- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04259879
Voies moléculaires liées à la réponse au jeûne à court terme
Évaluation de l'induction de p21 et des voies moléculaires liées à la réponse au jeûne à court terme
Aperçu de l'étude
Description détaillée
Le jeûne est une intervention nutritionnelle consistant en la restriction de l'apport en nutriments pendant une période de temps relativement longue. Il provoque une reprogrammation métabolique profonde visant à déplacer l'apport de nutriments de l'apport alimentaire externe vers les nutriments stockés internes. L'activation périodique de cette réponse complexe, appelée jeûne périodique ou intermittent (FI), suscite de nombreux effets protecteurs contre le vieillissement, les altérations métaboliques, les troubles neurologiques et la santé cardiovasculaire. Le jeûne à court terme est protecteur dans différents scénarios de stress, y compris la reperfusion d'ischémie, les épisodes d'inflammation et la toxicité induite par la chimiothérapie, et améliore l'efficacité anti-tumorale de la chimiothérapie. Bien que la physiologie de base du jeûne soit bien connue, les mécanismes moléculaires qui sous-tendent ses effets bénéfiques ne sont pas encore complètement compris.
Chez les mammifères, la réponse au jeûne de courte durée (de 12 à 48 heures) en termes de mobilisation des nutriments par la circulation sanguine a été largement étudiée. Le jeûne suit des phases séquentielles, au cours desquelles les nutriments sont libérés de différents dépôts de stockage. Premièrement, le glucose est libéré des réserves de glycogène dans le foie et les muscles. Lors de l'épuisement du glycogène, deux mécanismes de jeûne sont activés : les acides gras sont exportés du tissu adipeux vers la circulation sanguine sous forme d'acides gras libres (FFA), atteignant le foie où ils sont utilisés pour produire des corps cétoniques, un processus appelé cétogenèse. De plus, la gluconéogenèse est activée dans le foie, générant du glucose principalement à partir du glycérol (libéré lors de la lipolyse) et des acides aminés, qui proviennent principalement de la dégradation musculaire. Toutes ces réponses physiologiques sont étroitement régulées par des mécanismes hormonaux et moléculaires.
Au niveau hormonal, le jeûne induit une diminution de l'insuline sanguine, de la leptine et de la ghréline, et une augmentation du taux de glucagon, tandis que l'adiponectine sanguine reste inchangée. De plus, plusieurs voies de transduction du signal sont affectées par le jeûne. PPARalpha, un récepteur nucléaire des acides gras, est activé par l'augmentation médiée par le jeûne des acides gras libres (FFA) sanguins et déclenche l'expression de nombreux gènes cibles dans plusieurs tissus, y compris les cellules sanguines. Il a été démontré que l'inhibiteur p21 de la cycline dépendante de la kinase (CDK) est fortement régulé positivement pendant le jeûne à court terme dans de nombreux tissus de souris. De plus, il est connu que les souris p21-null sont incapables de supporter des périodes normales de jeûne et que p21 est nécessaire pour l'activation complète des gènes cibles de PPARa à la fois in vivo et dans des hépatocytes isolés.
Dans la présente étude, les chercheurs ont voulu étudier pour la première fois les mécanismes moléculaires du jeûne encore inexplorés, en particulier l'induction de l'expression de la voie de signalisation p21 et PPARalpha. Pour cela, les chercheurs ont analysé des échantillons de sang de volontaires sains soumis à 36 heures de jeûne, afin d'explorer l'expression des gènes dans les cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC).
Type d'étude
Inscription (Réel)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
-
Madrid, Espagne, 28049
- IMDEA Food
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
La description
Critère d'intégration:
- Hommes et femmes entre 18 et 50 ans.
