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TDRD9 基因突变对少弱精子症患者L-肉碱治疗反应的影响

2026年2月4日 更新者:Mostafa Abd-Elhakeem Ameen、South Valley University

TDRD9基因突变对少弱精子症男性L-肉碱治疗反应的影响

不孕症仍然是一个重大的全球负担。 据估计,全球有10-15%的夫妇患有不孕症,其中20-50%的病例是由男性不育症引起的。 然而,对于大多数病例,其病因仍然未知,被称为特发性不孕症。 无精子症,即精液中缺乏精子,是男性不育最常见的原因之一,在一般人群中的患病率为1%,在不育男性中超过15%。

少精子症是男性不育的主要原因,但其遗传基础仍有待进一步阐明。 少精子症指的是精子浓度低于既定参考限值(例如,16百万/毫升,95%置信区间15-18百万/毫升;WHO 2021)。

许多研究已证明少精子症具有强烈的遗传基础,在原因不明的少精子症和无精子症男性中,已报告存在遗传异常,例如染色体数目或结构异常、Y染色体上无精子症因子区(AZF)缺失以及囊性纤维化跨膜传导调节因子(CFTR)基因突变。 此外,先前的研究已识别出超过400个基因,这些基因专门或可能与生育调节相关,同时可能促成与精子发生障碍相关的广泛遗传异质性。 例如,已有报告称RPL10L和MAGEB基因的突变会导致少精子症。 然而,只有少数基因的突变已被证明会导致男性不育,少精子症的候选致病基因仍需进一步研究。

近期研究暗示,Tudor结构域包含蛋白9(TDRD9)基因通过其在piRNA通路和转座子沉默中的作用,参与精子发生的调控。 一项2024年的研究在一个患有特发性少精子症的中国家庭中,发现了复合杂合突变-c.1115+3A>G(剪接变异)和c.958delC(移码变异),导致异常剪接和截短的TDRD9蛋白产物。

Tudor结构域包含蛋白9(TDRD9)是一种在生殖细胞系中高表达的RNA解旋酶。 在睾丸的有丝分裂精原细胞、减数分裂精母细胞和单倍体精子细胞中,已检测到TDRD9的表达。 在男性不育病例中,有报告称TDRD9参与长散布核元件-1反转录转座子的沉默,暗示TDRD9突变与非梗阻性无精子症之间存在关联。

TDRD9与精子发生和piRNA通路完整性有关。 其变异可能影响精子质量和对治疗的反应。 左旋肉碱作为一种抗氧化剂和代谢补充剂被广泛使用,已被证明能改善部分不育男性的精子参数。 本研究将测试TDRD9突变状态是否能预测左旋肉碱的治疗获益。

研究概览

地位

主动,不招人

干预/治疗

详细说明

男性不育症的遗传基础:以少精子症为重点及TDRD9基因的作用 不孕不育是一个全球性的重大健康问题,影响全球约10-15%的夫妇。在这些病例中,男性因素导致的不育约占20-50%,既可能是单独原因,也可能与女性因素共同作用。尽管诊断技术有所进步,但在相当大比例的患者中,男性不育的病因仍不明确,因此被归类为特发性不育。在男性不育的各种原因中,精子生成和功能的异常构成了最常见的潜在病理。

无精子症,定义为精液中完全无精子,是男性不育最严重的表现之一。它影响约1%的普通男性人群,占男性不育病例的15%以上。无精子症可分为梗阻性或非梗阻性,后者反映了精子发生的固有缺陷,通常具有遗传基础。

少精子症,以精子浓度降低为特征,是男性不育的另一个主要因素,通常代表一种较轻但具有临床意义的生精障碍。根据世界卫生组织(WHO)2021年的参考值,少精子症定义为精子浓度低于每毫升1600万个精子(95%置信区间:1500-1800万/毫升)。尽管环境、生活方式、内分泌和感染因素被认为与之相关,但越来越多的证据表明少精子症具有很强的遗传成分。然而,其分子和遗传基础仍仅部分被理解。

少精子症和无精子症的遗传异常 遗传缺陷日益被认为是导致其他无法解释的少精子症和无精子症的主要原因。经典的遗传异常包括染色体数目和结构异常,如克氏综合征(47,XXY)、平衡易位和倒位。Y染色体无精子因子(AZF)区域(AZFa、AZFb和AZFc)的微缺失是导致精子发生受损的最明确的遗传原因之一。此外,囊性纤维化跨膜传导调节因子(CFTR)基因的突变通常与先天性双侧输精管缺如和梗阻性无精子症相关。

除了这些已明确特征的异常,下一代测序技术使得识别可能参与精子发生的数百个基因成为可能。迄今为止,已有超过400个基因被报道与男性生育调控特异性或潜在相关,反映了精子异常背后显著的遗传异质性。在精子发生过程中参与核糖体功能的RPL10L基因,以及参与生殖细胞发育的MAGEB基因等突变,已被认为与少精子症相关。然而,尽管有这些发现,仅有有限数量的基因的致病性变异被最终证实与男性不育相关,这突显了对新候选基因持续研究的必要性。

TDRD9及其在精子发生中的作用 最近的研究强调了Tudor Domain Containing 9(TDRD9)基因是精子发生的关键调节因子。TDRD9编码一种生殖系特异性的RNA解旋酶,在PIWI相互作用RNA(piRNA)通路中发挥重要作用,该通路是生殖细胞发育过程中抑制转座元件的关键防御机制。适当的转座子沉默对于维持生殖细胞的基因组稳定性至关重要,这一过程的破坏可能导致精子发生受损和不育。

TDRD9在睾丸中高度表达,在生殖细胞发育的多个阶段(包括有丝分裂的精原细胞、减数分裂的精母细胞和单倍体的精子细胞)均检测到其表达。功能研究表明,TDRD9参与长散布核元件-1(LINE-1)逆转录转座子的沉默,从而保护生殖细胞的完整性。该通路的缺陷与生精阻滞和非梗阻性无精子症相关。

2024年的一项最新研究为TDRD9参与人类男性不育提供了有力的临床证据。在一个患有特发性少精子症的中国家庭中,发现了TDRD9基因的复合杂合突变,即一个剪接位点变异(c.1115+3A>G)和一个移码变异(c.958delC)。这些突变导致异常的mRNA剪接和截短的蛋白质产物,进而损害TDRD9功能。这项研究加强了TDRD9功能障碍与精子发生缺陷之间的因果关系,并扩展了与少精子症相关的基因谱。

研究类型

介入性

注册 (实际的)

50

阶段

  • 第三阶段

联系人和位置

本节提供了进行研究的人员的详细联系信息,以及有关进行该研究的地点的信息。

学习地点

      • Cairo、埃及
        • Qena University Hospital

参与标准

研究人员寻找符合特定描述的人,称为资格标准。这些标准的一些例子是一个人的一般健康状况或先前的治疗。

资格标准

适合学习的年龄

  • 成人

接受健康志愿者

不

描述

纳入标准:年龄20-50岁的男性参与者

临床诊断为少弱精子症,根据WHO 2010/2021标准通过两次精液分析确认:

精子浓度<1500万/mL,且前向运动精子比例<32% 与伴侣尝试怀孕≥12个月,或因不育评估被转诊 愿意且能够口服左旋肉碱,并遵守所有研究访视和程序 能够并愿意提供书面知情同意,包括同意进行基因检测(TDRD9分析) 排除标准 已知梗阻性无精子症 需要手术矫正的Ⅲ度精索静脉曲张,除非在入组前≥6个月已修复 入组前3个月内使用过生育补充剂或激素治疗(需洗脱期) 活动性泌尿生殖系统感染(如前列腺炎)或已知影响生育的系统性疾病 已知严重系统性疾病,包括未控制的糖尿病或严重肝、肾疾病 已知对左旋肉碱过敏或过敏反应史 睾丸癌病史或过去2年内接受过化疗

学习计划

本节提供研究计划的详细信息,包括研究的设计方式和研究的衡量标准。

研究是如何设计的?

设计细节

  • 主要用途:治疗
  • 分配:不适用
  • 介入模型:单组作业
  • 屏蔽:无(打开标签)

武器和干预

参与者组/臂
干预/治疗
实验性的:Tdrd9 阳性和阴性
L-肉碱
膳食补充剂

研究衡量的是什么?

主要结果指标

结果测量
措施说明
大体时间
从基线到3个月期间总活动精子计数(TMSC)的变化
大体时间:基线至3个月

总活动精子数(TMSC)的计算方式为精液体积 × 精子浓度 × 渐进性活动精子百分比,在基线时和口服左旋肉碱治疗3个月后进行测量。 该结果以TMSC(每次射精百万活动精子数)从基线到3个月的平均变化表示,并在携带和不携带TDRD9基因突变的男性之间进行比较。

测量单位:

每次射精百万活动精子数

基线至3个月

次要结果测量

结果测量
措施说明
大体时间
从基线至3个月的精子浓度变化
大体时间:基线至3个月

根据世界卫生组织标准,在基线时和治疗3个月后通过精液分析测量的精子浓度。 结果是精子浓度(百万/毫升)从基线到3个月的平均变化,在TDRD9突变携带者和非携带者之间进行比较。

测量单位:

百万精子每毫升

基线至3个月
从基线至3个月期间正常精子形态的变化
大体时间:基线至3个月

使用严格的WHO标准评估的基线时和3个月后正常形态精子的百分比。 结果是从基线到3个月时各组间正常形态百分比(%)的平均变化。

测量单位:

百分比(%)

基线至3个月
从基线至3个月的精液量变化
大体时间:基线至3个月

治疗前基线及治疗3个月后以毫升测量的精液量。 结果为从基线到3个月精液量(mL)的平均变化。

测量单位:

毫升(mL)

基线至3个月
从基线至3个月期间血清促卵泡激素(FSH)水平的变化
大体时间:基线至3个月

基线时和治疗3个月后测量的血清FSH水平。 结果为从基线到3个月时FSH水平(IU/L)的平均变化。

测量单位:

IU/L

基线至3个月

合作者和调查者

在这里您可以找到参与这项研究的人员和组织。

调查人员

  • 研究主任:Eisa Mohammed Hegazy、South Valley University
  • 学习椅:Mahmoud Ahmed Ali, Assistant professor、Aswan university hospital

出版物和有用的链接

负责输入研究信息的人员自愿提供这些出版物。这些可能与研究有关。

一般刊物

  • Lahimer M, Gherissi O, Ben Salem N, Ben Mustapha H, Bach V, Khorsi-Cauet H, Khairi H, Ben Ali H, BenKhalifa M, Ajina M. Effect of micronutrients and L-carnitine as antioxidant on sperm parameters, genome integrity, and ICSI outcomes: randomized, double-blind, and placebo-controlled clinical trial. Antioxidants. 2023 Oct 31;12(11):1937.
  • Okutman O, et al. A no-stop mutation in MAGEB4 is a possible cause of rare X-linked azoospermia and oligozoospermia in a consanguineous Turkish family. J Assist Reprod Genet. 2017;34(5):683-94.
  • Esteves SC. Who cares about oligozoospermia when we have ICSI. Reproductive biomedicine online. 2022 May 1;44(5):769-75.
  • Wang W, Feng Y, Dong J, Zhou Z, Jing J, Li Z, Chen L, Lin X, Ma J, Yao B. A Novel Compound Heterozygous Mutation in TDRD9 Causes Oligozoospermia. Reproductive Sciences. 2024 Nov;31(11):3413-9.
  • Babakhanzadeh E, Khodadadian A, Rostami S, Alipourfard I, Aghaei M, Nazari M, Hosseinnia M, Mehrjardi MY, Jamshidi Y, Ghasemi N. Testicular expression of TDRD1, TDRD5, TDRD9 and TDRD12 in azoospermia. BMC medical genetics. 2020 Dec; 21:1-7. rmia when we have ICSI. Reproductive biomedicine online. 2022 May 1;44(5):769-75.

研究记录日期

这些日期跟踪向 ClinicalTrials.gov 提交研究记录和摘要结果的进度。研究记录和报告的结果由国家医学图书馆 (NLM) 审查,以确保它们在发布到公共网站之前符合特定的质量控制标准。

研究主要日期

学习开始 (实际的)

2026年1月1日

初级完成 (估计的)

2026年6月1日

研究完成 (估计的)

2026年8月1日

研究注册日期

首次提交

2026年1月18日

首先提交符合 QC 标准的

2026年2月4日

首次发布 (实际的)

2026年2月11日

研究记录更新

最后更新发布 (实际的)

2026年2月11日

上次提交的符合 QC 标准的更新

2026年2月4日

最后验证

2026年2月1日

更多信息

与本研究相关的术语

计划个人参与者数据 (IPD)

计划共享个人参与者数据 (IPD)?

不

药物和器械信息、研究文件

研究美国 FDA 监管的药品

不

研究美国 FDA 监管的设备产品

不

在美国制造并从美国出口的产品

不

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