急性膵炎のセクレチン (SNAP)
ヒト急性膵炎(SNAP)研究における合成ヒト SecretiN の有効性を確立するための第 II 相研究
急性膵炎は、広範囲の罹患率、死亡率、および入院費用をもたらす、壊滅的な膵臓の炎症プロセスであることがよくあります。 急性膵炎の発生率は過去 10 年間で増加しており、全体の死亡率は 5% ですが、最も重症の場合は 30% に達することもあります。 これは、2009 年に最も一般的な入院患者の胃腸診断であり、合計 270,000 件を超える入院があり、米国では推定「入院費用」が 25 億ドルを超えています。 しかし、患者と医療制度の両方に重大な影響があるにもかかわらず、急性膵炎の重要な臨床転帰を改善することが証明された薬物療法はありません。 管細胞から膵管への重炭酸塩に富む液体の放出は、2つの異なるメカニズムによって膵炎から保護するための重要なメカニズムです。
- 活性化酵素を膵臓から十二指腸に「洗い流す」ことで、活性化酵素が膵臓の腺房に蓄積するのを防ぎます。
- 腺房細胞を直接アルカリ化します。これにより、不適切に活性化された腺房内酵素のアピカル膜に沿った人身売買が改善され、腺房内細胞の損傷が制限されます。
標準治療に加えて、患者は4つのコホートに分けられます。 コホート1、2、および3は、異なる用量の静脈内合成ヒトセクレチンで治療されます。 コホート X にはヒト セクレチンは投与されませんが、すべてのデータポイントと標本が収集されます。 患者コホートは、次のように研究に参加します。コホート X。コホート 1;コホート 2;コホート3.各コホートの5人の患者が各センターで評価されます(各コホートの両方のセンターで合計n = 10)。 投薬は入院から24時間以内に開始し、3日目以降は合成ヒトセクレチンを投与しません。患者は、7日間または退院までのいずれか早い方まで追跡を続けます。 その時点までに記録されたデータは、治療意図分析に含まれます。 主な目的は、ヒト急性(非閉塞性)膵炎の重症度を調節するための薬理学的補助剤としての静脈内合成ヒトセクレチンの有効性を調査するためのフェーズ II パイロット研究を実施することです。
調査の概要
詳細な説明
研究の種類
入学 (予想される)
段階
- フェーズ2
連絡先と場所
研究場所
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New Hampshire
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Lebanon、New Hampshire、アメリカ、03756
- 募集
- Dartmouth Hitchcock Medical Center
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コンタクト:
- Damara Crate, RN
- 電話番号:603-653-9017
- メール:damara.j.crate@hitchcock.org
-
コンタクト:
- Timothy B Gardner, M.D.
- 電話番号:603-650-6472
- メール:timothy.b.gardner@hitchcock.org
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参加基準
適格基準
就学可能な年齢
健康ボランティアの受け入れ
受講資格のある性別
説明
包含基準:
- -患者は18歳以上の男性または女性です
- -患者は書面によるインフォームドコンセント契約に自発的に署名しました。
- -患者が女性で、閉経後1年以内、または外科的に無菌の場合、医学的に認められた避妊法を使用するか、研究中の性行為を控える必要があります
- -患者は、2012年のアトランタ分類で定義された急性膵炎を患っています
- 利用可能な断面画像に閉塞性膵炎の証拠がない
除外基準:
- -アトランタ分類で定義された膵管閉塞または重度の急性膵炎を伴う膵炎
- 妊娠中の女性、授乳中の母親、または避妊していない出産の可能性のある女性
- ヒトセクレチンに対する既知の副作用
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:処理
- 割り当て:非ランダム化
- 介入モデル:平行
- マスキング:なし
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
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NO_INTERVENTION:コホートX
セクレチンは投与されていません。
すべての観測
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ACTIVE_COMPARATOR:コホート1
32 mcg (<50 kg) または 40 mcg (≥50 kg) のセクレチンを 1 日 2 回 (40 mcg; 12 時間毎)
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膵分泌促進薬
他の名前:
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ACTIVE_COMPARATOR:コホート 2
32 mcg (<50 kg) または 40 mcg (≧50 kg) のセクレチンを 1 日 4 回 (40 mcg; 6 時間毎)
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膵分泌促進薬
他の名前:
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ACTIVE_COMPARATOR:コホート3
32 mcg (<50 kg) または 40 mcg (≥50 kg) のセクレチンを 1 日 6 回 (40 mcg; 4 時間毎)
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膵分泌促進薬
他の名前:
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この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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CRP値の変化
時間枠:96時間、研究完了まで平均7日
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投与の最適な頻度を決定するための入院時のCRPレベルと比較して、96時間以内および/または退院時の血清C反応性タンパク質(CRP)レベルの50%の変化
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96時間、研究完了まで平均7日
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二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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炎症誘発性および抗炎症性マーカー
時間枠:1日目、2日目、3日目、96時間、研究完了まで平均7日目
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SCD40L、EGF、Eotaxin/CCL11、FGF-2、Flt-3 リガンド、Fractalkine、G-CSF、GM-CSF、GRO、IFN-α2、IFN-γ、IL- などの炎症誘発性および抗炎症性サイトカインの血清測定1α、IL-1β、IL-1ra、IL-2、IL-3、IL-4、IL-5、IL-6、IL-7、IL-8、IL-9、IL-10、IL-12 ( p40)、IL-12 (p70)、IL-13、IL-15、IL-17A、IP-10、MCP-1、MCP-3、MDC (CCL22)、MIP-1α、MIP-1β、PDGF-AA 、PDGF-AB/BB、RANTES、TGF-α、TNF-α、TNF-β、VEGF、HSP 27、HSP 60、HSP 70、HSP 90 試験登録時、セクレチン投与日数、96 時間および退院時
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1日目、2日目、3日目、96時間、研究完了まで平均7日目
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その他の成果指標
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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血液濃度測定値の変化
時間枠:96時間、研究完了まで平均7日
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入院からのヘマトクリットの変化
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96時間、研究完了まで平均7日
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血液濃度測定値の変化
時間枠:96時間、研究完了まで平均7日
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入院時からの血中尿素窒素の変化
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96時間、研究完了まで平均7日
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急性膵炎活動スコア
時間枠:96時間、研究完了まで平均7日
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以下のパラメータの累積測定: (CRF から参照) 値が高いほど転帰が悪いことを表す 臓器不全 (システムの数) x 100 (各システム) SIRS (基準の数) x 25 (各基準) 腹痛 (1- 10) x 5 モルヒネ等価用量 (mg) x 5 耐容固形食 (はい = 0、いいえ = 1) X 40
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96時間、研究完了まで平均7日
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入院期間全般
時間枠:96時間、研究完了まで平均7日
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入院期間
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96時間、研究完了まで平均7日
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有害事象の発生率
時間枠:試験治療の最後の投与から30日後
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コホートごとの率として報告されます。
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試験治療の最後の投与から30日後
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再入院率
時間枠:試験治療の最後の投与から30日後
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率は、最終試験治療から30日以内に再入院した被験者の数として記録されます
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試験治療の最後の投与から30日後
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協力者と研究者
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- National Institutes of Health. Opportunities and challenges in digestive diseases research: recommendations of the national commission on digestive diseases. March 2009. Retrieved January 29, 2017.
- Everhart JE, Ruhl CE. Burden of digestive diseases in the United States Part III: Liver, biliary tract, and pancreas. Gastroenterology. 2009 Apr;136(4):1134-44. doi: 10.1053/j.gastro.2009.02.038. Epub 2009 Feb 24. No abstract available.
- Forsmark CE, Vege SS, Wilcox CM. Acute Pancreatitis. N Engl J Med. 2016 Nov 17;375(20):1972-1981. doi: 10.1056/NEJMra1505202. No abstract available.
- Peery AF, Dellon ES, Lund J, Crockett SD, McGowan CE, Bulsiewicz WJ, Gangarosa LM, Thiny MT, Stizenberg K, Morgan DR, Ringel Y, Kim HP, DiBonaventura MD, Carroll CF, Allen JK, Cook SF, Sandler RS, Kappelman MD, Shaheen NJ. Burden of gastrointestinal disease in the United States: 2012 update. Gastroenterology. 2012 Nov;143(5):1179-1187.e3. doi: 10.1053/j.gastro.2012.08.002. Epub 2012 Aug 8.
- Lerch MM, Saluja AK, Runzi M, Dawra R, Saluja M, Steer ML. Pancreatic duct obstruction triggers acute necrotizing pancreatitis in the opossum. Gastroenterology. 1993 Mar;104(3):853-61. doi: 10.1016/0016-5085(93)91022-a.
- Rattner DW. Experimental models of acute pancreatitis and their relevance to human disease. Scand J Gastroenterol Suppl. 1996;219:6-9. doi: 10.3109/00365529609104991.
- Hegyi P, Pandol S, Venglovecz V, Rakonczay Z Jr. The acinar-ductal tango in the pathogenesis of acute pancreatitis. Gut. 2011 Apr;60(4):544-52. doi: 10.1136/gut.2010.218461. Epub 2010 Sep 28.
- Grady T, Saluja A, Kaiser A, Steer M. Edema and intrapancreatic trypsinogen activation precede glutathione depletion during caerulein pancreatitis. Am J Physiol. 1996 Jul;271(1 Pt 1):G20-6. doi: 10.1152/ajpgi.1996.271.1.G20.
- Prinz RA. Mechanisms of acute pancreatitis. Vascular etiology. Int J Pancreatol. 1991 Summer;9:31-8. doi: 10.1007/BF02925576.
- Hegyi P, Rakonczay Z Jr. The role of pancreatic ducts in the pathogenesis of acute pancreatitis. Pancreatology. 2015 Jul;15(4 Suppl):S13-7. doi: 10.1016/j.pan.2015.03.010. Epub 2015 Apr 7.
- Song L, Wormann S, Ai J, Neuhofer P, Lesina M, Diakopoulos KN, Ruess D, Treiber M, Witt H, Bassermann F, Halangk W, Steiner JM, Esposito I, Rosendahl J, Schmid RM, Riemann M, Algul H. BCL3 Reduces the Sterile Inflammatory Response in Pancreatic and Biliary Tissues. Gastroenterology. 2016 Feb;150(2):499-512.e20. doi: 10.1053/j.gastro.2015.10.017. Epub 2015 Oct 23.
- Vege SS, Atwal T, Bi Y, Chari ST, Clemens MA, Enders FT. Pentoxifylline Treatment in Severe Acute Pancreatitis: A Pilot, Double-Blind, Placebo-Controlled, Randomized Trial. Gastroenterology. 2015 Aug;149(2):318-20.e3. doi: 10.1053/j.gastro.2015.04.019. Epub 2015 Jun 23.
- Noel P, Patel K, Durgampudi C, Trivedi RN, de Oliveira C, Crowell MD, Pannala R, Lee K, Brand R, Chennat J, Slivka A, Papachristou GI, Khalid A, Whitcomb DC, DeLany JP, Cline RA, Acharya C, Jaligama D, Murad FM, Yadav D, Navina S, Singh VP. Peripancreatic fat necrosis worsens acute pancreatitis independent of pancreatic necrosis via unsaturated fatty acids increased in human pancreatic necrosis collections. Gut. 2016 Jan;65(1):100-11. doi: 10.1136/gutjnl-2014-308043. Epub 2014 Dec 10.
- Gardner TB, Vege SS, Pearson RK, Chari ST. Fluid resuscitation in acute pancreatitis. Clin Gastroenterol Hepatol. 2008 Oct;6(10):1070-6. doi: 10.1016/j.cgh.2008.05.005. Epub 2008 Jul 10.
- Pitchumoni CS, Agarwal N, Jain NK. Systemic complications of acute pancreatitis. Am J Gastroenterol. 1988 Jun;83(6):597-606.
- Chey WY, Chang TM. Secretin: historical perspective and current status. Pancreas. 2014 Mar;43(2):162-82. doi: 10.1097/01.mpa.0000437325.29728.d6.
- Chey WY, Chang TM. Secretin, 100 years later. J Gastroenterol. 2003;38(11):1025-35. doi: 10.1007/s00535-003-1235-3.
- Hegyi P, Rakonczay Z. Insufficiency of electrolyte and fluid secretion by pancreatic ductal cells leads to increased patient risk for pancreatitis. Am J Gastroenterol. 2010 Sep;105(9):2119-20. doi: 10.1038/ajg.2010.191. No abstract available.
- Takacs T, Rosztoczy A, Maleth J, Rakonczay Z Jr, Hegyi P. Intraductal acidosis in acute biliary pancreatitis. Pancreatology. 2013 Jul-Aug;13(4):333-5. doi: 10.1016/j.pan.2013.05.011. Epub 2013 Jun 10.
- Hegyi P, Petersen OH. The exocrine pancreas: the acinar-ductal tango in physiology and pathophysiology. Rev Physiol Biochem Pharmacol. 2013;165:1-30. doi: 10.1007/112_2013_14.
- Ishiguro H, Naruse S, Kitagawa M, Mabuchi T, Kondo T, Hayakawa T, Case RM, Steward MC. Chloride transport in microperfused interlobular ducts isolated from guinea-pig pancreas. J Physiol. 2002 Feb 15;539(Pt 1):175-89. doi: 10.1113/jphysiol.2001.012490.
- Ooi CY, Dorfman R, Cipolli M, Gonska T, Castellani C, Keenan K, Freedman SD, Zielenski J, Berthiaume Y, Corey M, Schibli S, Tullis E, Durie PR. Type of CFTR mutation determines risk of pancreatitis in patients with cystic fibrosis. Gastroenterology. 2011 Jan;140(1):153-61. doi: 10.1053/j.gastro.2010.09.046. Epub 2010 Nov 9.
- Freedman SD, Kern HF, Scheele GA. Pancreatic acinar cell dysfunction in CFTR(-/-) mice is associated with impairments in luminal pH and endocytosis. Gastroenterology. 2001 Oct;121(4):950-7. doi: 10.1053/gast.2001.27992.
- Behrendorff N, Floetenmeyer M, Schwiening C, Thorn P. Protons released during pancreatic acinar cell secretion acidify the lumen and contribute to pancreatitis in mice. Gastroenterology. 2010 Nov;139(5):1711-20, 1720.e1-5. doi: 10.1053/j.gastro.2010.07.051. Epub 2010 Aug 3.
- Hegyi P, Maleth J, Venglovecz V, Rakonczay Z Jr. Pancreatic ductal bicarbonate secretion: challenge of the acinar Acid load. Front Physiol. 2011 Jul 14;2:36. doi: 10.3389/fphys.2011.00036. eCollection 2011.
- Goldenberg DE, Gordon SR, Gardner TB. Management of acute pancreatitis. Expert Rev Gastroenterol Hepatol. 2014 Aug;8(6):687-94. doi: 10.1586/17474124.2014.907524. Epub 2014 Apr 25.
- Morimoto T, Noguchi Y, Sakai T, Shimbo T, Fukui T. Acute pancreatitis and the role of histamine-2 receptor antagonists: a meta-analysis of randomized controlled trials of cimetidine. Eur J Gastroenterol Hepatol. 2002 Jun;14(6):679-86. doi: 10.1097/00042737-200206000-00014.
- Uhl W, Buchler MW, Malfertheiner P, Beger HG, Adler G, Gaus W. A randomised, double blind, multicentre trial of octreotide in moderate to severe acute pancreatitis. Gut. 1999 Jul;45(1):97-104. doi: 10.1136/gut.45.1.97.
- Andriulli A, Leandro G, Clemente R, Festa V, Caruso N, Annese V, Lezzi G, Lichino E, Bruno F, Perri F. Meta-analysis of somatostatin, octreotide and gabexate mesilate in the therapy of acute pancreatitis. Aliment Pharmacol Ther. 1998 Mar;12(3):237-45. doi: 10.1046/j.1365-2036.1998.00295.x.
- Wu BU, Hwang JQ, Gardner TH, Repas K, Delee R, Yu S, Smith B, Banks PA, Conwell DL. Lactated Ringer's solution reduces systemic inflammation compared with saline in patients with acute pancreatitis. Clin Gastroenterol Hepatol. 2011 Aug;9(8):710-717.e1. doi: 10.1016/j.cgh.2011.04.026. Epub 2011 May 12.
- Levenick JM, Andrews CL, Purich ED, Gordon SR, Gardner TB. A phase II trial of human secretin infusion for refractory type B pain in chronic pancreatitis. Pancreas. 2013 May;42(4):596-600. doi: 10.1097/MPA.0b013e318273f3ec. Erratum In: Pancreas. 2016 May-Jun;45(5):e23. Dosage error in article text.
- Stevens T, Conwell DL, Zuccaro G Jr, Van Lente F, Lopez R, Purich E, Fein S. A prospective crossover study comparing secretin-stimulated endoscopic and Dreiling tube pancreatic function testing in patients evaluated for chronic pancreatitis. Gastrointest Endosc. 2008 Mar;67(3):458-66. doi: 10.1016/j.gie.2007.07.028.
- Conwell DL, Zuccaro G Jr, Vargo JJ, Trolli PA, Vanlente F, Obuchowski N, Dumot JA, O'laughlin C. An endoscopic pancreatic function test with synthetic porcine secretin for the evaluation of chronic abdominal pain and suspected chronic pancreatitis. Gastrointest Endosc. 2003 Jan;57(1):37-40. doi: 10.1067/mge.2003.14.
- Renner IG, Wisner JR Jr. Ceruletide-induced acute pancreatitis in the dog and its amelioration by exogenous secretin. Int J Pancreatol. 1986 May;1(1):39-49. doi: 10.1007/BF02795238.
- Renner IG, Wisner JR Jr, Lavigne BC. Partial restoration of pancreatic function by exogenous secretin in rats with ceruletide-induced acute pancreatitis. Dig Dis Sci. 1986 Mar;31(3):305-13. doi: 10.1007/BF01318123.
- Niederau C, Ferrell LD, Grendell JH. Caerulein-induced acute necrotizing pancreatitis in mice: protective effects of proglumide, benzotript, and secretin. Gastroenterology. 1985 May;88(5 Pt 1):1192-204. doi: 10.1016/s0016-5085(85)80079-2.
- Evander A, Lundquist I, Ihse I. Influence of gastrointestinal hormones on the course of acute experimental pancreatitis. Hepatogastroenterology. 1982 Aug;29(4):161-6.
- Jowell PS, Branch MS, Fein SH, Purich ED, Kilaru R, Robuck G, d'Almada P, Baillie J. Intravenous synthetic secretin reduces the incidence of pancreatitis induced by endoscopic retrograde cholangiopancreatography. Pancreas. 2011 May;40(4):533-9. doi: 10.1097/MPA.0b013e3182152eb6.
- Bakker OJ, van Brunschot S, van Santvoort HC, Besselink MG, Bollen TL, Boermeester MA, Dejong CH, van Goor H, Bosscha K, Ahmed Ali U, Bouwense S, van Grevenstein WM, Heisterkamp J, Houdijk AP, Jansen JM, Karsten TM, Manusama ER, Nieuwenhuijs VB, Schaapherder AF, van der Schelling GP, Schwartz MP, Spanier BW, Tan A, Vecht J, Weusten BL, Witteman BJ, Akkermans LM, Bruno MJ, Dijkgraaf MG, van Ramshorst B, Gooszen HG; Dutch Pancreatitis Study Group. Early versus on-demand nasoenteric tube feeding in acute pancreatitis. N Engl J Med. 2014 Nov 20;371(21):1983-93. doi: 10.1056/NEJMoa1404393.
- Eatock FC, Chong P, Menezes N, Murray L, McKay CJ, Carter CR, Imrie CW. A randomized study of early nasogastric versus nasojejunal feeding in severe acute pancreatitis. Am J Gastroenterol. 2005 Feb;100(2):432-9. doi: 10.1111/j.1572-0241.2005.40587.x.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (予期された)
研究の完了 (予期された)
試験登録日
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学習記録の更新
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最終確認日
詳しくは
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