- IMC >20<30
- Niveau d'éducation adéquat et compréhension de l'étude clinique
- Volonté de participer à l'étude en tant que volontaire et de fournir un consentement écrit
Critère d'exclusion:
- IMC <20 (minceur)
- IMC >30 (obésité)
- Niveaux de glucose bas anormaux après le jeûne
- Avoir donné du sang moins de 8 semaines avant le début de l'étude
- Sujets qui signalent une gêne particulière après des périodes précédentes de jeûne court
- Diagnostic du diabète sucré de type 2 (insulino-dépendant)
- Dyslipidémie sous traitement pharmacologique
- Hypertension artérielle sous traitement pharmacologique
- Démence, maladie neurologique ou réduction de la fonction cognitive
- Maladie grave (maladie hépatique, maladie rénale, etc.
- Prise de médicaments pouvant affecter les profils lipidiques et glycémiques (statines, fibrates, diurétiques, corticoïdes, anti-inflammatoires, hypoglycémiants ou insuline) 30 jours avant le début de l'étude.
- Prise de médicaments ou de substances pour la gestion de la perte de poids (15 jours avant le début de l'étude)
- Grossesse ou allaitement
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Science basique
- Répartition: N / A
- Modèle interventionnel: Affectation à un seul groupe
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
|---|---|
|
Expérimental: Jeûne
Les participants suivront une période de jeûne à court terme pendant 36 heures
|
Restriction de l'apport alimentaire
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Changements dans l'expression des gènes dans les PBMC après le jeûne
Délai: Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
L'analyse de l'expression de p21, pyruvate déshydrogénase kinase 4 (PDK4), carnitine palmitoyltransférase 1 (CPT1), adipophiline (ADFP) et famille de porteurs de solutés 25, membre 50 (SLC25A50) a été réalisée dans une réaction en chaîne par polymérase en temps réel rapide HT-7900 (PCR ).
Les quantifications ont été faites en appliquant la méthode ΔCt (ΔCt = [Ct du gène d'intérêt - Ct du ménage]).
Les gènes domestiques utilisés pour la normalisation des entrées étaient la β-actine (ACTB) et la sous-unité de tige latérale de la protéine ribosomique P0 (RPLP0).
|
Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Changements dans les niveaux d'insuline en réponse au jeûne
Délai: Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
Les niveaux d'insuline (Unités Internationales par millilitre) ont été mesurés avec un kit d'Abbott Laboratories, par dosage immunologique luminescent en utilisant l'instrument Architect d'Abbott Laboratories.
|
Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
|
Changements dans les niveaux d'acides gras libres en réponse au jeûne
Délai: Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
Les niveaux d'acides gras libres (moles par millilitre) ont été évalués avec un kit d'Abbott Laboratories, par des dosages spectrophotométriques enzymatiques à l'aide d'un instrument Architect d'Abbott Laboratories.
|
Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
|
Modifie les corps cétoniques en réponse au jeûne
Délai: Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
La concentration en corps cétoniques (moles par millilitre) sera mesurée avec un kit de Sigma-Aldrich, par un dosage spectrophotométrique enzymatique à l'aide d'un lecteur de microplaques de Thermo Fisher.
|
Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
|
Changements dans les niveaux de leptine en réponse au jeûne
Délai: Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
Les niveaux de leptine (nanogrammes par millilitre) ont été mesurés avec un kit de Mercodia par une immunoanalyse ELISA automatique non compétitive
|
Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
|
Modifications du profil lipidique en réponse au jeûne
Délai: Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
Pour évaluer les améliorations des lipides, les mesures suivantes ont été prises en compte : triacylglycérol, cholestérol total, lipoprotéines de basse densité et lipoprotéines de haute densité mesurées par des méthodes de laboratoire de routine (CQS, Madrid, Espagne).
|
Baseline, 24 heures et 48 heures plus tard
|
|
Évaluation subjective de la tolérance au jeûne
Délai: 36 heures de jeûne
|
Pour évaluer la tolérance au jeûne, les participants rempliront un test de tolérance au jeûne basé sur les symptômes qu'ils ressentent, cela se traduira par un score final de tolérance au jeûne.
|
36 heures de jeûne
|
Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Pablo J Fernandez-Marcos, PhD, IMDEA Food
- Chercheur principal: Manuel Serrano Marugán, PhD, Spanish National Cancer Research Center
Publications et liens utiles
Publications générales
- Antoni R, Johnston KL, Collins AL, Robertson MD. Effects of intermittent fasting on glucose and lipid metabolism. Proc Nutr Soc. 2017 Aug;76(3):361-368. doi: 10.1017/S0029665116002986. Epub 2017 Jan 16.
