- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT05978947
Mikrofluidische Chip-Methode versus Dichtegradientenzentrifugationsmethode für Samenparameter
Auswirkung der Spermienvorbereitung durch eine mikrofluidische Chip-Methode im Vergleich zu einer Dichtegradienten-Zentrifugationsmethode auf Samenparameter
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Unfruchtbarkeit betrifft jedes sechste Paar und kommt immer häufiger vor, da viele Frauen aus verschiedenen Gründen Heirat und Geburt hinauszögern. In-vitro-Fertilisation (IVF) ist die wirksamste Behandlung für Paare mit langjähriger Unfruchtbarkeit und hat Millionen unfruchtbarer Paare auf der ganzen Welt behandelt, seit vor mehr als 40 Jahren über die erste Geburt von IVF berichtet wurde. Trotz technologischer Fortschritte liegen die Schwangerschafts- und Geburtenraten in Europa im Jahr 2018 jedoch immer noch bei etwa 35 % bzw. 25 % pro Übertragung. 20–30 % aller unfruchtbaren Paare sind auf männliche Unfruchtbarkeit zurückzuführen. Samenparameter können die IVF-Ergebnisse beeinflussen und es wurde angenommen, dass der relative Beitrag von Spermien zu einer Lebendgeburt etwa 10–15 % beträgt.
Bei der IVF handelt es sich um Hormoninjektionen, die die Eierstöcke einer Frau dazu anregen, eine Reihe von Eizellen zu produzieren, die durch eine kleine Operation entnommen und dann mit Sperma vermischt werden, um im Labor Embryonen zu bilden. Normalerweise werden 2–5 Tage nach der Eizellentnahme ein oder zwei Embryonen in die Gebärmutter übertragen. Bei der IVF werden von Ehemännern gewonnene Samenproben üblicherweise durch eine Dichtegradientenzentrifugationsmethode verarbeitet, um die besseren Spermien für die Befruchtung zu isolieren. Durch die Dichtegradientenzentrifugation können Spermien mit relativ guter Beweglichkeit und normaler Morphologie angereichert werden. Es ist möglich, Spermien aus Samenproben mit einer sehr geringen Spermiendichte zu gewinnen. Es kann eine relativ gute Ausbeute erzielt werden. Der Aufbau des Dichtegradienten bestehend aus zwei Medien unterschiedlicher Dichte erfordert jedoch eine technische Ausbildung. Bei der Samenverarbeitung werden die Spermien durch den Gradienten zentrifugiert. Es ist bekannt, dass die Zentrifugation die Spermien durch die dabei entstehenden reaktiven Sauerstoffspezies erheblich schädigt. Es ist bekannt, dass reaktive Sauerstoffspezies eine der Hauptursachen für die Fragmentierung der Spermien-DNA und die daraus resultierenden unerwünschten Folgen wie Implantationsversagen und Fehlgeburten sind. Eine Metaanalyse zeigte, dass eine Schädigung der Spermien-DNA einen negativen Einfluss auf die klinische Schwangerschaft nach einer IVF hat.
Ein mikrofluidischer Chip, ein miniaturisiertes Gerät mit Kanälen und Kammern im Mikromaßstab zur Nanopartikelpräparation, wird seit Kurzem als alternative Technik zur Spermienpräparation eingesetzt. Mithilfe der Mikrofluidik-Technologie können Spermien den Chip passieren, der die natürliche Selektion in der Mikroumgebung des weiblichen Genitaltrakts genau simuliert. Die Technologie ermöglicht die Auswahl hochwertiger beweglicher Spermien aus Samenproben, ohne dass eine Zentrifugation erforderlich ist, was zu einer verringerten Bildung reaktiver Sauerstoffspezies führt.
Studien haben durchweg gezeigt, dass die Verwendung einer Mikrofluidik-Chip-Methode die DNA-Fragmentierung im Vergleich zur Dichtegradientenzentrifugationsmethode erheblich reduziert und die Motilität erhöht.
Diese randomisierte kontrollierte Studie zielt darauf ab, die Wirkung der Spermienvorbereitung durch eine Mikrofluidik-Chip-Methode mit einer Dichtegradientenzentrifugationsmethode auf Samenparameter vor Beginn einer randomisierten Studie zu vergleichen, in der die Auswirkungen der beiden Spermienvorbereitungsmethoden auf die kumulativen Lebendgeburtenraten von in verglichen werden vitro-Fertilisation.
Ziele:
Das erste Ziel dieser randomisierten kontrollierten Studie besteht darin, die Wirkung der Spermienvorbereitung durch eine mikrofluidische Chip-Methode mit einer Dichtegradientenzentrifugation auf Samenparameter zu vergleichen. Die Hypothese ist, dass die Verwendung der Spermienaufbereitung durch eine Mikrofluidik-Chip-Methode die Samenparameter verbessert.
Das zweite Ziel besteht darin, die Wirkung zweier verschiedener mikrofluidischer Chipplattformen auf Samenparameter zu vergleichen.
Versuchsdesign:
Es werden Männer rekrutiert, die am Zentrum für assistierte Reproduktion und Embryologie des Queen Mary Hospital eine Fruchtbarkeitsbehandlung durchführen.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: YU WING TONG, MBBS
- Telefonnummer: 92707722
- E-Mail: ptong@connect.hku.hk
Studienorte
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Hong Kong
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Hong Kong, Hong Kong, China
- Rekrutierung
- Department of Obstetrics and Gynaecology
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Kontakt:
- Ernest HY NG, MD
- Telefonnummer: 852-22553400
- E-Mail: nghye@hku.hk
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Hauptermittler:
- Ernest HY NG, MD
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Kind
- Erwachsene
- Älterer Erwachsener
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Spermienkonzentration des Rohsamens mit mindestens 5 Millionen beweglichen Spermien pro ml und einem Gesamtvolumen von nicht weniger als 1,5 ml.
