- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT01533350
Valutazione della ricettività dell'endometrio omogeneo nella fase follicolare tardiva
Valutazione della ricettività dell'endometrio omogeneo nella fase follicolare tardiva delle donne infertili con cicli naturali
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
Soggetti Ventotto donne apparentemente sane, quattordici delle quali con ecografia ecografica omogenea (gruppo 1) e altre quattordici con endometrio "a tripla linea" (gruppo 2) in fase follicolare tardiva, sono state coinvolte nel nostro Dipartimento per lo studio tra settembre 2010 e novembre 2011. I criteri inclusi per entrambi i gruppi di donne erano ≤40 anni di età, con cicli mestruali regolari (25-35 giorni), senza uso di dispositivi intrauterini o contraccettivi orali almeno 3 mesi prima dello studio. I criteri di esclusione erano donne con sindrome dell'ovaio policistico (PCOS), endometriosi, insufficienza ovarica prematura (POF) e un aborto entro 1 anno o una storia di malattia infiammatoria pelvica. L'età media delle donne era di 31,9±3,7 anni (range, 26-39 anni). L'indice di massa corporea medio era 20,96 ± 2,46 kg/m2 (intervallo, 17,58-26,04 kg/m2). Con un ciclo mestruale regolare (25-35 giorni) e 2-11 anni di infertilità, tutti i soggetti avevano firmato gli appositi moduli di consenso. Lo studio è stato approvato dal nostro comitato etico istituzionale.
Monitoraggio dell'ovulazione Le donne sono state seguite per un ciclo prelevando campioni di sangue e campioni di urina. L'ovulazione è stata monitorata con l'ecografia vaginale (sonda transvaginale aloka-1000, UST-985, 5 MHz, aloka Co. Ltd, Tokyo, Giappone). È stato misurato lo spessore di due strati endometriali. Il pattern endometriale è stato valutato secondo la classificazione proposta da Gonen e Casper come segue: un endometrio interamente omogeneamente iperecogeno senza una linea ecogena centrale è stato considerato come un pattern ecografico omogeneo e il pattern a tripla linea consisteva in una linea iperecogena centrale circondata da due strati ipoecogeni. La crescita dei follicoli, l'ovulazione e lo sviluppo del corpo luteo sono stati monitorati mediante scansioni a due piani. I partecipanti hanno identificato il giorno del picco di LH testando l'urina del mattino (test di ovulazione di David, Rubio Biotech Co. Ltd., Shantou, Cina). Il giorno del picco di LH è stato determinato nei campioni di urina quando il picco di LH ha raggiunto il suo valore più alto in cui sono stati raccolti anche i campioni di sangue. Il giorno del ciclo si riferisce al primo giorno di sanguinamento mestruale. Le donne che hanno cicli ovulatori normali con intervalli di 25-35 giorni dovrebbero ovulare il giorno 11 al più presto e il giorno 21 al più tardi. I campioni di sangue periferico sono stati prelevati mediante puntura venosa il giorno del picco di LH e 6-7 giorni dopo l'ovulazione. Il sangue è stato separato mediante centrifugazione entro 1 ora e il siero è stato conservato a -20 ℃ fino a quando non sono state analizzate le concentrazioni di LH, FSH, estradiolo (E2) e progesterone.
Biopsia endometriale In ogni soggetto sono state eseguite due biopsie endometriali durante un singolo ciclo mestruale. La biopsia precoce è stata eseguita il giorno pre-ovulatorio (fase follicolare tardiva) e i tessuti endometriali sono stati prelevati dalla parete anteriore della cavità uterina. Considerando che la biopsia tardiva è stata eseguita il giorno dell'ovulazione +7 (fase medioluteale o fase della vedova dell'impianto) e il campione endometriale è stato raccolto dalla parete posteriore della cavità uterina con o senza dilatazione della cervice utilizzando una curette endometriale (# 4164 prebet , Genetica, pomo, Belgio). Ogni campione è stato diviso in tre pezzi e subito riparato. Campioni per microscopia elettronica a scansione da fissare in una soluzione contenente 2,5% (peso/volume) di glutaraldeide, 0,5% di paraformaldeide, 0,1 mol/L di saccarosio, 0,1 mol/L di sodiocacodilato e 3 mmol/L di cloruro di calcio (pH, 7,4) . I campioni per l'immunoistochimica sono stati fissati in formalina al 4%. I campioni per la microscopia elettronica a trasmissione sono stati fissati con arseniato di glutaraldeide al 2,5%;
Microscopia elettronica a scansione I campioni sono stati lavati due volte in un tampone contenente 0,15 mol/L di sodiocacodilato e 3 mmol/L di cloruro di calcio (PH, 7,4) e una volta in acqua distillata. I campioni sono stati disidratati prima in concentrazioni crescenti di etanolo (70%, 95% e 99,5%) e poi in acetone; sono stati essiccati in un essiccatore a punto critico utilizzando anidride carbonica. I campioni sono stati montati, rivestiti con platino ed esaminati utilizzando un microscopio elettronico a scansione (S-3000N, Hitachi, Tokyo, Giappone). La fase di sviluppo del pinopode è stata classificata. Poiché i pinopodi sulla superficie endometriale non si sviluppano esattamente nello stesso momento, i pinopodi non erano distribuiti uniformemente sulla superficie endometriale, quindi, nel nostro studio, abbiamo esaminato cinque campi per ciascun campione di biopsia e analizzato lo sviluppo e la distribuzione dei pinopodi. La valutazione morfologica è stata definita come: assenza di pinopodi, pinopodi in via di sviluppo, pinopodi completamente sviluppati e pinopodi in regressione. La valutazione semi-quantitativa è stata definita come segue:- (0%), + (﹤20%), ++ (20-50%) e +++(>50%).
Immunoistochimica 56 campioni bioptici di 28 pazienti sono stati utilizzati per l'analisi immunoistochimica. Per gli studi LIF, integrina αv, VEGF e MMP-9 sezioni da 4 um incluse in paraffina sono state deparaffinate per 20 minuti in acetone a 70 ℃. La perossidasi endogena è stata bloccata con H2O2 al 3% per 10 min. Il recupero dell'antigene è stato fatto bollire riscaldando per 5 minuti in tampone citrato 0,01 M a pH 6,0, quindi le sezioni sono state incubate durante la notte a 4 ℃ con gli anticorpi specifici che sono stati diluiti a 1:50. Gli anticorpi utilizzati in questo studio erano anticorpi policlonali (PAB) LIF, integrina αv, VEGF e MMP-9 (BA 1239, BA0957, BA0407 e BA0573, Booster Co Ltd, Wuhan, Cina). Le sezioni sono state risciacquate in soluzione salina tamponata con fosfato (PBS), bloccate con siero di capra normale al 10% per 30 minuti e quindi incubate con immunoglobuline biotinilate anti-coniglio (IgG) di capra (SV0002, Booster Co Ltd, Wuhan, Cina) a 37 ℃ per 30 min. Per lo studio dell'integrina β3, le sezioni sono state incubate con perossido di idrogeno al 3% per 10 minuti dopo la riparazione a caldo dell'antigene mediante ebollizione a 95 ℃ di tampone citrato 0,01 M (pH6,0), quindi incubate con anticorpi policlonali integrina β3 (sc-6626, santa, USA) diluito a 1:100 durante la notte a 4℃. Polymer Helper (PV-9003, Zhong-Shang Co Ltd, Beijing, China) è stato aggiunto a temperatura ambiente e con un intervallo di 20 min, Poly Peroxidase-anti-goat IgG (PV-9003, Zhong-Shang Co Ltd, Beijing, Cina) è stato aggiunto. I vetrini sono stati quindi lavati in PBS e colorati con 3,3-diaminobenzidina in H2O2 (DAB, vitrogen, California, USA). Le sezioni sono state infine lavate in acqua. In ogni caso è stato eseguito un controllo negativo mediante omissione dell'incubazione con l'anticorpo primario specifico. È stata valutata la reattività di ciascun anticorpo policlonale con ghiandole endometriali ed epitelio superficiale, cellule stromali. La colorazione è stata valutata semiquantitativamente utilizzando un sistema di classificazione. L'intensità della colorazione e il numero di cellule colorate sono stati classificati su una scala di 0 = nessuna colorazione, +/- = poche cellule colorate, + = colorazione debole, ++ = colorazione moderata e +++ = colorazione forte. Per il calcolo è stata utilizzata la formula H-score=ΣPi(i+1). Un osservatore che è stato cieco per identificare le diapositive ha eseguito tutte le valutazioni. Dopo il completamento dello studio, lo stesso osservatore ha riesaminato i vetrini per garantire la riproducibilità della valutazione semiquantitativa.
Microscopia elettronica a trasmissione I campioni per la microscopia elettronica a trasmissione sono stati fissati in glutaraldeide al 2,5% in PBS (pH 7,4) e post-fissati in tetrossido di osmio all'1%. Dopo la disidratazione in una serie graduata di etanolo, i campioni sono stati posti in ossido di propilene e incorporati in Epon, colorati con acetato di uranile e citrato di piombo ed esaminati al microscopio elettronico a trasmissione.
Analisi statistica Lo Statistics Package for Social Science (SPSS 13.0; SPSS Inc., Chicago, IL) è stato utilizzato per le analisi statistiche. La media ± SD è stata valutata utilizzando l'analisi del t-test di Student, i dati classificati sono stati analizzati con il Rank Sum Test (test di Mann-Whitney) e i dati qualitativi sono stati analizzati con il test chi-quadrato. La significatività statistica è stata fissata a P<0,05 (a due code).
Tipo di studio
Iscrizione (Effettivo)
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
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Guang-Dong
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Shen-Zhen, Guang-Dong, Cina, 518000
- Department of Reproductive Healthcare, Shen-Zhen Maternity and Child Healthcare Hospital
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Sessi ammissibili allo studio
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
- sterile
- ≤ 40 anni di età
- cicli mestruali regolari (25-35 giorni)
- senza uso di dispositivi intrauterini o contraccettivi orali almeno 3 mesi prima dello studio.
Criteri di esclusione:
- sindrome dell'ovaio policistico (PCOS)
- endometriosi
- insufficienza ovarica prematura (POF)
- un aborto entro 1 anno
- anamnesi di malattia infiammatoria pelvica
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
Coorti e interventi
Gruppo / Coorte |
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gruppo 1
donne con endometrio ecografico omogeneo in fase follicolare tardiva
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gruppo2
donne con endometrio ecografico a "tripla linea" nella fase follicolare tardiva
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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fattore di crescita dell'endotelio vascolare (VEGF)
Lasso di tempo: 2 mesi
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L'espressione analizzata dall'immunoistochimica. Le colorazioni sono state classificate in modo semiquantitativo e il punteggio H è stato calcolato utilizzando la seguente equazione: H-score =∑Pi (i + 1), dove i = intensità della colorazione con un valore di 1, 2 o 3 (rispettivamente debole, moderato o forte) e Pi è la percentuale di cellule epiteliali colorate per ciascuna intensità, variabile da 0 a 100%.
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2 mesi
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pinopode
Lasso di tempo: 2 mesi
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I campioni sono stati montati, rivestiti con platino ed esaminati utilizzando un microscopio elettronico a scansione (S-3000N, Hitachi, Tokyo, Giappone).
La valutazione morfologica dei pinopodi è stata definita come: nessun pinopodi, pinopodi in via di sviluppo, pinopodi completamente sviluppati e pinopodi in regressione.
La valutazione semi-quantitativa è stata definita come segue:- (0%), + (<20%), ++ (20-50%) e +++(>50%).
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2 mesi
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Ultrastruttura
Lasso di tempo: 2 mesi
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L'ultrastruttura è stata osservata mediante microscopia elettronica a trasmissione
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2 mesi
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fattore inibitorio della leucemia (LIF)
Lasso di tempo: Due mesi
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L'espressione analizzata dall'immunoistochimica. Le colorazioni sono state classificate in modo semiquantitativo e il punteggio H è stato calcolato utilizzando la seguente equazione: H-score =∑Pi (i + 1), dove i = intensità della colorazione con un valore di 1, 2 o 3 (rispettivamente debole, moderato o forte) e Pi è la percentuale di cellule epiteliali colorate per ciascuna intensità, variabile da 0 a 100%.
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Due mesi
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integrina ɑvβ3
Lasso di tempo: Due mesi
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L'espressione analizzata dall'immunoistochimica. Le colorazioni sono state classificate in modo semiquantitativo e il punteggio H è stato calcolato utilizzando la seguente equazione: H-score =∑Pi (i + 1), dove i = intensità della colorazione con un valore di 1, 2 o 3 (rispettivamente debole, moderato o forte) e Pi è la percentuale di cellule epiteliali colorate per ciascuna intensità, variabile da 0 a 100%.
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Due mesi
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matrice metalloproteinasi-9 (MM-9)
Lasso di tempo: Due mesi
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L'espressione analizzata dall'immunoistochimica. Le colorazioni sono state classificate in modo semiquantitativo e il punteggio H è stato calcolato utilizzando la seguente equazione: H-score =∑Pi (i + 1), dove i = intensità della colorazione con un valore di 1, 2 o 3 (rispettivamente debole, moderato o forte) e Pi è la percentuale di cellule epiteliali colorate per ciascuna intensità, variabile da 0 a 100%.
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Due mesi
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Collaboratori e investigatori
Investigatori
- Cattedra di studio: Wen-Jie Zhu, M.D, Shenzhen Maternity and Child Healthcare Hospital
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio
Completamento primario (Effettivo)
Completamento dello studio (Effettivo)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Stima)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Stima)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Parole chiave
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- 201002089
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