- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT06539585
Balayage du fuseau méiotique dans les techniques de procréation assistée pour évaluer la qualité des ovocytes (SMART)
Scanner le fuseau méiotique dans les techniques de procréation assistée pour évaluer la qualité des ovocytes (étude SMART)
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
L'une des principales stratégies de traitement de l'infertilité est la fécondation in vitro (FIV) . Le taux de réussite de la FIV est affecté par plusieurs facteurs clés, notamment l'âge des femmes, la qualité et l'état de maturation des ovocytes, ainsi que la qualité du sperme. Plusieurs auteurs ont suggéré que la présence, la position et le retard du fuseau méiotique (MS) optiquement biréfringent sont liés à la compétence de développement des ovocytes, affectant la qualité de la fécondation et le développement de l'embryon. Les ovocytes ayant une morphologie de fuseau normal sont significativement plus susceptibles de produire des embryons euploïdes que les ovocytes dont le fuseau méiotique n'est pas visible ou anormal. L'ajustement du moment de l'injection intracytoplasmique des spermatozoïdes (ICSI) en fonction de la morphologie de la SEP a également été proposé. Il a été démontré que l'ajustement du moment de l'ICSI en fonction de la position du MS par rapport au corps polaire (PB) augmente la probabilité de fécondation réussie pour les femmes de plus de 35 ans. Pour les ovocytes des patientes de plus de 35 ans, le temps d'incubation plus long a permis à un plus grand nombre d'ovocytes d'atteindre leur pleine maturité (phase MII) et de se préparer à l'ICSI. Dans cette situation, le statut MS était un indicateur important de l’immaturité des ovules.
Le patient sera randomisé en trois groupes à l'aide de la capture électronique de données de recherche (REDCap) : groupe 1, ICSI standard sans imagerie MS ; groupe 2, imagerie MS suivie d'une ICSI standard, groupe 3, imagerie MS et fécondation ICSI selon le statut MS. Les ovocytes des patients du groupe 3 avec évaluation de la SEP seront fécondés selon le statut de la SEP soit 5 à 6 heures après le prélèvement de l'ovule (OPU) ou 7 à 8 heures après l'OPU. Les ovocytes sans évaluation MS seront tous fécondés 5 à 6 heures après l'OPU. L'évaluation MS aura lieu dans des plats à fond de verre pré-préparés avec environ 5 µl de milieu avec le tampon HEPES recouvert d'huile de paraffine, mis à chauffer une heure avant utilisation. L'ovocyte sera mis en rotation à l'aide d'une aiguille afin que le corps polaire (PB) et la MS soient tous deux bien visibles, et les photographies seront prises à l'aide d'un microscope optique. Le statut MS et l'angle (α) entre MS et PB seront obtenus 3 à 4 heures après le prélèvement des ovocytes (OPU). Dans le même temps, l'image de microscopie en lumière polarisée sera acquise (microscopie en lumière polarisée à un grossissement ×100. En particulier, pour les ovocytes du groupe 3, les patients présentant une PB/MS à proximité immédiate (angle entre PB et MS < 5◦) ou une MS non visible seront prédits comme des ovocytes immatures. Pour ces ovocytes, l'ICSI sera réalisée 4 à 5 h après l'évaluation en microscopie polarisation, soit 7 à 8 h après l'OPU. Pour les ovocytes avec MS clairement visible et PB/MS pas à proximité (angle entre PB et MS > 5◦), l'ICSI sera réalisée généralement 2 à 3 h après l'évaluation en microscopie de polarisation, soit 5 à 6 h après l'OPU, comme pour patients des groupes 1 et 2. L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard en utilisant des micropipettes ICSI/holding (Microtech IVF, République tchèque), de la polyvinylpyrrolidone (ICSI™, Vitrolife, Suède) et du système de micromanipulation Eppendorf (Hambourg, Allemagne) équipé d'une thermoplaque (Tokaohit, Japon). Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels. Nous surveillerons également le temps écoulé entre l'administration de la gonadotrophine chorionique humaine (hCG) et la fin de la fécondation proprement dite. Les ovocytes seront dénudés (HYASE-10X™, Vitrolife, Suède) après OPU, et le stade de maturation sera examiné. L'ovocyte au stade vésicule germinale (GV) ne sera pas inclus. Les ovocytes et embryons en incubateur time-lapse du fabricant japonais Astec seront cultivés dans une boîte timelapse Origio, Danemark Sage 1-Step™, Origio, Danemark sous huile de paraffine (OVOIL™, VITROLIFE, Suède) à 37,0 °C, 6% CO2 et 5%O2. La fécondation après ICSI sera définie comme la présence de deux pronoyaux et de 2 globules polaires 16 à 20 h après l'ICSI. Les embryons seront cultivés pendant 122 à 144 h.
Les résultats pilotes seront confirmés dans un essai contrôlé randomisé, c'est-à-dire que l'efficacité de l'utilisation de la visibilité MS et de la position relative par rapport au corps polaire comme indicateurs de la maturation des ovocytes afin d'optimiser le timing ICSI sera évaluée.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
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Prague, Tchéquie, 128 08
- General University Hospital in Prague
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Adulte
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
- Femmes ayant subi une ICSI ;
- Spermiogramme contenant au moins 0,5 mil/ml de spermatozoïdes ;
- Morphologie : morphologie normale > 1 % ;
- Cycles stimulés
Critère d'exclusion:
- Âge inférieur à 35 ans ou supérieur à 40 ans ;
- Cycles natifs ;
- Anomalies utérines sévères (fibrome sous-muqueux, fibrome ≥ 5 cm, septum utérin, polypes de l'endomètre, duplex utérin)
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Diagnostique
- Répartition: Randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Seul
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Comparateur actif: ICSI standard sans imagerie du fuseau méiotique.
Un groupe témoin de patients ayant subi un cycle de FIV standard sans microscopie du fuseau méiotique. Dans ce groupe témoin de patients, la fécondation ICSI sera réalisée 5 à 6 heures après le prélèvement d'ovocytes. L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard [6]. Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels. La fécondation après ICSI sera définie comme la présence de deux pronoyaux et de 2 corpus polaires. Les embryons seront cultivés pendant 122 à 144 h. |
L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard en utilisant des micropipettes ICSI/holding (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, République tchèque), de la polyvinylpyrrolidone (ICSI™, Vitrolife, Suède) et Eppendorf (Hambourg, Allemagne) système de micromanipulation équipé de thermoplaque (Tokaohit, Japon).
Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels.
Les ovocytes seront dénudés (HYASE-10X™, Vitrolife, Suède) après OPU et le stade de maturation sera examiné.
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Comparateur actif: Imagerie du fuseau méiotique suivie d’une ICSI standard.
L'évaluation MS aura lieu dans des plats à fond de verre pré-préparés avec environ 5 µl de milieu avec le tampon HEPES recouvert d'huile de paraffine, mis à chauffer une heure avant utilisation. L'ovocyte sera tourné à l'aide d'une aiguille afin que PB et MS soient tous deux bien visibles, et les photographies seront prises à l'aide d'un microscope optique. Le statut MS et l'angle (α) entre MS et PB seront obtenus 3 à 4 heures après le prélèvement des ovocytes (OPU). Dans le même temps, l'image de microscopie en lumière polarisée sera acquise (microscopie en lumière polarisée à un grossissement ×100. L'ICSI sera réalisée généralement 2 à 3 h après l'évaluation en microscopie de polarisation, soit 5 à 6 h après l'OPU. L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard [6]. La fécondation après ICSI sera définie comme la présence de deux pronoyaux et de 2 corpus polaires. Les embryons seront cultivés pendant 122 à 144 h. |
L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard en utilisant des micropipettes ICSI/holding (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, République tchèque), de la polyvinylpyrrolidone (ICSI™, Vitrolife, Suède) et Eppendorf (Hambourg, Allemagne) système de micromanipulation équipé de thermoplaque (Tokaohit, Japon).
Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels.
Les ovocytes seront dénudés (HYASE-10X™, Vitrolife, Suède) après OPU et le stade de maturation sera examiné.
Chez les patients âgés de plus de 35 ans et de moins de 40 ans, nous utiliserons un microscope avec un filtre polarisant pour évaluer la position des fuseaux méiotiques et des globules polaires dans les ovocytes prélevés sur des patients indiqués pour la FIV et l'ICSI.
À l'aide d'un microscope optique avec un filtre polarisant Nikon CEE GmbH, l'angle entre PB et MS ainsi que la visibilité MS seront déterminés.
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Comparateur actif: Imagerie MS et fécondation ICSI selon le statut MS.
Les ovocytes avec évaluation MS seront fécondés selon le statut MS soit 5 à 6 heures après le prélèvement de l'ovule (OPU) ou 7 à 8 heures après l'OPU. L'évaluation MS aura lieu dans des plats à fond de verre pré-préparés. Le statut MS et l'angle (α) entre MS et PB seront obtenus 3 à 4 heures après le prélèvement des ovocytes (OPU). Dans le même temps, l'image de microscopie en lumière polarisée sera acquise (microscopie en lumière polarisée à un grossissement ×100. Pour les ovocytes avec PB/MS à proximité (angle entre PB et MS < 5◦) ou MS non visibles, l'ICSI sera réalisée 4 à 5 h après l'évaluation en microscopie de polarisation, soit 7 à 8 h après l'OPU (ces ovocytes sont supposés ne pas être complètement mature). Pour les ovocytes avec MS clairement visible et PB/MS pas à proximité (angle entre PB et MS > 5◦), l'ICSI sera réalisée généralement 2 à 3 h après l'évaluation par microscopie de polarisation, soit 5 à 6 h après l'OPU. L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard [6]. |
L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard en utilisant des micropipettes ICSI/holding (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, République tchèque), de la polyvinylpyrrolidone (ICSI™, Vitrolife, Suède) et Eppendorf (Hambourg, Allemagne) système de micromanipulation équipé de thermoplaque (Tokaohit, Japon).
Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels.
Les ovocytes seront dénudés (HYASE-10X™, Vitrolife, Suède) après OPU et le stade de maturation sera examiné.
Chez les patients âgés de plus de 35 ans et de moins de 40 ans, nous utiliserons un microscope avec un filtre polarisant pour évaluer la position des fuseaux méiotiques et des globules polaires dans les ovocytes prélevés sur des patients indiqués pour la FIV et l'ICSI.
À l'aide d'un microscope optique avec un filtre polarisant Nikon CEE GmbH, l'angle entre PB et MS ainsi que la visibilité MS seront déterminés.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Taux de grossesse clinique des patientes dont le délai d'ICSI a été établi en fonction de l'état de la SEP
Délai: 6-8 semaines
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Le pourcentage de toutes les tentatives ayant abouti à une grossesse chez les patientes dont la fécondation ICSI a été réalisée selon le statut MS.
La visibilité du fuseau méiotique en lumière polarisée et sa position relative par rapport au corps polaire comme indicateur de la maturité des ovules seront surveillées et le moment optimal pour l'ICSI sera défini.
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6-8 semaines
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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taux de grossesse clinique des patientes dont le délai d'ICSI n'a pas été établi en fonction de l'état de SEP mesuré
Délai: 6-8 semaines
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Le pourcentage de toutes les tentatives conduisant à une grossesse chez les patientes dont la fécondation ICSI n'a pas été effectuée selon le statut SEP.
Mais la visibilité du fuseau méiotique en lumière polarisée et sa position relative par rapport au corps polaire ont été mesurées.
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6-8 semaines
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Autres mesures de résultats
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Taux de grossesse clinique des patientes avec un temps ICSI standard
Délai: 6-8 semaines
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Le pourcentage de toutes les tentatives conduisant à une grossesse chez les patientes dont l'ICSI était standard.
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6-8 semaines
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Collaborateurs et enquêteurs
Publications et liens utiles
Publications générales
- van Loendersloot LL, van Wely M, Limpens J, Bossuyt PM, Repping S, van der Veen F. Predictive factors in in vitro fertilization (IVF): a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod Update. 2010 Nov-Dec;16(6):577-89. doi: 10.1093/humupd/dmq015. Epub 2010 Jun 25.
- Wu B, Shi J, Zhao W, Lu S, Silva M, Gelety TJ. Understanding reproducibility of human IVF traits to predict next IVF cycle outcome. J Assist Reprod Genet. 2014 Oct;31(10):1323-30. doi: 10.1007/s10815-014-0288-y. Epub 2014 Aug 15.
- Hanevik HI, Hessen DO. IVF and human evolution. Hum Reprod Update. 2022 Jun 30;28(4):457-479. doi: 10.1093/humupd/dmac014.
- Rienzi L, Ubaldi F, Martinez F, Iacobelli M, Minasi MG, Ferrero S, Tesarik J, Greco E. Relationship between meiotic spindle location with regard to the polar body position and oocyte developmental potential after ICSI. Hum Reprod. 2003 Jun;18(6):1289-93. doi: 10.1093/humrep/deg274.
- Innocenti F, Fiorentino G, Cimadomo D, Soscia D, Garagna S, Rienzi L, Ubaldi FM, Zuccotti M; SIERR. Maternal effect factors that contribute to oocytes developmental competence: an update. J Assist Reprod Genet. 2022 Apr;39(4):861-871. doi: 10.1007/s10815-022-02434-y. Epub 2022 Feb 15.
- Rienzi L, Vajta G, Ubaldi F. Predictive value of oocyte morphology in human IVF: a systematic review of the literature. Hum Reprod Update. 2011 Jan-Feb;17(1):34-45. doi: 10.1093/humupd/dmq029. Epub 2010 Jul 16.
- Tepla O, Topurko Z, Jirsova S, Moosova M, Fajmonova E, Cabela R, Komrskova K, Kratochvilova I, Masata J. Timing of ICSI with Respect to Meiotic Spindle Status. Int J Mol Sci. 2022 Dec 21;24(1):105. doi: 10.3390/ijms24010105.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
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Termes liés à cette étude
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- MW24-08-00048
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