Ausschlusskriterien:
- Spermienkonzentration des Rohsamens von weniger als 5 Millionen beweglichen Spermien pro ml
- Männer, die keine ejakulierte Samenprobe abgeben können
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Vervierfachen
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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Experimental: Mikrofluidische Chip-Methode
Es wird das Spermientrenngerät ZyMōt Multi 850µL (ZyMōt Fertility, Inc) verwendet.
Die Mikrofluidikkammer wird gemäß den Anweisungen des Herstellers verwendet.
850 μL der Samenprobe werden in den Einlassanschluss des Geräts gegeben und 750 μL Befruchtungsmedium werden in den Auslassanschluss gegeben.
Anschließend wird das Gerät in 6 % CO2 bei 37 °C inkubiert.
Nach 30 Minuten werden 500 μL der vorbereiteten Probe an der Auslassöffnung entnommen und in ein beschriftetes Reagenzglas pipettiert.
Das Endvolumen wird für die Spermienzählung auf 1 ml eingestellt.
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Das ZyMōt Multi 850µL-Gerät ist ein Laborgerät, das für den Einsatz bei Verfahren der assistierten Reproduktionstechnik (ART) wie der intrauterinen Insemination (IUI) und der In-vitro-Fertilisation (IVF) entwickelt wurde.
Es handelt sich um ein Gerät zur Spermienvorbereitung, das eine proprietäre, patentierte Technologie verwendet, um bewegliche Spermien aus Samenproben für die Verwendung in ART-Verfahren zu isolieren und auszuwählen.
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Aktiver Komparator: Methode der Dichtegradientenzentrifugation
Nach der Verflüssigung wird die Spermienvorbereitung durch eine diskontinuierliche Dichtegradientenzentrifugationsmethode unter Verwendung von Spermiendichtegradientenmedien von Pureception (CooperSurgical, Dänemark) abgeschlossen.
Das nach der Zentrifugation resultierende Spermienpellet wird einmal mit dem Spermienwaschmedium (G-IVF Plus, Vitrolife, Schweden) gewaschen. Die gewaschenen Spermien werden mit demselben Medium resuspendiert, wodurch das Endvolumen auf 500 μl eingestellt wird.
Das Endvolumen wird für die Spermienzählung auf 1 ml eingestellt.
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Die Dichtegradientenzentrifugation ist eine Labortechnik, mit der verschiedene Arten von Zellen oder Partikeln anhand ihrer Dichte getrennt und isoliert werden.
Es wird häufig in verschiedenen Anwendungen eingesetzt, darunter in der Zellbiologie, Immunologie und der assistierten Reproduktionstechnologie (ART).
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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DNA-Fragmentierung durch Comet-Assay
Zeitfenster: 1 Monat
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Messung der DNA-Fragmentierung durch Comet-Assay unter Verwendung des Olivenschwanzmoments als quantitative Metrik.
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1 Monat
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Spermienanzahl
Zeitfenster: 1 Monat
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Spermienanzahl
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1 Monat
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Vorwärtsbewegung
Zeitfenster: 1 Monat
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Beurteilung der Vorwärtsbeweglichkeit von Spermien durch manuelle Beobachtung anhand der Kriterien der Weltgesundheitsorganisation (WHO).
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1 Monat
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Morphologie
Zeitfenster: 1 Monat
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Quantitative Beurteilung der Spermienmorphologie durch manuelle Beobachtung unter Verwendung der strengen Tygerberg-Kriterien.
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1 Monat
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Spermien-Aneuploidie
Zeitfenster: 1 Monat
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Quantitative Messung der Spermienaneuploidie durch Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH) unter Verwendung von Sonden für die Chromosomen X, Y, 13, 18 und 21.
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1 Monat
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Calciumionophor A23187-induzierter Akrosomreaktionstest
Zeitfenster: 1 Monat
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Quantitative Messung der durch Calciumionophor A23187 induzierten Akrosomreaktion in Spermien mittels Durchflusszytometrie.
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1 Monat
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Bindungstest für intakte Eizellen/Hemizona
Zeitfenster: 1 Monat
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Quantitative Messung der Spermienbindung an intakte Eizellen oder Hemizona mithilfe des Bindungstests für intakte Eizellen/Hemizona.
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1 Monat
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Von CASA gemessene Spermiengeschwindigkeiten
Zeitfenster: 1 Monat
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Quantitative Analyse der Spermiengeschwindigkeiten mithilfe des computergestützten Spermienanalysesystems (CASA), einschließlich der Bewertung der Vorwärtsbewegung, der krummlinigen Geschwindigkeit und der Linearität.
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1 Monat
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Analyse künstlicher Intelligenz
Zeitfenster: 1 Monat
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Quantitative Analyse der Spermienmorphologie mithilfe von Algorithmen der künstlichen Intelligenz.
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1 Monat
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Geschätzt)
Studienabschluss (Geschätzt)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Geschätzt)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Mehr Informationen
Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
Schlüsselwörter
Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen
Andere Studien-ID-Nummern
- UW 23-233
Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)
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Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird
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