- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT00923195
Radiothérapie, chimiothérapie, vaccin et cellules anti-MART-1 et anti-gp100 pour les patients atteints de mélanome métastatique
Étude de phase II sur le mélanome métastatique à l'aide d'un régime de conditionnement lymphodéplétif par chimioradiation suivi d'une perfusion de lymphocytes et de vaccins peptidiques anti-Mart-1 et anti-gp100 TCR-Gene
Fond:
- L'antigène de mélanome reconnu par les lymphocytes T (MART-1) et gp100 sont deux gènes trouvés dans les cellules de mélanome. Une procédure expérimentale développée pour traiter les patients atteints de mélanome avancé utilise ces gènes et un type de virus pour fabriquer des cellules spéciales appelées cellules anti-MART-1 et anti-gp100, conçues pour détruire la tumeur du patient. Les cellules sont créées en laboratoire à partir des propres cellules tumorales ou sanguines du patient.
- La procédure utilise également l'un des deux vaccins - le peptide anti-MART-1 ou le peptide anti-gp100 - pour stimuler les cellules du système immunitaire qui peuvent augmenter l'efficacité des cellules anti-MART-1 et anti-gp100. Les deux vaccins sont fabriqués à partir d'un virus modifié pour porter une copie du gène MART-1 ou du gène gp100. Le virus ne peut pas provoquer de maladie chez l'homme.
Objectifs:
- Évaluer l'innocuité et l'efficacité des cellules anti-MART-1 et anti-gp100 et des vaccins peptidiques pour le traitement des patients atteints de mélanome avancé.
Admissibilité:
- Patients de 18 ans atteints d'un mélanome métastatique pour lesquels les traitements standards, y compris l'aldesleukine (IL-2) pour stimuler la réponse immunitaire, n'ont pas été efficaces.
Concevoir:
- Les participants ont une évaluation initiale avec des antécédents médicaux complets, ainsi que des scanners, des radiographies et d'autres tests selon les directives des chercheurs. La plupart des traitements pour cette étude seront administrés en milieu hospitalier.
- Avant le début du traitement, les participants subiront une leucaphérèse (prélèvement de cellules sanguines sélectionnées) afin d'obtenir des cellules pour préparer les cellules anti-MART-1 et anti-gp100, et pour une greffe ultérieure de cellules souches.
- Traitement pré-infusion : 5 jours de chimiothérapie et 2 jours d'irradiation corporelle totale pour préparer le système immunitaire à recevoir les cellules anti-MART-1 et anti-gp100.
- Infusion de cellules, suivie d'un traitement à l'IL-2 pour améliorer la réponse immunitaire. L'IL-2 est administrée en perfusion de 15 minutes dans une veine toutes les 8 heures pour un maximum de 15 doses (sur 5 jours).
- Après l'infusion cellulaire, les participants seront divisés en deux groupes et recevront soit le peptide gp100, soit le vaccin MART-1, administré une fois par semaine pendant 3 semaines. Les participants auront également une greffe de cellules souches (à partir de cellules souches précédemment collectées) pour favoriser la survie des cellules.
- Visites périodiques de suivi à la clinique après la sortie de l'hôpital pour un examen physique, un examen des effets secondaires du traitement, des tests de laboratoire et des analyses tous les 1 à 6 mois.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Description détaillée
Fond:
- Nous avons conçu des lymphocytes du sang périphérique humain (PBL) pour qu'ils expriment un récepteur des lymphocytes T (TCR) qui reconnaît les épitopes restreints aux antigènes leucocytaires humains (HLAA*0201) dérivés de la gp100 ou de l'antigène de mélanome MART-1.
- Nous avons construit des vecteurs rétroviraux uniques contenant à la fois des chaînes de récepteurs de cellules T alpha et bêta (TCR) et pouvant assurer le transfert génétique de ce TCR avec une efficacité élevée (supérieure à 30%) sans qu'il soit nécessaire d'effectuer une sélection.
- Dans les co-cultures avec des mélanomes HLA-A*0201 positifs, ces lymphocytes T transduits par le TCR ont sécrété une quantité significative d'interféron gamma (IFN-y), mais aucune sécrétion significative n'a été observée dans les co-cultures témoins.
- gp100: 154-162 TCR ou MART-1: 27-35 TCR transduits pourraient tuer efficacement les tumeurs HLAA * 0201 positives. Il y avait peu ou pas de reconnaissance des fibroblastes normaux.
- Le transfert adoptif de l'un ou l'autre de ces lymphocytes du sang périphérique (PBL) modifiés par le gène transféré par TCR à la suite d'un régime lymphodéplétif non myéloablatif pourrait entraîner une régression tumorale chez 13 à 30 % des patients atteints de mélanome métastatique, bien qu'aucune réponse complète n'ait été observée.
Objectifs:
Objectifs principaux:
- Dans les cohortes 1 et 2, pour déterminer si l'administration des lymphocytes du sang périphérique (PBL) anti-gp100:154-162 modifiés par TCR et anti-MART-1:27-35 modifiés par TCR, de l'aldesleukine et de la gp100 : 154-162 ou le peptide MART-1:26-35(27L) à des patients suivant un régime préparatif de chimioradiothérapie lymphodéplétive entraînera une régression complète de la tumeur chez les patients atteints de mélanome métastatique.
- Dans les cohortes 3 et 4, pour déterminer si l'administration à la fois des lymphocytes du sang périphérique CD8+ (PBL) anti-gp100:154-162 TCR et anti-MART-1:27-35 TCR-modifiés, de l'aldesleukine et soit de la gp100 :154-162 ou le peptide MART-1:26-35(27L) à des patients suivant un régime préparatif de chimioradiothérapie lymphodéplétive entraînera une régression complète de la tumeur chez les patients atteints de mélanome métastatique.
- Déterminer si l'administration du vaccin spécifique (le peptide gp100:154-162 ou le peptide MART-1:26-35(27L)) peut augmenter la persistance des cellules spécifiques transférées (anti-gp100:154-162 TCR PBL, anti-gp100:154-162 TCR CD8+ PBL, anti-MART-1:27-35 TCR PBL ou anti-MART-1:27-35 TCR CD8+ PBL), respectivement.
Objectifs secondaires :
- Déterminer le profil de toxicité de ces schémas thérapeutiques.
Admissibilité:
Les patients HLA-A*0201 positifs et âgés de 18 ans ou plus doivent avoir :
- mélanome métastatique avec maladie mesurable
- déjà été traité par IL-2 pour un mélanome ;
- valeurs normales pour les valeurs de laboratoire de base.
Les patients peuvent ne pas avoir :
- maladies médicales majeures concomitantes ;
- toute forme d'immunodéficience primaire ou secondaire ;
- hypersensibilité sévère à l'un des agents utilisés dans cette étude ;
- contre-indications à l'administration de fortes doses d'aldesleukine.
Concevoir:
Dans les cohortes 1 et 2 :
- Des cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC) seront obtenues par leucaphérèse (environ 5 fois 10(9) cellules) et cultivées en présence d'anti-CD3 (OKT3) et d'aldesleukine et des aliquotes séparées seront transduites avec l'anti-gp100:154- 162TCR et le vecteur rétroviral anti-MART-1:27-35TCR.
- La transduction est initiée par l'exposition d'environ 10(8) à 5 fois 10(8) cellules au surnageant contenant les vecteurs rétroviraux. Ces cellules transduites par gp100 et MART-1 TCR seront développées séparément et testées pour leur activité anti-tumorale.
- Une fois qu'il aura été démontré que les lymphocytes modifiés sont biologiquement actifs selon les critères stricts décrits dans le certificat d'analyse, les patients recevront un régime préparatif d'épuisement des lymphocytes par chimioradiothérapie composé de cyclophosphamide et de fludarabine et d'une irradiation corporelle totale de 600 cGy, suivie d'une perfusion intraveineuse d'un réactif tumoral ex vivo. , gp100 et cellules transduites par le gène MART-1 TCR plus aldesleukine IV (720 000 UI/kg q8h pour un maximum de 15 doses).
- Les patients seront randomisés pour recevoir soit le peptide gp100:154-162, soit le peptide MART-1:26-35(27L) émulsifié dans de l'adjuvant incomplet de Freund.
- Les patients subiront une évaluation complète de la tumeur avec un examen physique, une tomodensitométrie (TDM) du thorax, de l'abdomen et du bassin et une évaluation en laboratoire clinique quatre à six semaines après le traitement, puis une fois par mois pendant environ 3 à 4 mois ou jusqu'à ce que les critères de l'étude soient remplis.
- L'étude sera menée en utilisant une conception optimale de phase II où initialement 21 patients évaluables seront inscrits dans chacune des deux cohortes. Si aucun des 21 patients par cohorte ne présente de réponse clinique complète, aucun autre patient ne sera recruté, mais si 1 ou plusieurs des 21 premiers patients évaluables recrutés dans cette cohorte présentent une réponse clinique complète, l'acquisition de cette cohorte se poursuivra jusqu'à un total de 41 patients évaluables ont été inscrits dans cette cohorte.
- Les cohortes 1 et 2 seront fermées avec l'approbation de l'amendement D.
Les cohortes 3 et 4 seront lancées avec l'approbation de l'amendement D.
- Les cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC) seront obtenues par leucaphérèse (environ 5 fois 10(9) cellules) et les cellules CD8+ seront sélectionnées dans les cultures, à l'aide de l'appareil Miltenyi CliniMACS, avant d'être stimulées et transduites. Des aliquotes séparées de cellules CD8+ seront transduites avec les vecteurs rétroviraux anti-gp100:154-162 TCR et anti-MART-1:27-35 TCR.
- La transduction est initiée par l'exposition d'environ 10(8) à 5 fois 10(8) cellules CD8+ au surnageant contenant les vecteurs rétroviraux. Ces cellules transduites par gp100 et MART-1 TCR seront développées séparément et testées pour leur activité anti-tumorale.
- Une fois qu'il aura été démontré que les lymphocytes modifiés sont biologiquement actifs selon les critères stricts décrits dans le certificat d'analyse, les patients recevront un régime préparatif d'épuisement des lymphocytes par chimioradiothérapie composé de cyclophosphamide et de fludarabine et d'une irradiation corporelle totale de 600 cGy, suivie d'une perfusion intraveineuse d'un réactif tumoral ex vivo. , gp100 et cellules CD8+ transduites par le gène MART-1 TCR plus aldesleukine IV (720 000 UI/kg q8h pour un maximum de 15 doses).
- Les patients seront randomisés pour recevoir soit le peptide gp100:154-162 (cohorte 3) soit le peptide MART-1:26-35(27L) (cohorte 4) émulsifié dans de l'adjuvant incomplet de Freund.
- Les patients subiront une évaluation complète de la tumeur avec un examen physique, une TDM de la poitrine, de l'abdomen et du bassin et une évaluation en laboratoire clinique quatre à six semaines après le traitement, puis une fois par mois pendant environ 3 à 4 mois ou jusqu'à ce que les critères de l'étude soient remplis.
- L'étude sera menée en utilisant une conception optimale de phase II où initialement 21 patients évaluables seront inscrits dans chacune des cohortes 3 et 4. Si aucun des 21 patients par cohorte ne présente une réponse clinique complète, alors aucun autre patient ne sera inscrit mais si 1 ou plusieurs des 21 premiers patients évaluables inscrits dans cette cohorte ont une réponse clinique complète, puis l'accumulation dans cette cohorte se poursuivra jusqu'à ce qu'un total de 41 patients évaluables aient été inscrits dans cette cohorte.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- Phase 2
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
Maryland
-
Bethesda, Maryland, États-Unis, 20892
- National Institutes of Health Clinical Center, 9000 Rockville Pike
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
CRITÈRE D'INTÉGRATION:
- Mélanome métastatique avec maladie mesurable.
