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- Essai clinique NCT03943394
PCM1-JAK2 dans les néoplasmes liés à la thérapie
Détection du gène de fusion PCM1-JAK2 chez les patients atteints de syndrome myélodysplasique lié à la thérapie / patients atteints de leucémie myéloïde aiguë
Le terme leucémie "liée au traitement" est descriptif et basé sur les antécédents d'exposition d'un patient à des agents cytotoxiques. Bien qu'une relation causale soit implicite, le mécanisme reste à prouver. On pense que ces néoplasmes sont la conséquence directe d'événements mutationnels induits par le traitement antérieur. Les syndromes myélodysplasiques liés au traitement / leucémie myéloïde aiguë (t-MDS / t-AML) sont désormais considérés comme une seule entité, appelée néoplasmes myéloïdes liés au traitement. la classification actuelle de l'OMS de l'Organisation mondiale de la santé2,. Il s'agit d'un syndrome clinique bien connu survenant comme une complication tardive des agents cytotoxiques et de la radiothérapie ionisante dans le traitement de la plupart des types de cancer : lymphome hodgkinien (LH), lymphome non hodgkinien (LNH), leucémie aiguë lymphoblastique (LAL), sarcome, et cancer de l'ovaire et des testicules Le délai médian de développement du t-MDS/AML est de 3 à 5 ans, le risque diminuant nettement après la première décennie Deux types de t-MDS/AML sont reconnus dans la classification de l'OMS en fonction de l'exposition thérapeutique causale : un agent alkylant /type lié aux rayonnements et un type lié à l'inhibiteur de la topoisomérase II. Le t-MDS/AML lié à l'agent alkylant apparaît généralement 4 à 7 ans après l'exposition à l'agent mutagène. La translocation réciproque t(8;9) (p22;p24) entre le bras court du chromosome 8 et le bras long du chromosome 9 est une anomalie récurrente qui fusionne la kinase activée par Janus 2 (JAK2) avec le gène du matériel péricentriolaire 1 de l'auto-antigène humain (PCM1), avec rupture et réunion au niveau des bandes 8p11 et 9q3410. une oligomérisation qui rassemble les domaines JAK2 liés résultant en un domaine tyrosine kinase activé de manière constitutive de JAK2Le mécanisme le plus courant d'activation de JAK2 dans les hémopathies malignes est la mutation ponctuelle en position 617 (V617F).
Les conséquences de l'activation de JAK2 sont la transformation néoplasique et la prolifération cellulaire anormale dans diverses tumeurs malignes
- Ainsi, les translocations impliquant le locus JAK2 sont considérées comme ayant une importance oncogène dans les leucémies aiguës et les maladies myélodysplasiques/myéloprolifératives.
- Les patients atteints de cette anomalie présentent un large spectre clinique allant des maladies hématologiques chroniques aux maladies hématologiques aiguës d'aspect myéloïde ou lymphoïde
Aperçu de l'étude
Statut
Description détaillée
Le terme leucémie "liée au traitement" est descriptif et basé sur les antécédents d'exposition d'un patient à des agents cytotoxiques. Bien qu'une relation causale soit implicite, le mécanisme reste à prouver. On pense que ces néoplasmes sont la conséquence directe d'événements mutationnels induits par le traitement antérieur.
Les syndromes myélodysplasiques liés à la thérapie / leucémie myéloïde aiguë (t-MDS / t-AML) sont désormais considérés comme une seule entité, appelée néoplasmes myéloïdes liés à la thérapie, selon la classification actuelle de l'OMS2, de l'Organisation mondiale de la santé. Il s'agit d'un syndrome clinique bien connu survenant comme une complication tardive des agents cytotoxiques et de la radiothérapie ionisante dans le traitement de la plupart des types de cancer : lymphome hodgkinien (LH), lymphome non hodgkinien (LNH), leucémie aiguë lymphoblastique (LAL), sarcome, et cancer des ovaires et des testicules3,4.
Les caractéristiques du néoplasme myéloïde lié au traitement et le moment de son développement après un diagnostic primaire dépendent de l'exposition à des agents spécifiques ainsi que de la dose cumulée et de l'intensité de la dose du traitement cytotoxique précédent 5.
L'incidence de t-MDS/AML suite à un traitement conventionnel varie de 0,8 % à 6,3 % à 20 ans. Le délai médian de développement de t-MDS/AML est de 3 à 5 ans, le risque diminuant nettement après la première décennie 6.
Deux types de t-MDS/AML sont reconnus dans la classification de l'OMS en fonction de l'exposition thérapeutique causale : un type lié à un agent alkylant/aux radiations et un type lié à un inhibiteur de la topoisomérase II. Le t-MDS/AML lié à un agent alkylant apparaît généralement 4 à 7 ans après l'exposition à l'agent mutagène .
Environ les deux tiers des patients présentent un SMD et le reste une LAM avec des caractéristiques myélodysplasiques. Les patients présentent fréquemment des cytopénies. Une dysplasie multilignée est souvent présente 7.
Dans cette forme classique de leucémie liée au traitement qui suit un traitement avec des agents alkylants et/ou une radiothérapie, les résultats dans le sang et la moelle osseuse ressemblent à ceux observés dans le SMD primaire, bien que le degré de dysgranulopoïèse et de dysmégacaryocytopoïèse soit généralement plus élevé 8.
Contrairement à l'agent alkylant t-MDS/AML, l'AML secondaire aux inhibiteurs de la topoisomérase II n'a souvent pas de phase myélodysplasique précédente et se présente comme une leucémie aiguë manifeste, souvent avec une composante monocytaire proéminente. La période de latence entre le début du traitement par les inhibiteurs de la topoisomérase II et le début de la leucémie est brève, avec une médiane de 2 à 3 ans 9.
La translocation réciproque t(8;9) (p22;p24) entre le bras court du chromosome 8 et le bras long du chromosome 9 est une anomalie récurrente qui fusionne la kinase activée par Janus 2 (JAK2) au gène du matériel péricentriolaire 1 de l'auto-antigène humain (PCM1) , avec rupture et réunion aux bandes 8p11 et 9q341010.
PCM1 code pour une grande protéine de 228kDa contenant plusieurs domaines potentiels de coiled-coil dans sa partie aminoterminale. Cette protéine est localisée dans des granules cytoplasmiques appelés satellites centriolaires. Il est supposé jouer un rôle crucial dans l'assemblage des protéines centrosomales, l'organisation des microtubules et dans la progression du cycle cellulaire11.
En raison de la fusion des gènes PCM1-JAK2, les domaines enroulés de PCM1 médient une oligomérisation qui rassemble les domaines JAK2 liés résultant en un domaine tyrosine kinase activé de manière constitutive de JAK212, 13.
JAK2 fait partie de la famille Janus des tyrosine kinases (JAK1, JAK2, JAK3, TYK2). Ces tyrosine kinases non réceptrices jouent un rôle important dans diverses voies de transduction du signal qui régulent la survie, la prolifération, la différenciation et l'apoptose cellulaires. La protéine est formée de sept domaines. Le domaine JH2 (domaine pseudokinase, domaine de type kinase) est situé dans l'exon 14 et a une fonction autorégulatrice négative essentielle14.
Le mécanisme le plus courant d'activation de JAK2 dans les hémopathies malignes est la mutation ponctuelle en position 617 (V617F).
Les conséquences de l'activation de JAK2 sont la transformation néoplasique et la prolifération cellulaire anormale dans diverses tumeurs malignes15.
- Ainsi, les translocations impliquant le locus JAK2 sont considérées comme ayant une importance oncogène dans les leucémies aiguës et les maladies myélodysplasiques/myéloprolifératives.
- Les patients atteints de cette anomalie présentent un large spectre clinique allant des maladies hématologiques chroniques aux maladies aiguës d'aspect myéloïde ou lymphoïde 16.
L'hybridation in situ par fluorescence (FISH) est une sorte de technique cytogénétique qui permet la visualisation de séquences d'acides nucléiques définies, en particulier des sites cellulaires ou chromosomiques, par hybridation de séquences de sondes complémentaires marquées par fluorescence dans des cellules intactes en métaphase ou en interphase.
Les sondes fluorescentes sont des acides nucléiques marqués avec des groupes fluorescents et peuvent se lier à des séquences d'ADN/ARN spécifiques. La microscopie à fluorescence peut être utilisée pour déterminer où la sonde fluorescente est liée aux chromosomes17.
Type d'étude
Inscription (Anticipé)
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Enfant
- Adulte
- Adulte plus âgé
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critère d'intégration:
• Syndromes myélodysplasiques : le diagnostic de SMD doit être confirmé par une ponction et/ou une biopsie de la moelle osseuse : le nombre de blastes doit être < 20 % ; les patients avec n'importe quel score pronostique international (IPSS) sont éligibles ; les patients avec un IPSS faible ou intermédiaire (INT)-1 doivent avoir une numération plaquettaire < 50x10⁹/L et/ou une numération absolue des neutrophiles (ANC) < 50x10⁹/L.
- Leucémie myéloïde aiguë avec dysplasie multilignée : le diagnostic de LAM-TLD doit être confirmé par une ponction et/ou une biopsie de moelle osseuse REMARQUE : il doit y avoir des preuves de >= 20 % de blastes lors de l'examen de la ponction et/ou de la biopsie de moelle osseuse ; AML-TLD sera interprété pour inclure les patients précédemment diagnostiqués selon les critères franco-américains-britanniques (FAB) comme une anémie réfractaire avec excès de blastes en transformation (AREB-t), ainsi que les patients sans antécédent de trouble hématologique antérieur qui ont une LAM qui répond aux critères d'AML-TLD selon les critères de l'Organisation mondiale de la santé (OMS); les patients atteints de LAM-TLD doivent avoir un nombre de globules blancs (GB) = < 30 x 10⁹/L documenté dans les 4 semaines précédant l'entrée dans l'étude (deux séries de numérations à 2 semaines d'intervalle seront prises ); les patients dont le nombre de globules blancs a doublé au cours de cette période et est supérieur à 20x10⁹/L au moment du dépistage ne seront pas éligibles
- Les patients ont commencé un traitement (agents cytotoxiques et radiothérapie ionisante) il y a au moins 2 ans.
Critère d'exclusion:
- autres néoplasmes liés au traitement autres que le syndrome myéloplasique ou la leucémie myéloïde aiguë
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Modèles d'observation: Autre
- Perspectives temporelles: Transversale
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
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Denovo MDS/AML
Patients atteints d'un néoplasme myéloïde de novo soit syndrome myélodysplasique et/ou leucémie myéloïde aiguë qui sont diagnostiqués par numération globulaire complète, frottis sanguin, ponction de moelle osseuse, biopsie de moelle osseuse, immunophénotypage et biopsie de moelle osseuse avec ces critères d'inclusion • Syndromes myélodysplasiques : le diagnostic le SMD doit être confirmé par une ponction et/ou une biopsie de la moelle osseuse : le nombre de blastes doit être < 20 % ; • Leucémie myéloïde aiguë avec dysplasie multilignée : le diagnostic d'AML-TLD doit être confirmé par une ponction et/ou une biopsie de moelle osseuse REMARQUE : il doit y avoir des preuves de >= 20 % de blastes lors de l'examen de la ponction et/ou de la biopsie de moelle osseuse ; |
Les échantillons sont déshydratés dans l'éthanol (une série de 50, 80 et 95 % (v/v), exposition pendant 3 min à 300 µl d'éthanol à chaque concentration) avant l'hybridation. Les échantillons sur bandes sont hybridés pendant 15 minutes à 55°C en utilisant une chambre d'incubation étanche à l'humidité. En bref, des volumes de 500 µl de tampon d'hybridation (NaCl 0,7 M, Tris 0,1 M [pH 8,0], dodécylsulfate de sodium 0,1 %, EDTA 10 mM, contenant la sonde, préchauffée à 55 ºC) sont appliqués sur la surface de la bande et le le couvercle est scellé, créant un environnement humide à température contrôlée dans la chambre. Après 15 min, le couvercle est retiré et les échantillons sont brièvement rincés avec un tampon d'hybridation sans sonde, préchauffé à 55 °C. Les cellules hybridées sur des bandes sont contre-colorées pendant 10 minutes dans l'obscurité avec environ 30 µl de milieu de montage contenant 1,5 µg ml-1 4',6-diamidino-2-phénylindole (DAPI). Ensuite, les bandes sont montées avec une lamelle et examinées à l'aide d'un microscope à fluorescence. |
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SMD/LMA liés au traitement
Détection du gène de fusion PCM1-JAK2 chez les patients atteints de syndrome myélodysplasique lié au traitement / patients atteints de leucémie myéloïde aiguë
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Les échantillons sont déshydratés dans l'éthanol (une série de 50, 80 et 95 % (v/v), exposition pendant 3 min à 300 µl d'éthanol à chaque concentration) avant l'hybridation. Les échantillons sur bandes sont hybridés pendant 15 minutes à 55°C en utilisant une chambre d'incubation étanche à l'humidité. En bref, des volumes de 500 µl de tampon d'hybridation (NaCl 0,7 M, Tris 0,1 M [pH 8,0], dodécylsulfate de sodium 0,1 %, EDTA 10 mM, contenant la sonde, préchauffée à 55 ºC) sont appliqués sur la surface de la bande et le le couvercle est scellé, créant un environnement humide à température contrôlée dans la chambre. Après 15 min, le couvercle est retiré et les échantillons sont brièvement rincés avec un tampon d'hybridation sans sonde, préchauffé à 55 °C. Les cellules hybridées sur des bandes sont contre-colorées pendant 10 minutes dans l'obscurité avec environ 30 µl de milieu de montage contenant 1,5 µg ml-1 4',6-diamidino-2-phénylindole (DAPI). Ensuite, les bandes sont montées avec une lamelle et examinées à l'aide d'un microscope à fluorescence. |
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Détection du gène de fusion PCM1-JAK2
Délai: 24mois
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Utilisation d'un échantillon frais de patients atteints de néoplasme myéloïde pour rechercher le gène de fusion PCM1-JAK2 dans les 2 types de néoplasme myéloïde lié au thaerap, étude de la relation entre PCM1-JAK2 et l'intensité de la dose et le temps d'exposition, et étude de la relation entre PCM1-JAK2 et d'autres cytogénétiques anomalies en utilisant la technique FISH et
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24mois
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Anticipé)
Achèvement primaire (Anticipé)
Achèvement de l'étude (Anticipé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Autres numéros d'identification d'étude
- PCM1-JAK2 fusion gene
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
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