Diese Seite wurde automatisch übersetzt und die Genauigkeit der Übersetzung wird nicht garantiert. Bitte wende dich an die englische Version für einen Quelltext.

Mikrofluidische Chip-Methode versus Dichtegradientenzentrifugationsmethode für Samenparameter

3. Dezember 2024 aktualisiert von: Professor Ernest Hung-Yu Ng

Auswirkung der Spermienvorbereitung durch eine mikrofluidische Chip-Methode im Vergleich zu einer Dichtegradienten-Zentrifugationsmethode auf Samenparameter

Unfruchtbarkeit betrifft viele Paare, wobei männliche Unfruchtbarkeit eine häufige Ursache ist. In-vitro-Fertilisation (IVF) ist eine wirksame Behandlung, die Erfolgsquote ist jedoch nicht hoch. Die Samenqualität kann sich auf die IVF-Ergebnisse auswirken und die derzeitige Methode zur Samenverarbeitung kann das Sperma und die DNA schädigen. Wissenschaftler testen derzeit eine neue Methode namens Mikrofluidik-Chip-Technologie, die DNA-Schäden reduziert und die Spermienbewegung erhöht. In dieser Studie wird die Wirksamkeit der Chip-Methode und der aktuellen Methode auf die Samenqualität bei Männern verglichen, die eine Fruchtbarkeitsklinik aufsuchen. Im Rahmen der Studie wird der gesammelte Samen nach dem Zufallsprinzip einer der beiden Methoden zugeordnet und die Samenqualität mithilfe verschiedener Tests sowie der Unterschied bei der Verwendung zweier verschiedener Mikrofluidik-Chip-Plattformen bewertet. Das primäre Ergebnis wird die DNA-Fragmentierung sein, weitere Ergebnisse umfassen die Spermienzahl und -motilität. Den Probanden würden Samenproben zur Analyse entnommen und sowohl die Proben als auch die Ergebnisse würden nicht für die Behandlung der Patienten verwendet.

Studienübersicht

Detaillierte Beschreibung

Unfruchtbarkeit betrifft jedes sechste Paar und kommt immer häufiger vor, da viele Frauen aus verschiedenen Gründen Heirat und Geburt hinauszögern. In-vitro-Fertilisation (IVF) ist die wirksamste Behandlung für Paare mit langjähriger Unfruchtbarkeit und hat Millionen unfruchtbarer Paare auf der ganzen Welt behandelt, seit vor mehr als 40 Jahren über die erste Geburt von IVF berichtet wurde. Trotz technologischer Fortschritte liegen die Schwangerschafts- und Geburtenraten in Europa im Jahr 2018 jedoch immer noch bei etwa 35 % bzw. 25 % pro Übertragung. 20–30 % aller unfruchtbaren Paare sind auf männliche Unfruchtbarkeit zurückzuführen. Samenparameter können die IVF-Ergebnisse beeinflussen und es wurde angenommen, dass der relative Beitrag von Spermien zu einer Lebendgeburt etwa 10–15 % beträgt.

Bei der IVF handelt es sich um Hormoninjektionen, die die Eierstöcke einer Frau dazu anregen, eine Reihe von Eizellen zu produzieren, die durch eine kleine Operation entnommen und dann mit Sperma vermischt werden, um im Labor Embryonen zu bilden. Normalerweise werden 2–5 Tage nach der Eizellentnahme ein oder zwei Embryonen in die Gebärmutter übertragen. Bei der IVF werden von Ehemännern gewonnene Samenproben üblicherweise durch eine Dichtegradientenzentrifugationsmethode verarbeitet, um die besseren Spermien für die Befruchtung zu isolieren. Durch die Dichtegradientenzentrifugation können Spermien mit relativ guter Beweglichkeit und normaler Morphologie angereichert werden. Es ist möglich, Spermien aus Samenproben mit einer sehr geringen Spermiendichte zu gewinnen. Es kann eine relativ gute Ausbeute erzielt werden. Der Aufbau des Dichtegradienten bestehend aus zwei Medien unterschiedlicher Dichte erfordert jedoch eine technische Ausbildung. Bei der Samenverarbeitung werden die Spermien durch den Gradienten zentrifugiert. Es ist bekannt, dass die Zentrifugation die Spermien durch die dabei entstehenden reaktiven Sauerstoffspezies erheblich schädigt. Es ist bekannt, dass reaktive Sauerstoffspezies eine der Hauptursachen für die Fragmentierung der Spermien-DNA und die daraus resultierenden unerwünschten Folgen wie Implantationsversagen und Fehlgeburten sind. Eine Metaanalyse zeigte, dass eine Schädigung der Spermien-DNA einen negativen Einfluss auf die klinische Schwangerschaft nach einer IVF hat.

Ein mikrofluidischer Chip, ein miniaturisiertes Gerät mit Kanälen und Kammern im Mikromaßstab zur Nanopartikelpräparation, wird seit Kurzem als alternative Technik zur Spermienpräparation eingesetzt. Mithilfe der Mikrofluidik-Technologie können Spermien den Chip passieren, der die natürliche Selektion in der Mikroumgebung des weiblichen Genitaltrakts genau simuliert. Die Technologie ermöglicht die Auswahl hochwertiger beweglicher Spermien aus Samenproben, ohne dass eine Zentrifugation erforderlich ist, was zu einer verringerten Bildung reaktiver Sauerstoffspezies führt.

Studien haben durchweg gezeigt, dass die Verwendung einer Mikrofluidik-Chip-Methode die DNA-Fragmentierung im Vergleich zur Dichtegradientenzentrifugationsmethode erheblich reduziert und die Motilität erhöht.

Diese randomisierte kontrollierte Studie zielt darauf ab, die Wirkung der Spermienvorbereitung durch eine Mikrofluidik-Chip-Methode mit einer Dichtegradientenzentrifugationsmethode auf Samenparameter vor Beginn einer randomisierten Studie zu vergleichen, in der die Auswirkungen der beiden Spermienvorbereitungsmethoden auf die kumulativen Lebendgeburtenraten von in verglichen werden vitro-Fertilisation.

Ziele:

Das erste Ziel dieser randomisierten kontrollierten Studie besteht darin, die Wirkung der Spermienvorbereitung durch eine mikrofluidische Chip-Methode mit einer Dichtegradientenzentrifugation auf Samenparameter zu vergleichen. Die Hypothese ist, dass die Verwendung der Spermienaufbereitung durch eine Mikrofluidik-Chip-Methode die Samenparameter verbessert.

Das zweite Ziel besteht darin, die Wirkung zweier verschiedener mikrofluidischer Chipplattformen auf Samenparameter zu vergleichen.

Versuchsdesign:

Es werden Männer rekrutiert, die am Zentrum für assistierte Reproduktion und Embryologie des Queen Mary Hospital eine Fruchtbarkeitsbehandlung durchführen.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Geschätzt)

80

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienkontakt

Studienorte

    • Hong Kong
      • Hong Kong, Hong Kong, China
        • Rekrutierung
        • Department of Obstetrics and Gynaecology
        • Kontakt:
          • Ernest HY NG, MD
          • Telefonnummer: 852-22553400
          • E-Mail: nghye@hku.hk
        • Hauptermittler:
          • Ernest HY NG, MD

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

  • Kind
  • Erwachsene
  • Älterer Erwachsener

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Ja

Beschreibung

Einschlusskriterien:

  • Spermienkonzentration des Rohsamens mit mindestens 5 Millionen beweglichen Spermien pro ml und einem Gesamtvolumen von nicht weniger als 1,5 ml.

Ausschlusskriterien:

  • Spermienkonzentration des Rohsamens von weniger als 5 Millionen beweglichen Spermien pro ml
  • Männer, die keine ejakulierte Samenprobe abgeben können

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Behandlung
  • Zuteilung: Zufällig
  • Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
  • Maskierung: Vervierfachen

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Experimental: Mikrofluidische Chip-Methode
Es wird das Spermientrenngerät ZyMōt Multi 850µL (ZyMōt Fertility, Inc) verwendet. Die Mikrofluidikkammer wird gemäß den Anweisungen des Herstellers verwendet. 850 μL der Samenprobe werden in den Einlassanschluss des Geräts gegeben und 750 μL Befruchtungsmedium werden in den Auslassanschluss gegeben. Anschließend wird das Gerät in 6 % CO2 bei 37 °C inkubiert. Nach 30 Minuten werden 500 μL der vorbereiteten Probe an der Auslassöffnung entnommen und in ein beschriftetes Reagenzglas pipettiert. Das Endvolumen wird für die Spermienzählung auf 1 ml eingestellt.
Das ZyMōt Multi 850µL-Gerät ist ein Laborgerät, das für den Einsatz bei Verfahren der assistierten Reproduktionstechnik (ART) wie der intrauterinen Insemination (IUI) und der In-vitro-Fertilisation (IVF) entwickelt wurde. Es handelt sich um ein Gerät zur Spermienvorbereitung, das eine proprietäre, patentierte Technologie verwendet, um bewegliche Spermien aus Samenproben für die Verwendung in ART-Verfahren zu isolieren und auszuwählen.
Aktiver Komparator: Methode der Dichtegradientenzentrifugation
Nach der Verflüssigung wird die Spermienvorbereitung durch eine diskontinuierliche Dichtegradientenzentrifugationsmethode unter Verwendung von Spermiendichtegradientenmedien von Pureception (CooperSurgical, Dänemark) abgeschlossen. Das nach der Zentrifugation resultierende Spermienpellet wird einmal mit dem Spermienwaschmedium (G-IVF Plus, Vitrolife, Schweden) gewaschen. Die gewaschenen Spermien werden mit demselben Medium resuspendiert, wodurch das Endvolumen auf 500 μl eingestellt wird. Das Endvolumen wird für die Spermienzählung auf 1 ml eingestellt.
Die Dichtegradientenzentrifugation ist eine Labortechnik, mit der verschiedene Arten von Zellen oder Partikeln anhand ihrer Dichte getrennt und isoliert werden. Es wird häufig in verschiedenen Anwendungen eingesetzt, darunter in der Zellbiologie, Immunologie und der assistierten Reproduktionstechnologie (ART).

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
DNA-Fragmentierung durch Comet-Assay
Zeitfenster: 1 Monat
Messung der DNA-Fragmentierung durch Comet-Assay unter Verwendung des Olivenschwanzmoments als quantitative Metrik.
1 Monat

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Spermienanzahl
Zeitfenster: 1 Monat
Spermienanzahl
1 Monat
Vorwärtsbewegung
Zeitfenster: 1 Monat
Beurteilung der Vorwärtsbeweglichkeit von Spermien durch manuelle Beobachtung anhand der Kriterien der Weltgesundheitsorganisation (WHO).
1 Monat
Morphologie
Zeitfenster: 1 Monat
Quantitative Beurteilung der Spermienmorphologie durch manuelle Beobachtung unter Verwendung der strengen Tygerberg-Kriterien.
1 Monat
Spermien-Aneuploidie
Zeitfenster: 1 Monat
Quantitative Messung der Spermienaneuploidie durch Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH) unter Verwendung von Sonden für die Chromosomen X, Y, 13, 18 und 21.
1 Monat
Calciumionophor A23187-induzierter Akrosomreaktionstest
Zeitfenster: 1 Monat
Quantitative Messung der durch Calciumionophor A23187 induzierten Akrosomreaktion in Spermien mittels Durchflusszytometrie.
1 Monat
Bindungstest für intakte Eizellen/Hemizona
Zeitfenster: 1 Monat
Quantitative Messung der Spermienbindung an intakte Eizellen oder Hemizona mithilfe des Bindungstests für intakte Eizellen/Hemizona.
1 Monat
Von CASA gemessene Spermiengeschwindigkeiten
Zeitfenster: 1 Monat
Quantitative Analyse der Spermiengeschwindigkeiten mithilfe des computergestützten Spermienanalysesystems (CASA), einschließlich der Bewertung der Vorwärtsbewegung, der krummlinigen Geschwindigkeit und der Linearität.
1 Monat
Analyse künstlicher Intelligenz
Zeitfenster: 1 Monat
Quantitative Analyse der Spermienmorphologie mithilfe von Algorithmen der künstlichen Intelligenz.
1 Monat

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

1. Juli 2023

Primärer Abschluss (Geschätzt)

31. März 2025

Studienabschluss (Geschätzt)

31. März 2025

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

29. Juni 2023

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

29. Juli 2023

Zuerst gepostet (Tatsächlich)

7. August 2023

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Geschätzt)

5. Dezember 2024

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

3. Dezember 2024

Zuletzt verifiziert

1. Dezember 2024

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Zusätzliche relevante MeSH-Bedingungen

Andere Studien-ID-Nummern

  • UW 23-233

Plan für individuelle Teilnehmerdaten (IPD)

Planen Sie, individuelle Teilnehmerdaten (IPD) zu teilen?

NEIN

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Ja

Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird

Ja

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

Abonnieren