- A déjà reçu de l'aldesleukine (IL-2) et n'a pas répondu (maladie évolutive) ou a récidivé.
- Positif pour la gp100 et l'antigène de mélanome reconnu par les lymphocytes T (MART-1) (au moins 1 plus et plus de 5 %) tel qu'évalué par immunohistochimie (IHC) dans le test approuvé par les amendements d'amélioration du laboratoire clinique (CLIA) du laboratoire de pathologie , Centre de recherche sur le cancer (CCR), National Cancer Institute (NCI), National Institutes of Health (NIH).
- Âge supérieur ou égal à 18 ans.
- Disposé à signer une procuration durable.
- Capable de comprendre et de signer le document de consentement éclairé.
- Statut de performance clinique du Eastern Cooperative Oncology Group (ECOG) 0 ou 1.
- Espérance de vie supérieure à trois mois.
- Les patients des deux sexes doivent être disposés à pratiquer le contrôle des naissances à partir du moment de l'inscription à cette étude et jusqu'à quatre mois après avoir reçu le régime préparatoire.
- Doit être positif aux antigènes leucocytaires humains (HLA-A * 0201)
- Sérologie :
- Séronégatif pour les anticorps du virus de l'immunodéficience humaine (VIH). (Le traitement expérimental évalué dans ce protocole dépend d'un système immunitaire intact. Les patients séropositifs pour le VIH peuvent avoir une compétence immunitaire réduite et donc être moins réactifs au traitement expérimental et plus sensibles à ses toxicités.)
- Séronégatif pour l'antigène de l'hépatite B et les anticorps de l'hépatite C sauf si l'antigène est négatif.
l. Hématologie:
- Nombre absolu de neutrophiles supérieur à 1 000/m^3
- Globule blanc (GB) (supérieur à 3000/mm^3.
- Numération plaquettaire supérieure à 100 000/mm^3.
- Hémoglobine supérieure à 8,0 g/dl.
M. Chimie
- Sérum alanine aminotransférase (ALT)/aspartate aminotransférase (AST) inférieure ou égale à 2,5 fois la limite supérieure de la normale.
- Créatinine sérique inférieure ou égale à 1,6 mg/dl.
- Bilirubine totale inférieure ou égale à 1,5 mg/dl, sauf chez les patients atteints du syndrome de Gilbert qui doivent avoir une bilirubine totale inférieure à 3,0 mg/dl.
n.m. Les femmes en âge de procréer doivent avoir un test de grossesse négatif en raison des effets potentiellement dangereux de la chimiothérapie préparative sur le fœtus.
o. Plus de quatre semaines doivent s'être écoulées depuis tout traitement systémique antérieur au moment où le patient reçoit le régime préparatoire, et les toxicités des patients doivent avoir récupéré à un grade 1 ou moins (à l'exception des toxicités telles que l'alopécie ou le vitiligo).
p. Six semaines doivent s'être écoulées depuis le traitement antérieur par anticorps anti-CTLA4 (cytotoxique T-lymphocyte antigen 4) pour permettre aux niveaux d'anticorps de diminuer, et les patients qui ont déjà reçu des anticorps anti-CTLA4 doivent avoir une coloscopie normale avec des biopsies coliques normales.
CRITÈRE D'EXCLUSION:
- Femmes en âge de procréer qui sont enceintes ou qui allaitent en raison des effets potentiellement dangereux de la chimiothérapie préparative sur le fœtus ou le nourrisson.
- Infections systémiques actives ; troubles de la coagulation ou autres maladies médicales majeures du système cardiovasculaire, respiratoire ou immunitaire ; infarctus du myocarde; arythmies cardiaques; maladie pulmonaire obstructive ou restrictive.
- Toute forme d'immunodéficience primaire (telle que le déficit immunitaire combiné sévère).
- Thérapie stéroïdienne systémique.
- Antécédents de réaction d'hypersensibilité immédiate sévère à l'un des agents utilisés dans cette étude.
- Antécédents de revascularisation coronarienne
- Fraction d'éjection ventriculaire gauche (FEVG) documentée inférieure à 45 % chez les patients présentant :
a) Arythmies auriculaires et/ou ventriculaires cliniquement significatives, y compris, mais sans s'y limiter : fibrillation auriculaire, tachycardie ventriculaire, bloc cardiaque de 2 ou 3 degrés
b) Âge supérieur ou égal à 60 ans
h. Volume expiratoire forcé documenté 1 (FEV1) inférieur ou égal à 60 % prévu pour les patients avec :
- Antécédents prolongés de tabagisme (plus de 20 paquets/an au cours des 2 dernières années)
- Symptômes de détresse respiratoire
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: Randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Expérimental: TBI 600cGy + PBL + HD IL-2+gp100:154-162
Jour 0 : La perfusion de CD8+PBL transduits autologues (anti-gp100 : 154 TCR PBL et anti-MART-1 F5 TCR PBL) sera administrée par voie intraveineuse pendant 20 à 30 minutes (minimum 5 x 10e8 et jusqu'à un maximum de 2 x 10e11 de chaque population de lymphocytes transduits).
Un mg de gp100:154-162 ou de MART-1:26-35(27) émulsifié dans l'IFA par injection sous-cutanée profonde dans chaque cuisse à administrer avant la perfusion cellulaire et aux jours 7 et 14.
Dans les 24 heures suivant la perfusion cellulaire, l'administration d'aldesleukine sera initiée à raison de 720 000 UI/kg/dose IV pendant 15 minutes toutes les 8 heures pendant 5 jours maximum (maximum 15 doses). jour -1 (dose totale 6 Gy) à raison de 0,07 Gy/minute.
|
Jour 0 : La perfusion de CD8+PBL transduits autologues (anti-gp100 : 154 TCR PBL et anti-MART-1 F5 TCR PBL) sera administrée par voie intraveineuse pendant 20 à 30 minutes (minimum 5 x 10e8 et jusqu'à un maximum de 2 x 10e11 de chaque population de lymphocytes transduits). Un mg de gp100:154-162 ou de MART-1:26-35(27) émulsifié dans l'IFA par injection sous-cutanée profonde dans chaque cuisse à administrer avant la perfusion cellulaire et aux jours 7 et 14. Jour 0 : La perfusion de CD8+PBL transduits autologues (anti-gp100 : 154 TCR PBL et anti-MART-1 F5 TCR PBL) sera administrée par voie intraveineuse pendant 20 à 30 minutes (minimum 5 x 10e8 et jusqu'à un maximum de 2 x 10e11 de chaque population de lymphocytes transduits). Un mg de gp100:154-162 ou de MART-1:26-35(27) émulsifié dans l'IFA par injection sous-cutanée profonde dans chaque cuisse à administrer avant la perfusion cellulaire et aux jours 7 et 14.
2Gy de TBI deux fois le jour -2 et une fois le jour -1 (dose totale 6 Gy) à un débit de 0,07 Gy/minute
Dans les 24 heures suivant la perfusion cellulaire, l'administration d'aldesleukine sera initiée à raison de 720 000 UI/kg/dose IV en 15 minutes toutes les 8 heures pendant 5 jours maximum (maximum 15 doses).
Autres noms:
Jour -6 à -2 : Fludarabine 25 mg/m2/jour IVPB tous les jours pendant 15 à 30 minutes pendant 5 jours
Autres noms:
Jour -6 à -5 : Cyclophosphamide 60 mg/kg/jour X 2 jours IV dans 250 ml J5W avec mesna 15 mg/kg/jour pendant 1 h X 2 jours.
Autres noms:
Jour 0 : La perfusion de CD8+PBL transduits autologues (anti-gp100 : 154 TCR PBL et anti-MART-1 F5 TCR PBL) sera administrée par voie intraveineuse pendant 20 à 30 minutes (minimum 5 x 10e8 et jusqu'à un maximum de 2 x 10e11 de chaque population de lymphocytes transduits). Un mg de gp100:154-162 ou de theMART-1:26-35(27) émulsifié dans l'IFA par injection sous-cutanée profonde dans chaque cuisse à administrer avant la perfusion cellulaire et aux jours 7 et 14 |
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Expérimental: TBI 600cGy+PBL+HD IL-2+MART-1:26-35(27L)
Jour 0 : La perfusion de CD8+PBL transduits autologues (anti-gp100 : 154 TCR PBL et anti-MART-1 F5 TCR PBL) sera administrée par voie intraveineuse pendant 20 à 30 minutes (minimum 5 x 10e8 et jusqu'à un maximum de 2 x 10e11 de chaque population de lymphocytes transduits).
Un mg de gp100:154-162 ou de MART-1:26-35(27) émulsifié dans l'IFA par injection sous-cutanée profonde dans chaque cuisse à administrer avant la perfusion cellulaire et aux jours 7 et 14.
Dans les 24 heures suivant la perfusion cellulaire, l'administration d'aldesleukine sera initiée à raison de 720 000 UI/kg/dose IV pendant 15 minutes toutes les 8 heures pendant 5 jours maximum (maximum 15 doses). jour -1 (dose totale 6 Gy) à raison de 0,07 Gy/minute.
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Jour 0 : La perfusion de CD8+PBL transduits autologues (anti-gp100 : 154 TCR PBL et anti-MART-1 F5 TCR PBL) sera administrée par voie intraveineuse pendant 20 à 30 minutes (minimum 5 x 10e8 et jusqu'à un maximum de 2 x 10e11 de chaque population de lymphocytes transduits). Un mg de gp100:154-162 ou de MART-1:26-35(27) émulsifié dans l'IFA par injection sous-cutanée profonde dans chaque cuisse à administrer avant la perfusion cellulaire et aux jours 7 et 14.
2Gy de TBI deux fois le jour -2 et une fois le jour -1 (dose totale 6 Gy) à un débit de 0,07 Gy/minute
Dans les 24 heures suivant la perfusion cellulaire, l'administration d'aldesleukine sera initiée à raison de 720 000 UI/kg/dose IV en 15 minutes toutes les 8 heures pendant 5 jours maximum (maximum 15 doses).
Autres noms:
Jour -6 à -2 : Fludarabine 25 mg/m2/jour IVPB tous les jours pendant 15 à 30 minutes pendant 5 jours
Autres noms:
Jour -6 à -5 : Cyclophosphamide 60 mg/kg/jour X 2 jours IV dans 250 ml J5W avec mesna 15 mg/kg/jour pendant 1 h X 2 jours.
Autres noms:
Jour 0 : La perfusion de CD8+PBL transduits autologues (anti-gp100 : 154 TCR PBL et anti-MART-1 F5 TCR PBL) sera administrée par voie intraveineuse pendant 20 à 30 minutes (minimum 5 x 10e8 et jusqu'à un maximum de 2 x 10e11 de chaque population de lymphocytes transduits). Un mg de gp100:154-162 ou de MART-1:26-35(27) émulsifié dans l'IFA par injection sous-cutanée profonde dans chaque cuisse à administrer avant la perfusion cellulaire et aux jours 7 et 14. Jour 0 : La perfusion de CD8+PBL transduits autologues (anti-gp100 : 154 TCR PBL et anti-MART-1 F5 TCR PBL) sera administrée par voie intraveineuse pendant 20 à 30 minutes (minimum 5 x 10e8 et jusqu'à un maximum de 2 x 10e11 de chaque population de lymphocytes transduits). Un mg de gp100:154-162 ou de theMART-1:26-35(27) émulsifié dans l'IFA par injection sous-cutanée profonde dans chaque cuisse à administrer avant la perfusion cellulaire et aux jours 7 et 14 |
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Taux de réponse complète pour les patients atteints de mélanome métastatique
Délai: Toutes les 4 à 6 semaines après le régime de traitement initial. Si le patient a une maladie stable ou un rétrécissement de la tumeur, des évaluations complètes seront répétées tous les 1 à 3 mois.
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La réponse complète a été évaluée par les critères RECIST (Response Evaluation Criteria in Solid Tumours).
La réponse complète est une disparition de toutes les lésions cibles.
La réponse partielle est une diminution d'au moins 30 % de la somme des diamètres les plus longs (LD) des lésions cibles en prenant comme référence la somme LD de base.
La progression est une augmentation d'au moins 20% de la somme des DL des lésions cibles en prenant comme référence la plus petite somme des DL enregistrée depuis le début du traitement ou l'apparition d'une ou plusieurs nouvelles lésions.
Une maladie stable n'est ni un rétrécissement suffisant pour se qualifier pour PR ni une augmentation suffisante pour se qualifier pour PD en prenant comme référence la plus petite somme LD.
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Toutes les 4 à 6 semaines après le régime de traitement initial. Si le patient a une maladie stable ou un rétrécissement de la tumeur, des évaluations complètes seront répétées tous les 1 à 3 mois.
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Profil de toxicité
Délai: 32 mois
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Voici le nombre de participants avec des événements indésirables.
Pour une liste détaillée des événements indésirables, voir le module sur les événements indésirables.
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32 mois
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Publications et liens utiles
Publications générales
- Kawakami Y, Eliyahu S, Delgado CH, Robbins PF, Rivoltini L, Topalian SL, Miki T, Rosenberg SA. Cloning of the gene coding for a shared human melanoma antigen recognized by autologous T cells infiltrating into tumor. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 Apr 26;91(9):3515-9. doi: 10.1073/pnas.91.9.3515.
- Kawakami Y, Eliyahu S, Sakaguchi K, Robbins PF, Rivoltini L, Yannelli JR, Appella E, Rosenberg SA. Identification of the immunodominant peptides of the MART-1 human melanoma antigen recognized by the majority of HLA-A2-restricted tumor infiltrating lymphocytes. J Exp Med. 1994 Jul 1;180(1):347-52. doi: 10.1084/jem.180.1.347.
- Abate-Daga D, Hanada K, Davis JL, Yang JC, Rosenberg SA, Morgan RA. Expression profiling of TCR-engineered T cells demonstrates overexpression of multiple inhibitory receptors in persisting lymphocytes. Blood. 2013 Aug 22;122(8):1399-410. doi: 10.1182/blood-2013-04-495531. Epub 2013 Jul 16.
- Kawakami Y, Eliyahu S, Delgado CH, Robbins PF, Sakaguchi K, Appella E, Yannelli JR, Adema GJ, Miki T, Rosenberg SA. Identification of a human melanoma antigen recognized by tumor-infiltrating lymphocytes associated with in vivo tumor rejection. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 Jul 5;91(14):6458-62. doi: 10.1073/pnas.91.14.6458.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Estimation)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Estimation)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Termes MeSH pertinents supplémentaires
- Tumeurs par type histologique
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- Tumeurs neuroectodermiques
- Tumeurs, cellules germinales et embryonnaires
- Tumeurs, tissu nerveux
- Tumeurs neuroendocrines
- Nevi et mélanomes
- Mélanome
- Effets physiologiques des médicaments
- Mécanismes moléculaires de l'action pharmacologique
- Agents anti-infectieux
- Agents du système nerveux périphérique
- Agents antiviraux
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- Analgésiques, non narcotiques
- Agents antirhumatismaux
- Agents antinéoplasiques
- Agents immunosuppresseurs
- Facteurs immunologiques
- Agents antinéoplasiques, alkylants
- Agents d'alkylation
- Agonistes myéloablatifs
- Adjuvants, immunologique
- Aldesleukine
- Cyclophosphamide
- Fludarabine
- Interleukine-2
- Monatide (IMS 3015)
Autres numéros d'identification d'étude
- 090051
- 09-C-0051
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