- Arnason TG, Bowen MW, Mansell KD. Effects of intermittent fasting on health markers in those with type 2 diabetes: A pilot study. World J Diabetes. 2017 Apr 15;8(4):154-164. doi: 10.4239/wjd.v8.i4.154.
- Gotthardt JD, Verpeut JL, Yeomans BL, Yang JA, Yasrebi A, Roepke TA, Bello NT. Intermittent Fasting Promotes Fat Loss With Lean Mass Retention, Increased Hypothalamic Norepinephrine Content, and Increased Neuropeptide Y Gene Expression in Diet-Induced Obese Male Mice. Endocrinology. 2016 Feb;157(2):679-91. doi: 10.1210/en.2015-1622. Epub 2015 Dec 14.
- Halberg N, Henriksen M, Soderhamn N, Stallknecht B, Ploug T, Schjerling P, Dela F. Effect of intermittent fasting and refeeding on insulin action in healthy men. J Appl Physiol (1985). 2005 Dec;99(6):2128-36. doi: 10.1152/japplphysiol.00683.2005. Epub 2005 Jul 28.
- Mattson MP, Longo VD, Harvie M. Impact of intermittent fasting on health and disease processes. Ageing Res Rev. 2017 Oct;39:46-58. doi: 10.1016/j.arr.2016.10.005. Epub 2016 Oct 31.
- Varady KA, Bhutani S, Church EC, Klempel MC. Short-term modified alternate-day fasting: a novel dietary strategy for weight loss and cardioprotection in obese adults. Am J Clin Nutr. 2009 Nov;90(5):1138-43. doi: 10.3945/ajcn.2009.28380. Epub 2009 Sep 30.
- Vasconcelos AR, Yshii LM, Viel TA, Buck HS, Mattson MP, Scavone C, Kawamoto EM. Intermittent fasting attenuates lipopolysaccharide-induced neuroinflammation and memory impairment. J Neuroinflammation. 2014 May 6;11:85. doi: 10.1186/1742-2094-11-85.
- Tinkum KL, Stemler KM, White LS, Loza AJ, Jeter-Jones S, Michalski BM, Kuzmicki C, Pless R, Stappenbeck TS, Piwnica-Worms D, Piwnica-Worms H. Fasting protects mice from lethal DNA damage by promoting small intestinal epithelial stem cell survival. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015 Dec 22;112(51):E7148-54. doi: 10.1073/pnas.1509249112. Epub 2015 Dec 7.
- Safdie FM, Dorff T, Quinn D, Fontana L, Wei M, Lee C, Cohen P, Longo VD. Fasting and cancer treatment in humans: A case series report. Aging (Albany NY). 2009 Dec 31;1(12):988-1007. doi: 10.18632/aging.100114.
- Raffaghello L, Safdie F, Bianchi G, Dorff T, Fontana L, Longo VD. Fasting and differential chemotherapy protection in patients. Cell Cycle. 2010 Nov 15;9(22):4474-6. doi: 10.4161/cc.9.22.13954. Epub 2010 Nov 15.
- Lee C, Raffaghello L, Brandhorst S, Safdie FM, Bianchi G, Martin-Montalvo A, Pistoia V, Wei M, Hwang S, Merlino A, Emionite L, de Cabo R, Longo VD. Fasting cycles retard growth of tumors and sensitize a range of cancer cell types to chemotherapy. Sci Transl Med. 2012 Mar 7;4(124):124ra27. doi: 10.1126/scitranslmed.3003293. Epub 2012 Feb 8.
- Di Biase S, Lee C, Brandhorst S, Manes B, Buono R, Cheng CW, Cacciottolo M, Martin-Montalvo A, de Cabo R, Wei M, Morgan TE, Longo VD. Fasting-Mimicking Diet Reduces HO-1 to Promote T Cell-Mediated Tumor Cytotoxicity. Cancer Cell. 2016 Jul 11;30(1):136-146. doi: 10.1016/j.ccell.2016.06.005.
- Pietrocola F, Pol J, Vacchelli E, Rao S, Enot DP, Baracco EE, Levesque S, Castoldi F, Jacquelot N, Yamazaki T, Senovilla L, Marino G, Aranda F, Durand S, Sica V, Chery A, Lachkar S, Sigl V, Bloy N, Buque A, Falzoni S, Ryffel B, Apetoh L, Di Virgilio F, Madeo F, Maiuri MC, Zitvogel L, Levine B, Penninger JM, Kroemer G. Caloric Restriction Mimetics Enhance Anticancer Immunosurveillance. Cancer Cell. 2016 Jul 11;30(1):147-160. doi: 10.1016/j.ccell.2016.05.016.
- Ruderman NB. Muscle amino acid metabolism and gluconeogenesis. Annu Rev Med. 1975;26:245-58. doi: 10.1146/annurev.me.26.020175.001333. No abstract available.
- Cahill GJ Jr, Owen OE, Morgan AP. The consumption of fuels during prolonged starvation. Adv Enzyme Regul. 1968;6:143-50. doi: 10.1016/0065-2571(68)90011-3. No abstract available.
- Nuttall FQ, Almokayyad RM, Gannon MC. Comparison of a carbohydrate-free diet vs. fasting on plasma glucose, insulin and glucagon in type 2 diabetes. Metabolism. 2015 Feb;64(2):253-62. doi: 10.1016/j.metabol.2014.10.004. Epub 2014 Oct 8.
- Nuttall FQ, Almokayyad RM, Gannon MC. The ghrelin and leptin responses to short-term starvation vs a carbohydrate-free diet in men with type 2 diabetes; a controlled, cross-over design study. Nutr Metab (Lond). 2016 Jul 22;13:47. doi: 10.1186/s12986-016-0106-x. eCollection 2016.
- Merl V, Peters A, Oltmanns KM, Kern W, Born J, Fehm HL, Schultes B. Serum adiponectin concentrations during a 72-hour fast in over- and normal-weight humans. Int J Obes (Lond). 2005 Aug;29(8):998-1001. doi: 10.1038/sj.ijo.0802971.
- Bouwens M, Afman LA, Muller M. Fasting induces changes in peripheral blood mononuclear cell gene expression profiles related to increases in fatty acid beta-oxidation: functional role of peroxisome proliferator activated receptor alpha in human peripheral blood mononuclear cells. Am J Clin Nutr. 2007 Nov;86(5):1515-23. doi: 10.1093/ajcn/86.5.1515.
- Lopez-Guadamillas E, Fernandez-Marcos PJ, Pantoja C, Munoz-Martin M, Martinez D, Gomez-Lopez G, Campos-Olivas R, Valverde AM, Serrano M. p21Cip1 plays a critical role in the physiological adaptation to fasting through activation of PPARalpha. Sci Rep. 2016 Oct 10;6:34542. doi: 10.1038/srep34542.
- Prokesch A, Graef FA, Madl T, Kahlhofer J, Heidenreich S, Schumann A, Moyschewitz E, Pristoynik P, Blaschitz A, Knauer M, Muenzner M, Bogner-Strauss JG, Dohr G, Schulz TJ, Schupp M. Liver p53 is stabilized upon starvation and required for amino acid catabolism and gluconeogenesis. FASEB J. 2017 Feb;31(2):732-742. doi: 10.1096/fj.201600845R. Epub 2016 Nov 3.
- Tinkum KL, White LS, Marpegan L, Herzog E, Piwnica-Worms D, Piwnica-Worms H. Forkhead box O1 (FOXO1) protein, but not p53, contributes to robust induction of p21 expression in fasted mice. J Biol Chem. 2013 Sep 27;288(39):27999-8008. doi: 10.1074/jbc.M113.494328. Epub 2013 Aug 5.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Autres numéros d'identification d'étude
- IMD PI0025
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
produit fabriqué et exporté des États-Unis.
Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .