- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT04691232
Autologe Ex Vivo utvidede regulatoriske T-celler ved ulcerøs kolitt
Fase I, åpen etikett, rask dose-eskalering klinisk studie som utforsker sikkerheten og toleransen til autologe ex Vivo utvidede regulatoriske T-celler hos voksne med ulcerøs kolitt
Sammen med Crohns sykdom (CD) er ulcerøs kolitt (UC) en av de viktigste formene for inflammatoriske tarmsykdommer (IBD). For tiden er ingen kurativ behandling tilgjengelig, siden patofysiologien til denne sykdommen er ufullstendig forstått (1-3) og Klinisk praksis viser at nåværende terapier induserer remisjon kun i undergrupper av pasienter. Vitenskapelig bevis tyder på at kolitogene immunresponser kan kontrolleres ved å øke antallet sirkulerende regulatoriske T-celler (Treg) (4). Produksjonen av et stort antall autologe Treg er mulig ved isolering av CD25+-celler fra en pasients fullblod og påfølgende ex vivo ekspansjon i nærvær av det immunmodulerende medikamentet rapamycin, Interleukin-2 (IL-2) og CD3/CD28 ekspanderkuler (5).
ER-TREG 01 er en enkeltsenter, åpen, rask fase I dose-eskaleringsstudie designet for å vurdere sikkerhetsprofilen og maksimal tolerert dose (MTD) av en enkelt infusjon av ex vivo ekspandert autolog Treg hos pasienter med aktiv ulcerøs kolitt.
Studieoversikt
Status
Forhold
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
Mens den primære årsaken til utvikling av inflammatorisk tarmsykdom (IBD) fortsatt er ukjent, er det allment akseptert at de første hendelsene kulminerer i vedvarende immunresponser med infiltrasjon av immunceller og ødeleggelse av vev i tarmen. Immuncellepopulasjoner som er tilstede i den betente tarmveggen til IBD-pasienter har blitt omfattende karakterisert og studert (1;6). Studier med fokus på T-celler har vist at slimhinnen til pasienter med Crohns sykdom (CD) domineres av Th1-celler, mens hos pasienter med ulcerøs kolitt (UC) T-hjelpeceller med en atypisk Th2-profil, som produserer for mye IL-5 og IL- 13, men ikke IL-4, er rikelig (7). Videre kan Th17-celler identifiseres i den betente lamina propria og disse cellene antas å spille en viktig rolle i patofysiologien til IBD, selv om de patogene mekanismene til disse cellene ennå ikke er fullt ut forstått (8;9). Treg er også tilstede i lamina propria, og disse cellene kontrollerer effektor-T-cellepopulasjonene nevnt ovenfor. De kan genereres gjennom interaksjon av lokale T-celler med CD103-uttrykkende dendrittiske celler og tarmepitelceller, henholdsvis (10;11). Dessuten vil uttrykket av integriner på Treg-overflaten (f.eks. α4β7) letter mukosal migrasjon gjennom deres interaksjon med spesifikke ligander (f. MAdCAM1). Som sådan skaper homing og lokal ekspansjon av Treg-celler et lokalt Treg-basseng som er avgjørende for selvtoleranse og støtte til tarmhomeostase (12). I tillegg er Treg-celler vist å undertrykke proinflammatoriske intestinale immunresponser ved kolitt og kolittassosiert kreft (13-16), og de antas å forsterke intestinale Th17-responser (17). Siden tidligere studier har vist utilstrekkelig utvidelse av slimhinne-Treg-celler hos IBD-pasienter sammenlignet med den massive lokale ekspansjonen av effektor-T-celler, er det sannsynlig at det relativt lave antallet Treg-celler hos IBD-pasienter forklarer hvorfor disse cellene ikke klarer å kontrollere overdreven immunrespons. (18).
Eksperimentelle kolittstudier på mus har vist at kolitogene immunresponser kan kontrolleres ved å øke antall slimhinne-Treg-celler og fremhever potensialet til Treg-basert celleterapi ved IBD (19). Nærmere bestemt forhindrer samtidig overføring av naive CD4+ T-celler med Treg både kronisk kolitt og lindrer etablert kolitt hos mus med alvorlig kombinert immunsvikt (20). Dessuten forhindrer CD4+ T-celler utvidet ex vivo i nærvær av rapamycin utviklingen av kolitt i en naiv CD4+ T-cellemodell i SCID-mus. Det er viktig at systemisk administrering av rapamycin alene bare delvis forhindret utviklingen av kolonbetennelse (20). I tillegg undertrykte adoptiv overføring av nTreg-celler samt adoptiv overføring av ex vivo transformerende vekstfaktor (TGF)-β-indusert Treg (iTreg) kolittaktivitet in vivo i musemodeller (13;15;21). Samlet antyder disse dataene at Treg-celler kan brukes til terapi av tarmbetennelse ved IBD (22).
For å tillate en adoptiv overføring av et stort antall Treg, blir CD25+ Treg-celler isolert fra et autologt leukafereseprodukt og ekspandert in vitro i løpet av 21 dager i nærvær av tilsetningsstoffene Interleukin-2 (IL-2), rapamycin og anti-CD3/anti -CD28 ekspanderperler. Etter 21 dagers ekspansjon fjernes anti-CD3/anti-CD28 ekspanderkuler fra Treg-medikamentet. Deretter fryses Treg i alikvoter på 10 millioner treg/ml inntil videre bruk (5).
Tolv pasienter, inkludert 10 % pasienttap, noe som resulterer i minst ti behandlede og fullt evaluerbare pasienter, vil bli registrert i denne enkeltsenter, åpne, raske doseeskaleringsstudien. Autologe ex vivo utvidede CD4+CD25+CD127-/lo Treg-celler vil bli adoptivt overført hos pasienter med ulcerøs kolitt med aktiv sykdom eller stabil sykdom under tillatt samtidig terapi på tidspunktet for registrering. Maksimal tolerert dose (MTD) er definert som dosen som ikke gir mer enn én dosebegrensende toksisitet (DLT) blant totalt fire behandlede pasienter på det aktuelle dosenivået.
Den første registrerte pasienten vil motta startdosen på 0,5 x10e6 Treg/kg kroppsvekt. Adoptiv overføring eskaleres til neste dosenivå (1 x 10e6 Treg/kg, 2 x 10e6 Treg/kg, 5 x 10e6/Treg/kg og 10 x 10e6 Treg/kg kroppsvekt), i en neste pasient, hvis ingen DLT oppstår . Påfølgende pasienter vil bli behandlet med minst fire ukers mellomrom for å overvåke akutte alvorlige bivirkninger. Hvis en DLT registreres, vil ytterligere tre pasienter få samme dosenivå. Doseeskalering fortsetter inntil minst to pasienter blant en kohort på fire pasienter opplever en DLT. Hvis to pasienter blant en kohort på fire pasienter opplever en DLT, vil dosedeeskalering til det høyeste tidligere tolererte dosenivået følge. Tre ekstra pasienter vil få den høyeste tidligere tolererte dosen. Hvis en DLT registreres hos minst to pasienter på det testede dosenivået, vil dosedeeskalering fortsette inntil mindre enn to pasienter har opplevd en DLT. Etter vellykket registrering på høyeste dosenivå, vil ytterligere fem pasienter bli registrert på høyeste dosenivå for å utvide sikkerhetsvurderingen. Hvis ingen DLT-er eller mindre enn to DLT-er oppleves ved alle testede dosenivåer, nås ikke MTD. I dette tilfellet er en maksimal administrert dose (MAD) definert.
Studietype
Registrering (Faktiske)
Fase
- Fase 1
Kontakter og plasseringer
Studiesteder
-
-
Bayern
-
Erlangen, Bayern, Tyskland, 91054
- University of Erlangen-Nürnberg Medical School
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- Pasienter må ha en etablert diagnose av UC, med minimum tid fra diagnose på ≥3 måneder
- Pasienter må enten være i remisjon under tillatt samtidig terapi eller må ha mottatt alle fordelaktige farmakologiske behandlingslinjer før innmelding og ha moderat til alvorlig sykdomsaktivitet (sykdommen bør strekke seg 15 cm eller mer over analgrensen) bestemt av en modifisert Mayo-score ( ekskludert sprøheten ved grad 1 for den endoskopiske subskåren) på 6 til 12 med en endoskopisk subscore ≥ 2 og ingen annen individuell subscore < 1.
- Pasienter må ha en WHO-ytelsesstatus på 0, 1 eller 2 og må være i stabil medisinsk tilstand.
- Pasienter må være mellom 18 og 75 år og må kunne og være villige til å gi informert samtykke.
- Kvinner i fertil alder må ha negativ graviditetstest ved opptak til studien, må være villige til å gjennomgå månedlige graviditetstester inntil minst 3 måneder etter adoptiv Treg-overføring og må forplikte seg til å bruke effektiv prevensjon inntil minst 3 måneder etter adoptiv Treg overføre. En svært effektiv prevensjonsmetode er definert som en som resulterer i en lav feilrate (dvs. mindre enn 1 prosent per år) når den brukes konsekvent og riktig, for eksempel implantater, injiserbare p-piller, kombinerte p-piller, noen intrauterine enheter (IUDs) , seksuell avholdenhet eller en vasektomisert partner. For personer som bruker en hormonell prevensjonsmetode, bør informasjon om produktet som vurderes og dets potensielle effekt på prevensjonsmidlet tas opp.
- Mannlige studiepasienter, som er partnere til kvinner i fertil alder, må være villige til å bruke effektiv prevensjon inntil minst 3 måneder etter adoptiv Treg-overføring. En svært effektiv prevensjonsmetode er definert som en som resulterer i en lav feilrate (dvs. mindre enn 1 prosent per år) når den brukes konsekvent og riktig, for eksempel seksuell avholdenhet eller vasektomi. Kun bruk av kondom anses ikke som en effektiv prevensjonsmetode. Derfor bør partnere i fertil alder fra mannlige studiepasienter være villige til å bruke implantater, injiserbare midler, kombinerte orale prevensjonsmidler eller intrauterin utstyr (IUDs), en svært effektiv metode for prevensjon. Informasjon om produktet under evaluering og dets potensielle effekt på prevensjonsmidlet bør tas opp.
- Pasienter må være villige til å gjennomgå en leukaferese.
- Pasienter må være villige til å bli innlagt på sykehus i minst 24 timer etter adoptiv Treg-overføring, og til å samarbeide under hele forsøksperioden.
- Gjennomføring av en utvaskingsfase for biologisk terapi på minst 8 uker eller ingen påvisbare bunnnivåer i serum før screening i tilfelle en utvaskingsfase mindre enn 8 uker.
- Samtidig behandling med orale kortikosteroider (prednison eller tilsvarende opptil 20 mg/dag, stabil i 2 uker ved inklusjon), budesonid (9 mg/dag, stabil i 8 uker ved inklusjon), 5-ASA (stabil i 2 uker ved inklusjon) og azatioprin (stabil i 8 uker, startet for minst 3 måneder siden) er tillatt. Samtidig orale kortikosteroider kan reduseres etter utrederens skjønn fra besøk 5 og utover (f.eks. 5 mg reduksjon per uke).≤
Ekskluderingskriterier:
- Noen av de ovennevnte inklusjonskriteriene er ikke oppfylt.
- Nedsatt hematologisk funksjon (ved gjentatt testing) som indikert ved antall leukocytter ≤ 2500 /mm3, eller nøytrofiler ≤ 1000 / mm3, eller lymfocytter ≤ 700 / mm3, eller blodplater ≤ 75 000 / mm3 / dl29, eller hemoglobin ≤29
- Nedsatt lever- eller nyrefunksjon som indikert av serumkreatinin ≥ 2,5 mg/100 ml, eller serumbilirubin ≥ 2,0 mg/100 ml
- Enhver annen alvorlig alvorlig sykdom [f.eks. aktive systemiske infeksjoner, immunsviktsykdom, klinisk signifikant hjertesykdom, luftveissykdom, blødningsforstyrrelser, etc.] eller en kontraindikasjon mot leukaferese.
- Bevis for HIV-1, HIV -2, HTLV-1, TPHA, HBV eller HCV-infeksjon.
- Pasienter som har tilbrakt en kumulativ periode på 1 år eller mer i Storbritannia mellom begynnelsen av 1980 og slutten av 1996
- Pasienter som har en familiehistorie, som setter dem i fare for å utvikle Creutzfeldt-Jacobs sykdom
- Pasienter som har fått hornhinne- eller dura mater-transplantat, eller som tidligere har blitt behandlet med medisiner laget av humane hypofyse
- Andre aktive autoimmune sykdommer (som, men ikke begrenset til, Lupus erythematosus, autoimmun tyreoiditt eller uveitt, multippel sklerose).
- Tidligere splenektomi eller strålebehandling av milten.
- Pasienter med organallograft.
- Pasienter med cøliaki.
- Samtidig behandling med kjemoterapi, immunterapi, eventuelle undersøkelsesmedisiner og paramedisinske stoffer.
- Eksistens eller tidligere historie med en ondartet neoplasma.
- Organisk hjernesyndrom eller betydelig psykiatrisk abnormitet som vil utelukke deltakelse i hele protokollen og oppfølgingen.
- Positiv graviditetstest / Graviditet eller amming. Hvis graviditet oppstår i løpet av forsøket til kvinnelige pasienter, må pasienten ekskluderes (ikke gyldig for partnere til mannlige pasienter som behandles).
- Kjent overfølsomhet overfor humant serumalbumin og/eller DMSO
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: N/A
- Intervensjonsmodell: Enkeltgruppeoppdrag
- Masking: Ingen (Open Label)
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentell: Regulatoriske T-celler
Intravenøs infusjon av en enkelt dose på 0,5x10e6, 1x10e6, 2x10e6, 5x10e6 eller 10x10e6 Treg/kg kroppsvekt
|
Autologe, ex vivo utvidede, regulatoriske T-celler
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Dosefinning
Tidsramme: Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
For å definere maksimal tolerabel dose (MTD) av én enkelt infusjon av autologe ex vivo utvidede regulatoriske T-celler hos pasienter med ulcerøs kolitt
|
Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Vurdering av sikkerhet for én enkelt infusjon av regulatoriske T-celler
Tidsramme: Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
For å definere antall pasienter med behandlingsrelaterte bivirkninger som vurdert av CTCAE v. 5.0
|
Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
|
Vurdering av betennelse i tarmen
Tidsramme: Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
Å definere innvirkningen på forløpet av UC som definert ved en økning i Mayo Clinic-skåren på minst 3 poeng og en økning på minst 30 % fra baseline, med en medfølgende økning i rektalblødningssubscore på minst 1 poeng.
|
Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
|
Vurdering av livskvalitet
Tidsramme: Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
For å definere endringer i sykdomsaktivitetsscore beregnet ved evalueringen av Quality of Life Inflammatory Bowel Disease Questionnaire (IBDQ)
|
Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
|
Vurdering av Treg-funksjon i perifert blod
Tidsramme: Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
For å definere endringer i Treg-frekvens i perifert blod
|
Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
|
Vurdering av Treg funksjon i tarmen
Tidsramme: Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
For å definere endringer i effektor-T-celle- og Treg-frekvenser i tarmen
|
Besøk 5 (4 uker etter adoptiv Treg-overføring)
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Prof. Dr. med. Markus Neurath, MD, University of Erlangen-Nürnberg Medical School
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Neurath MF. Cytokines in inflammatory bowel disease. Nat Rev Immunol. 2014 May;14(5):329-42. doi: 10.1038/nri3661. Epub 2014 Apr 22.
- Danese S, Fiocchi C. Ulcerative colitis. N Engl J Med. 2011 Nov 3;365(18):1713-25. doi: 10.1056/NEJMra1102942. No abstract available.
- Abraham C, Cho JH. Inflammatory bowel disease. N Engl J Med. 2009 Nov 19;361(21):2066-78. doi: 10.1056/NEJMra0804647. No abstract available.
- Corridoni D, Arseneau KO, Cominelli F. Inflammatory bowel disease. Immunol Lett. 2014 Oct;161(2):231-5. doi: 10.1016/j.imlet.2014.04.004. Epub 2014 Jun 2.
- Mayne CG, Williams CB. Induced and natural regulatory T cells in the development of inflammatory bowel disease. Inflamm Bowel Dis. 2013 Jul;19(8):1772-88. doi: 10.1097/MIB.0b013e318281f5a3.
- Wiesinger M, Stoica D, Roessner S, Lorenz C, Fischer A, Atreya R, Neufert CF, Atreya I, Scheffold A, Schuler-Thurner B, Neurath MF, Schuler G, Voskens CJ. Good Manufacturing Practice-Compliant Production and Lot-Release of Ex Vivo Expanded Regulatory T Cells As Basis for Treatment of Patients with Autoimmune and Inflammatory Disorders. Front Immunol. 2017 Oct 26;8:1371. doi: 10.3389/fimmu.2017.01371. eCollection 2017.
- Geremia A, Biancheri P, Allan P, Corazza GR, Di Sabatino A. Innate and adaptive immunity in inflammatory bowel disease. Autoimmun Rev. 2014 Jan;13(1):3-10. doi: 10.1016/j.autrev.2013.06.004. Epub 2013 Jun 15.
- Iboshi Y, Nakamura K, Fukaura K, Iwasa T, Ogino H, Sumida Y, Ihara E, Akiho H, Harada N, Nakamuta M. Increased IL-17A/IL-17F expression ratio represents the key mucosal T helper/regulatory cell-related gene signature paralleling disease activity in ulcerative colitis. J Gastroenterol. 2017 Mar;52(3):315-326. doi: 10.1007/s00535-016-1221-1. Epub 2016 May 13. Erratum In: J Gastroenterol. 2017 Mar;52(3):396.
- Sujino T, Kanai T, Ono Y, Mikami Y, Hayashi A, Doi T, Matsuoka K, Hisamatsu T, Takaishi H, Ogata H, Yoshimura A, Littman DR, Hibi T. Regulatory T cells suppress development of colitis, blocking differentiation of T-helper 17 into alternative T-helper 1 cells. Gastroenterology. 2011 Sep;141(3):1014-23. doi: 10.1053/j.gastro.2011.05.052. Epub 2011 Jun 7.
- Siddiqui KR, Powrie F. CD103+ GALT DCs promote Foxp3+ regulatory T cells. Mucosal Immunol. 2008 Nov;1 Suppl 1:S34-8. doi: 10.1038/mi.2008.43.
- Westendorf AM, Fleissner D, Groebe L, Jung S, Gruber AD, Hansen W, Buer J. CD4+Foxp3+ regulatory T cell expansion induced by antigen-driven interaction with intestinal epithelial cells independent of local dendritic cells. Gut. 2009 Feb;58(2):211-9. doi: 10.1136/gut.2008.151720. Epub 2008 Oct 2.
- Hadis U, Wahl B, Schulz O, Hardtke-Wolenski M, Schippers A, Wagner N, Muller W, Sparwasser T, Forster R, Pabst O. Intestinal tolerance requires gut homing and expansion of FoxP3+ regulatory T cells in the lamina propria. Immunity. 2011 Feb 25;34(2):237-46. doi: 10.1016/j.immuni.2011.01.016. Epub 2011 Feb 17.
- Coombes JL, Maloy KJ. Control of intestinal homeostasis by regulatory T cells and dendritic cells. Semin Immunol. 2007 Apr;19(2):116-26. doi: 10.1016/j.smim.2007.01.001. Epub 2007 Feb 21.
- Coombes JL, Siddiqui KR, Arancibia-Carcamo CV, Hall J, Sun CM, Belkaid Y, Powrie F. A functionally specialized population of mucosal CD103+ DCs induces Foxp3+ regulatory T cells via a TGF-beta and retinoic acid-dependent mechanism. J Exp Med. 2007 Aug 6;204(8):1757-64. doi: 10.1084/jem.20070590. Epub 2007 Jul 9.
- Griseri T, Asquith M, Thompson C, Powrie F. OX40 is required for regulatory T cell-mediated control of colitis. J Exp Med. 2010 Apr 12;207(4):699-709. doi: 10.1084/jem.20091618. Epub 2010 Apr 5.
- Pastille E, Bardini K, Fleissner D, Adamczyk A, Frede A, Wadwa M, von Smolinski D, Kasper S, Sparwasser T, Gruber AD, Schuler M, Sakaguchi S, Roers A, Muller W, Hansen W, Buer J, Westendorf AM. Transient ablation of regulatory T cells improves antitumor immunity in colitis-associated colon cancer. Cancer Res. 2014 Aug 15;74(16):4258-69. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-13-3065. Epub 2014 Jun 6.
- Wang Z, Friedrich C, Hagemann SC, Korte WH, Goharani N, Cording S, Eberl G, Sparwasser T, Lochner M. Regulatory T cells promote a protective Th17-associated immune response to intestinal bacterial infection with C. rodentium. Mucosal Immunol. 2014 Nov;7(6):1290-301. doi: 10.1038/mi.2014.17. Epub 2014 Mar 19.
- Holmen N, Lundgren A, Lundin S, Bergin AM, Rudin A, Sjovall H, Ohman L. Functional CD4+CD25high regulatory T cells are enriched in the colonic mucosa of patients with active ulcerative colitis and increase with disease activity. Inflamm Bowel Dis. 2006 Jun;12(6):447-56. doi: 10.1097/00054725-200606000-00003.
- Izcue A, Coombes JL, Powrie F. Regulatory T cells suppress systemic and mucosal immune activation to control intestinal inflammation. Immunol Rev. 2006 Aug;212:256-71. doi: 10.1111/j.0105-2896.2006.00423.x.
- Ogino H, Nakamura K, Iwasa T, Ihara E, Akiho H, Motomura Y, Akahoshi K, Igarashi H, Kato M, Kotoh K, Ito T, Takayanagi R. Regulatory T cells expanded by rapamycin in vitro suppress colitis in an experimental mouse model. J Gastroenterol. 2012 Apr;47(4):366-76. doi: 10.1007/s00535-011-0502-y. Epub 2011 Dec 22.
- Fantini MC, Becker C, Tubbe I, Nikolaev A, Lehr HA, Galle P, Neurath MF. Transforming growth factor beta induced FoxP3+ regulatory T cells suppress Th1 mediated experimental colitis. Gut. 2006 May;55(5):671-80. doi: 10.1136/gut.2005.072801. Epub 2005 Sep 14.
- Salas A, Panes J. IBD. Regulatory T cells for treatment of Crohn's disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2015 Jun;12(6):315-6. doi: 10.1038/nrgastro.2015.68. Epub 2015 Apr 21.
- Voskens CJ, Stoica D, Roessner S, Vitali F, Zundler S, Rosenberg M, Wiesinger M, Wunder J, Siegmund B, Schuler-Thurner B, Schuler G, Berking C, Atreya R, Neurath MF. Safety and tolerability of a single infusion of autologous ex vivo expanded regulatory T cells in adults with ulcerative colitis (ER-TREG 01): protocol of a phase 1, open-label, fast-track dose-escalation clinical trial. BMJ Open. 2021 Dec 8;11(12):e049208. doi: 10.1136/bmjopen-2021-049208.
- Voskens C, Stoica D, Rosenberg M, Vitali F, Zundler S, Ganslmayer M, Knott H, Wiesinger M, Wunder J, Kummer M, Siegmund B, Schnoy E, Rath T, Hartmann A, Hackstein H, Schuler-Thurner B, Berking C, Schuler G, Atreya R, Neurath MF. Autologous regulatory T-cell transfer in refractory ulcerative colitis with concomitant primary sclerosing cholangitis. Gut. 2023 Jan;72(1):49-53. doi: 10.1136/gutjnl-2022-327075. Epub 2022 Apr 15.
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Faktiske)
Studiet fullført (Faktiske)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
Andre studie-ID-numre
- ER-TREG 01
Plan for individuelle deltakerdata (IPD)
Planlegger du å dele individuelle deltakerdata (IPD)?
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .