- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk utprøving NCT05568953
En eksperimentell medisinsk dechiffrer av et minimumskorrelat av cellulær immunitet
Vi antar at et høyt CD4+ og CD8+ T-celletall vil redusere viremi ved utfordring med et strukturelt heterologt virus, og tilsvarende resultere i redusert omfang av vertsrespons på utfordringsinfeksjon.
Primært mål: Å sammenligne, etter utfordring med en strukturelt heterolog vaksine, forskjellene i nivåer av viremi mellom friske voksne som fikk primærvaksinasjon med enten YF17D-vaksine, kimær JE-YF17D-vaksine eller inaktivert JE-vaksine.
58 forsøkspersoner vil bli randomisert i 1 av 2 armer (arm B1 og arm B2) i et 1:1-forhold, på en dobbeltblind måte. Forsøkspersoner i arm B1 vil motta JE-YF17D-vaksine (Imojev, Sanofi Pasteur) på dag 0 etterfulgt av YF17D-vaksine (Stamaril, Sanofi Pasteur) på dag 28. Emner i arm B2 vil motta Stamaril på dag 0 etterfulgt av Imojev på dag 28. Arm B3 vil bli utført som en separat enarms åpen etikettdesign i 14 fag. Pasienter i arm B3 vil motta inaktivert JE-vaksine (Ixiaro, Valneva) på dag 0 etterfulgt av Stamaril på dag 28.
Begrunnelsen for disse tre studiearmene er som følger: Arm B1 vil vise virkningen lave nivåer av viremi, og de resulterende lave nivåene av virusspesifikke CD4+ og CD8+ T-celler, ville ha på YF17D-infeksjon. I motsetning til dette vil YF17D-vaksinasjon i arm B2 gi høye nivåer av viremi, og i sin tur høye nivåer av virusspesifikke T-celler, og dermed sannsynligvis forbedre JE-YF17D-infeksjon. Arm B3 vil fungere som kontrollarm, da vaksinasjon med inaktivert JE-vaksine ikke vil gi noen YF17D-spesifikk T-cellerespons. Spesielt vil den første vaksinasjonen i armene B1 og B2 også gi viremi-responsen i fravær av virusspesifikke T-celler, som vil tjene som et referansepunkt for å tolke resultatet av den andre vaksinasjonen.
Studieoversikt
Status
Intervensjon / Behandling
Detaljert beskrivelse
Kriterier for rekrutterings- og rekrutteringsprosess: Emner vil bli rekruttert fra SingHealth Investigational Medicine Unit (IMU) database for sunne frivillige og rekrutteringsplakater. Emner vil få en kopi av deltakerinformasjonen og informert samtykkeskjema for å lese ved ankomst. En orienteringssesjon om studien vil bli gjennomført av etterforskeren. Deretter vil forsøkspersonene bli ført inn i et privat rom hvor informert samtykke innhentes og hvor spørsmål om studien kan stilles fritt. Forsøkspersonene vil ikke bli forhastet til å ta en beslutning om å delta i studien. De vil bli oppfordret til å snakke med familiemedlemmer om deltakelse i studien; og tillatelse til å utsette avgjørelsen (uten fordommer) om å delta til etter diskusjon med familiemedlemmer.
Screeningbesøk og prosedyrer: Emner vil bli rekruttert via SingHealth Investigational Medicine Unit (IMU). Det vil bli innhentet informert skriftlig samtykke fra fag som oppfyller kriteriene for påmelding. Alle samtykkede forsøkspersoner vil gjennomgå screening, som inkluderer fysisk undersøkelse, full blodtelling, leverfunksjonstest, anti-dengue antistoffer ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay) og uringraviditetstest (for kvinnelige forsøkspersoner i fertil alder).
En uringraviditetstest vil bli utført ved screening og på vaksinasjonsdagen (dag 0 og dag 28) for kvinnelige forsøkspersoner i fertil alder. Kun de med negativ uringraviditetstest vil bli vurdert å være kvalifisert for studien, forutsatt at andre kvalifikasjonskriterier er oppfylt.
Både mannlige (hvis han har en partner i fertil alder) og kvinnelige forsøkspersoner (i fertil alder) må samtykke i å bruke tilstrekkelige og pålitelige prevensjonstiltak (f.eks. sæddrepende midler, kondomer, p-piller) eller praktisere avholdenhet i 10 dager etter vaksinasjon.
Studiebesøk og prosedyrer: 58 forsøkspersoner vil bli randomisert i 1 av 2 armer (arm B1 og arm B2) i forholdet 1:1, på en dobbeltblind måte. Forsøkspersoner i arm B1 vil motta JE-YF17D-vaksine (Imojev, Sanofi Pasteur) på dag 0 etterfulgt av YF17D-vaksine (Stamaril, Sanofi Pasteur) på dag 28. Emner i arm B2 vil motta Stamaril på dag 0 etterfulgt av Imojev på dag 28. Arm B3 vil bli utført som en separat enarms åpen etikettdesign i 14 fag. Pasienter i arm B3 vil motta inaktivert JE-vaksine (Ixiaro, Valneva) på dag 0 etterfulgt av Stamaril på dag 28. Studiebesøk i alle armer vil finne sted på dag 0, 4, 7, 10, 14, 28, 29, 32, 35, 38, 42, 58. Ved hvert studiebesøk vil det bli utført fysisk undersøkelse, vitale tegn og forskningsblodprøver. På dag 0 og dag 28 vil det bli tatt blodprøver før vaksinasjon.
Avsluttende studiebesøk: Siste studiebesøk vil være på dag 58 post-studie vaksinasjon.
Etterstudieoppfølging og prosedyrer: Det er ingen krav om etterstudieoppfølging eller prosedyrer.
Plan for sikkerhetsovervåking: Studien kan evalueres av offentlige inspektører/regulerende myndigheter som må få tilgang til e-CRF-er, kildedokumenter og andre studiefiler. Inspektørene vil gjennomgå CRF-er og sammenligne dem med kildedokumenter for å bekrefte nøyaktig og fullstendig innsamling av data og bekrefte at studien utføres i henhold til protokollen, ICH Good Clinical Practices (ICH-GCP) og alle gjeldende forskrifter.
Når som helst etter vaksinasjon vil alle forsøkspersoner bli opplært til å observere for systemiske bivirkninger. En dagbok vil også bli gitt til forsøkspersonene for å registrere slike hendelser dersom de skulle inntreffe i denne perioden. Skulle de utvikle systemiske symptomer som krever intervensjon, vil de rapportere til studiestedet for medisinsk vurdering og motta passende behandling. Varigheten av symptomene vil bli registrert. Eventuell samtidig medisinbruk i denne perioden vil også bli registrert.
I løpet av studien vil full historietaking og fysisk undersøkelse bli utført ved både planlagte og uplanlagte besøk. En fullstendig fysisk undersøkelse vil kun bli gjort ved screeningbesøket, mens en kort fysisk undersøkelse vil bli gjort for alle påfølgende besøk. Common Terminology Criteria for Adverse Events (CTCAE), rutinemessig brukt i kliniske studier, vil bli brukt til å definere AE-terminologi og alvorlighetsgrad. Håndtering av AE er etter skjønn av studieteamets PI og co-Is, veiledet av alvorlighetsgrad og klinisk indikasjon for intervensjon. Alle medisiner som er foreskrevet for behandling av AE vil bli dokumentert i journalskjemaet for medisinering/samtidig medisinering. Detaljer om terminologi for AE-hendelse, dato og klokkeslett for hendelsens start og slutt, alvorlighetsgrad, bruk av CTCAE eller gitt behandling, innvirkning på arbeidet og fortsettelsen av studien, og endelig utfall av hendelsen vil bli registrert i saksrapporten frem til løsning av arrangementet.
Datakvalitetssikring: PI og co-Is vil gjennomgå studien med jevne mellomrom for data- og sikkerhetsovervåking. Interne kvalitetskontroller vil bli utført av to CRC-er som er studieteammedlemmer. Dataene som legges inn av en CRC vil bli kontrollert av en annen ved å bruke kildedokumentene. Studien kan også velges for overvåking av SingHealth Office of Research Integrity and Compliance (ORIC) eller evaluert av offentlige inspektører/regulatoriske myndigheter som må få tilgang til e-CRF-er, kildedokumenter og andre studiefiler. Monitorene/inspektørene kan gjennomgå CRF-er og sammenligne dem med kildedokumenter for å bekrefte nøyaktig og fullstendig innsamling av data og bekrefte at studien utføres i henhold til protokollen, ICH-Good Clinical Practices (ICH-GCP) og alle gjeldende forskrifter.
Dataregistrering og lagring: Alle deltakers data vil bli avidentifisert ved rekruttering. Papirbaserte forskningsdatainnsamlingsskjemaer som CRF-er, logger og dagbøker vil bli oppbevart i Investigator's Site File og lagret i SingHealth IMU under lås og nøkkel, kun tilgjengelig for delegerte studieteammedlemmer.
Direkte datafangst av demografiske og kliniske data vil bli fanget opp på kildedokumenter. Identifikatorer vil bli oppbevart i en egen fil på et annet kontor, og det vil bli gjort alt for å beskytte deltakernes personvern. Dataene som skal analyseres vil kun inneholde avidentifiserte data. Det vil bli brukt et elektronisk datafangstsystem. Alle elektroniske data vil være passordbeskyttet og kan bare nås av studieteammedlemmer. Prøver, testresultater eller patogendata vil bli lagret på Duke-NUS EID-laboratoriet på en frittstående PC der tilgangen er passordbeskyttet.
Bestemmelse av prøvestørrelse: For å påvise en effektstørrelse på 0,8 SD i gjennomsnittlig vireminivå på log(10) skala mellom første og andre med samme vaksine - første dose av vil bli analysert mot de som fikk YF17D etter JE-YF17D og omvendt - en prøvestørrelse på 25 per gruppe vil gi 80 % kraft ved 5 % tosidig type 1 feilrate. For å tillate 10 % tidlig frafall, er det målrettet en total prøvestørrelse på 28 per gruppe for arm B1 og B2. For arm B3, som er kontrollgruppen, vil en prøvestørrelse på 14 bli brukt.
Statistisk og analytisk plan: Distribusjonsdiagnostiske plott vil bli brukt til å undersøke formen på fordelinger av T-celletall rett før utfordringsvaksinasjonen og den påfølgende vaksineviremi. Parametriske (t-test) eller ikke-parametriske (Mann-Whitney U) prosedyrer vil bli brukt for å vurdere forskjellene i T-celletall og de ulike målte variablene som viremi, antistofftitere og cytokinnivåer. Pearsons eller Spearmans korrelasjonskoeffisienter vil bli brukt, etter behov, for å undersøke sammenhengen mellom T-cellenivåer og disse variablene.
Frekvensen av rapporterte symptomer og type symptomer vil først bli analysert ved å bestemme median- og interkvartilområdet. Vi vil deretter analysere hvordan den første vaksinasjonen påvirker det symptomatiske resultatet av utfordringsvaksinasjonen ved å bruke 2x2-tabeller og chi square-analyse eller Fishers eksakte test, avhengig av hva som passer. Parametriske (t-test) eller ikke-parametriske (Mann-Whitney U) prosedyrer vil bli brukt for å vurdere forskjellene i pre-utfordring virusspesifikke T-celletall blant de med symptomer og de uten.
Tester som vil bli utført på blodprøvene: DENV IgG ELISA, FBC, Leverpanel, Viremia (NS5 PCR), cytokiner, Anti-NS1 Ab, T-cellestudier (AIM, ELLISPOT, ELLA), BCR-sekvensering, PRNT og gen uttrykk.
Studietype
Registrering (Forventet)
Fase
- Fase 2
Kontakter og plasseringer
Studiekontakt
- Navn: Lavanya Lakshmi Jeeva
- Telefonnummer: 63237532
- E-post: lavanya.lakshmi.jeeva@singhealth.com.sg
Studer Kontakt Backup
- Navn: Jin Ying Ng
- Telefonnummer: 63237572
- E-post: ng.jin.ying@singhealth.com.sg
Studiesteder
-
-
-
Singapore, Singapore
- Rekruttering
- SingHealth Investigational Medicine Unit
-
Ta kontakt med:
- Shirin Kalimuddin
- Telefonnummer: 65-6323 7532
- E-post: imu@singhealth.com.sg
-
-
Deltakelseskriterier
Kvalifikasjonskriterier
Alder som er kvalifisert for studier
Tar imot friske frivillige
Beskrivelse
Inklusjonskriterier:
- Friske voksne, 21-45 år på tidspunktet for screening
- Villig til å følge studieprosedyrer og følge studieplanen for besøk.
- Tilfredsstillende medisinsk baseline vurdering vurdert ved fysisk undersøkelse og stabil helsetilstand. Laboratorieverdiene må være innenfor det normale området for vurderingsstedet eller vise abnormiteter som anses som ikke klinisk signifikante, vurdert av etterforskeren. En stabil helsestatus er definert som fravær av en helsehendelse som tilfredsstiller definisjonen av en alvorlig bivirkning.
- Tilgjengelig vene for blodinnsamling.
- Evne til å gi informert samtykke.
- Kvinnelige forsøkspersoner som ikke kan føde på grunn av kirurgisk sterilisering (hysterektomi eller bilateral ooforektomi eller tubal ligering) eller overgangsalder. Postmenopausale personer må ha hatt minst 12 måneder med naturlig (spontan) amenoré
- Fertile kvinner med negative uringraviditetstester på dagen for screening og vaksinasjon.
- Både mannlige (hvis han har en partner i fertil alder) og kvinnelige forsøkspersoner (i fertil alder) må samtykke i å bruke tilstrekkelige og pålitelige prevensjonstiltak (f.eks. sæddrepende midler, kondomer, p-piller) eller praktisere avholdenhet i 10 dager etter vaksinasjon.
Ekskluderingskriterier:
- Anamnese med tilstedeværelse av kardiovaskulære, respiratoriske, lever-, nyre-, gastrointestinale, nevropsykiatriske, hematologiske, endokrine eller immunsuppressive lidelser som ville være en risikofaktor ved administrering av undersøkelsesproduktet (IP)
- Tidligere mottak av Imojev-, Stamaril- eller Ixiaro-vaksiner, eller andre vaksiner mot gul feber eller japansk encefalitt
- Tidligere historie med gulfebervirus eller japansk encefalittinfeksjon
- Kjent allergi mot Imojev, Stamaril eller Ixiaro vaksiner eller deres komponenter
- Anamnese med alvorlige mat-/medikament-/vaksineallergier f.eks. angioødem, anafylaksi
- Kjent allergi mot egg eller eggprodukter
- Historie om thymuskjertelsykdom
- Diagnostisert med kreft eller på behandling for kreft (med unntak av lokalisert basalcellekarsinom) innen 3 år før screening
- Bevis på klinisk signifikant anemi (Hb
- Bloddonasjon som overstiger >450 ml de siste 3 månedene
- Tilstedeværelse av akutt infeksjon i løpet av de siste 7 dagene eller tilstedeværelse av en temperatur ≥ 38,0 °C (oral eller trommehinnetemperaturvurdering), eller akutte symptomer større enn av "mild" alvorlighetsgrad på den planlagte datoen for første dose
- Kvinne som er gravid eller ammer
- Bevis på rusmisbruk, eller tidligere rusmisbruk inkludert alkohol
- Deltakelse i en studie som involverer administrering av en undersøkelsesforbindelse (inkludert undersøkelsesvaksiner) i løpet av de siste tre månedene, eller planlagt deltakelse i løpet av denne studien.
- Mottak av antiinflammatoriske legemidler (som NSAIDs eller systemiske steroider) i løpet av de siste 7 dagene.
- Mottak av lisensiert vaksine de siste 30 dagene før den første studievaksinedosen.
- Positivt serum Dengue IgG ved ELISA
- Enhver tilstand som, etter etterforskerens mening, ville komplisere eller kompromittere studiet eller velvære til faget.
Studieplan
Hvordan er studiet utformet?
Designdetaljer
- Primært formål: Grunnvitenskap
- Tildeling: Randomisert
- Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
- Masking: Trippel
Våpen og intervensjoner
Deltakergruppe / Arm |
Intervensjon / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentell: Arm 1 (JE-YF17D-vaksine etterfulgt av YF17D-vaksine)
28 forsøkspersoner vil motta én dose av JE-YF17D-vaksinen (Imojev, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (4,0 - 5,8 log plakkdannende enheter [PFU])) på dag 0 etterfulgt av én dose av YF17D-vaksinen (Stamaril, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (3 - 4 log PFU) ) på dag 28.
|
Stamaril er lisensiert av Health Sciences Authority (HSA), Singapore.
Vaksinen er produsert av Sanofi Pasteur og hentet fra Sanofi Pasteurs lokale distributør.
Andre navn:
Imojev er lisensiert av Health Sciences Authority (HSA), Singapore.
Vaksinen er produsert av Sanofi Pasteur og hentet fra Sanofi Pasteurs lokale distributør.
Andre navn:
|
|
Eksperimentell: Arm 2 (YF17D-vaksine etterfulgt av JE-YF17D-vaksine)
28 forsøkspersoner vil motta én dose av YF17D-vaksinen (Stamaril, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (3 - 4 log PFU)) på dag 0 etterfulgt av én dose av JE-YF17D-vaksinen (Imojev, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (4,0 - 5.8 log plakettdannende enheter [PFU]) på dag 28.
|
Stamaril er lisensiert av Health Sciences Authority (HSA), Singapore.
Vaksinen er produsert av Sanofi Pasteur og hentet fra Sanofi Pasteurs lokale distributør.
Andre navn:
Imojev er lisensiert av Health Sciences Authority (HSA), Singapore.
Vaksinen er produsert av Sanofi Pasteur og hentet fra Sanofi Pasteurs lokale distributør.
Andre navn:
|
|
Eksperimentell: Arm 3 (inaktivert JE-vaksine etterfulgt av YF17D-vaksine)
14 forsøkspersoner vil motta én dose av den inaktiverte JE-vaksinen (Ixiaro, Valneva, 0,5 ml) på dag 0 etterfulgt av én dose av YF17D-vaksinen (Stamaril, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (3 - 4 log PFU)) på dag 28.
|
Stamaril er lisensiert av Health Sciences Authority (HSA), Singapore.
Vaksinen er produsert av Sanofi Pasteur og hentet fra Sanofi Pasteurs lokale distributør.
Andre navn:
Ixiaro er lisensiert av Health Sciences Authority (HSA), Singapore.
Ixiaro-vaksinene er produsert av Valneva og hentet fra den lokale distributøren, Aenon Pharmaceuticals SEA Pte Ltd.
Andre navn:
|
Hva måler studien?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Vireminivåer etter andre vaksinasjon
Tidsramme: Dag 0 til dag 58
|
Vireminivå (genomkopier/ml) etter andre vaksinasjon med enten JE-YF17D eller YF17D
|
Dag 0 til dag 58
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
T-celleresponser etter vaksinasjon
Tidsramme: Dag 0 til dag 58
|
Størrelsen på antigenspesifikke T-celleresponser etter vaksinasjon.
|
Dag 0 til dag 58
|
|
Vireminivå etter første vaksinasjon
Tidsramme: Dag 0 til dag 58
|
Vireminivå etter første vaksinasjon med enten JE-YF17D eller YF17D
|
Dag 0 til dag 58
|
|
Varighet av viremi etter andre vaksinasjon
Tidsramme: Dag 0 til dag 58
|
Varighet (i dager) av påvisbar viremi etter andre vaksinasjon med enten JEYF17D eller YF17D.
|
Dag 0 til dag 58
|
|
Antistofftitere
Tidsramme: Dag 0 til dag 58
|
Nøytraliserende antistofftitere som målt ved plakkreduksjonsnøytraliseringstest (PRNT50 og PRNT90), dvs. serumtiteren som kreves for å redusere viral plakk med henholdsvis 50 % eller 90 %, etter andre vaksinasjon med enten YF17D, JEYF17D eller inaktiverte JE-YF17D vaksiner.
|
Dag 0 til dag 58
|
|
Priser for uønskede hendelser
Tidsramme: Dag 0 til dag 58
|
Hyppighet av bivirkninger etter vaksinasjon med enten JE-YF17D eller YF17D
|
Dag 0 til dag 58
|
Andre resultatmål
Resultatmål |
Tiltaksbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Medfødt immungenuttrykk
Tidsramme: Dag 0 til dag 58
|
Nivåer av medfødt immungenuttrykk etter vaksinasjon med JE-YF17D, YF17D eller inaktivert JE-vaksine.
|
Dag 0 til dag 58
|
|
Cytokinnivåer
Tidsramme: Dag 0 til 58
|
Nivåer av cytokiner etter vaksinasjon med JE-YF17D, YF17D eller inaktivert JE-vaksine
|
Dag 0 til 58
|
Samarbeidspartnere og etterforskere
Sponsor
Samarbeidspartnere
Etterforskere
- Hovedetterforsker: Shirin Kalimuddin, MRCP (UK), Singapore General Hospital
Publikasjoner og nyttige lenker
Generelle publikasjoner
- Long QX, Tang XJ, Shi QL, Li Q, Deng HJ, Yuan J, Hu JL, Xu W, Zhang Y, Lv FJ, Su K, Zhang F, Gong J, Wu B, Liu XM, Li JJ, Qiu JF, Chen J, Huang AL. Clinical and immunological assessment of asymptomatic SARS-CoV-2 infections. Nat Med. 2020 Aug;26(8):1200-1204. doi: 10.1038/s41591-020-0965-6. Epub 2020 Jun 18.
- Chan KR, Wang X, Saron WAA, Gan ES, Tan HC, Mok DZL, Zhang SL, Lee YH, Liang C, Wijaya L, Ghosh S, Cheung YB, Tannenbaum SR, Abraham SN, St John AL, Low JGH, Ooi EE. Cross-reactive antibodies enhance live attenuated virus infection for increased immunogenicity. Nat Microbiol. 2016 Sep 19;1(12):16164. doi: 10.1038/nmicrobiol.2016.164.
- Braciale TJ, Hahn YS. Immunity to viruses. Immunol Rev. 2013 Sep;255(1):5-12. doi: 10.1111/imr.12109.
- Smith CM, Wilson NS, Waithman J, Villadangos JA, Carbone FR, Heath WR, Belz GT. Cognate CD4(+) T cell licensing of dendritic cells in CD8(+) T cell immunity. Nat Immunol. 2004 Nov;5(11):1143-8. doi: 10.1038/ni1129. Epub 2004 Oct 10.
- Luckheeram RV, Zhou R, Verma AD, Xia B. CD4(+)T cells: differentiation and functions. Clin Dev Immunol. 2012;2012:925135. doi: 10.1155/2012/925135. Epub 2012 Mar 14.
- Valbon SF, Condotta SA, Richer MJ. Regulation of effector and memory CD8(+) T cell function by inflammatory cytokines. Cytokine. 2016 Jun;82:16-23. doi: 10.1016/j.cyto.2015.11.013. Epub 2015 Dec 10.
- Oja AE, Saris A, Ghandour CA, Kragten NAM, Hogema BM, Nossent EJ, Heunks LMA, Cuvalay S, Slot E, Linty F, Swaneveld FH, Vrielink H, Vidarsson G, Rispens T, van der Schoot E, van Lier RAW, Ten Brinke A, Hombrink P. Divergent SARS-CoV-2-specific T- and B-cell responses in severe but not mild COVID-19 patients. Eur J Immunol. 2020 Dec;50(12):1998-2012. doi: 10.1002/eji.202048908. Epub 2020 Nov 16.
- Gallais F, Velay A, Nazon C, Wendling MJ, Partisani M, Sibilia J, Candon S, Fafi-Kremer S. Intrafamilial Exposure to SARS-CoV-2 Associated with Cellular Immune Response without Seroconversion, France. Emerg Infect Dis. 2021 Jan;27(1):113-21. doi: 10.3201/eid2701.203611. Epub 2020 Dec 1.
- Seow J, Graham C, Merrick B, Acors S, Pickering S, Steel KJA, Hemmings O, O'Byrne A, Kouphou N, Galao RP, Betancor G, Wilson HD, Signell AW, Winstone H, Kerridge C, Huettner I, Jimenez-Guardeno JM, Lista MJ, Temperton N, Snell LB, Bisnauthsing K, Moore A, Green A, Martinez L, Stokes B, Honey J, Izquierdo-Barras A, Arbane G, Patel A, Tan MKI, O'Connell L, O'Hara G, MacMahon E, Douthwaite S, Nebbia G, Batra R, Martinez-Nunez R, Shankar-Hari M, Edgeworth JD, Neil SJD, Malim MH, Doores KJ. Longitudinal observation and decline of neutralizing antibody responses in the three months following SARS-CoV-2 infection in humans. Nat Microbiol. 2020 Dec;5(12):1598-1607. doi: 10.1038/s41564-020-00813-8. Epub 2020 Oct 26.
- Ibarrondo FJ, Fulcher JA, Goodman-Meza D, Elliott J, Hofmann C, Hausner MA, Ferbas KG, Tobin NH, Aldrovandi GM, Yang OO. Rapid Decay of Anti-SARS-CoV-2 Antibodies in Persons with Mild Covid-19. N Engl J Med. 2020 Sep 10;383(11):1085-1087. doi: 10.1056/NEJMc2025179. Epub 2020 Jul 21. No abstract available. Erratum In: N Engl J Med. 2020 Jul 23;:
- Channappanavar R, Fett C, Zhao J, Meyerholz DK, Perlman S. Virus-specific memory CD8 T cells provide substantial protection from lethal severe acute respiratory syndrome coronavirus infection. J Virol. 2014 Oct;88(19):11034-44. doi: 10.1128/JVI.01505-14. Epub 2014 Jul 23.
- Zhao J, Alshukairi AN, Baharoon SA, Ahmed WA, Bokhari AA, Nehdi AM, Layqah LA, Alghamdi MG, Al Gethamy MM, Dada AM, Khalid I, Boujelal M, Al Johani SM, Vogel L, Subbarao K, Mangalam A, Wu C, Ten Eyck P, Perlman S, Zhao J. Recovery from the Middle East respiratory syndrome is associated with antibody and T-cell responses. Sci Immunol. 2017 Aug 4;2(14):eaan5393. doi: 10.1126/sciimmunol.aan5393. Epub 2017 Aug 4.
- Le Bert N, Tan AT, Kunasegaran K, Tham CYL, Hafezi M, Chia A, Chng MHY, Lin M, Tan N, Linster M, Chia WN, Chen MI, Wang LF, Ooi EE, Kalimuddin S, Tambyah PA, Low JG, Tan YJ, Bertoletti A. SARS-CoV-2-specific T cell immunity in cases of COVID-19 and SARS, and uninfected controls. Nature. 2020 Aug;584(7821):457-462. doi: 10.1038/s41586-020-2550-z. Epub 2020 Jul 15.
- Yauch LE, Zellweger RM, Kotturi MF, Qutubuddin A, Sidney J, Peters B, Prestwood TR, Sette A, Shresta S. A protective role for dengue virus-specific CD8+ T cells. J Immunol. 2009 Apr 15;182(8):4865-73. doi: 10.4049/jimmunol.0801974.
- Prestwood TR, Morar MM, Zellweger RM, Miller R, May MM, Yauch LE, Lada SM, Shresta S. Gamma interferon (IFN-gamma) receptor restricts systemic dengue virus replication and prevents paralysis in IFN-alpha/beta receptor-deficient mice. J Virol. 2012 Dec;86(23):12561-70. doi: 10.1128/JVI.06743-11. Epub 2012 Sep 12.
- Bassi MR, Kongsgaard M, Steffensen MA, Fenger C, Rasmussen M, Skjodt K, Finsen B, Stryhn A, Buus S, Christensen JP, Thomsen AR. CD8+ T cells complement antibodies in protecting against yellow fever virus. J Immunol. 2015 Feb 1;194(3):1141-53. doi: 10.4049/jimmunol.1402605. Epub 2014 Dec 24.
- Shrestha B, Pinto AK, Green S, Bosch I, Diamond MS. CD8+ T cells use TRAIL to restrict West Nile virus pathogenesis by controlling infection in neurons. J Virol. 2012 Sep;86(17):8937-48. doi: 10.1128/JVI.00673-12. Epub 2012 Jun 27.
- Shrestha B, Diamond MS. Fas ligand interactions contribute to CD8+ T-cell-mediated control of West Nile virus infection in the central nervous system. J Virol. 2007 Nov;81(21):11749-57. doi: 10.1128/JVI.01136-07. Epub 2007 Sep 5.
- Jain N, Oswal N, Chawla AS, Agrawal T, Biswas M, Vrati S, Rath S, George A, Bal V, Medigeshi GR. CD8 T cells protect adult naive mice from JEV-induced morbidity via lytic function. PLoS Negl Trop Dis. 2017 Feb 2;11(2):e0005329. doi: 10.1371/journal.pntd.0005329. eCollection 2017 Feb.
- Shrestha B, Ng T, Chu HJ, Noll M, Diamond MS. The relative contribution of antibody and CD8+ T cells to vaccine immunity against West Nile encephalitis virus. Vaccine. 2008 Apr 7;26(16):2020-33. doi: 10.1016/j.vaccine.2008.02.009. Epub 2008 Feb 20.
- Moodie Z, Juraska M, Huang Y, Zhuang Y, Fong Y, Carpp LN, Self SG, Chambonneau L, Small R, Jackson N, Noriega F, Gilbert PB. Neutralizing Antibody Correlates Analysis of Tetravalent Dengue Vaccine Efficacy Trials in Asia and Latin America. J Infect Dis. 2018 Feb 14;217(5):742-753. doi: 10.1093/infdis/jix609.
- Arredondo-Garcia JL, Hadinegoro SR, Reynales H, Chua MN, Rivera Medina DM, Chotpitayasunondh T, Tran NH, Deseda CC, Wirawan DN, Cortes Supelano M, Frago C, Langevin E, Coronel D, Laot T, Perroud AP, Sanchez L, Bonaparte M, Limkittikul K, Chansinghakul D, Gailhardou S, Noriega F, Wartel TA, Bouckenooghe A, Zambrano B; CYD-TDV Dengue Vaccine Study Group. Four-year safety follow-up of the tetravalent dengue vaccine efficacy randomized controlled trials in Asia and Latin America. Clin Microbiol Infect. 2018 Jul;24(7):755-763. doi: 10.1016/j.cmi.2018.01.018. Epub 2018 Feb 8.
- Thomas SJ, Yoon IK. A review of Dengvaxia(R): development to deployment. Hum Vaccin Immunother. 2019;15(10):2295-2314. doi: 10.1080/21645515.2019.1658503. Epub 2019 Oct 7.
- Friberg H, Beaumier CM, Park S, Pazoles P, Endy TP, Mathew A, Currier JR, Jarman RG, Anderson KB, Hatch S, Thomas SJ, Rothman AL. Protective versus pathologic pre-exposure cytokine profiles in dengue virus infection. PLoS Negl Trop Dis. 2018 Dec 17;12(12):e0006975. doi: 10.1371/journal.pntd.0006975. eCollection 2018 Dec.
- Rothman AL. Cellular immunology of sequential dengue virus infection and its role in disease pathogenesis. Curr Top Microbiol Immunol. 2010;338:83-98. doi: 10.1007/978-3-642-02215-9_7.
- Ng KH, Zhang SL, Tan HC, Kwek SS, Sessions OM, Chan CY, Liu ID, Lee CK, Tambyah PA, Ooi EE, Yap HK. Persistent Dengue Infection in an Immunosuppressed Patient Reveals the Roles of Humoral and Cellular Immune Responses in Virus Clearance. Cell Host Microbe. 2019 Nov 13;26(5):601-605.e3. doi: 10.1016/j.chom.2019.10.005. Epub 2019 Oct 29.
- Ong EZ, Gan ES, de Alwis R, Wijaya L, Ong XM, Zhang M, Wong AW, Cheung YB, Zellweger RM, Ooi EE, Low JG. Genomic signature of early T-cell response is associated with lower antibody titer threshold for sterilizing immunity. Antiviral Res. 2019 Jun;166:35-41. doi: 10.1016/j.antiviral.2019.03.013. Epub 2019 Mar 30.
- Barrett ADT. The reemergence of yellow fever. Science. 2018 Aug 31;361(6405):847-848. doi: 10.1126/science.aau8225. Epub 2018 Aug 23. No abstract available.
- Akondy RS, Monson ND, Miller JD, Edupuganti S, Teuwen D, Wu H, Quyyumi F, Garg S, Altman JD, Del Rio C, Keyserling HL, Ploss A, Rice CM, Orenstein WA, Mulligan MJ, Ahmed R. The yellow fever virus vaccine induces a broad and polyfunctional human memory CD8+ T cell response. J Immunol. 2009 Dec 15;183(12):7919-30. doi: 10.4049/jimmunol.0803903.
- Gaucher D, Therrien R, Kettaf N, Angermann BR, Boucher G, Filali-Mouhim A, Moser JM, Mehta RS, Drake DR 3rd, Castro E, Akondy R, Rinfret A, Yassine-Diab B, Said EA, Chouikh Y, Cameron MJ, Clum R, Kelvin D, Somogyi R, Greller LD, Balderas RS, Wilkinson P, Pantaleo G, Tartaglia J, Haddad EK, Sekaly RP. Yellow fever vaccine induces integrated multilineage and polyfunctional immune responses. J Exp Med. 2008 Dec 22;205(13):3119-31. doi: 10.1084/jem.20082292. Epub 2008 Dec 1.
- Querec TD, Akondy RS, Lee EK, Cao W, Nakaya HI, Teuwen D, Pirani A, Gernert K, Deng J, Marzolf B, Kennedy K, Wu H, Bennouna S, Oluoch H, Miller J, Vencio RZ, Mulligan M, Aderem A, Ahmed R, Pulendran B. Systems biology approach predicts immunogenicity of the yellow fever vaccine in humans. Nat Immunol. 2009 Jan;10(1):116-125. doi: 10.1038/ni.1688. Epub 2008 Nov 23.
- Pulendran B. Learning immunology from the yellow fever vaccine: innate immunity to systems vaccinology. Nat Rev Immunol. 2009 Oct;9(10):741-7. doi: 10.1038/nri2629. Epub 2009 Sep 18.
- Li X, Ma SJ, Liu X, Jiang LN, Zhou JH, Xiong YQ, Ding H, Chen Q. Immunogenicity and safety of currently available Japanese encephalitis vaccines: a systematic review. Hum Vaccin Immunother. 2014;10(12):3579-93. doi: 10.4161/21645515.2014.980197.
- Monath TP, Seligman SJ, Robertson JS, Guy B, Hayes EB, Condit RC, Excler JL, Mac LM, Carbery B, Chen RT; Brighton Collaboration Viral Vector Vaccines Safety Working Group (V3SWG). Live virus vaccines based on a yellow fever vaccine backbone: standardized template with key considerations for a risk/benefit assessment. Vaccine. 2015 Jan 1;33(1):62-72. doi: 10.1016/j.vaccine.2014.10.004. Epub 2014 Oct 27.
- Mishra N, Boudewijns R, Schmid MA, Marques RE, Sharma S, Neyts J, Dallmeier K. A Chimeric Japanese Encephalitis Vaccine Protects against Lethal Yellow Fever Virus Infection without Inducing Neutralizing Antibodies. mBio. 2020 Apr 7;11(2):e02494-19. doi: 10.1128/mBio.02494-19.
- Nasveld PE, Marjason J, Bennett S, Aaskov J, Elliott S, McCarthy K, Kanesa-Thasan N, Feroldi E, Reid M. Concomitant or sequential administration of live attenuated Japanese encephalitis chimeric virus vaccine and yellow fever 17D vaccine: randomized double-blind phase II evaluation of safety and immunogenicity. Hum Vaccin. 2010 Nov;6(11):906-14. doi: 10.4161/hv.6.11.12854. Epub 2010 Nov 1.
- Singh R, Rothman AL, Potts J, Guirakhoo F, Ennis FA, Green S. Sequential immunization with heterologous chimeric flaviviruses induces broad-spectrum cross-reactive CD8+ T cell responses. J Infect Dis. 2010 Jul 15;202(2):223-33. doi: 10.1086/653486.
- Low JG, Ng JHJ, Ong EZ, Kalimuddin S, Wijaya L, Chan YFZ, Ng DHL, Tan HC, Baglody A, Chionh YH, Lee DCP, Budigi Y, Sasisekharan R, Ooi EE. Phase 1 Trial of a Therapeutic Anti-Yellow Fever Virus Human Antibody. N Engl J Med. 2020 Jul 30;383(5):452-459. doi: 10.1056/NEJMoa2000226.
- Monath TP, Guirakhoo F, Nichols R, Yoksan S, Schrader R, Murphy C, Blum P, Woodward S, McCarthy K, Mathis D, Johnson C, Bedford P. Chimeric live, attenuated vaccine against Japanese encephalitis (ChimeriVax-JE): phase 2 clinical trials for safety and immunogenicity, effect of vaccine dose and schedule, and memory response to challenge with inactivated Japanese encephalitis antigen. J Infect Dis. 2003 Oct 15;188(8):1213-30. doi: 10.1086/378356. Epub 2003 Oct 3.
- Sekine T, Perez-Potti A, Rivera-Ballesteros O, Stralin K, Gorin JB, Olsson A, Llewellyn-Lacey S, Kamal H, Bogdanovic G, Muschiol S, Wullimann DJ, Kammann T, Emgard J, Parrot T, Folkesson E; Karolinska COVID-19 Study Group; Rooyackers O, Eriksson LI, Henter JI, Sonnerborg A, Allander T, Albert J, Nielsen M, Klingstrom J, Gredmark-Russ S, Bjorkstrom NK, Sandberg JK, Price DA, Ljunggren HG, Aleman S, Buggert M. Robust T Cell Immunity in Convalescent Individuals with Asymptomatic or Mild COVID-19. Cell. 2020 Oct 1;183(1):158-168.e14. doi: 10.1016/j.cell.2020.08.017. Epub 2020 Aug 14.
- Timko C, Lewis M, Lor MC, Aldaco-Revilla L, Blonigen D, Ilgen M. Hazardous Drinking Interventions Delivered During Medical-Surgical Care: Patient and Provider Views. J Clin Psychol Med Settings. 2023 Mar 23:1-12. doi: 10.1007/s10880-023-09954-4. Online ahead of print.
Hjelpsomme linker
Studierekorddatoer
Studer hoveddatoer
Studiestart (Faktiske)
Primær fullføring (Forventet)
Studiet fullført (Forventet)
Datoer for studieregistrering
Først innsendt
Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene
Først lagt ut (Faktiske)
Oppdateringer av studieposter
Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)
Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene
Sist bekreftet
Mer informasjon
Begreper knyttet til denne studien
Nøkkelord
Ytterligere relevante MeSH-vilkår
- Patologiske prosesser
- Hjernesykdommer
- Sykdommer i sentralnervesystemet
- Sykdommer i nervesystemet
- RNA-virusinfeksjoner
- Sykdomsattributter
- Encefalitt, Arbovirus
- Encefalitt, viral
- Virale sykdommer i sentralnervesystemet
- Infeksjoner i sentralnervesystemet
- Infeksiøs encefalitt
- Arbovirus infeksjoner
- Vektorbårne sykdommer
- Flavivirus infeksjoner
- Flaviviridae-infeksjoner
- Hemoragisk feber, viral
- Encefalitt, japansk
- Encefalitt
- Infeksjoner
- Smittsomme sykdommer
- Virussykdommer
- Gul feber
- Fysiologiske effekter av legemidler
- Immunologiske faktorer
- Vaksiner
Andre studie-ID-numre
- JEYF-Tcell-001
Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter
Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt
Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt
Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .