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Escaneo del huso meiótico en técnicas de reproducción asistida para evaluar la calidad de los ovocitos (SMART)

1 de agosto de 2024 actualizado por: Jaromír Mašata, Charles University, Czech Republic

Escaneo del huso meiótico en técnicas de reproducción asistida para evaluar la calidad de los ovocitos (estudio SMART)

La tasa de éxito de la reproducción asistida se ve afectada por varios factores, entre ellos la edad de las mujeres, la calidad de los ovocitos y el estado de maduración, así como la calidad del esperma. Las imágenes del huso meiótico pueden ser cruciales para determinar la maduración de los ovocitos y el momento óptimo de fertilización de los ovocitos mediante inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI). Se introducirá un nuevo método preciso y no invasivo para seleccionar ovocitos maduros de calidad basado en imágenes del huso meiótico para mujeres mayores de 35 años. Se monitoreará la evaluación de la eficiencia utilizando la visibilidad del huso meiótico en luz polarizada y su posición relativa al cuerpo polar como indicador de madurez de los ovocitos y se definirá el momento óptimo para ICSI.

Descripción general del estudio

Descripción detallada

Una de las principales estrategias del tratamiento de la infertilidad es la fertilización in vitro (FIV). La tasa de éxito de la FIV se ve afectada por varios factores clave, incluida la edad de las mujeres, la calidad de los ovocitos y el estado de maduración, así como la calidad del esperma. Varios autores han sugerido que la presencia, posición y retardo del huso meiótico (MS) ópticamente birrefringente están relacionados con la competencia de desarrollo de los ovocitos, afectando la calidad de la fertilización y el desarrollo embrionario. Los ovocitos con morfología de huso normal tienen significativamente más probabilidades de producir embriones euploides en comparación con los ovocitos con husos meióticos que no son visibles o anormales. También se ha propuesto ajustar el momento de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (ICSI) en función de la morfología de la EM. Se demostró que ajustar el tiempo de ICSI en función de la posición del MS con respecto al cuerpo polar (PB) aumenta la probabilidad de fertilización exitosa en mujeres mayores de 35 años. Para los ovocitos de pacientes mayores de 35 años, el mayor tiempo de incubación permitió que un mayor número de ovocitos maduraran completamente (fase MII) y se prepararan para ICSI. En esta situación, el estado de EM fue un indicador importante de la inmadurez de los ovocitos.

El paciente será asignado al azar a tres grupos utilizando la captura de datos electrónicos de investigación (REDCap): grupo 1, ICSI estándar sin imágenes de EM; grupo 2, imágenes de EM seguidas de ICSI estándar, grupo 3, imágenes de EM y fertilización con ICSI según el estado de la EM. Los ovocitos de pacientes del grupo 3 con evaluación de EM serán fertilizados según el estado de la EM, ya sea 5 a 6 horas después de la recogida del óvulo (OPU) o 7 a 8 horas después de la OPU. Todos los ovocitos sin evaluación de EM serán fertilizados 5-6 horas después de la OPU. La evaluación de MS se llevará a cabo en platos con fondo de vidrio preparados previamente con aproximadamente 5 μl de medio con el tampón HEPES cubierto con aceite de parafina, puesto a calentar una hora antes de su uso. El ovocito se rotará con una aguja para que el cuerpo polar (PB) y el MS sean bien visibles, y se tomarán fotografías con un microscopio óptico. El estado de MS y el ángulo (α) entre MS y PB se obtendrán 3-4 horas después de la recogida de ovocitos (OPU). Al mismo tiempo, se adquirirá la imagen de microscopía de luz polarizada (microscopía de luz polarizada con un aumento de ×100). Especialmente, para los ovocitos del grupo 3, los pacientes con PB/MS muy próximos (ángulo entre PB y MS < 5◦) o MS no visible se predecirán como ovocitos inmaduros. Para estos ovocitos, la ICSI se realizará 4-5 h después de la evaluación por microscopía de polarización, es decir, 7-8 h después de la OPU. Para ovocitos con MS claramente visible y PB/MS no muy próximos (ángulo entre PB y MS > 5◦), la ICSI se realizará normalmente 2-3 h después de la evaluación por microscopía de polarización, es decir, 5-6 h después de OPU, como para pacientes de 1 y 2 grupos. La ICSI se realizará de acuerdo con el protocolo estándar utilizando ICSI/micropipetas de sujeción (Microtech IVF, República Checa), polivinilpirrolidona (ICSI ™, Vitrolife, Suecia) y sistema de micromanipulación Eppendorf (Hamburgo, Alemania) equipado con termoplaca (Tokaohit, Japón). Los ovocitos se cultivarán individualmente y se preservará su orden, de modo que los otros resultados (datos del lapso de tiempo, resultados clínicos) puedan asociarse con ovocitos individuales. También controlaremos el tiempo desde la administración de gonadotropina coriónica humana (hCG) hasta la finalización de la fertilización real. Los ovocitos se desnudarán (HYASE-10X™, Vitrolife, Suecia) después de la OPU y se examinará la etapa de maduración. No se incluirán ovocitos en estadio de vesícula germinal (GV). Los ovocitos y embriones en una incubadora time-lapse del fabricante japonés Astec se cultivarán en una placa timelapse Origio, Dinamarca Sage 1-Step™, Origio, Dinamarca bajo aceite de parafina (OVOIL™, VITROLIFE, Suecia) a 37,0 °C, 6 % CO2 y 5%O2. La fertilización después de ICSI se definirá como la presencia de dos pronúcleos y 2 cuerpos polares 16-20 h después de ICSI. Los embriones se cultivarán durante 122-144 h.

Los hallazgos piloto se confirmarán en un ensayo de control aleatorio, es decir, se evaluará la eficiencia del uso de la visibilidad de la EM y la posición relativa al cuerpo polar como indicadores de la maduración de los ovocitos para optimizar el tiempo de ICSI.

Tipo de estudio

Intervencionista

Inscripción (Estimado)

164

Fase

  • No aplica

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Ubicaciones de estudio

      • Prague, Chequia, 128 08
        • General University Hospital in Prague

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

  • Adulto

Acepta Voluntarios Saludables

No

Descripción

Criterios de inclusión:

  • Mujeres que se sometieron a ICSI;
  • Espermiograma que contenga al menos 0,5 mil/ml de espermatozoides;
  • Morfología: morfología normal >1%;
  • Ciclos estimulados

Criterio de exclusión:

  • Edad menor de 35 años o mayor de 40;
  • Ciclos nativos;
  • Anomalías uterinas graves (fibroma submucoso, fibroma ≥5 cm, tabique uterino, pólipos endometriales, útero dúplex)

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Propósito principal: Diagnóstico
  • Asignación: Aleatorizado
  • Modelo Intervencionista: Asignación paralela
  • Enmascaramiento: Único

Armas e Intervenciones

Grupo de participantes/brazo
Intervención / Tratamiento
Comparador activo: ICSI estándar sin imágenes del huso meiótico.

Un grupo de control de pacientes que se sometieron a un ciclo de FIV estándar sin microscopía del huso meiótico. En este grupo de control de pacientes, la fertilización ICSI se realizará 5 a 6 horas después de la recolección de ovocitos.

La ICSI se realizará según el protocolo estándar [6]. Los ovocitos se cultivarán individualmente y se preservará su orden, de modo que los otros resultados (datos del lapso de tiempo, resultados clínicos) puedan asociarse con ovocitos individuales. La fertilización después de ICSI se definirá como la presencia de dos pronúcleos y 2 cuerpos polares. Los embriones se cultivarán durante 122-144 h.

La ICSI se realizará de acuerdo con el protocolo estándar utilizando ICSI/micropipetas de retención (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, República Checa), polivinilpirrolidona (ICSI™, Vitrolife, Suecia) y Eppendorf (Hamburgo, Alemania) sistema de micromanipulación equipado con termoplaca (Tokaohit, Japón). Los ovocitos se cultivarán individualmente y se preservará su orden, de modo que los otros resultados (datos del lapso de tiempo, resultados clínicos) puedan asociarse con ovocitos individuales. Los ovocitos se desnudarán (HYASE-10X™, Vitrolife, Suecia) después de la OPU y se examinará la etapa de maduración.
Comparador activo: Imágenes del huso meiótico seguidas de ICSI estándar.

La evaluación de MS se llevará a cabo en platos con fondo de vidrio preparados previamente con aproximadamente 5 μl de medio con el tampón HEPES cubierto con aceite de parafina, puesto a calentar una hora antes de su uso. El ovocito se rotará con una aguja para que tanto PB como MS sean bien visibles y se tomarán fotografías con un microscopio óptico. El estado de MS y el ángulo (α) entre MS y PB se obtendrán 3-4 horas después de la recogida de ovocitos (OPU). Al mismo tiempo, se adquirirá la imagen de microscopía de luz polarizada (microscopía de luz polarizada con un aumento de ×100). La ICSI se realizará normalmente entre 2 y 3 h después de la evaluación por microscopía de polarización, es decir, entre 5 y 6 h después de la OPU.

La ICSI se realizará según el protocolo estándar [6]. La fertilización después de ICSI se definirá como la presencia de dos pronúcleos y 2 cuerpos polares. Los embriones se cultivarán durante 122-144 h.

La ICSI se realizará de acuerdo con el protocolo estándar utilizando ICSI/micropipetas de retención (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, República Checa), polivinilpirrolidona (ICSI™, Vitrolife, Suecia) y Eppendorf (Hamburgo, Alemania) sistema de micromanipulación equipado con termoplaca (Tokaohit, Japón). Los ovocitos se cultivarán individualmente y se preservará su orden, de modo que los otros resultados (datos del lapso de tiempo, resultados clínicos) puedan asociarse con ovocitos individuales. Los ovocitos se desnudarán (HYASE-10X™, Vitrolife, Suecia) después de la OPU y se examinará la etapa de maduración.
En pacientes mayores de 35 años y menores de 40 años, utilizaremos un microscopio con filtro polarizador para evaluar la posición de los husos meióticos y cuerpos polares en ovocitos recolectados de pacientes que fueron indicadas para FIV e ICSI. Utilizando un microscopio óptico con un filtro polarizador Nikon CEE GmbH, se determinará el ángulo entre PB y MS junto con la visibilidad de MS.
Comparador activo: Imágenes de EM y fertilización ICSI según el estado de la EM.

Los ovocitos con evaluación de EM se fertilizarán según el estado de EM, ya sea 5 a 6 horas después de la recogida del óvulo (OPU) o 7 a 8 horas después de la OPU. La evaluación de la EM se realizará en platos con fondo de vidrio preparados previamente. El estado de MS y el ángulo (α) entre MS y PB se obtendrán 3-4 horas después de la recogida de ovocitos (OPU). Al mismo tiempo, se adquirirá la imagen de microscopía de luz polarizada (microscopía de luz polarizada con un aumento de ×100). Para ovocitos con PB/MS muy cerca (ángulo entre PB y MS < 5◦) o MS no visible, la ICSI se realizará 4-5 h después de la evaluación por microscopía de polarización, es decir, 7-8 h después de la OPU (se supone que estos ovocitos no estar completamente maduro). Para ovocitos con MS claramente visible y PB/MS no muy próximos (ángulo entre PB y MS > 5◦), la ICSI se realizará normalmente 2-3 h después de la evaluación por microscopía de polarización, es decir, 5-6 h después de la OPU.

La ICSI se realizará según el protocolo estándar [6].

La ICSI se realizará de acuerdo con el protocolo estándar utilizando ICSI/micropipetas de retención (#002-5-30/#001-120-30, Microtech IVF, República Checa), polivinilpirrolidona (ICSI™, Vitrolife, Suecia) y Eppendorf (Hamburgo, Alemania) sistema de micromanipulación equipado con termoplaca (Tokaohit, Japón). Los ovocitos se cultivarán individualmente y se preservará su orden, de modo que los otros resultados (datos del lapso de tiempo, resultados clínicos) puedan asociarse con ovocitos individuales. Los ovocitos se desnudarán (HYASE-10X™, Vitrolife, Suecia) después de la OPU y se examinará la etapa de maduración.
En pacientes mayores de 35 años y menores de 40 años, utilizaremos un microscopio con filtro polarizador para evaluar la posición de los husos meióticos y cuerpos polares en ovocitos recolectados de pacientes que fueron indicadas para FIV e ICSI. Utilizando un microscopio óptico con un filtro polarizador Nikon CEE GmbH, se determinará el ángulo entre PB y MS junto con la visibilidad de MS.

¿Qué mide el estudio?

Medidas de resultado primarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Tasa de embarazo clínico de pacientes cuyo tiempo de ICSI se estableció según el estado de EM
Periodo de tiempo: 6-8 semanas
El porcentaje de todos los intentos que conducen al embarazo de pacientes cuya fertilización ICSI se realizó según el estado de EM. Se controlará la visibilidad del huso meiótico en luz polarizada y su posición relativa al cuerpo polar como indicador de la madurez de los ovocitos y se definirá el momento óptimo para la ICSI.
6-8 semanas

Medidas de resultado secundarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Tasa de embarazo clínico de pacientes cuyo tiempo de ICSI no se estableció de acuerdo con el estado de EM medido.
Periodo de tiempo: 6-8 semanas
El porcentaje de todos los intentos que conducen al embarazo de pacientes cuya fertilización ICSI no se realizó según el estado de EM. Pero se midió la visibilidad del huso meiótico en luz polarizada y su posición relativa con respecto al cuerpo polar.
6-8 semanas

Otras medidas de resultado

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Tasa de embarazo clínico de pacientes con tiempo ICSI estándar
Periodo de tiempo: 6-8 semanas
El porcentaje de todos los intentos que conducen al embarazo de pacientes cuya ICSI era estándar.
6-8 semanas

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Publicaciones y enlaces útiles

La persona responsable de ingresar información sobre el estudio proporciona voluntariamente estas publicaciones. Estos pueden ser sobre cualquier cosa relacionada con el estudio.

Publicaciones Generales

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio (Actual)

18 de julio de 2024

Finalización primaria (Estimado)

31 de diciembre de 2027

Finalización del estudio (Estimado)

31 de marzo de 2028

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

23 de julio de 2024

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

1 de agosto de 2024

Publicado por primera vez (Actual)

6 de agosto de 2024

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Actual)

6 de agosto de 2024

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

1 de agosto de 2024

Última verificación

1 de agosto de 2024

Más información

Términos relacionados con este estudio

Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio

Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.

No

Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.

No

Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .

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