- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT07511062
Axatilimab kombinert med Decitabin/Venetoclax for behandling av TP53-mutert AML
31. mars 2026 oppdatert av: Northside Hospital, Inc.
Axatilimab kombinert med decitabin/venetoklaks for behandling av TP53-mutert/slettet AML-pasienter
Axatilimab kombinert med Decitabin/Venetoclax for behandling av pasienter med TP53-mutert/slettet AML
Studieoversikt
Status
Har ikke rekruttert ennå
Intervensjon / Behandling
Studietype
Intervensjonell
Registrering (Antatt)
32
Fase
- Fase 1
Kontakter og plasseringer
Denne delen inneholder kontaktinformasjon for de som utfører studien, og informasjon om hvor denne studien blir utført.
Studiekontakt
- Navn: Caitlin Guzowski
- Telefonnummer: 404-851-8523
- E-post: caitlin.guzowski@northside.com
Studer Kontakt Backup
- Navn: Scott R Solomon, MD
- Telefonnummer: 404-255-1930
- E-post: ssolomon@bmtga.com
Studiesteder
-
-
Georgia
-
Atlanta, Georgia, Forente stater, 30342
- Northside Hospital, Inc.
-
Ta kontakt med:
- Caitlin Guzowski
- Telefonnummer: 404-851-8523
- E-post: caitlin.guzowski@northside.com
-
-
Deltakelseskriterier
Forskere ser etter personer som passer til en bestemt beskrivelse, kalt kvalifikasjonskriterier. Noen eksempler på disse kriteriene er en persons generelle helsetilstand eller tidligere behandlinger.
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
- Voksen
- Eldre voksen
Tar imot friske frivillige
Nei
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- MDS/AML eller AML med TP53-mutasjon eller -deleksjon, definert som:
- større enn eller lik 10% OG (ett av følgende):
- tilstedeværelse av TP53-mutasjon
- tilstedeværelse av TP53-deleksjon ved FISH
- positiv TP53-farging ved IHC av diagnostisk beinmarg
- Enten ubehandlet eller første redningsbehandling (primær refraktær eller første tilbakefall)
Eksklusjonskriterier:
- KPS <60
- aktiv ukontrollert infeksjon
- tidligere HIV eller aktiv HBV- eller HCV-infeksjon
- nåværende aktiv annen malignitet
- beregnet CrCl <40mL/min
- AST og/eller ALT og/eller direkte bilirubin >3x øvre normalgrense
- hjertets ejeksjonsfraksjon <40% eller historie med ukontrollerte hjerterytmeforstyrrelser
- historie med akutt eller kronisk bukspyttkjertelbetennelse, historie med myositt
- kjent leukemibefengelse av sentralnervesystemet
- hematopoietisk stamcelletransplantasjon innen 3 måneder etter behandlingsstart og/eller vedvarende ikke-hematologiske toksisiteter av grad 2+ relatert til transplantasjonen
- aktiv akutt eller kronisk GVHD som krever immunsuppressiv behandling
Studieplan
Denne delen gir detaljer om studieplanen, inkludert hvordan studien er utformet og hva studien måler.
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: N/A
- Intervensjonsmodell: Enkeltgruppeoppdrag
- Masking: Ingen (Open Label)
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentell: Axatilimab+Decitabin+Venetoklaks
|
20mg/m²/d x5 dager (indusering & konsolidering)
400mg/d x14 dager (induksjon); 400mg/d x7 dager (konsolidering)
Doseøkning, gitt på dag 1 og 15 i hver syklus
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Fase 2 dosenivåbestemmelse
Tidsramme: 1 år
|
Å finne den anbefalte fase 2-dosen (RP2D) av axatilimab når den kombineres med decitabin og venetoklaks ved å registrere bivirkninger basert på CTCAE v.5.
|
1 år
|
|
Estimering av MRD-negativ komplett remisjon
Tidsramme: 2 måneder
|
For å estimere MRD-negativ fullstendig remisjonsrate etter 1-2 sykluser med induksjonskjemoterapi med decitabin og venetoklaks ved å gjennomføre benmargsbiopsier og sykdomsresponsvurderinger etter induksjon
|
2 måneder
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Estimering av responsrater, total overlevelse
Tidsramme: 1 år
|
For å estimere komplett responsrate ved å evaluere beinmargbiopsier som finner sted etter induksjon og hver 3. måned under konsolidering
|
1 år
|
|
Evaluering av sikkerheten til behandlingsregimet
Tidsramme: 1 år
|
Å evaluere sikkerheten og tolerabiliteten til axatilimab når den kombineres med decitabin og venetoklaks ved å registrere alle bivirkninger i henhold til CTCAE v5.0
|
1 år
|
|
Estimering av progresjonsfri overlevelse
Tidsramme: 1 år
|
For å estimere progresjonsfri overlevelsesrate ved å evaluere beinmargbiopsier som foretas etter induksjon og hver 3. måned under konsolidering
|
1 år
|
|
Estimering av total overlevelse
Tidsramme: 1 år
|
For å estimere overlevelsesratene ved å kontakte pasienter 1 år etter fullført terapi for overlevelsesdata
|
1 år
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Det er her du vil finne personer og organisasjoner som er involvert i denne studien.
Sponsor
Samarbeidspartnere
Publikasjoner og nyttige lenker
Den som er ansvarlig for å legge inn informasjon om studien leverer frivillig disse publikasjonene. Disse kan handle om alt relatert til studiet.
Generelle publikasjoner
- Wolff D, Cutler C, Lee SJ, Pusic I, Bittencourt H, White J, Hamadani M, Arai S, Salhotra A, Perez-Simon JA, Alousi A, Choe H, Kwon M, Bermudez A, Kim I, Socie G, Chhabra S, Radojcic V, O'Toole T, Tian C, Ordentlich P, DeFilipp Z, Kitko CL; AGAVE-201 Investigators. Axatilimab in Recurrent or Refractory Chronic Graft-versus-Host Disease. N Engl J Med. 2024 Sep 19;391(11):1002-1014. doi: 10.1056/NEJMoa2401537.
- Kitko CL, Arora M, DeFilipp Z, Zaid MA, Di Stasi A, Radojcic V, Betts CB, Coussens LM, Meyers ML, Qamoos H, Ordentlich P, Kumar V, Quaranto C, Schmitt A, Gu Y, Blazar BR, Wang TP, Salhotra A, Pusic I, Jagasia M, Lee SJ. Axatilimab for Chronic Graft-Versus-Host Disease After Failure of at Least Two Prior Systemic Therapies: Results of a Phase I/II Study. J Clin Oncol. 2023 Apr 1;41(10):1864-1875. doi: 10.1200/JCO.22.00958. Epub 2022 Dec 2.
- Alexander KA, Flynn R, Lineburg KE, Kuns RD, Teal BE, Olver SD, Lor M, Raffelt NC, Koyama M, Leveque L, Le Texier L, Melino M, Markey KA, Varelias A, Engwerda C, Serody JS, Janela B, Ginhoux F, Clouston AD, Blazar BR, Hill GR, MacDonald KP. CSF-1-dependant donor-derived macrophages mediate chronic graft-versus-host disease. J Clin Invest. 2014 Oct;124(10):4266-80. doi: 10.1172/JCI75935. Epub 2014 Aug 26.
- Lemmon MA, Schlessinger J. Cell signaling by receptor tyrosine kinases. Cell. 2010 Jun 25;141(7):1117-34. doi: 10.1016/j.cell.2010.06.011.
- Rosnet O, Birnbaum D. Hematopoietic receptors of class III receptor-type tyrosine kinases. Crit Rev Oncog. 1993;4(6):595-613.
- Xu L, Xie X, Li X, Duan W, Qiu L, Liu H, Luo Y. Inflammatory level under different p53 mutation status and the regulation role of curcumin in tumor microenvironment. Immunobiology. 2022 Mar;227(2):152177. doi: 10.1016/j.imbio.2022.152177. Epub 2022 Jan 7.
- Blagih J, Zani F, Chakravarty P, Hennequart M, Pilley S, Hobor S, Hock AK, Walton JB, Morton JP, Gronroos E, Mason S, Yang M, McNeish I, Swanton C, Blyth K, Vousden KH. Cancer-Specific Loss of p53 Leads to a Modulation of Myeloid and T Cell Responses. Cell Rep. 2020 Jan 14;30(2):481-496.e6. doi: 10.1016/j.celrep.2019.12.028.
- Vadakekolathu J, Lai C, Reeder S, Church SE, Hood T, Lourdusamy A, Rettig MP, Aldoss I, Advani AS, Godwin J, Wieduwilt MJ, Arellano M, Muth J, Yau TO, Ravandi F, Sweet K, Altmann H, Foulds GA, Stolzel F, Middeke JM, Ciciarello M, Curti A, Valk PJM, Lowenberg B, Gojo I, Bornhauser M, DiPersio JF, Davidson-Moncada JK, Rutella S. TP53 abnormalities correlate with immune infiltration and associate with response to flotetuzumab immunotherapy in AML. Blood Adv. 2020 Oct 27;4(20):5011-5024. doi: 10.1182/bloodadvances.2020002512.
- Mussai F, De Santo C, Abu-Dayyeh I, Booth S, Quek L, McEwen-Smith RM, Qureshi A, Dazzi F, Vyas P, Cerundolo V. Acute myeloid leukemia creates an arginase-dependent immunosuppressive microenvironment. Blood. 2013 Aug 1;122(5):749-58. doi: 10.1182/blood-2013-01-480129. Epub 2013 Jun 3.
- Sierra-Filardi E, Nieto C, Dominguez-Soto A, Barroso R, Sanchez-Mateos P, Puig-Kroger A, Lopez-Bravo M, Joven J, Ardavin C, Rodriguez-Fernandez JL, Sanchez-Torres C, Mellado M, Corbi AL. CCL2 shapes macrophage polarization by GM-CSF and M-CSF: identification of CCL2/CCR2-dependent gene expression profile. J Immunol. 2014 Apr 15;192(8):3858-67. doi: 10.4049/jimmunol.1302821. Epub 2014 Mar 17.
- Hartwig T, Montinaro A, von Karstedt S, Sevko A, Surinova S, Chakravarthy A, Taraborrelli L, Draber P, Lafont E, Arce Vargas F, El-Bahrawy MA, Quezada SA, Walczak H. The TRAIL-Induced Cancer Secretome Promotes a Tumor-Supportive Immune Microenvironment via CCR2. Mol Cell. 2017 Feb 16;65(4):730-742.e5. doi: 10.1016/j.molcel.2017.01.021.
- Qian BZ, Li J, Zhang H, Kitamura T, Zhang J, Campion LR, Kaiser EA, Snyder LA, Pollard JW. CCL2 recruits inflammatory monocytes to facilitate breast-tumour metastasis. Nature. 2011 Jun 8;475(7355):222-5. doi: 10.1038/nature10138.
- Corzo CA, Condamine T, Lu L, Cotter MJ, Youn JI, Cheng P, Cho HI, Celis E, Quiceno DG, Padhya T, McCaffrey TV, McCaffrey JC, Gabrilovich DI. HIF-1alpha regulates function and differentiation of myeloid-derived suppressor cells in the tumor microenvironment. J Exp Med. 2010 Oct 25;207(11):2439-53. doi: 10.1084/jem.20100587. Epub 2010 Sep 27.
- Stromnes IM, Greenberg PD, Hingorani SR. Molecular pathways: myeloid complicity in cancer. Clin Cancer Res. 2014 Oct 15;20(20):5157-70. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-13-0866. Epub 2014 Jul 21.
- Sallman DA, McLemore AF, Aldrich AL, Komrokji RS, McGraw KL, Dhawan A, Geyer S, Hou HA, Eksioglu EA, Sullivan A, Warren S, MacBeth KJ, Meggendorfer M, Haferlach T, Boettcher S, Ebert BL, Al Ali NH, Lancet JE, Cleveland JL, Padron E, List AF. TP53 mutations in myelodysplastic syndromes and secondary AML confer an immunosuppressive phenotype. Blood. 2020 Dec 10;136(24):2812-2823. doi: 10.1182/blood.2020006158.
- Tohumeken S, Baur R, Bottcher M, Stoll A, Loschinski R, Panagiotidis K, Braun M, Saul D, Volkl S, Baur AS, Bruns H, Mackensen A, Jitschin R, Mougiakakos D. Palmitoylated Proteins on AML-Derived Extracellular Vesicles Promote Myeloid-Derived Suppressor Cell Differentiation via TLR2/Akt/mTOR Signaling. Cancer Res. 2020 Sep 1;80(17):3663-3676. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-20-0024. Epub 2020 Jun 30.
- Pyzer AR, Stroopinsky D, Rajabi H, Washington A, Tagde A, Coll M, Fung J, Bryant MP, Cole L, Palmer K, Somaiya P, Karp Leaf R, Nahas M, Apel A, Jain S, McMasters M, Mendez L, Levine J, Joyce R, Arnason J, Pandolfi PP, Kufe D, Rosenblatt J, Avigan D. MUC1-mediated induction of myeloid-derived suppressor cells in patients with acute myeloid leukemia. Blood. 2017 Mar 30;129(13):1791-1801. doi: 10.1182/blood-2016-07-730614. Epub 2017 Jan 26.
- Wang H, Tao Q, Wang Z, Zhang Q, Xiao H, Zhou M, Dong Y, Zhai Z. Circulating Monocytic Myeloid-Derived Suppressor Cells Are Elevated and Associated with Poor Prognosis in Acute Myeloid Leukemia. J Immunol Res. 2020 Dec 21;2020:7363084. doi: 10.1155/2020/7363084. eCollection 2020.
- Sun H, Li Y, Zhang ZF, Ju Y, Li L, Zhang BC, Liu B. Increase in myeloid-derived suppressor cells (MDSCs) associated with minimal residual disease (MRD) detection in adult acute myeloid leukemia. Int J Hematol. 2015 Nov;102(5):579-86. doi: 10.1007/s12185-015-1865-2. Epub 2015 Sep 10.
- Ren X, Tao Q, Wang H, Zhang Q, Zhou M, Liu L, Zhai Z. Monocytic Myeloid-Derived Suppressor Cells But Not Monocytes Predict Poor Prognosis of Acute Myeloid Leukemia. Turk J Haematol. 2022 Dec 1;39(4):230-236. doi: 10.4274/tjh.galenos.2022.2022.0137. Epub 2022 Aug 15.
- Peterlin P, Debord C, Eveillard M, Garnier A, Le Bourgeois A, Guillaume T, Jullien M, Bene MC, Chevallier P. Peripheral levels of monocytic myeloid-derived suppressive cells before and after first induction predict relapse and survivals in AML patients. J Cell Mol Med. 2022 Nov;26(21):5486-5492. doi: 10.1111/jcmm.17576. Epub 2022 Oct 13.
- Hamilton TA, Zhao C, Pavicic PG Jr, Datta S. Myeloid colony-stimulating factors as regulators of macrophage polarization. Front Immunol. 2014 Nov 21;5:554. doi: 10.3389/fimmu.2014.00554. eCollection 2014.
- Edwards DK 5th, Watanabe-Smith K, Rofelty A, Damnernsawad A, Laderas T, Lamble A, Lind EF, Kaempf A, Mori M, Rosenberg M, d'Almeida A, Long N, Agarwal A, Sweeney DT, Loriaux M, McWeeney SK, Tyner JW. CSF1R inhibitors exhibit antitumor activity in acute myeloid leukemia by blocking paracrine signals from support cells. Blood. 2019 Feb 7;133(6):588-599. doi: 10.1182/blood-2018-03-838946. Epub 2018 Nov 13.
- Yang X, Feng W, Wang R, Yang F, Wang L, Chen S, Ru Y, Cheng T, Zheng G. Repolarizing heterogeneous leukemia-associated macrophages with more M1 characteristics eliminates their pro-leukemic effects. Oncoimmunology. 2017 Dec 26;7(4):e1412910. doi: 10.1080/2162402X.2017.1412910. eCollection 2018.
- Xu ZJ, Gu Y, Wang CZ, Jin Y, Wen XM, Ma JC, Tang LJ, Mao ZW, Qian J, Lin J. The M2 macrophage marker CD206: a novel prognostic indicator for acute myeloid leukemia. Oncoimmunology. 2019 Nov 3;9(1):1683347. doi: 10.1080/2162402X.2019.1683347. eCollection 2020.
- Smirnova T, Spertini C, Spertini O. CSF1R Inhibition Combined with GM-CSF Reprograms Macrophages and Disrupts Protumoral Interplays with AML Cells. Cancers (Basel). 2021 Oct 21;13(21):5289. doi: 10.3390/cancers13215289.
- Brauneck F, Fischer B, Witt M, Muschhammer J, Oelrich J, da Costa Avelar PH, Tsoka S, Bullinger L, Seubert E, Smit DJ, Bokemeyer C, Ackermann C, Wellbrock J, Haag F, Fiedler W. TIGIT blockade repolarizes AML-associated TIGIT+ M2 macrophages to an M1 phenotype and increases CD47-mediated phagocytosis. J Immunother Cancer. 2022 Dec;10(12):e004794. doi: 10.1136/jitc-2022-004794.
- Miari KE, Guzman ML, Wheadon H, Williams MTS. Macrophages in Acute Myeloid Leukaemia: Significant Players in Therapy Resistance and Patient Outcomes. Front Cell Dev Biol. 2021 Jun 24;9:692800. doi: 10.3389/fcell.2021.692800. eCollection 2021.
- Mesaros O, Onciul M, Matei E, Joldes C, Jimbu L, Neaga A, Serban O, Zdrenghea M, Nanut AM. Macrophages as Potential Therapeutic Targets in Acute Myeloid Leukemia. Biomedicines. 2024 Oct 11;12(10):2306. doi: 10.3390/biomedicines12102306.
- Cencini E, Fabbri A, Sicuranza A, Gozzetti A, Bocchia M. The Role of Tumor-Associated Macrophages in Hematologic Malignancies. Cancers (Basel). 2021 Jul 18;13(14):3597. doi: 10.3390/cancers13143597.
- Maiti A, Rausch CR, Cortes JE, Pemmaraju N, Daver NG, Ravandi F, Garcia-Manero G, Borthakur G, Naqvi K, Ohanian M, Short NJ, Alvarado Y, Kadia TM, Takahashi K, Yilmaz M, Jain N, Kornblau S, Montalban Bravo G, Sasaki K, Andreeff M, Bose P, Ferrajoli A, Issa GC, Jabbour EJ, Masarova L, Thompson PA, Wang S, Konoplev S, Pierce SA, Ning J, Qiao W, Welch JS, Kantarjian HM, DiNardo CD, Konopleva MY. Outcomes of relapsed or refractory acute myeloid leukemia after frontline hypomethylating agent and venetoclax regimens. Haematologica. 2021 Mar 1;106(3):894-898. doi: 10.3324/haematol.2020.252569. No abstract available.
- Kim K, Maiti A, Loghavi S, Pourebrahim R, Kadia TM, Rausch CR, Furudate K, Daver NG, Alvarado Y, Ohanian M, Sasaki K, Short NJ, Takahashi K, Yilmaz M, Tang G, Ravandi F, Kantarjian HM, DiNardo CD, Konopleva MY. Outcomes of TP53-mutant acute myeloid leukemia with decitabine and venetoclax. Cancer. 2021 Oct 15;127(20):3772-3781. doi: 10.1002/cncr.33689. Epub 2021 Jul 13.
- Dohner H, Pratz KW, DiNardo CD, Wei AH, Jonas BA, Pullarkat VA, Thirman MJ, Recher C, Schuh AC, Babu S, Li X, Ku G, Liu Z, Sun Y, Potluri J, Dail M, Chyla B, Pollyea DA. Genetic risk stratification and outcomes among treatment-naive patients with AML treated with venetoclax and azacitidine. Blood. 2024 Nov 21;144(21):2211-2222. doi: 10.1182/blood.2024024944.
- Zhao D, Zarif M, Zhou Q, Capo-Chichi JM, Schuh A, Minden MD, Atenafu EG, Kumar R, Chang H. TP53 Mutations in AML Patients Are Associated with Dismal Clinical Outcome Irrespective of Frontline Induction Regimen and Allogeneic Hematopoietic Cell Transplantation. Cancers (Basel). 2023 Jun 16;15(12):3210. doi: 10.3390/cancers15123210.
Studierekorddatoer
Disse datoene sporer fremdriften for innsending av studieposter og sammendragsresultater til ClinicalTrials.gov. Studieposter og rapporterte resultater gjennomgås av National Library of Medicine (NLM) for å sikre at de oppfyller spesifikke kvalitetskontrollstandarder før de legges ut på det offentlige nettstedet.
Studer hoveddatoer
Studiestart (Antatt)
1. august 2026
Primær fullføring (Antatt)
1. august 2029
Studiet fullført (Antatt)
1. august 2030
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
25. mars 2026
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
31. mars 2026
Først lagt ut (Faktiske)
6. april 2026
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
6. april 2026
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
31. mars 2026
Sist bekreftet
1. mars 2026
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Neoplasmer
- Neoplasmer etter histologisk type
- Hematologiske sykdommer
- Leukemi, myeloid
- Leukemi
- Hemic og lymfatiske sykdommer
- Leukemi, Myeloid, Akutt
- Organiske kjemikalier
- Heterocykliske forbindelser, 1-ring
- Heterocykliske forbindelser
- Nukleinsyrer, nukleotider og nukleosider
- Cytidin
- Pyrimidin -nukleosider
- Pyrimidiner
- AZA -forbindelser
- Nukleosider
- Ribonukleosider
- Azacitidin
- Decitabin
- Venetoclax
- Axatilimab
Andre studie-ID-numre
- NSH 1436
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
NEI
IPD-planbeskrivelse
Endepunktene ser på overordnede responser og effekt
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Ja
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
Nei
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .