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Balayage du fuseau méiotique dans les techniques de procréation assistée pour évaluer la qualité des ovocytes (SMART)

1 août 2024 mis à jour par: Jaromír Mašata, Charles University, Czech Republic

Scanner le fuseau méiotique dans les techniques de procréation assistée pour évaluer la qualité des ovocytes (étude SMART)

Le taux de réussite de la procréation assistée est affecté par plusieurs facteurs, notamment l'âge des femmes, la qualité et l'état de maturation des ovocytes, ainsi que la qualité du sperme. L’imagerie du fuseau méiotique peut être cruciale pour déterminer la maturation des ovocytes et le moment optimal de la fécondation des ovules par injection intracytoplasmique de spermatozoïdes (ICSI). Une nouvelle méthode précise et non invasive de sélection d'ovocytes matures de qualité basée sur l'imagerie du fuseau méiotique destinée aux femmes de plus de 35 ans sera introduite. L'évaluation de l'efficacité en utilisant la visibilité du fuseau méiotique en lumière polarisée et sa position relative par rapport au corps polaire comme indicateur de la maturité des ovocytes sera surveillée et le moment optimal pour l'ICSI sera défini.

Aperçu de l'étude

Description détaillée

L'une des principales stratégies de traitement de l'infertilité est la fécondation in vitro (FIV) . Le taux de réussite de la FIV est affecté par plusieurs facteurs clés, notamment l'âge des femmes, la qualité et l'état de maturation des ovocytes, ainsi que la qualité du sperme. Plusieurs auteurs ont suggéré que la présence, la position et le retard du fuseau méiotique (MS) optiquement biréfringent sont liés à la compétence de développement des ovocytes, affectant la qualité de la fécondation et le développement de l'embryon. Les ovocytes ayant une morphologie de fuseau normal sont significativement plus susceptibles de produire des embryons euploïdes que les ovocytes dont le fuseau méiotique n'est pas visible ou anormal. L'ajustement du moment de l'injection intracytoplasmique des spermatozoïdes (ICSI) en fonction de la morphologie de la SEP a également été proposé. Il a été démontré que l'ajustement du moment de l'ICSI en fonction de la position du MS par rapport au corps polaire (PB) augmente la probabilité de fécondation réussie pour les femmes de plus de 35 ans. Pour les ovocytes des patientes de plus de 35 ans, le temps d'incubation plus long a permis à un plus grand nombre d'ovocytes d'atteindre leur pleine maturité (phase MII) et de se préparer à l'ICSI. Dans cette situation, le statut MS était un indicateur important de l’immaturité des ovules.

Le patient sera randomisé en trois groupes à l'aide de la capture électronique de données de recherche (REDCap) : groupe 1, ICSI standard sans imagerie MS ; groupe 2, imagerie MS suivie d'une ICSI standard, groupe 3, imagerie MS et fécondation ICSI selon le statut MS. Les ovocytes des patients du groupe 3 avec évaluation de la SEP seront fécondés selon le statut de la SEP soit 5 à 6 heures après le prélèvement de l'ovule (OPU) ou 7 à 8 heures après l'OPU. Les ovocytes sans évaluation MS seront tous fécondés 5 à 6 heures après l'OPU. L'évaluation MS aura lieu dans des plats à fond de verre pré-préparés avec environ 5 µl de milieu avec le tampon HEPES recouvert d'huile de paraffine, mis à chauffer une heure avant utilisation. L'ovocyte sera mis en rotation à l'aide d'une aiguille afin que le corps polaire (PB) et la MS soient tous deux bien visibles, et les photographies seront prises à l'aide d'un microscope optique. Le statut MS et l'angle (α) entre MS et PB seront obtenus 3 à 4 heures après le prélèvement des ovocytes (OPU). Dans le même temps, l'image de microscopie en lumière polarisée sera acquise (microscopie en lumière polarisée à un grossissement ×100. En particulier, pour les ovocytes du groupe 3, les patients présentant une PB/MS à proximité immédiate (angle entre PB et MS < 5◦) ou une MS non visible seront prédits comme des ovocytes immatures. Pour ces ovocytes, l'ICSI sera réalisée 4 à 5 h après l'évaluation en microscopie polarisation, soit 7 à 8 h après l'OPU. Pour les ovocytes avec MS clairement visible et PB/MS pas à proximité (angle entre PB et MS > 5◦), l'ICSI sera réalisée généralement 2 à 3 h après l'évaluation en microscopie de polarisation, soit 5 à 6 h après l'OPU, comme pour patients des groupes 1 et 2. L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard en utilisant des micropipettes ICSI/holding (Microtech IVF, République tchèque), de la polyvinylpyrrolidone (ICSI™, Vitrolife, Suède) et du système de micromanipulation Eppendorf (Hambourg, Allemagne) équipé d'une thermoplaque (Tokaohit, Japon). Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels. Nous surveillerons également le temps écoulé entre l'administration de la gonadotrophine chorionique humaine (hCG) et la fin de la fécondation proprement dite. Les ovocytes seront dénudés (HYASE-10X™, Vitrolife, Suède) après OPU, et le stade de maturation sera examiné. L'ovocyte au stade vésicule germinale (GV) ne sera pas inclus. Les ovocytes et embryons en incubateur time-lapse du fabricant japonais Astec seront cultivés dans une boîte timelapse Origio, Danemark Sage 1-Step™, Origio, Danemark sous huile de paraffine (OVOIL™, VITROLIFE, Suède) à 37,0 °C, 6% CO2 et 5%O2. La fécondation après ICSI sera définie comme la présence de deux pronoyaux et de 2 globules polaires 16 à 20 h après l'ICSI. Les embryons seront cultivés pendant 122 à 144 h.

Les résultats pilotes seront confirmés dans un essai contrôlé randomisé, c'est-à-dire que l'efficacité de l'utilisation de la visibilité MS et de la position relative par rapport au corps polaire comme indicateurs de la maturation des ovocytes afin d'optimiser le timing ICSI sera évaluée.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Estimé)

164

Phase

  • N'est pas applicable

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Lieux d'étude

      • Prague, Tchéquie, 128 08
        • General University Hospital in Prague

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

  • Adulte

Accepte les volontaires sains

Non

La description

Critère d'intégration:

  • Femmes ayant subi une ICSI ;
  • Spermiogramme contenant au moins 0,5 mil/ml de spermatozoïdes ;
  • Morphologie : morphologie normale > 1 % ;
  • Cycles stimulés

Critère d'exclusion:

  • Âge inférieur à 35 ans ou supérieur à 40 ans ;
  • Cycles natifs ;
  • Anomalies utérines sévères (fibrome sous-muqueux, fibrome ≥ 5 cm, septum utérin, polypes de l'endomètre, duplex utérin)

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: Diagnostique
  • Répartition: Randomisé
  • Modèle interventionnel: Affectation parallèle
  • Masquage: Seul

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Comparateur actif: ICSI standard sans imagerie du fuseau méiotique.

Un groupe témoin de patients ayant subi un cycle de FIV standard sans microscopie du fuseau méiotique. Dans ce groupe témoin de patients, la fécondation ICSI sera réalisée 5 à 6 heures après le prélèvement d'ovocytes.

L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard [6]. Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels. La fécondation après ICSI sera définie comme la présence de deux pronoyaux et de 2 corpus polaires. Les embryons seront cultivés pendant 122 à 144 h.

L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard en utilisant des micropipettes ICSI/holding (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, République tchèque), de la polyvinylpyrrolidone (ICSI™, Vitrolife, Suède) et Eppendorf (Hambourg, Allemagne) système de micromanipulation équipé de thermoplaque (Tokaohit, Japon). Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels. Les ovocytes seront dénudés (HYASE-10X™, Vitrolife, Suède) après OPU et le stade de maturation sera examiné.
Comparateur actif: Imagerie du fuseau méiotique suivie d’une ICSI standard.

L'évaluation MS aura lieu dans des plats à fond de verre pré-préparés avec environ 5 µl de milieu avec le tampon HEPES recouvert d'huile de paraffine, mis à chauffer une heure avant utilisation. L'ovocyte sera tourné à l'aide d'une aiguille afin que PB et MS soient tous deux bien visibles, et les photographies seront prises à l'aide d'un microscope optique. Le statut MS et l'angle (α) entre MS et PB seront obtenus 3 à 4 heures après le prélèvement des ovocytes (OPU). Dans le même temps, l'image de microscopie en lumière polarisée sera acquise (microscopie en lumière polarisée à un grossissement ×100. L'ICSI sera réalisée généralement 2 à 3 h après l'évaluation en microscopie de polarisation, soit 5 à 6 h après l'OPU.

L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard [6]. La fécondation après ICSI sera définie comme la présence de deux pronoyaux et de 2 corpus polaires. Les embryons seront cultivés pendant 122 à 144 h.

L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard en utilisant des micropipettes ICSI/holding (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, République tchèque), de la polyvinylpyrrolidone (ICSI™, Vitrolife, Suède) et Eppendorf (Hambourg, Allemagne) système de micromanipulation équipé de thermoplaque (Tokaohit, Japon). Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels. Les ovocytes seront dénudés (HYASE-10X™, Vitrolife, Suède) après OPU et le stade de maturation sera examiné.
Chez les patients âgés de plus de 35 ans et de moins de 40 ans, nous utiliserons un microscope avec un filtre polarisant pour évaluer la position des fuseaux méiotiques et des globules polaires dans les ovocytes prélevés sur des patients indiqués pour la FIV et l'ICSI. À l'aide d'un microscope optique avec un filtre polarisant Nikon CEE GmbH, l'angle entre PB et MS ainsi que la visibilité MS seront déterminés.
Comparateur actif: Imagerie MS et fécondation ICSI selon le statut MS.

Les ovocytes avec évaluation MS seront fécondés selon le statut MS soit 5 à 6 heures après le prélèvement de l'ovule (OPU) ou 7 à 8 heures après l'OPU. L'évaluation MS aura lieu dans des plats à fond de verre pré-préparés. Le statut MS et l'angle (α) entre MS et PB seront obtenus 3 à 4 heures après le prélèvement des ovocytes (OPU). Dans le même temps, l'image de microscopie en lumière polarisée sera acquise (microscopie en lumière polarisée à un grossissement ×100. Pour les ovocytes avec PB/MS à proximité (angle entre PB et MS < 5◦) ou MS non visibles, l'ICSI sera réalisée 4 à 5 h après l'évaluation en microscopie de polarisation, soit 7 à 8 h après l'OPU (ces ovocytes sont supposés ne pas être complètement mature). Pour les ovocytes avec MS clairement visible et PB/MS pas à proximité (angle entre PB et MS > 5◦), l'ICSI sera réalisée généralement 2 à 3 h après l'évaluation par microscopie de polarisation, soit 5 à 6 h après l'OPU.

L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard [6].

L'ICSI sera réalisée selon le protocole standard en utilisant des micropipettes ICSI/holding (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, République tchèque), de la polyvinylpyrrolidone (ICSI™, Vitrolife, Suède) et Eppendorf (Hambourg, Allemagne) système de micromanipulation équipé de thermoplaque (Tokaohit, Japon). Les ovocytes seront cultivés individuellement et leur ordre préservé, afin que les autres résultats (données timelapse, résultats cliniques) puissent être associés à des ovocytes individuels. Les ovocytes seront dénudés (HYASE-10X™, Vitrolife, Suède) après OPU et le stade de maturation sera examiné.
Chez les patients âgés de plus de 35 ans et de moins de 40 ans, nous utiliserons un microscope avec un filtre polarisant pour évaluer la position des fuseaux méiotiques et des globules polaires dans les ovocytes prélevés sur des patients indiqués pour la FIV et l'ICSI. À l'aide d'un microscope optique avec un filtre polarisant Nikon CEE GmbH, l'angle entre PB et MS ainsi que la visibilité MS seront déterminés.

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Taux de grossesse clinique des patientes dont le délai d'ICSI a été établi en fonction de l'état de la SEP
Délai: 6-8 semaines
Le pourcentage de toutes les tentatives ayant abouti à une grossesse chez les patientes dont la fécondation ICSI a été réalisée selon le statut MS. La visibilité du fuseau méiotique en lumière polarisée et sa position relative par rapport au corps polaire comme indicateur de la maturité des ovules seront surveillées et le moment optimal pour l'ICSI sera défini.
6-8 semaines

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
taux de grossesse clinique des patientes dont le délai d'ICSI n'a pas été établi en fonction de l'état de SEP mesuré
Délai: 6-8 semaines
Le pourcentage de toutes les tentatives conduisant à une grossesse chez les patientes dont la fécondation ICSI n'a pas été effectuée selon le statut SEP. Mais la visibilité du fuseau méiotique en lumière polarisée et sa position relative par rapport au corps polaire ont été mesurées.
6-8 semaines

Autres mesures de résultats

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Taux de grossesse clinique des patientes avec un temps ICSI standard
Délai: 6-8 semaines
Le pourcentage de toutes les tentatives conduisant à une grossesse chez les patientes dont l'ICSI était standard.
6-8 semaines

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Publications générales

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

18 juillet 2024

Achèvement primaire (Estimé)

31 décembre 2027

Achèvement de l'étude (Estimé)

31 mars 2028

Dates d'inscription aux études

Première soumission

23 juillet 2024

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

1 août 2024

Première publication (Réel)

6 août 2024

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

6 août 2024

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

1 août 2024

Dernière vérification

1 août 2024

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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