후두 근육에서의 차등 SERCA 발현
쥐 후두 근육에서 SERCA 및 미오신 중쇄 이소 형의 차등 발현
연구 개요
상태
상태
정황
정황
개입 / 치료
개입 / 치료
상세 설명
이 연구에서,이 연구에서, 수컷 성인 Wistar 쥐 (Shimizu Laboratory Supplies Co., Kyoto, Japan), 8-12 주령, 무게는 280-350 g (n = 10)을 어린 쥐로 사용 하였다. 또한, 24 개월 된 래트 (n = 10)는 노화 된 모델로 사용되었다.
동물 조직 제조 동물을 펜 토 바르 비탈 나트륨 (복용량 30-60 mg/kg)의 복강 내 주사로 마취시키고 0.01 M 인산염-완충 식염수 (PBS)로 심장 관류 후 4% 파라 포름 알데히드로 고정시켰다. 후두를 즉시 절제하고 (4 ℃)에서 약 12 시간 동안 동일한 고정 장치에 담았다. 조직을 파라핀으로 가공하고 마이크로톰 (8-10 μm 두께)을 사용하여 절단시켰다.
연구 된 본질적인 후두 근육은 1) 내측 및 측면 갑상선 텐 노이드 (MTA, LTA), (2) 측면 크리코 아레 텐이 노이드 (LCA), (3) 우수한 크리코 아레 텐이드 (SCA), (4) 후부 크리코 아레 텐이드 (PCA) 및 (5)였다. 미세 점화 (CT).
면역 조직 화학 (IHC) 연구자들은 냉동 섹션에서 실패한 빠른 섬유 유형 식별에 직면 한 후 파라핀 섹션으로 이동했습니다. 탈 파라핀 화 된 섹션을 PBS 중 3% H2O2와 10 분 동안 인큐베이션 한 후 전자 레인지 처리 (시트 레이트 완충액에서 500 와트에서 5 분 x 3 회)를 배양 하였다. 이어서, 1 차 항체에서 배양하기 전에 30 분 동안 차단 용액 (0.3m 글리신, 50mM 염화 암모늄 및 1% BSA)에서 섹션을 인큐베이션 하였다. 섹션을 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체와 함께 인큐베이션 한 다음 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor와 함께 인큐베이션 하였다. 실온에서 1 시간 동안 ® 594 당나귀 항-염소 IgG 2 차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 -SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제와 1 차 또는 2 차 항체의 혼합물로 수행되었다.
면역 염색 된 조직 섹션을 FV-1000 레이저 공 초점 현미경 (일본 도쿄 올림푸스)을 사용하여 검사 하였다. ImageJ 1.46 소프트웨어를 사용하여 각 항체에 대한 양성 세포의 백분율을 수동으로 계산하고 계산했습니다.
8-12 주 동안, 노화 된 래트, 나트륨 펜토 바르 비탈로 마취 하의 표준 작동 현미경을 사용하여 중간 선 절개를 통해 후두에 접근 하였다. 올바른 재발 및 우수한 후두 신경의 확인 후, 오른쪽 재발 성 후두 신경에서 1cm 세그먼트를 제거하고 양쪽 끝이 결찰되었다. 올바른 우수한 후두 신경도 나뉘어졌다. 방해받은 쥐 그룹은 2, 4, 8 및 12 주 후에 희생되었다. 후두를 수집하고 위에서 설명한 동일한 절차를 사용하여 IHC를 위해 준비 하였다 (각 그룹에서 n = 5).
멀티 컬러 파이버 타이핑을 사용한 MHC 하위 유형 :
연구가 시작될 때 우리는 냉동 섹션을 시도했습니다. 자가 형광 및 배경 노이즈를 감소시키기위한 여러 기술의 시험 후, 연구자들은 우수한 염색을 가하지 못했습니다. 그런 다음, 연구자들은 MHC 하위 유형을 중단하고 파라핀-매립 블록 통계 분석으로 이동시켰다. 각 래트 항체의 양성 세포 백분율에 대한 이용 가능한 데이터를 SPSS 통계 소프트웨어 버전 16을 사용하여 통계적으로 분석 하였다. 통계적 비교는 짝을 이루지 않은 양측 학생의 t- 검정을 사용하여 수행되었으며 p <0.05에서 유의 한 것으로 간주되었다.
일방적 인 분산 분석 (ANOVA)에 이어 Scheffe의 사후 검사를 수행하여 대측 측면에서 각 근육에 대한 MHC 및 SERCA 조성물을 반대쪽 측면과 나이가 들어감에 따라 젊게 비교했습니다. 제시된 값은 평균 ± SD (표준 편차)이며 SD는 쥐를 가로 질러 있습니다.
연구 유형
연구 유형
등록 (실제)
등록
단계
단계
- 해당 없음
연락처 및 위치
연구 장소
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Sohag, 이집트, 82524
- Sohag University
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참여기준
자격 기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
- 어린이
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
설명
포함 기준 :
- 무게는 280-350g (n = 10) 인 8-12 주령을 어린 쥐로 사용 하였다. 또한, 24 개월 된 래트 (n = 10)는 노화 된 모델로 사용되었다.
제외 기준 :
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공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 주 목적: 특수 증상
- 할당: 무작위
- 중재 모델: 병렬 할당
- 마스킹: 하나의
팔의 수
무기와 개입
참가자 그룹 / 팔참가자 그룹 / 팔 |
개입 / 치료개입 / 치료 |
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실험적: 어린 쥐
수컷 성인 Wistar 쥐 (Shimizu Laboratory Supplies Co., Kyoto, Cyoto), 8-12 주령, 무게는 280-350g (n = 10) 인 anti-serca1 또는 -serca2 및 -serca2 및 -serca2를 갖는 젊은 쥐 면역 조직 화학 (IHC)으로 사용되었습니다. 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체를 세척하고 인큐베이션했습니다. Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor® 594 실온에서 1 시간 동안 당나귀 항-염소 IgG 이차 ABS.
이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 -SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다.
이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
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우리는 냉동 섹션에서 빠른 섬유 유형의 식별에 실패한 후 파라핀 섹션으로 이동했습니다.
탈 파라핀 화 된 섹션을 PBS 중 3% H2O2와 10 분 동안 인큐베이션 한 후 전자 레인지 처리 (시트 레이트 완충액에서 500 와트에서 5 분 x 3 회)를 배양 하였다.
이어서, 1 차 항체에서 배양하기 전에 30 분 동안 차단 용액 (0.3m 글리신, 50mM 염화 암모늄 및 1% BSA)에서 섹션을 인큐베이션 하였다.
섹션을 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체와 함께 인큐베이션 한 다음 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor와 함께 인큐베이션 하였다. 실온에서 1 시간 동안 ® 594 당나귀 항-염소 IgG 2 차 ABS.
이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 -SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다.
이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
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실험적: 오래된 쥐
24 개월 된 래트 (n = 10)는 노화 된 모델로 사용되었다.
항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 항체를 갖는 면역 조직 화학 (IHC)은 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체를 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당장 항-마우스 IgG와 함께 배양했습니다. Fluor® 594 실온에서 1 시간 동안 당나귀 항-염소 IgG 이차 ABS.
이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 -SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다.
이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
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우리는 냉동 섹션에서 빠른 섬유 유형의 식별에 실패한 후 파라핀 섹션으로 이동했습니다.
탈 파라핀 화 된 섹션을 PBS 중 3% H2O2와 10 분 동안 인큐베이션 한 후 전자 레인지 처리 (시트 레이트 완충액에서 500 와트에서 5 분 x 3 회)를 배양 하였다.
이어서, 1 차 항체에서 배양하기 전에 30 분 동안 차단 용액 (0.3m 글리신, 50mM 염화 암모늄 및 1% BSA)에서 섹션을 인큐베이션 하였다.
섹션을 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체와 함께 인큐베이션 한 다음 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor와 함께 인큐베이션 하였다. 실온에서 1 시간 동안 ® 594 당나귀 항-염소 IgG 2 차 ABS.
이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 -SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다.
이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
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활성 비교기: 변성 된 쥐
8-12 주 동안, 노화 된 래트, 후두는 나트륨 펜토 바르 비탈로 마취 하의 표준 작동 현미경을 사용하여 중간 선 절개를 통해 접근 하였다. 올바른 재발 및 우수한 후두 신경의 확인 후, 오른쪽 재발 성 후두 신경에서 1cm 세그먼트를 제거하고 양쪽 끝이 결찰되었다. 올바른 우수한 후두 신경도 나뉘어졌다. 방해받은 쥐 그룹은 2, 4, 8 및 12 주 후에 희생되었다. 후두를 수집하고 위에서 설명한 동일한 절차를 사용하여 IHC를 위해 준비 하였다 (각 그룹에서 n = 5). 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 항체를 갖는 면역 조직 화학 (IHC)은 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체를 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당장 항-마우스 IgG와 함께 배양했습니다. Fluor® 594 실온에서 1 시간 동안 당나귀 항-염소 IgG 이차 ABS. 이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 -SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다. 이중 IHC에서. |
우리는 냉동 섹션에서 빠른 섬유 유형의 식별에 실패한 후 파라핀 섹션으로 이동했습니다.
탈 파라핀 화 된 섹션을 PBS 중 3% H2O2와 10 분 동안 인큐베이션 한 후 전자 레인지 처리 (시트 레이트 완충액에서 500 와트에서 5 분 x 3 회)를 배양 하였다.
이어서, 1 차 항체에서 배양하기 전에 30 분 동안 차단 용액 (0.3m 글리신, 50mM 염화 암모늄 및 1% BSA)에서 섹션을 인큐베이션 하였다.
섹션을 항 -Serca1 또는 -serca2 및 항 -MHC I 또는 -MHCII (표 1) 4 ℃에서 1-2 일 동안 항체와 함께 인큐베이션 한 다음 세척 한 다음 Alexa Fluor® 488 당나귀 항-마우스 IgG 및 Fluor와 함께 인큐베이션 하였다. 실온에서 1 시간 동안 ® 594 당나귀 항-염소 IgG 2 차 ABS.
이중 IHC는 (항 -Serca1 + 항 -Serca2) 및 (항 -SercA2 + 항 -MHCII) 조합을 사용하여 공동 발현을 확인 하였다.
이중 IHC에서, 동일한 단계는 동일한 희석제 또는 1 차 항체의 혼합물로 이전과 동일한 단계를 수행 하였다.
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연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
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SERCA 및 MHC 이소 형의 면역-국소화
기간: 6 개월
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5 개의 ILM에서 SERCA 및 MHC 이소 형 (SERCA1, SERCA2, MHC I 및 MHCII) 발현 및 공동 발현의 면역-국소화
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6 개월
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공동 작업자 및 조사자
수사관
수사관
- 연구 책임자: Mohammed E Ahmed, Sohag University
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Mao VH, Abaza M, Spiegel JR, Mandel S, Hawkshaw M, Heuer RJ, Sataloff RT. Laryngeal myasthenia gravis: report of 40 cases. J Voice. 2001 Mar;15(1):122-30. doi: 10.1016/S0892-1997(01)00012-1.
- Marques MJ, Ferretti R, Vomero VU, Minatel E, Neto HS. Intrinsic laryngeal muscles are spared from myonecrosis in the mdx mouse model of Duchenne muscular dystrophy. Muscle Nerve. 2007 Mar;35(3):349-53. doi: 10.1002/mus.20697.
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
연구 시작
기본 완료 (실제)
기본 완료
연구 완료 (실제)
연구 완료
연구 등록 날짜
최초 제출
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
처음 게시됨
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
마지막 업데이트 게시됨
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
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마지막으로 확인됨
마지막으로 확인됨
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- sohag-5-24-2023-01
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