- ICH GCP
- Rejestr badań klinicznych w USA
- Badanie kliniczne NCT05202938
Struktura eMESH. 2022-23 (eMESH)
Metabolizm energetyczny septycznego serca.
Przegląd badań
Status
Szczegółowy opis
Wstrząs septyczny jest zarówno bardzo powszechny, jak i chorobowy na oddziałach intensywnej terapii. Śmiertelność wzrasta z 10-30% do 70-80% w przypadku wystąpienia dysfunkcji mięśnia sercowego wywołanej sepsą (SIMD). SIMD jest powiązany z kardiomiopatiami wywołanymi stresem i zawiera komponenty biomechanistyczne różniące się od przewlekłej niewydolności serca (CHF), tradycyjnie przypisywanej chorobie wieńcowej. Dobutamina, agonista receptora beta-adrenergicznego, jest lekiem inotropowym faktycznie zalecanym, gdy wskaźnik sercowy jest zbyt niski, często w połączeniu z mieszanką agonistów alfa-beta-adrenergicznych, takich jak norepinefryna. W tym kontekście dobutamina jest marginalnie skuteczna (1/3 osób reagujących), ma potencjalnie szkodliwy wpływ na funkcję i żywotność kardiomiocytów oraz zwiększa zapotrzebowanie na energię w sercu. Zdrowe serce działa prawie wyłącznie na metabolizm tlenowy. Podczas gdy glukoza jest niezbędnym paliwem dla mózgu i mięśni szkieletowych, kwasy tłuszczowe poprzez utlenianie lipidów są głównymi substratami dla prawidłowego spoczynkowego serca (cykl Randle'a). To utlenianie lipidów wytwarza co najmniej 70% sercowego ATP, równowaga pochodzi z glukozy, z marginalnym udziałem ciał ketonowych i mleczanu. Mitochondria to fabryka komórkowa, która wytwarza ponad 95% ATP w organizmie. Mitochondria stanowią 30-40% całkowitej objętości kardiomiocytów i zużywają tlen do wytwarzania ogromnych ilości ATP dziennie przez fosforylację oksydacyjną przez 3 połączone szlaki: glikolizę cytoplazmatyczną, cykl Krebsa i mitochondrialny łańcuch transportu elektronów wewnątrz kompleksu enzymów oddechowych. Chociaż bezpośredni ścisły związek między homeostazą metabolizmu mięśnia sercowego a jego funkcją nie jest wyraźnie ustalony w normalnych warunkach, równowaga kompensacyjna między utlenianiem mitochondrialnym kwasów tłuszczowych i glukozy jest ogólnie przyjętą koncepcją. Rzeczywiście, serce jest wszystkożerne i może modulować wychwytywanie/wykorzystanie substratów paliwowych zgodnie z wydarzeniami fizjologicznymi (ćwiczenia, szybkość). Ta zdolność przeprogramowania w kierunku innych różnych okoliczności lub stanów patologicznych nie jest gwarantowana, z potencjalną utratą elastyczności metabolicznej. SIMD występuje bardzo często we wstrząsie septycznym i często wskazuje na pogorszenie wyników leczenia ze zwiększoną śmiertelnością. Dysfunkcje skurczowe i rozkurczowe lewej komory obserwuje się w 50% przypadków ostrej sepsy w ciągu pierwszych 48 godzin od przyjęcia chorego. Eksperymentalne modele na zwierzętach mogą symulować ludzką posocznicę i SIMD poprzez wstrzykiwanie endotoksyny (model LPS) lub kału do jamy brzusznej (model nakłucia podwiązania jelita ślepego) oraz z cytokinami zapalnymi, stresem oksydacyjnym, tlenkiem azotu i neutrofilami jako potencjalnymi agresorami. Cechą charakterystyczną niewydolności skurczowej obserwowanej w SIMD jest rozłączenie komorowo-tętnicze i pobudzenie-skurcz. Obchodzenie się z Ca2+ (cząsteczką jonu niezbędną do funkcjonowania serca) jest nieprawidłowe podczas sepsy i związane z upośledzoną aktywacją/fosforylacją oraz zwiększonym rozszczepianiem proteolitycznym kluczowych regulatorów, takich jak troponina sercowa I. Wynikające z tego powszechne uszkodzenia cytohistopatologiczne to: apoptoza mięśnia sercowego z ogniskową martwicą, uszkodzenie mięśnia sercowego obrzęk, przekrwienie, mnogie nacieki zapalne i uszkodzenia struktury mitochondriów z wewnątrzmięśniowym nagromadzeniem glikogenu i lipidów. Piany mogą być efektem ubocznym metabolicznego wyłączenia serca w następstwie dysfunkcji mitochondriów. Udokumentowano zmniejszenie wychwytu/utleniania kwasów tłuszczowych w tradycyjnej CHF, nie zawsze równoważone zwiększonym zużyciem glukozy, ale czasami zwiększonym zużyciem ciał ketonowych i mleczanów oraz podwyższoną proteolizą mięśnia sercowego. Ta obserwacja niekoniecznie odnosi się do sepsy i SIMD, gdzie metabolizm energetyczny serca jest nadal tajemnicą. Ogólnoustrojowe zmiany metaboliczne w sepsie są złożone i obejmują aktywację glikogenolizy i glukoneogenezy, insulinooporność i zwiększoną lipolizę ze zwiększonym poziomem kwasów tłuszczowych we krwi. W tych warunkach iw sercu spadek utleniania kwasów tłuszczowych niekoniecznie jest kompensowany zwiększonym zużyciem glukozy. Do określenia tych wywołanych przez SIMD zaburzeń metabolizmu używano różnych określeń, z których najlepsze to „wyłączenie metaboliczno-bioenergetyczne i ogłuszenie”. W rzeczywistości posocznica wywołuje metaboliczny huragan w krwioobiegu, ważnych dla życia narządach i mitochondriach, powodując znaczny wzrost wydatku energetycznego spoczynku. Dhainaut i wsp. jako pierwsi wykazali w 1987 r. zmianę w wyborze paliw energetycznych przez tkanki mięśnia sercowego u pacjentów ze wstrząsem septycznym. Zużycie zarówno kwasów tłuszczowych, jak i glukozy zmniejszyło się odpowiednio 4 i 2 razy. Jednak to badanie było skierowane do pacjentów resuscytowanych z suboptymalnymi płynami, którzy byli we wczesnym ostrym wstrząsie hiperdynamicznym (< 6 godzin). W eksperymentalnych modelach myszy poddanych prowokacji LPS lub nakłuciu podwiązaniem jelita ślepego i odpowiedniej resuscytacji płynowej mikroperfuzja serca jest zmieniona (tj. malperfuzja), a mitochondrialny metabolizm oksydacyjny uległ zmniejszeniu wraz ze wzrostem wychwytu glukozy przez mięsień sercowy. Układ apelin to rodzina endogennych hormonów peptydowych (apelin), niezwiązanych z katecholaminami, ale o silnych właściwościach sercowo-naczyniowych. Ten funkcjonalny wpływ koreluje z konstytutywną ekspresją apelin i ich receptora APJ w sercu i naczyniach. Działanie apelin na serce charakteryzuje się zwiększoną siłą skurczu (funkcja skurczowa), bez efektu chronotropowego, ale z efektem luzytropowym i dromo-modulacją. Kolejnym wpływem apelin jest wykorzystanie przez serce metabolicznych substratów energetycznych.
Apeliny są pośrednikami wpływającymi na wykorzystanie glukozy i kwasów tłuszczowych poprzez rekrutację głównych specyficznych nośników, takich jak GLUT4 i FAT/CD36.
Badania naukowe: Które źródło energii jest uprzywilejowane przez mitochondria sercowe w ostrym wstrząsie septycznym z dysfunkcją mięśnia sercowego lub bez niej w porównaniu z nieseptyczną CHF? Czy to wstępne przesunięcie/przesunięcie wykorzystania substratu energetycznego jest związane z dysfunkcją mięśni, czy tylko reaktywną na środowisko ogólnoustrojowe? i czy jest to charakterystyczne dla sepsy, czy wspólne dla jakiegokolwiek niespecyficznego uszkodzenia mięśnia sercowego? Czy ta zmiana jest związana z określonym biofenotypem układu apelinergicznego, który bierze udział w homeostazie sercowo-naczyniowej? i/lub wyraźną zmianę biomarkerów uszkodzenia serca? Czy podczas ostrego wstrząsu septycznego ogólnoustrojowy metabolizm środowiskowy zmienia się w kierunku tendencji?
Hipotezy: Pozytronowa tomografia emisyjna mięśnia sercowego (PET) mogłaby pozwolić na wizualizację i ilościową nieinwazyjną selekcję zaopatrzenia w energię serca w stanach ostrego wstrząsu związanego lub niezwiązanego z sepsą. Można znaleźć zależności między profilami PET, źródłami ostrego wstrząsu (posocznica vs. bez sepsy), danymi czynnościowymi (kardiografia ultrasonograficzna), biomarkerami specyficznymi dla urazu serca, profilami apelinergicznym i metabolomicznym krwi.
Cele: 1) Wykazanie wartości analitycznej kinetyki kapitulacji serca dla 3 wskaźników energetycznych (palmitynian dla kwasów tłuszczowych, FDG dla glukozy i octanu dla aktywności mitochondrialnej), 2) Korelacja danych PET z (dys)funkcją mięśnia sercowego obserwowaną w kardiografii USG , 3) Ocena profilu metabolicznego krwi pacjentów pod kątem akumulacji produktów pochodzących z niewydolności utleniania substratów energetycznych, 4) Pomiar i porównanie biomarkerów uszkodzenia/przebudowy mięśnia sercowego (troponiny, NT-proBNP, galektyna-3) oraz ogólnoustrojowych endogennych biofenotyp apeliny.
Metody: 1) Prospektywne badanie oceniające 4 grupy po 8 pacjentów we wstrząsie septycznym lub ostrej niewydolności serca przy wspomaganiu hemodynamicznym: i) grupa z objawami SIMD (kardiografia USG na oddziale OIT w ciągu pierwszych 48 godzin: skurczowa frakcja wyrzutowa < 45 %), ii) grupa we wstrząsie septycznym bez cech SIMD, iii) grupa z nieseptyczną niewydolnością serca (skurczowa frakcja wyrzutowa < 45% lub niewydolność serca z obniżoną frakcją wyrzutową, iv) grupa z nieseptyczną (skurczową frakcja wyrzutowa < 50% lub niewydolność serca z obniżoną frakcją wyrzutową.
Typ studiów
Zapisy (Szacowany)
Kontakty i lokalizacje
Kontakt w sprawie studiów
- Nazwa: Olivier Lesur, MD PhD
- Numer telefonu: 14881 819-346-1110
- E-mail: olivier.lesur@usherbrooke.ca
Kopia zapasowa kontaktu do badania
- Nazwa: Frédéric Chagnon, MSc
- Numer telefonu: 15731 819-346-1110
- E-mail: frederic.chagnon@usherbrooke.ca
Lokalizacje studiów
-
-
Quebec
-
Sherbrooke, Quebec, Kanada, J1H5N4
- Rekrutacyjny
- CHUS
-
-
Kryteria uczestnictwa
Kryteria kwalifikacji
Wiek uprawniający do nauki
Akceptuje zdrowych ochotników
Metoda próbkowania
Badana populacja
Opis
Kryteria przyjęcia:
- Pacjenci hospitalizowani na oddziale intensywnej terapii i oddziale kardiologicznym szpitala Sherbrooke/CHUS.
- Akceptuje zdrowych ochotników: 4 do 6 HV dobranych pod względem wieku i płci zostanie zwerbowanych i zobrazowanych na końcu okna włączenia w celu oceny wychwytu znacznika energii serca i jako ref. sterownica.
Kryteria wyłączenia:
- Pacjenci pediatryczni
- Alergia na albuminy
- Konający pacjenci
- Pacjenci zbyt niestabilni do badania obrazowego (ocena kliniczna)
- Niedostępne znaczniki, personel, skan PET w maksymalnym opóźnieniu 72 godzin
Plan studiów
Jak projektuje się badanie?
Szczegóły projektu
Kohorty i interwencje
Grupa / Kohorta |
Interwencja / Leczenie |
|---|---|
|
Ostra niewydolność serca z zachowaną frakcją wyrzutową: HFpEF
8 pacjentów z ostrą niewydolnością serca i zachowaną frakcją wyrzutową (frakcja wyrzutowa (LVEF ≥ 50% lub zbliżona do prawidłowych wartości USG serca zarejestrowanych mniej niż 2 lata temu).
Brak śladów wstrząsu septycznego.
|
USG w celu sprawdzenia funkcji serca i skurczowej frakcji wyrzutowej.
Wstrzyknięcie żylne FDG i skan pozytonowej tomografii emisyjnej.
Inne nazwy:
Wstrzyknięcie żylne C11-Palmitate i skan pozytonowej tomografii emisyjnej.
Inne nazwy:
Wstrzyknięcie żylne C11-octanu i pozytonowa tomografia emisyjna.
Inne nazwy:
Pobranie 20 ml krwi żylnej.
Inne nazwy:
|
|
Wstrząs septyczny z SIMD: SIMD+
8 pacjentów we wstrząsie septycznym (Sepsis-3-) z SIMD: frakcja wyrzutowa (LVEF) < 45% w ciągu pierwszych 48 godzin przyjęcia na oddział intensywnej terapii.
Brak wcześniejszego USG serca lub prawidłowe wartości USG serca sprzed mniej niż 2 lat lub wlew inowazotropowy (milrinon, dobutamina, norepinefryna lub adrenalina) wymagany do uzyskania LVEF ≥ 45% lub spadku ≥ 20% w porównaniu z LVEF wartość odnotowana mniej niż 2 lata temu.
|
USG w celu sprawdzenia funkcji serca i skurczowej frakcji wyrzutowej.
Wstrzyknięcie żylne FDG i skan pozytonowej tomografii emisyjnej.
Inne nazwy:
Wstrzyknięcie żylne C11-Palmitate i skan pozytonowej tomografii emisyjnej.
Inne nazwy:
Wstrzyknięcie żylne C11-octanu i pozytonowa tomografia emisyjna.
Inne nazwy:
Pobranie 20 ml krwi żylnej.
Inne nazwy:
|
|
Wstrząs septyczny bez SIMD: SIMD-
8 pacjentów we wstrząsie septycznym (sepsis-3) bez SIMD.
Frakcja wyrzutowa (LVEF) ≥ 45% z lub bez infuzji inowazotropowej (milrinon, dobutamina, norepinefryna lub epinefryna) lub podobna do LVEF zarejestrowanej mniej niż 2 lata temu.
|
USG w celu sprawdzenia funkcji serca i skurczowej frakcji wyrzutowej.
Wstrzyknięcie żylne FDG i skan pozytonowej tomografii emisyjnej.
Inne nazwy:
Wstrzyknięcie żylne C11-Palmitate i skan pozytonowej tomografii emisyjnej.
Inne nazwy:
Wstrzyknięcie żylne C11-octanu i pozytonowa tomografia emisyjna.
Inne nazwy:
Pobranie 20 ml krwi żylnej.
Inne nazwy:
|
|
Ostra niewydolność serca ze zmniejszoną frakcją wyrzutową: HFrEF
8 pacjentów z ostro obniżoną frakcją wyrzutową (LVEF) < 50%.
z lub bez infuzji inowazotropowej (milrinon, dobutamina, norepinefryna lub epinefryna) Brak wcześniejszego USG serca lub prawidłowe wartości USG serca mniej niż 2 lata temu lub spadek ≥ 20% w porównaniu z LVEF zarejestrowanym mniej niż 2 lata temu.
Brak dowodów na sepsę lub wstrząs septyczny.
|
USG w celu sprawdzenia funkcji serca i skurczowej frakcji wyrzutowej.
Wstrzyknięcie żylne FDG i skan pozytonowej tomografii emisyjnej.
Inne nazwy:
Wstrzyknięcie żylne C11-Palmitate i skan pozytonowej tomografii emisyjnej.
Inne nazwy:
Wstrzyknięcie żylne C11-octanu i pozytonowa tomografia emisyjna.
Inne nazwy:
Pobranie 20 ml krwi żylnej.
Inne nazwy:
|
Co mierzy badanie?
Podstawowe miary wyniku
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Skan FDG PET
Ramy czasowe: 25 minut
|
Pozytonowa tomografia emisyjna z radioznacznikiem FDG.
Zgłosi wychwyt glukozy przez serce.
|
25 minut
|
|
Skan PET z palmitynianem
Ramy czasowe: 15 minut
|
Pozytonowa tomografia emisyjna z radioznacznikiem C11-palmitynianem.
Zgłosi wchłanianie kwasów tłuszczowych przez serce.
|
15 minut
|
|
Skan PET octanu
Ramy czasowe: 10 minut
|
Pozytonowa tomografia emisyjna z radioznacznikiem octanowym C11.
Zgłosi wychwyt octanu przez serce.
|
10 minut
|
|
Ilościowe badanie krwi FDG:równowaga palmitynianowa.
Ramy czasowe: 20 minut
|
Pomiar równowagi FDG:palmitynian we krwi za pomocą spektroskopii LC-MS i NMR.
|
20 minut
|
Miary wyników drugorzędnych
Miara wyniku |
Opis środka |
Ramy czasowe |
|---|---|---|
|
Pomiar biomarkerów uszkodzenia mięśnia sercowego.
Ramy czasowe: 45 minut
|
Pomiar biomarkerów uszkodzenia mięśnia sercowego we krwi metodami immunoenzymatycznymi (Troponina T, NT-pro BNP, Galektyna 3
|
45 minut
|
|
Miara apelinergiki.
Ramy czasowe: 45 minut
|
Oznaczanie apelinergiki we krwi (apelina-13, apelina-17, apelina-36 i ELABELA) metodami immunoenzymatycznymi.
|
45 minut
|
|
Profilowanie systemowej metabolomiki.
Ramy czasowe: 45 minut
|
Profilowanie metabolizmu układowego (krwi) za pomocą LC-MS i NMR.
Zgłosi metabolity we krwi, takie jak octan, acetooctan, aceton, 3-OH-maślan, cytrynian, glutaminian, mleczan i pirogronian.
|
45 minut
|
Współpracownicy i badacze
Śledczy
- Główny śledczy: Olivier Lesur, MD PhD, Centre de recherche du Centre Hospitalier Universitaire de Sherbrooke
Publikacje i pomocne linki
Publikacje ogólne
- Walley KR. Sepsis-induced myocardial dysfunction. Curr Opin Crit Care. 2018 Aug;24(4):292-299. doi: 10.1097/MCC.0000000000000507.
- Rudiger A, Singer M. Mechanisms of sepsis-induced cardiac dysfunction. Crit Care Med. 2007 Jun;35(6):1599-608. doi: 10.1097/01.CCM.0000266683.64081.02.
- Parrillo JE, Parker MM, Natanson C, Suffredini AF, Danner RL, Cunnion RE, Ognibene FP. Septic shock in humans. Advances in the understanding of pathogenesis, cardiovascular dysfunction, and therapy. Ann Intern Med. 1990 Aug 1;113(3):227-42. doi: 10.7326/0003-4819-113-3-227.
- Merx MW, Weber C. Sepsis and the heart. Circulation. 2007 Aug 14;116(7):793-802. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.106.678359.
- Taegtmeyer H, Young ME, Lopaschuk GD, Abel ED, Brunengraber H, Darley-Usmar V, Des Rosiers C, Gerszten R, Glatz JF, Griffin JL, Gropler RJ, Holzhuetter HG, Kizer JR, Lewandowski ED, Malloy CR, Neubauer S, Peterson LR, Portman MA, Recchia FA, Van Eyk JE, Wang TJ; American Heart Association Council on Basic Cardiovascular Sciences. Assessing Cardiac Metabolism: A Scientific Statement From the American Heart Association. Circ Res. 2016 May 13;118(10):1659-701. doi: 10.1161/RES.0000000000000097. Epub 2016 Mar 24. Erratum In: Circ Res. 2016 May 13;118(10):e35.
- Neely JR, Rovetto MJ, Oram JF. Myocardial utilization of carbohydrate and lipids. Prog Cardiovasc Dis. 1972 Nov-Dec;15(3):289-329. doi: 10.1016/0033-0620(72)90029-1. No abstract available.
- Krishnagopalan S, Kumar A, Parrillo JE, Kumar A. Myocardial dysfunction in the patient with sepsis. Curr Opin Crit Care. 2002 Oct;8(5):376-88. doi: 10.1097/00075198-200210000-00003.
- Antonucci E, Fiaccadori E, Donadello K, Taccone FS, Franchi F, Scolletta S. Myocardial depression in sepsis: from pathogenesis to clinical manifestations and treatment. J Crit Care. 2014 Aug;29(4):500-11. doi: 10.1016/j.jcrc.2014.03.028. Epub 2014 Apr 5.
- Lopaschuk GD. Metabolic Modulators in Heart Disease: Past, Present, and Future. Can J Cardiol. 2017 Jul;33(7):838-849. doi: 10.1016/j.cjca.2016.12.013. Epub 2016 Dec 21.
- Karwi QG, Uddin GM, Ho KL, Lopaschuk GD. Loss of Metabolic Flexibility in the Failing Heart. Front Cardiovasc Med. 2018 Jun 6;5:68. doi: 10.3389/fcvm.2018.00068. eCollection 2018.
- Pascual F, Coleman RA. Fuel availability and fate in cardiac metabolism: A tale of two substrates. Biochim Biophys Acta. 2016 Oct;1861(10):1425-33. doi: 10.1016/j.bbalip.2016.03.014. Epub 2016 Mar 16.
- Doenst T, Nguyen TD, Abel ED. Cardiac metabolism in heart failure: implications beyond ATP production. Circ Res. 2013 Aug 30;113(6):709-24. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.113.300376.
- Drosatos K, Lymperopoulos A, Kennel PJ, Pollak N, Schulze PC, Goldberg IJ. Pathophysiology of sepsis-related cardiac dysfunction: driven by inflammation, energy mismanagement, or both? Curr Heart Fail Rep. 2015 Apr;12(2):130-40. doi: 10.1007/s11897-014-0247-z.
- Carre JE, Singer M. Cellular energetic metabolism in sepsis: the need for a systems approach. Biochim Biophys Acta. 2008 Jul-Aug;1777(7-8):763-71. doi: 10.1016/j.bbabio.2008.04.024. Epub 2008 Apr 23.
- Mangmool S, Denkaew T, Parichatikanond W, Kurose H. beta-Adrenergic Receptor and Insulin Resistance in the Heart. Biomol Ther (Seoul). 2017 Jan 1;25(1):44-56. doi: 10.4062/biomolther.2016.128.
- Ehrman RR, Sullivan AN, Favot MJ, Sherwin RL, Reynolds CA, Abidov A, Levy PD. Pathophysiology, echocardiographic evaluation, biomarker findings, and prognostic implications of septic cardiomyopathy: a review of the literature. Crit Care. 2018 May 4;22(1):112. doi: 10.1186/s13054-018-2043-8.
- Bertrand C, Valet P, Castan-Laurell I. Apelin and energy metabolism. Front Physiol. 2015 Apr 10;6:115. doi: 10.3389/fphys.2015.00115. eCollection 2015.
- Reddy YN, Borlaug BA. Heart Failure With Preserved Ejection Fraction. Curr Probl Cardiol. 2016 Apr;41(4):145-88. doi: 10.1016/j.cpcardiol.2015.12.002. Epub 2015 Dec 9.
- Fleischmann C, Scherag A, Adhikari NK, Hartog CS, Tsaganos T, Schlattmann P, Angus DC, Reinhart K; International Forum of Acute Care Trialists. Assessment of Global Incidence and Mortality of Hospital-treated Sepsis. Current Estimates and Limitations. Am J Respir Crit Care Med. 2016 Feb 1;193(3):259-72. doi: 10.1164/rccm.201504-0781OC.
- Parker MM, Shelhamer JH, Bacharach SL, Green MV, Natanson C, Frederick TM, Damske BA, Parrillo JE. Profound but reversible myocardial depression in patients with septic shock. Ann Intern Med. 1984 Apr;100(4):483-90. doi: 10.7326/0003-4819-100-4-483.
- Trager K, Radermacher P. Catecholamines in the treatment of septic shock: effects beyond perfusion. Crit Care Resusc. 2003 Dec;5(4):270-6.
- Hartmann C, Radermacher P, Wepler M, Nussbaum B. Non-Hemodynamic Effects of Catecholamines. Shock. 2017 Oct;48(4):390-400. doi: 10.1097/SHK.0000000000000879.
- Hou T, Zhang R, Jian C, Ding W, Wang Y, Ling S, Ma Q, Hu X, Cheng H, Wang X. NDUFAB1 confers cardio-protection by enhancing mitochondrial bioenergetics through coordination of respiratory complex and supercomplex assembly. Cell Res. 2019 Sep;29(9):754-766. doi: 10.1038/s41422-019-0208-x. Epub 2019 Jul 31.
- Banks L, Wells GD, McCrindle BW. Cardiac energy metabolism is positively associated with skeletal muscle energy metabolism in physically active adolescents and young adults. Appl Physiol Nutr Metab. 2014 Mar;39(3):363-8. doi: 10.1139/apnm-2013-0312. Epub 2013 Oct 9.
- Gertz EW, Wisneski JA, Stanley WC, Neese RA. Myocardial substrate utilization during exercise in humans. Dual carbon-labeled carbohydrate isotope experiments. J Clin Invest. 1988 Dec;82(6):2017-25. doi: 10.1172/JCI113822.
- Vieillard-Baron A, Caille V, Charron C, Belliard G, Page B, Jardin F. Actual incidence of global left ventricular hypokinesia in adult septic shock. Crit Care Med. 2008 Jun;36(6):1701-6. doi: 10.1097/CCM.0b013e318174db05.
- Bouhemad B, Nicolas-Robin A, Arbelot C, Arthaud M, Feger F, Rouby JJ. Isolated and reversible impairment of ventricular relaxation in patients with septic shock. Crit Care Med. 2008 Mar;36(3):766-74. doi: 10.1097/CCM.0B013E31816596BC.
- Bouhemad B, Nicolas-Robin A, Arbelot C, Arthaud M, Feger F, Rouby JJ. Acute left ventricular dilatation and shock-induced myocardial dysfunction. Crit Care Med. 2009 Feb;37(2):441-7. doi: 10.1097/CCM.0b013e318194ac44.
- Kumar A, Bunnell E, Lynn M, Anel R, Habet K, Neumann A, Parrillo JE. Experimental human endotoxemia is associated with depression of load-independent contractility indices: prevention by the lipid a analogue E5531. Chest. 2004 Sep;126(3):860-7. doi: 10.1378/chest.126.3.860.
- Vincent JL, Gris P, Coffernils M, Leon M, Pinsky M, Reuse C, Kahn RJ. Myocardial depression characterizes the fatal course of septic shock. Surgery. 1992 Jun;111(6):660-7.
- Turner A, Tsamitros M, Bellomo R. Myocardial cell injury in septic shock. Crit Care Med. 1999 Sep;27(9):1775-80. doi: 10.1097/00003246-199909000-00012.
- Chagnon F, Metz CN, Bucala R, Lesur O. Endotoxin-induced myocardial dysfunction: effects of macrophage migration inhibitory factor neutralization. Circ Res. 2005 May 27;96(10):1095-102. doi: 10.1161/01.RES.0000168327.22888.4d. Epub 2005 May 5.
- Parrillo JE, Burch C, Shelhamer JH, Parker MM, Natanson C, Schuette W. A circulating myocardial depressant substance in humans with septic shock. Septic shock patients with a reduced ejection fraction have a circulating factor that depresses in vitro myocardial cell performance. J Clin Invest. 1985 Oct;76(4):1539-53. doi: 10.1172/JCI112135.
- Duncan DJ, Yang Z, Hopkins PM, Steele DS, Harrison SM. TNF-alpha and IL-1beta increase Ca2+ leak from the sarcoplasmic reticulum and susceptibility to arrhythmia in rat ventricular myocytes. Cell Calcium. 2010 Apr;47(4):378-86. doi: 10.1016/j.ceca.2010.02.002. Epub 2010 Mar 12.
- Wu AH. Increased troponin in patients with sepsis and septic shock: myocardial necrosis or reversible myocardial depression? Intensive Care Med. 2001 Jun;27(6):959-61. doi: 10.1007/s001340100970. No abstract available.
- Tavernier B, Li JM, El-Omar MM, Lanone S, Yang ZK, Trayer IP, Mebazaa A, Shah AM. Cardiac contractile impairment associated with increased phosphorylation of troponin I in endotoxemic rats. FASEB J. 2001 Feb;15(2):294-6. doi: 10.1096/fj.00-0433fje. Epub 2000 Dec 8.
- Kakihana Y, Ito T, Nakahara M, Yamaguchi K, Yasuda T. Sepsis-induced myocardial dysfunction: pathophysiology and management. J Intensive Care. 2016 Mar 23;4:22. doi: 10.1186/s40560-016-0148-1. eCollection 2016.
- Murashige D, Jang C, Neinast M, Edwards JJ, Cowan A, Hyman MC, Rabinowitz JD, Frankel DS, Arany Z. Comprehensive quantification of fuel use by the failing and nonfailing human heart. Science. 2020 Oct 16;370(6514):364-368. doi: 10.1126/science.abc8861.
- Dhainaut JF, Huyghebaert MF, Monsallier JF, Lefevre G, Dall'Ava-Santucci J, Brunet F, Villemant D, Carli A, Raichvarg D. Coronary hemodynamics and myocardial metabolism of lactate, free fatty acids, glucose, and ketones in patients with septic shock. Circulation. 1987 Mar;75(3):533-41. doi: 10.1161/01.cir.75.3.533.
- Tessier JP, Thurner B, Jungling E, Luckhoff A, Fischer Y. Impairment of glucose metabolism in hearts from rats treated with endotoxin. Cardiovasc Res. 2003 Oct 15;60(1):119-30. doi: 10.1016/s0008-6363(03)00320-1.
- Kreymann G, Grosser S, Buggisch P, Gottschall C, Matthaei S, Greten H. Oxygen consumption and resting metabolic rate in sepsis, sepsis syndrome, and septic shock. Crit Care Med. 1993 Jul;21(7):1012-9. doi: 10.1097/00003246-199307000-00015.
- Panitchote A, Thiangpak N, Hongsprabhas P, Hurst C. Energy expenditure in severe sepsis or septic shock in a Thai Medical Intensive Care Unit. Asia Pac J Clin Nutr. 2017;26(5):794-797. doi: 10.6133/apjcn.072016.10.
- Chagnon F, Bentourkia M, Lecomte R, Lessard M, Lesur O. Endotoxin-induced heart dysfunction in rats: assessment of myocardial perfusion and permeability and the role of fluid resuscitation. Crit Care Med. 2006 Jan;34(1):127-33. doi: 10.1097/01.ccm.0000190622.02222.df.
- Levy RJ, Piel DA, Acton PD, Zhou R, Ferrari VA, Karp JS, Deutschman CS. Evidence of myocardial hibernation in the septic heart. Crit Care Med. 2005 Dec;33(12):2752-6. doi: 10.1097/01.ccm.0000189943.60945.77.
- Szokodi I, Tavi P, Foldes G, Voutilainen-Myllyla S, Ilves M, Tokola H, Pikkarainen S, Piuhola J, Rysa J, Toth M, Ruskoaho H. Apelin, the novel endogenous ligand of the orphan receptor APJ, regulates cardiac contractility. Circ Res. 2002 Sep 6;91(5):434-40. doi: 10.1161/01.res.0000033522.37861.69.
- Berry MF, Pirolli TJ, Jayasankar V, Burdick J, Morine KJ, Gardner TJ, Woo YJ. Apelin has in vivo inotropic effects on normal and failing hearts. Circulation. 2004 Sep 14;110(11 Suppl 1):II187-93. doi: 10.1161/01.CIR.0000138382.57325.5c.
- Farkasfalvi K, Stagg MA, Coppen SR, Siedlecka U, Lee J, Soppa GK, Marczin N, Szokodi I, Yacoub MH, Terracciano CM. Direct effects of apelin on cardiomyocyte contractility and electrophysiology. Biochem Biophys Res Commun. 2007 Jun 15;357(4):889-95. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.04.017. Epub 2007 Apr 12.
- Chamberland C, Barajas-Martinez H, Haufe V, Fecteau MH, Delabre JF, Burashnikov A, Antzelevitch C, Lesur O, Chraibi A, Sarret P, Dumaine R. Modulation of canine cardiac sodium current by Apelin. J Mol Cell Cardiol. 2010 Apr;48(4):694-701. doi: 10.1016/j.yjmcc.2009.12.011. Epub 2009 Dec 28.
- Li Z, He Q, Wu C, Chen L, Bi F, Zhou Y, Shan H. Apelin shorten QT interval by inhibiting Kir2.1/IK1 via a PI3K way in acute myocardial infarction. Biochem Biophys Res Commun. 2019 Sep 17;517(2):272-277. doi: 10.1016/j.bbrc.2019.07.041. Epub 2019 Jul 23.
- Alfarano C, Foussal C, Lairez O, Calise D, Attane C, Anesia R, Daviaud D, Wanecq E, Parini A, Valet P, Kunduzova O. Transition from metabolic adaptation to maladaptation of the heart in obesity: role of apelin. Int J Obes (Lond). 2015 Feb;39(2):312-20. doi: 10.1038/ijo.2014.122. Epub 2014 Jul 16.
- Mehrotra D, Wu J, Papangeli I, Chun HJ. Endothelium as a gatekeeper of fatty acid transport. Trends Endocrinol Metab. 2014 Feb;25(2):99-106. doi: 10.1016/j.tem.2013.11.001. Epub 2013 Dec 3.
- Feng J, Zhao H, Du M, Wu X. The effect of apelin-13 on pancreatic islet beta cell mass and myocardial fatty acid and glucose metabolism of experimental type 2 diabetic rats. Peptides. 2019 Apr;114:1-7. doi: 10.1016/j.peptides.2019.03.006. Epub 2019 Apr 4.
- Saleme B, Das SK, Zhang Y, Boukouris AE, Lorenzana Carrillo MA, Jovel J, Wagg CS, Lopaschuk GD, Michelakis ED, Sutendra G. p53-Mediated Repression of the PGC1A (PPARG Coactivator 1alpha) and APLNR (Apelin Receptor) Signaling Pathways Limits Fatty Acid Oxidation Energetics: Implications for Cardio-oncology. J Am Heart Assoc. 2020 Aug 4;9(15):e017247. doi: 10.1161/JAHA.120.017247. Epub 2020 Jul 29. No abstract available.
- Rudiger A, Dyson A, Felsmann K, Carre JE, Taylor V, Hughes S, Clatworthy I, Protti A, Pellerin D, Lemm J, Claus RA, Bauer M, Singer M. Early functional and transcriptomic changes in the myocardium predict outcome in a long-term rat model of sepsis. Clin Sci (Lond). 2013 Mar;124(6):391-401. doi: 10.1042/CS20120334.
- Chagnon F, Coquerel D, Salvail D, Marsault E, Dumaine R, Auger-Messier M, Sarret P, Lesur O. Apelin Compared With Dobutamine Exerts Cardioprotection and Extends Survival in a Rat Model of Endotoxin-Induced Myocardial Dysfunction. Crit Care Med. 2017 Apr;45(4):e391-e398. doi: 10.1097/CCM.0000000000002097.
- Coquerel D, Chagnon F, Sainsily X, Dumont L, Murza A, Cote J, Dumaine R, Sarret P, Marsault E, Salvail D, Auger-Messier M, Lesur O. ELABELA Improves Cardio-Renal Outcome in Fatal Experimental Septic Shock. Crit Care Med. 2017 Nov;45(11):e1139-e1148. doi: 10.1097/CCM.0000000000002639.
- Frier BC, Williams DB, Wright DC. The effects of apelin treatment on skeletal muscle mitochondrial content. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2009 Dec;297(6):R1761-8. doi: 10.1152/ajpregu.00422.2009. Epub 2009 Sep 30.
- Masse MH, Richard MA, D'Aragon F, St-Arnaud C, Mayette M, Adhikari NKJ, Fraser W, Carpentier A, Palanchuck S, Gauthier D, Lanthier L, Touchette M, Lamontagne A, Chenard J, Mehta S, Sansoucy Y, Croteau E, Lepage M, Lamontagne F. Early Evidence of Sepsis-Associated Hyperperfusion-A Study of Cerebral Blood Flow Measured With MRI Arterial Spin Labeling in Critically Ill Septic Patients and Control Subjects. Crit Care Med. 2018 Jul;46(7):e663-e669. doi: 10.1097/CCM.0000000000003147.
Daty zapisu na studia
Główne daty studiów
Rozpoczęcie studiów (Rzeczywisty)
Zakończenie podstawowe (Szacowany)
Ukończenie studiów (Szacowany)
Daty rejestracji na studia
Pierwszy przesłany
Pierwszy przesłany, który spełnia kryteria kontroli jakości
Pierwszy wysłany (Rzeczywisty)
Aktualizacje rekordów badań
Ostatnia wysłana aktualizacja (Rzeczywisty)
Ostatnia przesłana aktualizacja, która spełniała kryteria kontroli jakości
Ostatnia weryfikacja
Więcej informacji
Terminy związane z tym badaniem
Słowa kluczowe
Dodatkowe istotne warunki MeSH
Inne numery identyfikacyjne badania
- eMESH struct. 2022-23
- 2021-4012 (Inny identyfikator: CHUS ethical committee)
Informacje o lekach i urządzeniach, dokumenty badawcze
Bada produkt leczniczy regulowany przez amerykańską FDA
Bada produkt urządzenia regulowany przez amerykańską FDA
Te informacje zostały pobrane bezpośrednio ze strony internetowej clinicaltrials.gov bez żadnych zmian. Jeśli chcesz zmienić, usunąć lub zaktualizować dane swojego badania, skontaktuj się z register@clinicaltrials.gov. Gdy tylko zmiana zostanie wprowadzona na stronie clinicaltrials.gov, zostanie ona automatycznie zaktualizowana również na naszej stronie internetowej .