Ta strona została przetłumaczona automatycznie i dokładność tłumaczenia nie jest gwarantowana. Proszę odnieść się do angielska wersja za tekst źródłowy.

Metoda chipów mikroprzepływowych a metoda wirowania w gradiencie gęstości na parametry nasienia

3 grudnia 2024 zaktualizowane przez: Professor Ernest Hung-Yu Ng

Wpływ przygotowania nasienia metodą chipa mikroprzepływowego w porównaniu z metodą wirowania w gradiencie gęstości na parametry nasienia

Niepłodność dotyka wiele par, a niepłodność męska jest częstą przyczyną. Zapłodnienie in vitro (IVF) jest skuteczną metodą leczenia, ale jej skuteczność nie jest wysoka. Jakość nasienia może wpływać na wyniki IVF, a obecna metoda przetwarzania nasienia może uszkodzić plemniki i DNA. Naukowcy testują teraz nową metodę zwaną technologią chipów mikroprzepływowych, która zmniejsza uszkodzenia DNA i zwiększa ruchliwość plemników. W tym badaniu porównana zostanie skuteczność metody chipowej i obecnej metody na jakość nasienia u mężczyzn uczęszczających do klinik niepłodności. Badanie losowo przyporządkuje pobrane nasienie do jednej z dwóch metod i oceni jakość nasienia za pomocą różnych testów, a także różnicę w użyciu dwóch różnych platform mikroprzepływowych. Głównym wynikiem będzie fragmentacja DNA, a inne wyniki obejmują liczbę i ruchliwość plemników. Próbki nasienia byłyby pobierane od badanych do analizy i że zarówno próbki, jak i wyniki nie byłyby wykorzystywane w leczeniu pacjentów.

Przegląd badań

Szczegółowy opis

Niepłodność dotyka jedną na sześć par i jest coraz bardziej powszechna, ponieważ wiele kobiet opóźnia małżeństwo i poród z różnych powodów. Zapłodnienie in vitro (IVF) jest najskuteczniejszym sposobem leczenia par z długotrwałą niepłodnością i wyleczyło miliony niepłodnych par na całym świecie, odkąd ponad 40 lat temu zgłoszono pierwsze porody zapłodnienia in vitro. Jednak pomimo postępu technologicznego wskaźniki ciąż i urodzeń utrzymują się na poziomie około 35% i 25% na przeniesienie w Europie w 2018 r. Wśród wszystkich niepłodnych par 20-30% jest spowodowanych niepłodnością męską. Parametry nasienia mogą wpływać na wyniki IVF i postawiono hipotezę, że względny udział plemników w żywym porodzie wynosi około 10-15%.

IVF obejmuje zastrzyki hormonalne w celu stymulacji jajników kobiety do produkcji pewnej liczby komórek jajowych, które są pobierane podczas drobnej operacji, a następnie mieszane z plemnikami w celu utworzenia zarodków w laboratorium. Zwykle jeden lub dwa zarodki są przenoszone do macicy 2-5 dni po pobraniu komórki jajowej. W IVF próbki nasienia wyprodukowane przez mężów są zwykle przetwarzane metodą wirowania w gradiencie gęstości w celu wyizolowania lepszych plemników do zapłodnienia. Wirowanie w gradiencie gęstości może wzbogacić plemniki o stosunkowo dobrej ruchliwości i prawidłowej morfologii. Możliwe jest odzyskanie plemników z próbek nasienia o bardzo niskiej gęstości plemników. Może zapewnić stosunkowo dobre plony. Jednak ustawienie gradientu gęstości składającego się z dwóch mediów o różnych gęstościach wymaga przeszkolenia technicznego. Podczas przetwarzania nasienia plemniki są odwirowywane przez gradient. Wiadomo, że wirowanie powoduje znaczne uszkodzenia plemników przez reaktywne formy tlenu wytwarzane podczas tego procesu. Wiadomo, że reaktywne formy tlenu są jedną z głównych przyczyn fragmentacji DNA plemników i późniejszych niepożądanych skutków, w tym niepowodzenia implantacji i poronienia. Metaanaliza wykazała, że ​​uszkodzenie DNA plemników ma negatywny wpływ na ciążę kliniczną po zapłodnieniu in vitro.

Chip mikroprzepływowy, który jest zminiaturyzowanym urządzeniem zawierającym kanały i komory w zakresie mikroskali do przygotowania nanocząstek, jest ostatnio stosowany jako alternatywna technika przygotowania nasienia. Dzięki zastosowaniu technologii mikroprzepływowej plemniki mogą przejść przez chip, który dokładnie symuluje naturalną selekcję w mikrośrodowisku żeńskich narządów płciowych. Technologia umożliwia selekcję wysokiej jakości ruchliwych plemników z próbek nasienia bez konieczności wirowania, co prowadzi do ograniczenia powstawania reaktywnych form tlenu.

Badania konsekwentnie wykazały, że zastosowanie metody chipów mikroprzepływowych znacznie zmniejsza fragmentację DNA i zwiększa ruchliwość w porównaniu z metodą wirowania w gradiencie gęstości.

Celem tego randomizowanego, kontrolowanego badania jest porównanie wpływu przygotowania nasienia metodą chipa mikroprzepływowego z metodą wirowania w gradiencie gęstości na parametry nasienia przed rozpoczęciem randomizowanego badania porównującego wpływ dwóch metod przygotowania nasienia na skumulowany wskaźnik żywych urodzeń w zapłodnienie in vitro.

Cele:

Pierwszym celem tej randomizowanej kontrolowanej próby jest porównanie wpływu przygotowania plemników metodą mikroprzepływową z chipem w porównaniu z wirowaniem w gradiencie gęstości na parametry nasienia. Postawiono hipotezę, że zastosowanie preparatów nasienia metodą chipów mikroprzepływowych poprawia parametry nasienia.

Drugim celem jest porównanie wpływu dwóch różnych mikroprzepływowych platform czipowych na parametry nasienia.

Projekt próbny:

Zostaną zatrudnieni mężczyźni uczęszczający do Centrum Wspomaganego Rozrodu i Embriologii Szpitala Queen Mary w celu leczenia niepłodności.

Typ studiów

Interwencyjne

Zapisy (Szacowany)

80

Faza

  • Nie dotyczy

Kontakty i lokalizacje

Ta sekcja zawiera dane kontaktowe osób prowadzących badanie oraz informacje o tym, gdzie badanie jest przeprowadzane.

Kontakt w sprawie studiów

Lokalizacje studiów

    • Hong Kong
      • Hong Kong, Hong Kong, Chiny
        • Rekrutacyjny
        • Department of Obstetrics and Gynaecology
        • Kontakt:
          • Ernest HY NG, MD
          • Numer telefonu: 852-22553400
          • E-mail: nghye@hku.hk
        • Główny śledczy:
          • Ernest HY NG, MD

Kryteria uczestnictwa

Badacze szukają osób, które pasują do określonego opisu, zwanego kryteriami kwalifikacyjnymi. Niektóre przykłady tych kryteriów to ogólny stan zdrowia danej osoby lub wcześniejsze leczenie.

Kryteria kwalifikacji

Wiek uprawniający do nauki

  • Dziecko
  • Dorosły
  • Starszy dorosły

Akceptuje zdrowych ochotników

Tak

Opis

Kryteria przyjęcia:

  • Stężenie plemników w surowym nasieniu z co najmniej 5 milionami ruchliwych plemników na ml o łącznej objętości nie mniejszej niż 1,5 ml.

Kryteria wyłączenia:

  • Stężenie plemników w surowym nasieniu poniżej 5 milionów ruchliwych plemników na ml
  • Mężczyźni, którzy nie są w stanie dostarczyć próbki nasienia z wytryskiem

Plan studiów

Ta sekcja zawiera szczegółowe informacje na temat planu badania, w tym sposób zaprojektowania badania i jego pomiary.

Jak projektuje się badanie?

Szczegóły projektu

  • Główny cel: Leczenie
  • Przydział: Randomizowane
  • Model interwencyjny: Przydział równoległy
  • Maskowanie: Poczwórny

Broń i interwencje

Grupa uczestników / Arm
Interwencja / Leczenie
Eksperymentalny: Metoda chipów mikroprzepływowych
Zostanie użyte urządzenie do separacji plemników — urządzenie ZyMōt Multi 850µL (ZyMōt Fertility, Inc). Komora mikroprzepływowa będzie użytkowana zgodnie z zaleceniami producenta. 850 μl próbki nasienia zostanie dodane do portu wlotowego urządzenia, a 750 μl pożywki do zapłodnienia zostanie dodane do portu wylotowego. Urządzenie będzie następnie inkubowane w 6% CO2 w temperaturze 37°C. Po 30 minutach 500 μl przygotowanej próbki z portu wylotowego zostanie usunięte i przepipetowane do oznaczonej probówki testowej. Końcowa objętość zostanie dostosowana do 1 ml w celu zliczenia plemników.
Urządzenie ZyMōt Multi 850µL to narzędzie laboratoryjne przeznaczone do stosowania w procedurach technologii wspomaganego rozrodu (ART), takich jak inseminacja domaciczna (IUI) i zapłodnienie in vitro (IVF). Jest to urządzenie do przygotowywania nasienia, które wykorzystuje zastrzeżoną opatentowaną technologię do izolowania i selekcji ruchliwych plemników z próbek nasienia do wykorzystania w procedurach ART.
Aktywny komparator: Metoda wirowania w gradiencie gęstości
Po upłynnieniu przygotowanie plemników zostanie zakończone metodą wirowania w nieciągłym gradiencie gęstości, przy użyciu ośrodka Pureception (CooperSurgical, Dania) o gradiencie gęstości plemników. Powstały osad plemników po odwirowaniu zostanie przemyty jednokrotnie środkiem do płukania plemników (G-IVF Plus, Vitrolife, Szwecja). Przemyte plemniki zostaną ponownie zawieszone w tym samym podłożu, dostosowując końcową objętość do 500 μl. Końcowa objętość zostanie dostosowana do 1 ml w celu zliczenia plemników.
Wirowanie w gradiencie gęstości to technika laboratoryjna stosowana do oddzielania i izolowania różnych typów komórek lub cząstek na podstawie ich gęstości. Jest powszechnie stosowany w różnych zastosowaniach, w tym w biologii komórki, immunologii i technologii wspomaganego rozrodu (ART).

Co mierzy badanie?

Podstawowe miary wyniku

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
Fragmentacja DNA w teście Comet
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Pomiar fragmentacji DNA za pomocą testu Comet z wykorzystaniem momentu ogona Olive jako metryki ilościowej.
1 miesiąc

Miary wyników drugorzędnych

Miara wyniku
Opis środka
Ramy czasowe
Ilość plemników
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Ilość plemników
1 miesiąc
Ruchliwość do przodu
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Ocena ruchliwości plemników do przodu poprzez obserwację manualną z wykorzystaniem kryteriów Światowej Organizacji Zdrowia (WHO).
1 miesiąc
Morfologia
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Ilościowa ocena morfologii plemników poprzez obserwację manualną z zastosowaniem ścisłych kryteriów Tygerberga.
1 miesiąc
Aneuploidia plemników
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Ilościowy pomiar aneuploidii plemników metodą fluorescencyjnej hybrydyzacji in situ (FISH) z użyciem sond dla chromosomów X, Y, 13, 18 i 21.
1 miesiąc
Test reakcji akrosomalnej indukowanej jonoforem wapnia A23187
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Ilościowy pomiar reakcji akrosomalnej plemników indukowanej przez jonofor wapnia A23187 za pomocą cytometrii przepływowej.
1 miesiąc
Test wiązania nienaruszonych oocytów/hemizona
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Ilościowy pomiar wiązania plemników z nienaruszonymi oocytami lub hemizonem za pomocą testu wiązania nienaruszonych oocytów/hemizona.
1 miesiąc
Prędkości plemników mierzone metodą CASA
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Ilościowa analiza prędkości plemników za pomocą systemu wspomaganej komputerowo analizy nasienia (CASA), w tym ocena ruchliwości do przodu, prędkości krzywoliniowej i liniowości.
1 miesiąc
Analiza sztucznej inteligencji
Ramy czasowe: 1 miesiąc
Ilościowa analiza morfologii plemników z wykorzystaniem algorytmów sztucznej inteligencji.
1 miesiąc

Współpracownicy i badacze

Tutaj znajdziesz osoby i organizacje zaangażowane w to badanie.

Daty zapisu na studia

Daty te śledzą postęp w przesyłaniu rekordów badań i podsumowań wyników do ClinicalTrials.gov. Zapisy badań i zgłoszone wyniki są przeglądane przez National Library of Medicine (NLM), aby upewnić się, że spełniają określone standardy kontroli jakości, zanim zostaną opublikowane na publicznej stronie internetowej.

Główne daty studiów

Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)

1 lipca 2023

Zakończenie podstawowe (Szacowany)

31 marca 2025

Ukończenie studiów (Szacowany)

31 marca 2025

Daty rejestracji na studia

Pierwszy przesłany

29 czerwca 2023

Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości

29 lipca 2023

Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)

7 sierpnia 2023

Aktualizacje rekordów badań

Ostatnia wysłana aktualizacja (Szacowany)

5 grudnia 2024

Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości

3 grudnia 2024

Ostatnia weryfikacja

1 grudnia 2024

Więcej informacji

Terminy związane z tym badaniem

Inne numery identyfikacyjne badania

  • UW 23-233

Plan dla danych uczestnika indywidualnego (IPD)

Planujesz udostępniać dane poszczególnych uczestników (IPD)?

NIE

Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze

Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA

Nie

Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA

Tak

produkt wyprodukowany i wyeksportowany z USA

Tak

Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .

Subskrybuj