- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT05568953
Medycyna eksperymentalna rozszyfrowuje minimalny korelat odporności komórkowej
Stawiamy hipotezę, że wysoka liczba limfocytów T CD4+ i CD8+ zmniejszy wiremię po prowokacji strukturalnie heterologicznym wirusem i odpowiednio spowoduje zmniejszoną wielkość odpowiedzi gospodarza na infekcję prowokacyjną.
Główny cel: Porównanie, po prowokacji strukturalnie heterologiczną szczepionką, różnic w poziomach wiremii między zdrowymi dorosłymi, którzy otrzymali pierwotne szczepienie szczepionką YF17D, chimeryczną szczepionką JE-YF17D lub inaktywowaną szczepionką JE.
58 pacjentów zostanie losowo przydzielonych do 1 z 2 ramion (Ramię B1 i Ramię B2) w stosunku 1:1, metodą podwójnie ślepej próby. Pacjenci w ramieniu B1 otrzymają szczepionkę JE-YF17D (Imojev, Sanofi Pasteur) w dniu 0, a następnie szczepionkę YF17D (Stamaril, Sanofi Pasteur) w dniu 28. Pacjenci w grupie B2 otrzymają Stamaril w dniu 0, a następnie Imojev w dniu 28. Ramię B3 zostanie przeprowadzone jako osobny, jednoramienny projekt otwartej etykiety u 14 osób. Pacjenci w ramieniu B3 otrzymają inaktywowaną szczepionkę JE (Ixiaro, Valneva) w dniu 0, a następnie Stamaril w dniu 28.
Uzasadnienie dla tych trzech ramion badania jest następujące: Ramię B1 wykaże wpływ niskich poziomów wiremii i wynikających z nich niskich poziomów swoistych dla wirusa limfocytów T CD4+ i CD8+ na infekcję YF17D. W przeciwieństwie do tego, szczepienie YF17D w ramieniu B2 spowodowałoby wysoki poziom wiremii, a z kolei wysoki poziom limfocytów T specyficznych dla wirusa, prawdopodobnie łagodząc w ten sposób infekcję JE-YF17D. Ramię B3 będzie służyło jako ramię kontrolne, ponieważ szczepienie inaktywowaną szczepionką JE nie wywołałoby żadnej odpowiedzi komórek T specyficznej dla YF17D. Warto zauważyć, że pierwsze szczepienie w ramionach B1 i B2 zapewniłoby również odpowiedź wiremii przy braku komórek T swoistych dla wirusa, co posłużyłoby jako punkt odniesienia do interpretacji wyniku drugiego szczepienia.
Przegląd badań
Status
Interwencja / Leczenie
Szczegółowy opis
Kryteria rekrutacji i proces rekrutacji: Pacjenci będą rekrutowani z bazy danych zdrowych ochotników SingHealth Investigational Medicine Unit (IMU) i plakatów rekrutacyjnych. Uczestnicy otrzymają kopię informacji o uczestniku i formularz świadomej zgody do przeczytania po przybyciu. Sesja informacyjna dotycząca badania zostanie przeprowadzona przez badacza. Następnie osoby badane zostaną wprowadzone do prywatnego pokoju, w którym uzyskuje się świadomą zgodę i gdzie można swobodnie zadawać pytania dotyczące badania. Osoby badane nie będą zmuszane do podejmowania decyzji o udziale w badaniu. Będą zachęcani do rozmowy z członkami rodziny na temat udziału w badaniu; i mogli odroczyć swoją decyzję (bez żadnych uszczerbków) o udziale do czasu omówienia z członkami ich rodzin.
Wizyty i procedury przesiewowe: Pacjenci będą rekrutowani za pośrednictwem Jednostki Medycyny Śledczej SingHealth (IMU). Świadoma pisemna zgoda będzie wymagana od osób, które spełniają kryteria rejestracji. Wszystkie osoby, które wyrażą zgodę, zostaną poddane badaniu przesiewowemu, które obejmuje badanie fizykalne, pełną morfologię krwi, badanie czynnościowe wątroby, test ELISA na obecność przeciwciał przeciwko dendze (test immunoenzymatyczny) oraz test ciążowy z moczu (dla kobiet w wieku rozrodczym).
Test ciążowy z moczu zostanie wykonany podczas badania przesiewowego oraz w dniu szczepienia (dzień 0 i dzień 28) u kobiet w wieku rozrodczym. Tylko osoby z ujemnym wynikiem testu ciążowego z moczu zostaną uznane za kwalifikujące się do badania, pod warunkiem spełnienia innych kryteriów kwalifikacyjnych.
Zarówno mężczyzna (jeśli ma partnera w wieku rozrodczym), jak i kobieta (w wieku rozrodczym) muszą wyrazić zgodę na stosowanie odpowiednich i niezawodnych metod antykoncepcji (np. środki plemnikobójcze, prezerwatywy, tabletki antykoncepcyjne) lub zachować abstynencję przez 10 dni po szczepieniu.
Wizyty studyjne i procedury: 58 pacjentów zostanie losowo przydzielonych do 1 z 2 ramion (Ramię B1 i Ramię B2) w stosunku 1:1, metodą podwójnie ślepej próby. Pacjenci w ramieniu B1 otrzymają szczepionkę JE-YF17D (Imojev, Sanofi Pasteur) w dniu 0, a następnie szczepionkę YF17D (Stamaril, Sanofi Pasteur) w dniu 28. Pacjenci w grupie B2 otrzymają Stamaril w dniu 0, a następnie Imojev w dniu 28. Ramię B3 zostanie przeprowadzone jako osobny, jednoramienny projekt otwartej etykiety u 14 osób. Pacjenci w ramieniu B3 otrzymają inaktywowaną szczepionkę JE (Ixiaro, Valneva) w dniu 0, a następnie Stamaril w dniu 28. Wizyty studyjne we wszystkich grupach odbędą się w dniach 0, 4, 7, 10, 14, 28, 29, 32, 35, 38, 42, 58. Podczas każdej wizyty studyjnej przeprowadzane będzie badanie fizykalne, badanie parametrów życiowych i pobieranie krwi do celów badawczych. W dniu 0 i dniu 28 przed szczepieniem zostanie pobrane próbki krwi.
Ostatnia wizyta w ramach badania: Ostatnia wizyta w ramach badania odbędzie się w 58. dniu po szczepieniu w ramach badania.
Obserwacja i procedury po badaniu: Nie ma wymogu kontynuacji ani procedur po badaniu.
Plan monitorowania bezpieczeństwa: Badanie może zostać ocenione przez inspektorów rządowych/organy regulacyjne, którym należy zapewnić dostęp do e-CRF, dokumentów źródłowych i innych plików badawczych. Inspektorzy dokonają przeglądu CRF i porównają je z dokumentami źródłowymi, aby zweryfikować poprawność i kompletność zebranych danych oraz potwierdzić, że badanie jest prowadzone zgodnie z protokołem, Dobrymi Praktykami Klinicznymi ICH (ICH-GCP) i wszystkimi obowiązującymi przepisami.
W dowolnym momencie po szczepieniu wszyscy uczestnicy zostaną przeszkoleni w zakresie obserwacji ogólnoustrojowych zdarzeń niepożądanych. Osobom badanym zostanie również przekazany dziennik, w którym będą odnotowywać takie zdarzenia, jeśli wystąpią one w tym okresie. Jeśli wystąpią u nich objawy ogólnoustrojowe wymagające interwencji, zgłoszą się do ośrodka badawczego w celu oceny medycznej i poddania odpowiedniej terapii. Czas trwania objawów zostanie odnotowany. Każde jednoczesne stosowanie leków w tym okresie również zostanie odnotowane.
Podczas badania, zarówno podczas planowanych, jak i nieplanowanych wizyt, zostanie przeprowadzony pełny wywiad i badanie fizykalne. Pełne badanie fizykalne zostanie przeprowadzone tylko podczas wizyty przesiewowej, podczas gdy krótkie badanie fizykalne zostanie przeprowadzone podczas wszystkich kolejnych wizyt. W celu zdefiniowania terminologii i ciężkości AE zostaną wykorzystane wspólne kryteria terminologiczne dotyczące zdarzeń niepożądanych (CTCAE), rutynowo stosowane w badaniach klinicznych. Zarządzanie zdarzeniami niepożądanymi leży w gestii zespołu badawczego PI i co-Is, kierując się ciężkością i klinicznymi wskazaniami do interwencji. Wszystkie leki przepisane w leczeniu zdarzeń niepożądanych będą udokumentowane w dokumentacji klinicznej leku/leku towarzyszącego. Szczegóły dotyczące terminologii zdarzenia AE, daty i godziny rozpoczęcia i zakończenia zdarzenia, ciężkości, zastosowania CTCAE lub zastosowanego leczenia, wpływu na pracę i kontynuację badania oraz ostatecznego wyniku zdarzenia zostaną zapisane w opisie przypadku aż do rozwiązania wydarzenia.
Zapewnienie jakości danych: PI i Współpracownicy będą okresowo przeglądać badanie pod kątem monitorowania danych i bezpieczeństwa. Wewnętrzne kontrole jakości będą przeprowadzane przez dwie CRC będące członkami zespołu badawczego. Dane wprowadzone przez jeden CRC zostaną sprawdzone przez inny przy użyciu dokumentów źródłowych. Badanie może również zostać wybrane do monitorowania przez SingHealth Office of Research Integrity and Compliance (ORIC) lub ocenione przez rządowych inspektorów/organy regulacyjne, którym należy zezwolić na dostęp do e-CRF, dokumentów źródłowych i innych plików badawczych. Monitorujący/inspektorzy mogą przeglądać CRF i porównywać je z dokumentami źródłowymi, aby zweryfikować poprawność i kompletność zebranych danych oraz potwierdzić, że badanie jest prowadzone zgodnie z protokołem, ICH-Good Clinical Practices (ICH-GCP) i wszystkimi obowiązującymi przepisami.
Wprowadzanie i przechowywanie danych: Wszystkie dane uczestnika zostaną pozbawione elementów umożliwiających identyfikację podczas rekrutacji. Formularze zbierania danych badawczych w formie papierowej, takie jak CRF, dzienniki i dzienniki, będą przechowywane w pliku witryny badacza i przechowywane w SingHealth IMU pod kluczem, dostępnym tylko dla delegowanych członków zespołu badawczego.
Bezpośrednie przechwytywanie danych demograficznych i klinicznych zostanie przechwycone w dokumentach źródłowych. Identyfikatory będą przechowywane w oddzielnym pliku w innym biurze i dołożone zostaną wszelkie starania w celu ochrony prywatności uczestników. Dane do analizy będą zawierać wyłącznie dane pozbawione elementów umożliwiających identyfikację. Zastosowany zostanie elektroniczny system zbierania danych. Wszystkie dane elektroniczne będą chronione hasłem i będą dostępne tylko dla członków zespołu badawczego. Próbki, wyniki testów lub dane dotyczące patogenów będą przechowywane w laboratorium Duke-NUS EID na samodzielnym komputerze, do którego dostęp jest chroniony hasłem.
Określenie wielkości próby: Aby wykryć wielkość efektu 0,8 SD w średnim poziomie wiremii w skali log(10) między pierwszą a drugą z tą samą szczepionką – pierwsza dawka zostanie przeanalizowana w stosunku do tych, którzy otrzymali YF17D po JE-YF17D i odwrotnie - wielkość próby 25 na grupę zapewni 80% mocy przy 5% dwustronnym poziomie błędu typu 1. Aby uwzględnić 10% wczesnych rezygnacji, docelowa jest całkowita wielkość próby 28 na grupę dla Grupy B1 i B2. Dla ramienia B3, które jest grupą kontrolną, zostanie użyta próbka o wielkości 14.
Plan statystyczny i analityczny: Dystrybucyjne wykresy diagnostyczne zostaną wykorzystane do zbadania kształtu rozkładów liczby limfocytów T bezpośrednio przed szczepieniem prowokacyjnym i następczą wiremią poszczepienną. Procedury parametryczne (test t) lub nieparametryczne (U Manna-Whitneya) zostaną wykorzystane do oceny różnic w liczbie limfocytów T i różnych mierzonych zmiennych, takich jak wiremia, miana przeciwciał i poziomy cytokin. Stosowane będą odpowiednio współczynniki korelacji Pearsona lub Spearmana do zbadania związku między poziomami limfocytów T a tymi zmiennymi.
Częstość zgłaszanych objawów i rodzaj objawów zostaną najpierw przeanalizowane przez określenie mediany i przedziałów międzykwartylowych. Następnie przeanalizujemy, w jaki sposób pierwsze szczepienie wpływa na objawowy wynik szczepienia prowokacyjnego, używając tabel 2x2 i analizy chi-kwadrat lub dokładnego testu Fishera, w zależności od tego, który jest odpowiedni. Procedury parametryczne (test t) lub nieparametryczne (U Manna-Whitneya) zostaną zastosowane do oceny różnic w liczbie limfocytów T swoistych dla wirusa przed prowokacją wśród osób z objawami i bez.
Testy, które zostaną wykonane na próbkach krwi: DENV IgG ELISA, FBC, panel wątrobowy, wiremia (NS5 PCR), cytokiny, anty-NS1 Ab, badania limfocytów T (AIM, ELLISPOT, ELLA), sekwencjonowanie BCR, PRNT i gen wyrażenie.
Typ studiów
Zapisy (Oczekiwany)
Faza
- Faza 2
Kontakty i lokalizacje
Kontakt w sprawie studiów
- Nazwa: Lavanya Lakshmi Jeeva
- Numer telefonu: 63237532
- E-mail: lavanya.lakshmi.jeeva@singhealth.com.sg
Kopia zapasowa kontaktu do badania
- Nazwa: Jin Ying Ng
- Numer telefonu: 63237572
- E-mail: ng.jin.ying@singhealth.com.sg
Lokalizacje studiów
-
-
-
Singapore, Singapur
- Rekrutacyjny
- SingHealth Investigational Medicine Unit
-
Kontakt:
- Shirin Kalimuddin
- Numer telefonu: 65-6323 7532
- E-mail: imu@singhealth.com.sg
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Zdrowe osoby dorosłe w wieku 21-45 lat w momencie badania przesiewowego
- Gotowość do przestrzegania procedur badania i przestrzegania harmonogramu wizyt studyjnych.
- Zadowalająca wyjściowa ocena medyczna oceniana na podstawie badania fizykalnego i stabilny stan zdrowia. Wartości laboratoryjne muszą mieścić się w normalnym zakresie ocenianego miejsca lub wykazywać nieprawidłowości, które w ocenie badacza są uważane za nieistotne klinicznie. Stabilny stan zdrowia definiuje się jako brak zdarzenia zdrowotnego spełniającego definicję poważnego zdarzenia niepożądanego.
- Dostępna żyła do pobierania krwi.
- Możliwość wyrażenia świadomej zgody.
- Kobiety, które nie mogą zajść w ciążę z powodu sterylizacji chirurgicznej (histerektomia lub obustronne wycięcie jajników lub podwiązanie jajowodów) lub menopauzy. Osoby po menopauzie muszą mieć co najmniej 12 miesięcy naturalnego (spontanicznego) braku miesiączki
- Kobiety w wieku rozrodczym z ujemnym wynikiem testu ciążowego z moczu w dniu badania przesiewowego i szczepienia.
- Zarówno mężczyzna (jeśli ma partnera w wieku rozrodczym), jak i kobieta (w wieku rozrodczym) muszą wyrazić zgodę na stosowanie odpowiednich i niezawodnych metod antykoncepcji (np. środki plemnikobójcze, prezerwatywy, tabletki antykoncepcyjne) lub zachować abstynencję przez 10 dni po szczepieniu.
Kryteria wyłączenia:
- Historia występowania zaburzeń sercowo-naczyniowych, oddechowych, wątrobowych, nerek, żołądkowo-jelitowych, neuropsychiatrycznych, hematologicznych, endokrynologicznych lub immunosupresyjnych, które byłyby czynnikiem ryzyka podczas podawania badanego produktu (IP)
- Wcześniejsze otrzymanie szczepionek Imojev, Stamaril lub Ixiaro lub innych szczepionek przeciw żółtej gorączce lub japońskiemu zapaleniu mózgu
- Wcześniejsza historia zakażenia wirusem żółtej febry lub japońskiego zapalenia mózgu
- Znana alergia na szczepionki Imojev, Stamaril lub Ixiaro lub ich składniki
- Historia ciężkich alergii pokarmowych/lekowych/szczepionkowych np. obrzęk naczynioruchowy, anafilaksja
- Znana alergia na jaja lub produkty jajeczne
- Historia choroby grasicy
- Zdiagnozowany nowotwór lub w trakcie leczenia nowotworu (z wyjątkiem zlokalizowanego raka podstawnokomórkowego) w ciągu 3 lat przed badaniem przesiewowym
- Dowody na klinicznie istotną niedokrwistość (Hb
- Dawstwo krwi przekraczające >450 ml w ciągu ostatnich 3 miesięcy
- Obecność ostrej infekcji w ciągu ostatnich 7 dni lub obecność temperatury ≥ 38,0°C (ocena temperatury w jamie ustnej lub bębenku) lub ostre objawy o nasileniu większym niż „łagodne” w planowanym dniu podania pierwszej dawki
- Kobieta w ciąży lub karmiąca piersią
- Dowody na nadużywanie substancji lub wcześniejsze nadużywanie substancji, w tym alkoholu
- Udział w badaniu obejmującym podawanie badanego związku (w tym szczepionek eksperymentalnych) w ciągu ostatnich trzech miesięcy lub planowany udział w czasie trwania tego badania.
- Przyjmowanie leków przeciwzapalnych (takich jak NLPZ lub sterydy ogólnoustrojowe) w ciągu ostatnich 7 dni.
- Otrzymanie jakiejkolwiek licencjonowanej szczepionki w ciągu ostatnich 30 dni przed podaniem pierwszej dawki szczepionki badanej.
- Dodatnia surowica Dengue IgG w teście ELISA
- Każdy stan, który w opinii badacza skomplikowałby lub zagroziłby badaniu lub samopoczuciu uczestnika.
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
- Główny cel: Podstawowa nauka
- Przydział: Randomizowane
- Model interwencyjny: Przydział równoległy
- Maskowanie: Potroić
Broń i interwencje
Grupa uczestników / Arm |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Eksperymentalny: Ramię 1 (szczepionka JE-YF17D, a następnie szczepionka YF17D)
28 osób otrzyma jedną dawkę szczepionki JE-YF17D (Imojev, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (4,0 - 5,8 log jednostek tworzących płytkę [PFU])) w dniu 0, a następnie jedną dawkę szczepionki YF17D (Stamaril, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (3 - 4 log PFU)) w dniu 28.
|
Stamaril jest licencjonowany przez Health Sciences Authority (HSA) w Singapurze.
Szczepionki są produkowane przez Sanofi Pasteur i pozyskiwane od lokalnego dystrybutora Sanofi Pasteur.
Inne nazwy:
Imojev jest licencjonowany przez Health Sciences Authority (HSA) w Singapurze.
Szczepionki są produkowane przez Sanofi Pasteur i pozyskiwane od lokalnego dystrybutora Sanofi Pasteur.
Inne nazwy:
|
|
Eksperymentalny: Ramię 2 (szczepionka YF17D, a następnie szczepionka JE-YF17D)
28 osób otrzyma jedną dawkę szczepionki YF17D (Stamaril, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (3-4 log PFU)) w dniu 0, a następnie jedną dawkę szczepionki JE-YF17D (Imojev, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (4,0- 5,8 log jednostek tworzących płytkę nazębną [PFU]) w dniu 28.
|
Stamaril jest licencjonowany przez Health Sciences Authority (HSA) w Singapurze.
Szczepionki są produkowane przez Sanofi Pasteur i pozyskiwane od lokalnego dystrybutora Sanofi Pasteur.
Inne nazwy:
Imojev jest licencjonowany przez Health Sciences Authority (HSA) w Singapurze.
Szczepionki są produkowane przez Sanofi Pasteur i pozyskiwane od lokalnego dystrybutora Sanofi Pasteur.
Inne nazwy:
|
|
Eksperymentalny: Ramię 3 (szczepionka inaktywowana JE, a następnie szczepionka YF17D)
14 osób otrzyma jedną dawkę inaktywowanej szczepionki JE (Ixiaro, Valneva, 0,5 ml) w dniu 0, a następnie jedną dawkę szczepionki YF17D (Stamaril, Sanofi Pasteur, 0,5 ml (3-4 log PFU)) w dniu 28.
|
Stamaril jest licencjonowany przez Health Sciences Authority (HSA) w Singapurze.
Szczepionki są produkowane przez Sanofi Pasteur i pozyskiwane od lokalnego dystrybutora Sanofi Pasteur.
Inne nazwy:
Ixiaro jest licencjonowany przez Health Sciences Authority (HSA) w Singapurze.
Szczepionki Ixiaro są produkowane przez Valneva i pozyskiwane od lokalnego dystrybutora, firmy Aenon Pharmaceuticals SEA Pte Ltd.
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Poziomy wiremii po drugim szczepieniu
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 58
|
Poziom wiremii (kopie genomu/ml) po drugim szczepieniu JE-YF17D lub YF17D
|
Dzień 0 do dnia 58
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Odpowiedzi limfocytów T po szczepieniu
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 58
|
Wielkość odpowiedzi komórek T specyficznych dla antygenu po szczepieniu.
|
Dzień 0 do dnia 58
|
|
Poziom wiremii po pierwszym szczepieniu
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 58
|
Poziom wiremii po pierwszym szczepieniu JE-YF17D lub YF17D
|
Dzień 0 do dnia 58
|
|
Czas trwania wiremii po drugim szczepieniu
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 58
|
Czas trwania (w dniach) wykrywalnej wiremii po drugim szczepieniu JEYF17D lub YF17D.
|
Dzień 0 do dnia 58
|
|
Miana przeciwciał
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 58
|
Miana przeciwciał neutralizujących mierzone za pomocą testu neutralizacji redukcji łysinek (PRNT50 i PRNT90), tj. miana surowicy wymaganego do zmniejszenia łysinek wirusowych odpowiednio o 50% lub 90%, po drugim szczepieniu szczepionką YF17D, JEYF17D lub inaktywowaną szczepionką JE-YF17D.
|
Dzień 0 do dnia 58
|
|
Wskaźniki zdarzeń niepożądanych
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 58
|
Wskaźniki zdarzeń niepożądanych po szczepieniu JE-YF17D lub YF17D
|
Dzień 0 do dnia 58
|
Inne miary wyników
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Wrodzona ekspresja genów odpornościowych
Ramy czasowe: Dzień 0 do dnia 58
|
Poziomy ekspresji genów odporności wrodzonej po szczepieniu szczepionką JE-YF17D, YF17D lub inaktywowaną szczepionką JE.
|
Dzień 0 do dnia 58
|
|
Poziomy cytokin
Ramy czasowe: Dzień od 0 do 58
|
Poziomy cytokin po szczepieniu szczepionką JE-YF17D, YF17D lub inaktywowaną szczepionką JE
|
Dzień od 0 do 58
|
Współpracownicy i badacze
Sponsor
Współpracownicy
Śledczy
- Główny śledczy: Shirin Kalimuddin, MRCP (UK), Singapore General Hospital
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Long QX, Tang XJ, Shi QL, Li Q, Deng HJ, Yuan J, Hu JL, Xu W, Zhang Y, Lv FJ, Su K, Zhang F, Gong J, Wu B, Liu XM, Li JJ, Qiu JF, Chen J, Huang AL. Clinical and immunological assessment of asymptomatic SARS-CoV-2 infections. Nat Med. 2020 Aug;26(8):1200-1204. doi: 10.1038/s41591-020-0965-6. Epub 2020 Jun 18.
- Chan KR, Wang X, Saron WAA, Gan ES, Tan HC, Mok DZL, Zhang SL, Lee YH, Liang C, Wijaya L, Ghosh S, Cheung YB, Tannenbaum SR, Abraham SN, St John AL, Low JGH, Ooi EE. Cross-reactive antibodies enhance live attenuated virus infection for increased immunogenicity. Nat Microbiol. 2016 Sep 19;1(12):16164. doi: 10.1038/nmicrobiol.2016.164.
- Braciale TJ, Hahn YS. Immunity to viruses. Immunol Rev. 2013 Sep;255(1):5-12. doi: 10.1111/imr.12109.
- Smith CM, Wilson NS, Waithman J, Villadangos JA, Carbone FR, Heath WR, Belz GT. Cognate CD4(+) T cell licensing of dendritic cells in CD8(+) T cell immunity. Nat Immunol. 2004 Nov;5(11):1143-8. doi: 10.1038/ni1129. Epub 2004 Oct 10.
- Luckheeram RV, Zhou R, Verma AD, Xia B. CD4(+)T cells: differentiation and functions. Clin Dev Immunol. 2012;2012:925135. doi: 10.1155/2012/925135. Epub 2012 Mar 14.
- Valbon SF, Condotta SA, Richer MJ. Regulation of effector and memory CD8(+) T cell function by inflammatory cytokines. Cytokine. 2016 Jun;82:16-23. doi: 10.1016/j.cyto.2015.11.013. Epub 2015 Dec 10.
- Oja AE, Saris A, Ghandour CA, Kragten NAM, Hogema BM, Nossent EJ, Heunks LMA, Cuvalay S, Slot E, Linty F, Swaneveld FH, Vrielink H, Vidarsson G, Rispens T, van der Schoot E, van Lier RAW, Ten Brinke A, Hombrink P. Divergent SARS-CoV-2-specific T- and B-cell responses in severe but not mild COVID-19 patients. Eur J Immunol. 2020 Dec;50(12):1998-2012. doi: 10.1002/eji.202048908. Epub 2020 Nov 16.
- Gallais F, Velay A, Nazon C, Wendling MJ, Partisani M, Sibilia J, Candon S, Fafi-Kremer S. Intrafamilial Exposure to SARS-CoV-2 Associated with Cellular Immune Response without Seroconversion, France. Emerg Infect Dis. 2021 Jan;27(1):113-21. doi: 10.3201/eid2701.203611. Epub 2020 Dec 1.
- Seow J, Graham C, Merrick B, Acors S, Pickering S, Steel KJA, Hemmings O, O'Byrne A, Kouphou N, Galao RP, Betancor G, Wilson HD, Signell AW, Winstone H, Kerridge C, Huettner I, Jimenez-Guardeno JM, Lista MJ, Temperton N, Snell LB, Bisnauthsing K, Moore A, Green A, Martinez L, Stokes B, Honey J, Izquierdo-Barras A, Arbane G, Patel A, Tan MKI, O'Connell L, O'Hara G, MacMahon E, Douthwaite S, Nebbia G, Batra R, Martinez-Nunez R, Shankar-Hari M, Edgeworth JD, Neil SJD, Malim MH, Doores KJ. Longitudinal observation and decline of neutralizing antibody responses in the three months following SARS-CoV-2 infection in humans. Nat Microbiol. 2020 Dec;5(12):1598-1607. doi: 10.1038/s41564-020-00813-8. Epub 2020 Oct 26.
- Ibarrondo FJ, Fulcher JA, Goodman-Meza D, Elliott J, Hofmann C, Hausner MA, Ferbas KG, Tobin NH, Aldrovandi GM, Yang OO. Rapid Decay of Anti-SARS-CoV-2 Antibodies in Persons with Mild Covid-19. N Engl J Med. 2020 Sep 10;383(11):1085-1087. doi: 10.1056/NEJMc2025179. Epub 2020 Jul 21. No abstract available. Erratum In: N Engl J Med. 2020 Jul 23;:
- Channappanavar R, Fett C, Zhao J, Meyerholz DK, Perlman S. Virus-specific memory CD8 T cells provide substantial protection from lethal severe acute respiratory syndrome coronavirus infection. J Virol. 2014 Oct;88(19):11034-44. doi: 10.1128/JVI.01505-14. Epub 2014 Jul 23.
- Zhao J, Alshukairi AN, Baharoon SA, Ahmed WA, Bokhari AA, Nehdi AM, Layqah LA, Alghamdi MG, Al Gethamy MM, Dada AM, Khalid I, Boujelal M, Al Johani SM, Vogel L, Subbarao K, Mangalam A, Wu C, Ten Eyck P, Perlman S, Zhao J. Recovery from the Middle East respiratory syndrome is associated with antibody and T-cell responses. Sci Immunol. 2017 Aug 4;2(14):eaan5393. doi: 10.1126/sciimmunol.aan5393. Epub 2017 Aug 4.
- Le Bert N, Tan AT, Kunasegaran K, Tham CYL, Hafezi M, Chia A, Chng MHY, Lin M, Tan N, Linster M, Chia WN, Chen MI, Wang LF, Ooi EE, Kalimuddin S, Tambyah PA, Low JG, Tan YJ, Bertoletti A. SARS-CoV-2-specific T cell immunity in cases of COVID-19 and SARS, and uninfected controls. Nature. 2020 Aug;584(7821):457-462. doi: 10.1038/s41586-020-2550-z. Epub 2020 Jul 15.
- Yauch LE, Zellweger RM, Kotturi MF, Qutubuddin A, Sidney J, Peters B, Prestwood TR, Sette A, Shresta S. A protective role for dengue virus-specific CD8+ T cells. J Immunol. 2009 Apr 15;182(8):4865-73. doi: 10.4049/jimmunol.0801974.
- Prestwood TR, Morar MM, Zellweger RM, Miller R, May MM, Yauch LE, Lada SM, Shresta S. Gamma interferon (IFN-gamma) receptor restricts systemic dengue virus replication and prevents paralysis in IFN-alpha/beta receptor-deficient mice. J Virol. 2012 Dec;86(23):12561-70. doi: 10.1128/JVI.06743-11. Epub 2012 Sep 12.
- Bassi MR, Kongsgaard M, Steffensen MA, Fenger C, Rasmussen M, Skjodt K, Finsen B, Stryhn A, Buus S, Christensen JP, Thomsen AR. CD8+ T cells complement antibodies in protecting against yellow fever virus. J Immunol. 2015 Feb 1;194(3):1141-53. doi: 10.4049/jimmunol.1402605. Epub 2014 Dec 24.
- Shrestha B, Pinto AK, Green S, Bosch I, Diamond MS. CD8+ T cells use TRAIL to restrict West Nile virus pathogenesis by controlling infection in neurons. J Virol. 2012 Sep;86(17):8937-48. doi: 10.1128/JVI.00673-12. Epub 2012 Jun 27.
- Shrestha B, Diamond MS. Fas ligand interactions contribute to CD8+ T-cell-mediated control of West Nile virus infection in the central nervous system. J Virol. 2007 Nov;81(21):11749-57. doi: 10.1128/JVI.01136-07. Epub 2007 Sep 5.
- Jain N, Oswal N, Chawla AS, Agrawal T, Biswas M, Vrati S, Rath S, George A, Bal V, Medigeshi GR. CD8 T cells protect adult naive mice from JEV-induced morbidity via lytic function. PLoS Negl Trop Dis. 2017 Feb 2;11(2):e0005329. doi: 10.1371/journal.pntd.0005329. eCollection 2017 Feb.
- Shrestha B, Ng T, Chu HJ, Noll M, Diamond MS. The relative contribution of antibody and CD8+ T cells to vaccine immunity against West Nile encephalitis virus. Vaccine. 2008 Apr 7;26(16):2020-33. doi: 10.1016/j.vaccine.2008.02.009. Epub 2008 Feb 20.
- Moodie Z, Juraska M, Huang Y, Zhuang Y, Fong Y, Carpp LN, Self SG, Chambonneau L, Small R, Jackson N, Noriega F, Gilbert PB. Neutralizing Antibody Correlates Analysis of Tetravalent Dengue Vaccine Efficacy Trials in Asia and Latin America. J Infect Dis. 2018 Feb 14;217(5):742-753. doi: 10.1093/infdis/jix609.
- Arredondo-Garcia JL, Hadinegoro SR, Reynales H, Chua MN, Rivera Medina DM, Chotpitayasunondh T, Tran NH, Deseda CC, Wirawan DN, Cortes Supelano M, Frago C, Langevin E, Coronel D, Laot T, Perroud AP, Sanchez L, Bonaparte M, Limkittikul K, Chansinghakul D, Gailhardou S, Noriega F, Wartel TA, Bouckenooghe A, Zambrano B; CYD-TDV Dengue Vaccine Study Group. Four-year safety follow-up of the tetravalent dengue vaccine efficacy randomized controlled trials in Asia and Latin America. Clin Microbiol Infect. 2018 Jul;24(7):755-763. doi: 10.1016/j.cmi.2018.01.018. Epub 2018 Feb 8.
- Thomas SJ, Yoon IK. A review of Dengvaxia(R): development to deployment. Hum Vaccin Immunother. 2019;15(10):2295-2314. doi: 10.1080/21645515.2019.1658503. Epub 2019 Oct 7.
- Friberg H, Beaumier CM, Park S, Pazoles P, Endy TP, Mathew A, Currier JR, Jarman RG, Anderson KB, Hatch S, Thomas SJ, Rothman AL. Protective versus pathologic pre-exposure cytokine profiles in dengue virus infection. PLoS Negl Trop Dis. 2018 Dec 17;12(12):e0006975. doi: 10.1371/journal.pntd.0006975. eCollection 2018 Dec.
- Rothman AL. Cellular immunology of sequential dengue virus infection and its role in disease pathogenesis. Curr Top Microbiol Immunol. 2010;338:83-98. doi: 10.1007/978-3-642-02215-9_7.
- Ng KH, Zhang SL, Tan HC, Kwek SS, Sessions OM, Chan CY, Liu ID, Lee CK, Tambyah PA, Ooi EE, Yap HK. Persistent Dengue Infection in an Immunosuppressed Patient Reveals the Roles of Humoral and Cellular Immune Responses in Virus Clearance. Cell Host Microbe. 2019 Nov 13;26(5):601-605.e3. doi: 10.1016/j.chom.2019.10.005. Epub 2019 Oct 29.
- Ong EZ, Gan ES, de Alwis R, Wijaya L, Ong XM, Zhang M, Wong AW, Cheung YB, Zellweger RM, Ooi EE, Low JG. Genomic signature of early T-cell response is associated with lower antibody titer threshold for sterilizing immunity. Antiviral Res. 2019 Jun;166:35-41. doi: 10.1016/j.antiviral.2019.03.013. Epub 2019 Mar 30.
- Barrett ADT. The reemergence of yellow fever. Science. 2018 Aug 31;361(6405):847-848. doi: 10.1126/science.aau8225. Epub 2018 Aug 23. No abstract available.
- Akondy RS, Monson ND, Miller JD, Edupuganti S, Teuwen D, Wu H, Quyyumi F, Garg S, Altman JD, Del Rio C, Keyserling HL, Ploss A, Rice CM, Orenstein WA, Mulligan MJ, Ahmed R. The yellow fever virus vaccine induces a broad and polyfunctional human memory CD8+ T cell response. J Immunol. 2009 Dec 15;183(12):7919-30. doi: 10.4049/jimmunol.0803903.
- Gaucher D, Therrien R, Kettaf N, Angermann BR, Boucher G, Filali-Mouhim A, Moser JM, Mehta RS, Drake DR 3rd, Castro E, Akondy R, Rinfret A, Yassine-Diab B, Said EA, Chouikh Y, Cameron MJ, Clum R, Kelvin D, Somogyi R, Greller LD, Balderas RS, Wilkinson P, Pantaleo G, Tartaglia J, Haddad EK, Sekaly RP. Yellow fever vaccine induces integrated multilineage and polyfunctional immune responses. J Exp Med. 2008 Dec 22;205(13):3119-31. doi: 10.1084/jem.20082292. Epub 2008 Dec 1.
- Querec TD, Akondy RS, Lee EK, Cao W, Nakaya HI, Teuwen D, Pirani A, Gernert K, Deng J, Marzolf B, Kennedy K, Wu H, Bennouna S, Oluoch H, Miller J, Vencio RZ, Mulligan M, Aderem A, Ahmed R, Pulendran B. Systems biology approach predicts immunogenicity of the yellow fever vaccine in humans. Nat Immunol. 2009 Jan;10(1):116-125. doi: 10.1038/ni.1688. Epub 2008 Nov 23.
- Pulendran B. Learning immunology from the yellow fever vaccine: innate immunity to systems vaccinology. Nat Rev Immunol. 2009 Oct;9(10):741-7. doi: 10.1038/nri2629. Epub 2009 Sep 18.
- Li X, Ma SJ, Liu X, Jiang LN, Zhou JH, Xiong YQ, Ding H, Chen Q. Immunogenicity and safety of currently available Japanese encephalitis vaccines: a systematic review. Hum Vaccin Immunother. 2014;10(12):3579-93. doi: 10.4161/21645515.2014.980197.
- Monath TP, Seligman SJ, Robertson JS, Guy B, Hayes EB, Condit RC, Excler JL, Mac LM, Carbery B, Chen RT; Brighton Collaboration Viral Vector Vaccines Safety Working Group (V3SWG). Live virus vaccines based on a yellow fever vaccine backbone: standardized template with key considerations for a risk/benefit assessment. Vaccine. 2015 Jan 1;33(1):62-72. doi: 10.1016/j.vaccine.2014.10.004. Epub 2014 Oct 27.
- Mishra N, Boudewijns R, Schmid MA, Marques RE, Sharma S, Neyts J, Dallmeier K. A Chimeric Japanese Encephalitis Vaccine Protects against Lethal Yellow Fever Virus Infection without Inducing Neutralizing Antibodies. mBio. 2020 Apr 7;11(2):e02494-19. doi: 10.1128/mBio.02494-19.
- Nasveld PE, Marjason J, Bennett S, Aaskov J, Elliott S, McCarthy K, Kanesa-Thasan N, Feroldi E, Reid M. Concomitant or sequential administration of live attenuated Japanese encephalitis chimeric virus vaccine and yellow fever 17D vaccine: randomized double-blind phase II evaluation of safety and immunogenicity. Hum Vaccin. 2010 Nov;6(11):906-14. doi: 10.4161/hv.6.11.12854. Epub 2010 Nov 1.
- Singh R, Rothman AL, Potts J, Guirakhoo F, Ennis FA, Green S. Sequential immunization with heterologous chimeric flaviviruses induces broad-spectrum cross-reactive CD8+ T cell responses. J Infect Dis. 2010 Jul 15;202(2):223-33. doi: 10.1086/653486.
- Low JG, Ng JHJ, Ong EZ, Kalimuddin S, Wijaya L, Chan YFZ, Ng DHL, Tan HC, Baglody A, Chionh YH, Lee DCP, Budigi Y, Sasisekharan R, Ooi EE. Phase 1 Trial of a Therapeutic Anti-Yellow Fever Virus Human Antibody. N Engl J Med. 2020 Jul 30;383(5):452-459. doi: 10.1056/NEJMoa2000226.
- Monath TP, Guirakhoo F, Nichols R, Yoksan S, Schrader R, Murphy C, Blum P, Woodward S, McCarthy K, Mathis D, Johnson C, Bedford P. Chimeric live, attenuated vaccine against Japanese encephalitis (ChimeriVax-JE): phase 2 clinical trials for safety and immunogenicity, effect of vaccine dose and schedule, and memory response to challenge with inactivated Japanese encephalitis antigen. J Infect Dis. 2003 Oct 15;188(8):1213-30. doi: 10.1086/378356. Epub 2003 Oct 3.
- Sekine T, Perez-Potti A, Rivera-Ballesteros O, Stralin K, Gorin JB, Olsson A, Llewellyn-Lacey S, Kamal H, Bogdanovic G, Muschiol S, Wullimann DJ, Kammann T, Emgard J, Parrot T, Folkesson E; Karolinska COVID-19 Study Group; Rooyackers O, Eriksson LI, Henter JI, Sonnerborg A, Allander T, Albert J, Nielsen M, Klingstrom J, Gredmark-Russ S, Bjorkstrom NK, Sandberg JK, Price DA, Ljunggren HG, Aleman S, Buggert M. Robust T Cell Immunity in Convalescent Individuals with Asymptomatic or Mild COVID-19. Cell. 2020 Oct 1;183(1):158-168.e14. doi: 10.1016/j.cell.2020.08.017. Epub 2020 Aug 14.
- Timko C, Lewis M, Lor MC, Aldaco-Revilla L, Blonigen D, Ilgen M. Hazardous Drinking Interventions Delivered During Medical-Surgical Care: Patient and Provider Views. J Clin Psychol Med Settings. 2023 Mar 23:1-12. doi: 10.1007/s10880-023-09954-4. Online ahead of print.
Przydatne linki
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Oczekiwany)
Ukończenie studiów (Oczekiwany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
- Procesy patologiczne
- Choroby mózgu
- Choroby ośrodkowego układu nerwowego
- Choroby Układu Nerwowego
- Zakażenia wirusem RNA
- Atrybuty choroby
- Zapalenie mózgu, arbowirus
- Zapalenie mózgu, wirusowe
- Choroby wirusowe ośrodkowego układu nerwowego
- Infekcje ośrodkowego układu nerwowego
- Zakaźne zapalenie mózgu
- Infekcje arbowirusowe
- Choroby przenoszone przez wektory
- Infekcje Flawiwirusowe
- Infekcje Flaviviridae
- Gorączki krwotoczne, wirusowe
- Zapalenie mózgu, japoński
- Zapalenie mózgu
- Infekcje
- Choroby zakaźne
- Choroby wirusowe
- Żółta gorączka
- Fizjologiczne skutki leków
- Czynniki immunologiczne
- Szczepionki
Inne numery identyfikacyjne badania
- JEYF-Tcell-001
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .