- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT06539585
Scansione del fuso meiotico nelle tecniche di riproduzione assistita per valutare la qualità degli ovociti (SMART)
Scansione del fuso meiotico nelle tecniche di riproduzione assistita per valutare la qualità degli ovociti (studio SMART)
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
Una delle principali strategie di trattamento dell’infertilità è la fecondazione in vitro (IVF). Il tasso di successo della fecondazione in vitro è influenzato da diversi fattori chiave tra cui l’età delle donne, la qualità degli ovociti e lo stato di maturazione, nonché la qualità dello sperma. Diversi autori hanno suggerito che la presenza, la posizione e il ritardo del fuso meiotico (MS) otticamente birifrangente sono correlati alla competenza di sviluppo dell'ovocita, influenzando la qualità della fecondazione e lo sviluppo dell'embrione. Gli ovociti con morfologia del fuso normale hanno una probabilità significativamente maggiore di produrre embrioni euploidi rispetto agli ovociti con fusi meiotici non visibili o anormali. È stato anche proposto di regolare i tempi di iniezione intracitoplasmatica degli spermatozoi (ICSI) in base alla morfologia della SM. È stato dimostrato che aggiustare il tempo dell’ICSI in base alla posizione della MS rispetto al corpo polare (PB) aumenta la probabilità di successo della fecondazione per le donne di età superiore ai 35 anni. Per gli ovociti delle pazienti di età superiore ai 35 anni, il tempo di incubazione più lungo ha consentito a un maggior numero di ovociti di diventare completamente maturi (fase MII) e preparati per l'ICSI. In questa situazione, lo stato della SM era un indicatore importante dell’immaturità degli ovociti.
Il paziente verrà randomizzato in tre gruppi utilizzando Research Electronic Data Capture (REDCap): gruppo 1, ICSI standard senza imaging MS; gruppo 2, imaging MS seguito da ICSI standard, gruppo 3, imaging MS e fecondazione ICSI in base allo stato di SM. Gli ovociti dei pazienti del gruppo 3 con valutazione della SM verranno fecondati in base allo stato della SM 5-6 ore dopo il prelievo dell'ovulo (OPU) o 7-8 ore dopo l'OPU. Gli ovociti senza valutazione MS verranno tutti fecondati 5-6 ore dopo l'OPU. La valutazione della MS avrà luogo in piastre con fondo di vetro pre-preparate con circa 5μl di terreno con il tampone HEPES ricoperto di olio di paraffina, messo a scaldare un'ora prima dell'uso. L'ovocita verrà ruotato utilizzando un ago in modo che il corpo polare (PB) e il MS siano entrambi ben visibili e le fotografie verranno scattate utilizzando il microscopio ottico. Lo stato MS e l'angolo (α) tra MS e PB saranno ottenuti 3-4 ore dopo il prelievo degli ovociti (OPU). Contemporaneamente verrà acquisita l’immagine al microscopio a luce polarizzata (microscopia a luce polarizzata con ingrandimento 100×. In particolare, per gli ovociti dei pazienti del gruppo 3 con PB/MS in stretta prossimità (angolo tra PB e MS < 5◦) o MS non visibili saranno previsti come ovociti immaturi. Per questi ovociti, l'ICSI verrà eseguita 4-5 ore dopo la valutazione al microscopio di polarizzazione, ovvero 7-8 ore dopo l'OPU. Per gli ovociti con MS chiaramente visibile e PB/MS non in stretta prossimità (angolo tra PB e MS > 5◦) l'ICSI verrà eseguita tipicamente 2-3 ore dopo la valutazione al microscopio di polarizzazione, cioè 5-6 ore dopo l'OPU, come per pazienti da 1 e 2 gruppi. L'ICSI sarà eseguita secondo il protocollo standard utilizzando micropipette ICSI/holding (Microtech IVF, Repubblica Ceca), polivinilpirrolidone (ICSI™, Vitrolife, Svezia) e sistema di micromanipolazione Eppendorf (Amburgo, Germania) dotato di termopiastra (Tokaohit, Giappone). Gli ovociti verranno coltivati individualmente e il loro ordine verrà preservato, in modo che gli altri risultati (dati dal timelapse, risultati clinici) possano essere associati ai singoli ovociti. Monitoreremo anche il tempo che intercorre tra la somministrazione della gonadotropina corionica umana (hCG) e il completamento della fecondazione vera e propria. Gli ovociti verranno denudati (HYASE-10X™, Vitrolife, Svezia) dopo l'OPU e verrà esaminato lo stadio di maturazione. Gli ovociti allo stadio di vescicola germinale (GV) non saranno inclusi. Ovociti ed embrioni nell'incubatrice time-lapse del produttore giapponese Astec saranno coltivati in una piastra timelapse Origio, Danimarca Sage 1-Step™, Origio, Danimarca sotto olio di paraffina (OVOIL™, VITROLIFE, Svezia) a 37,0 °C, 6% CO2 e 5%O2. La fecondazione dopo l'ICSI sarà definita come la presenza di due pronuclei e 2 corpi polari 16-20 ore dopo l'ICSI. Gli embrioni verranno coltivati per 122-144 h.
I risultati pilota saranno confermati in uno studio di controllo randomizzato, ovvero verrà valutata l'efficienza dell'utilizzo della visibilità della SM e della posizione relativa rispetto al corpo polare come indicatori della maturazione degli ovociti al fine di ottimizzare i tempi dell'ICSI.
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
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Prague, Cechia, 128 08
- General University Hospital in Prague
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
Accetta volontari sani
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Donne sottoposte a ICSI;
- Spermiogramma contenente almeno 0,5 mil/ml di spermatozoi;
- Morflogia: morfologia normale >1%;
- Cicli stimolati
Criteri di esclusione:
- Età inferiore a 35 anni o superiore a 40;
- Cicli nativi;
- Gravi anomalie uterine (fibroma sottomucoso, fibroma ≥ 5 cm, setto uterino, polipi endometriali, duplex dell'utero)
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Diagnostico
- Assegnazione: Randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Separare
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
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Comparatore attivo: ICSI standard senza imaging del fuso meiotico.
Un gruppo di controllo di pazienti sottoposti a un ciclo di fecondazione in vitro standard senza microscopia del fuso meiotico. In questo gruppo di controllo di pazienti, la fecondazione ICSI verrà eseguita 5-6 ore dopo la raccolta degli ovociti. L'ICSI sarà eseguita secondo il protocollo standard [6]. Gli ovociti verranno coltivati individualmente e il loro ordine verrà preservato, in modo che gli altri risultati (dati dal timelapse, risultati clinici) possano essere associati ai singoli ovociti. La fecondazione dopo ICSI sarà definita come la presenza di due pronuclei e due corpi polari. Gli embrioni verranno coltivati per 122-144 h. |
L'ICSI sarà eseguita secondo il protocollo standard utilizzando micropipette ICSI/contenitrici (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, Repubblica Ceca), polivinilpirrolidone (ICSI™, Vitrolife, Svezia) ed Eppendorf (Amburgo, Germania) sistema di micromanipolazione dotato di termopiastra (Tokaohit, Giappone).
Gli ovociti verranno coltivati individualmente e il loro ordine verrà preservato, in modo che gli altri risultati (dati dal timelapse, risultati clinici) possano essere associati ai singoli ovociti.
Gli ovociti verranno denudati (HYASE-10X™, Vitrolife, Svezia) dopo l'OPU e verrà esaminato lo stadio di maturazione.
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Comparatore attivo: Imaging del fuso meiotico seguito da ICSI standard.
La valutazione della MS avrà luogo in piastre con fondo di vetro pre-preparate con circa 5μl di terreno con il tampone HEPES ricoperto di olio di paraffina, messo a scaldare un'ora prima dell'uso. L'ovocita verrà ruotato utilizzando un ago in modo che PB e MS siano entrambi ben visibili e le fotografie verranno scattate al microscopio ottico. Lo stato MS e l'angolo (α) tra MS e PB saranno ottenuti 3-4 ore dopo il prelievo degli ovociti (OPU). Contemporaneamente verrà acquisita l’immagine al microscopio a luce polarizzata (microscopia a luce polarizzata con ingrandimento 100×. L'ICSI verrà eseguita tipicamente 2-3 ore dopo la valutazione al microscopio di polarizzazione, ovvero 5-6 ore dopo l'OPU. L'ICSI sarà eseguita secondo il protocollo standard [6]. La fecondazione dopo ICSI sarà definita come la presenza di due pronuclei e due corpi polari. Gli embrioni verranno coltivati per 122-144 h. |
L'ICSI sarà eseguita secondo il protocollo standard utilizzando micropipette ICSI/contenitrici (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, Repubblica Ceca), polivinilpirrolidone (ICSI™, Vitrolife, Svezia) ed Eppendorf (Amburgo, Germania) sistema di micromanipolazione dotato di termopiastra (Tokaohit, Giappone).
Gli ovociti verranno coltivati individualmente e il loro ordine verrà preservato, in modo che gli altri risultati (dati dal timelapse, risultati clinici) possano essere associati ai singoli ovociti.
Gli ovociti verranno denudati (HYASE-10X™, Vitrolife, Svezia) dopo l'OPU e verrà esaminato lo stadio di maturazione.
Nei pazienti di età superiore a 35 anni e inferiore a 40 anni, utilizzeremo un microscopio con filtro polarizzatore per valutare la posizione dei fusi meiotici e dei corpi polari negli ovociti raccolti da pazienti indicati per IVF e ICSI.
Utilizzando un microscopio ottico con filtro polarizzatore Nikon CEE GmbH, verrà determinato l'angolo tra PB e MS insieme alla visibilità MS.
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Comparatore attivo: Imaging MS e fecondazione ICSI in base allo stato della SM.
Gli ovociti con valutazione MS verranno fecondati in base allo stato MS 5-6 ore dopo il prelievo dell'ovulo (OPU) o 7-8 ore dopo l'OPU. La valutazione della MS avrà luogo in piatti con fondo di vetro pre-preparati. Lo stato MS e l'angolo (α) tra MS e PB saranno ottenuti 3-4 ore dopo il prelievo degli ovociti (OPU). Contemporaneamente verrà acquisita l’immagine al microscopio a luce polarizzata (microscopia a luce polarizzata con ingrandimento 100×. Per gli ovociti con PB/MS in prossimità (angolo tra PB e MS < 5◦) o MS non visibile, l'ICSI verrà eseguita 4-5 ore dopo la valutazione al microscopio di polarizzazione, cioè 7-8 ore dopo l'OPU (questi ovociti si suppone non essere completamente maturo). Per gli ovociti con MS chiaramente visibile e PB/MS non nelle immediate vicinanze (angolo tra PB e MS > 5◦) l'ICSI verrà eseguita tipicamente 2-3 ore dopo la valutazione al microscopio di polarizzazione, ovvero 5-6 ore dopo l'OPU. L'ICSI sarà eseguita secondo il protocollo standard [6]. |
L'ICSI sarà eseguita secondo il protocollo standard utilizzando micropipette ICSI/contenitrici (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, Repubblica Ceca), polivinilpirrolidone (ICSI™, Vitrolife, Svezia) ed Eppendorf (Amburgo, Germania) sistema di micromanipolazione dotato di termopiastra (Tokaohit, Giappone).
Gli ovociti verranno coltivati individualmente e il loro ordine verrà preservato, in modo che gli altri risultati (dati dal timelapse, risultati clinici) possano essere associati ai singoli ovociti.
Gli ovociti verranno denudati (HYASE-10X™, Vitrolife, Svezia) dopo l'OPU e verrà esaminato lo stadio di maturazione.
Nei pazienti di età superiore a 35 anni e inferiore a 40 anni, utilizzeremo un microscopio con filtro polarizzatore per valutare la posizione dei fusi meiotici e dei corpi polari negli ovociti raccolti da pazienti indicati per IVF e ICSI.
Utilizzando un microscopio ottico con filtro polarizzatore Nikon CEE GmbH, verrà determinato l'angolo tra PB e MS insieme alla visibilità MS.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Tasso di gravidanza clinica delle pazienti il cui tempo ICSI è stato stabilito in base allo stato di SM
Lasso di tempo: 6-8 settimane
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La percentuale di tutti i tentativi che hanno portato alla gravidanza di pazienti la cui fecondazione ICSI è stata effettuata in base allo stato di SM.
Verrà monitorata la visibilità del fuso meiotico in luce polarizzata e la sua posizione relativa rispetto al corpo polare come indicatore della maturità dell'ovocita e verrà definito il momento ottimale per l'ICSI.
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6-8 settimane
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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tasso di gravidanza clinica dei pazienti il cui tempo ICSI non è stato stabilito in base allo stato di SM misurato
Lasso di tempo: 6-8 settimane
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La percentuale di tutti i tentativi che hanno portato alla gravidanza di pazienti la cui fecondazione ICSI non è stata eseguita in base allo stato di SM.
Ma è stata misurata la visibilità del fuso meiotico nella luce polarizzata e la sua posizione relativa rispetto al corpo polare.
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6-8 settimane
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Altre misure di risultato
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Tasso di gravidanza clinica delle pazienti con tempo ICSI standard
Lasso di tempo: 6-8 settimane
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La percentuale di tutti i tentativi che hanno portato alla gravidanza di pazienti la cui ICSI era standard.
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6-8 settimane
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Collaboratori e investigatori
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- van Loendersloot LL, van Wely M, Limpens J, Bossuyt PM, Repping S, van der Veen F. Predictive factors in in vitro fertilization (IVF): a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod Update. 2010 Nov-Dec;16(6):577-89. doi: 10.1093/humupd/dmq015. Epub 2010 Jun 25.
- Wu B, Shi J, Zhao W, Lu S, Silva M, Gelety TJ. Understanding reproducibility of human IVF traits to predict next IVF cycle outcome. J Assist Reprod Genet. 2014 Oct;31(10):1323-30. doi: 10.1007/s10815-014-0288-y. Epub 2014 Aug 15.
- Hanevik HI, Hessen DO. IVF and human evolution. Hum Reprod Update. 2022 Jun 30;28(4):457-479. doi: 10.1093/humupd/dmac014.
- Rienzi L, Ubaldi F, Martinez F, Iacobelli M, Minasi MG, Ferrero S, Tesarik J, Greco E. Relationship between meiotic spindle location with regard to the polar body position and oocyte developmental potential after ICSI. Hum Reprod. 2003 Jun;18(6):1289-93. doi: 10.1093/humrep/deg274.
- Innocenti F, Fiorentino G, Cimadomo D, Soscia D, Garagna S, Rienzi L, Ubaldi FM, Zuccotti M; SIERR. Maternal effect factors that contribute to oocytes developmental competence: an update. J Assist Reprod Genet. 2022 Apr;39(4):861-871. doi: 10.1007/s10815-022-02434-y. Epub 2022 Feb 15.
- Rienzi L, Vajta G, Ubaldi F. Predictive value of oocyte morphology in human IVF: a systematic review of the literature. Hum Reprod Update. 2011 Jan-Feb;17(1):34-45. doi: 10.1093/humupd/dmq029. Epub 2010 Jul 16.
- Tepla O, Topurko Z, Jirsova S, Moosova M, Fajmonova E, Cabela R, Komrskova K, Kratochvilova I, Masata J. Timing of ICSI with Respect to Meiotic Spindle Status. Int J Mol Sci. 2022 Dec 21;24(1):105. doi: 10.3390/ijms24010105.
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