餐后单核细胞研究 (PPMS)
2025年3月7日 更新者：USDA, Western Human Nutrition Research Center
西部人类营养研究中心 (WHNRC) 餐后单核细胞研究
这项研究的目的是确定一种免疫细胞在食用高脂肪膳食后在血液中的作用，称为非经典单核细胞 (NCM)。
先前的研究发现，单核细胞对血管健康很重要。
在这项研究中，将使用两种不同的高脂肪膳食来研究不同类型的膳食脂肪对餐后 NCM 的影响。
研究人员将在禁食条件下和食用两种不同的高脂肪膳食后对 NCM 进行表征，并将评估膳食中的脂肪类型是否会影响血液中的 NCM。
研究概览
详细说明
单核细胞是循环血细胞的异质群体，有助于组织完整性以及先天性和适应性免疫防御。 根据表面抗原的相对表达，存在三个充分表征的子集，分化簇 14 (CD14) 和分化簇 16 (CD16)。 单核细胞起源于骨髓中的髓样前体，并作为经典单核细胞 (CLM) 进入循环。 CLM 代表具有不同分化潜能的瞬态细胞群。 CLM 占循环血液单核细胞池的 80-90%，并且在迁移到组织中以重新填充组织驻留巨噬细胞群或成熟为非经典单核细胞 (NCM) 之前，在循环中保持大约一天。 NCM 仅占循环血单核细胞池的 5-10%，但循环寿命更长，约为 7 天。 NCM 作为血管组织的抗炎护理者和作为疾病发病机制的贡献者表现出相互矛盾的功能。
对食物消耗的代谢反应影响心脏代谢疾病的风险。 餐后血糖和脂血症通过改变内皮功能和诱导氧化应激、炎症和细胞凋亡来调节血管健康。 单次高脂肪膳食的消耗增加了循环白细胞介素 6 (IL-6)，增强了单核细胞粘附分子的表达，减少了血流介导的扩张，并增加了人类受试者的氧化应激标志物。 尽管 NCM 被描述为血管管家，具有独特的运动性和爬行模式，使它们能够主动监视内皮细胞并清除管腔碎片，但它们在餐后状态中的作用目前尚不清楚。
为了更好地了解食用单一高脂肪混合大量营养素挑战餐后餐后 NCM 的功能，研究人员提出了一项遵循交叉设计的研究，在该研究中，参与者将食用间隔两周的两份等热量高脂肪挑战餐中的一份，高饱和脂肪混合常量营养素挑战餐或高单不饱和脂肪混合常量营养素挑战餐。 将收集空腹和餐后 6 小时的血液，并通过流式细胞术分析 NCM 的比例及其整合素表达，同时通过 RNA 测序测量整体基因表达的变化。
研究类型
介入性
注册 (实际的)
32
阶段
- 不适用
联系人和位置
本节提供了进行研究的人员的详细联系信息，以及有关进行该研究的地点的信息。
学习地点
-
-
California
-
Davis、California、美国、95616
- USDA Western Human Nutrition Research Center
-
-
参与标准
研究人员寻找符合特定描述的人，称为资格标准。这些标准的一些例子是一个人的一般健康状况或先前的治疗。
资格标准
适合学习的年龄
18年 至 39年 (成人)
接受健康志愿者
是的
描述
纳入标准：
- 体重指数 18.5 - 29.9 公斤/平方米
- 拥有用于经济补偿的银行账户和社会安全号码或纳税人身份证明
排除标准：
- 孕妇或哺乳期妇女
- 已知过敏或不耐受研究膳食成分
- 测量的收缩压大于 140 mmHg 或舒张压大于 90 mmHg
- 空腹血糖高于 105 mg/dL
- 甘油三酯高于 150 mg/dL
- HDL 胆固醇低于 40 mg/dL（男性）和 50 mg/dL（女性）
- 自我报告的采血程序困难史，包括之前的昏厥或头晕，或被有执照的抽血师评估为不适合四次单独静脉穿刺的静脉
- 被诊断为活动性慢性疾病，个人目前正在服用日常药物，包括但不限于糖尿病、心血管疾病、癌症、胃肠道疾病、肾脏疾病、肝脏疾病、出血性疾病、哮喘、自身免疫性疾病、高血压、骨质疏松症
- 最近的小手术（4 周内）或大手术（16 周内）
- 胃肠道手术史，包括胃旁路手术或切除术
- 最近的抗生素治疗（4 周内）
- 已知的胆囊疾病或胆囊切除术史
- 最近住院（4周内）
- 在研究期间使用直接影响感兴趣的终点的处方药（例如 高脂血症、血糖控制、类固醇、他汀类药物、抗炎药和非处方减肥药）
- 目前参与另一项研究
- 18岁以下39岁以上
- BMI小于18.5且大于29.9 公斤/平方米
- 患有艾滋病毒/艾滋病或其他影响免疫系统的疾病
- 无法禁食 12 小时
- 定期献血并且不愿意在研究期间停止
- 单核细胞增多症（>0.8 x 10³/微升）或其他血液学参数异常基于筛选全血细胞计数 (CBC) 和差异
学习计划
本节提供研究计划的详细信息，包括研究的设计方式和研究的衡量标准。
研究是如何设计的？
设计细节
- 主要用途：基础科学
- 分配：随机化
- 介入模型：交叉作业
- 屏蔽：三倍
武器和干预
参与者组/臂 |
干预/治疗 |
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实验性的：高饱和脂肪挑战餐之后是高单不饱和脂肪挑战餐
高饱和脂肪混合常量营养素挑战餐加棕榈油，两周后高单不饱和脂肪混合常量营养素挑战餐加橄榄油
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用棕榈油制成的高饱和脂肪挑战餐
用橄榄油制成的高单不饱和脂肪挑战餐
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实验性的：高单不饱和脂肪挑战餐，然后是高饱和脂肪挑战餐
高单不饱和脂肪混合常量营养素挑战餐加橄榄油，两周后高饱和脂肪混合常量营养素挑战餐加棕榈油
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用棕榈油制成的高饱和脂肪挑战餐
用橄榄油制成的高单不饱和脂肪挑战餐
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研究衡量的是什么？
主要结果指标
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
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单核细胞亚群的变化
大体时间：在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将使用流式细胞术分析单核细胞亚群。
亚群分析将通过用抗分化抗原簇 45（抗 CD45）、分化抗原簇 91（抗 CD91）、抗 CD14 和抗 CD16 荧光标记抗体标记免疫细胞来进行。
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在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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次要结果测量
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
|---|---|---|
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极晚期抗原 4 表达的变化
大体时间：在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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极晚期抗原 4 (VLA-4) 的单核细胞粘附分子表达将使用流式细胞术进行评估。
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在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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C-X3-C 基序趋化因子受体 1 表达的变化
大体时间：在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将使用流式细胞术评估 C-X3-C 基序趋化因子受体 1 (CX3CR1) 的单核细胞粘附分子表达。
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在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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Notch2表达变化
大体时间：在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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Notch2 的单核细胞粘附分子表达将使用流式细胞术评估。
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在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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集落刺激因子1受体表达的变化
大体时间：在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将使用流式细胞术评估集落刺激因子 1 受体 (CSFR1) 的单核细胞粘附分子表达。
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在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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B 类清道夫受体表达的变化，成员 3
大体时间：在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将使用流式细胞术评估 B 类清道夫受体成员 3 (CD36) 的单核细胞粘附分子表达。
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在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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丝状肌动蛋白强度的变化
大体时间：在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将使用鬼笔环肽评估丝状肌动蛋白 (F-actin) 强度。
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在 2 个测试日的 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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白细胞计数的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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白细胞 (WBC) 计数将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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淋巴细胞计数的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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淋巴细胞 (LY) 计数将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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单核细胞计数的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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单核细胞 (MO) 计数将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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中性粒细胞计数变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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中性粒细胞 (NE) 计数将通过 DxH 520 血液分析仪测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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嗜酸性粒细胞计数的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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嗜酸性粒细胞 (EO) 计数将通过 DxH 520 血液分析仪测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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嗜碱性粒细胞计数变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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嗜碱性粒细胞 (BA) 计数将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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红细胞计数的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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红细胞 (RBC) 计数将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血红蛋白的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血红蛋白 (HGB) 将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血细胞比容的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血细胞比容 (HCT) 将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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平均红细胞体积的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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平均红细胞体积 (MCV) 将通过 DxH 520 血液分析仪测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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平均红细胞血红蛋白的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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平均红细胞血红蛋白 (MCH) 将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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平均红细胞血红蛋白浓度的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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平均红细胞血红蛋白浓度 (MCHC) 将通过 DxH 520 血液分析仪测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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红细胞分布宽度的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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红细胞分布宽度 (RDW) 将通过 DxH 520 血液分析仪测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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红细胞分布宽度标准差的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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红细胞分布宽度标准差 (RDW-SD) 将通过 DxH 520 血液分析仪测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血小板计数的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血小板 (PLT) 计数将通过 DxH 520 血液分析仪进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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平均血小板体积的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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平均血小板体积 (MPV) 将通过 DxH 520 血液分析仪测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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可溶性分化抗原簇的变化146
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将通过 ELISA 测量内皮活化，包括可溶性分化抗原 146 (CD146) 簇。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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CD45基因表达的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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使用抗 CD45 荧光标记抗体通过荧光激活细胞分选 (FACS) 从外周血中分离非经典单核细胞后，将通过 RNA 测序测量非经典和经典单核细胞的转录变化。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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CD91 基因表达的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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使用抗 CD91 荧光标记抗体通过荧光激活细胞分选 (FACS) 从外周血中分离非经典单核细胞后，将通过 RNA 测序测量非经典和经典单核细胞的转录变化。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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CD14基因表达的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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使用抗 CD14 荧光标记抗体通过荧光激活细胞分选 (FACS) 从外周血中分离非经典单核细胞后，将通过 RNA 测序测量非经典和经典单核细胞的转录变化。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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CD16基因表达的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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使用抗 CD16 荧光标记抗体通过荧光激活细胞分选 (FACS) 从外周血中分离非经典单核细胞后，将通过 RNA 测序测量非经典和经典单核细胞的转录变化。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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IL-6 水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将通过 ELISA 测量全身炎症的血浆标志物，包括白细胞介素 6。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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IL-8 水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将通过 ELISA 测量全身炎症的血浆标志物，包括白细胞介素 8。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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C反应蛋白水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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包括 C 反应蛋白 (CRP) 在内的急性期反应物将通过 ELISA 进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血清淀粉样蛋白 A 水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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包括血清淀粉样蛋白 A (SAA) 在内的急性期反应物将通过 ELISA 进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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趋化因子配体 2 水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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包括趋化因子配体2在内的趋化因子将通过ELISA进行测量。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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8-异前列腺素 F2α 水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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将通过 ELISA 测量氧化应激的血浆标志物，包括 8-异前列烷 F2α。
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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甘油三酯水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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包括甘油三酯在内的脂质相关标记物将通过自动分析仪 Cobas Integra 400+ 仪器进行测量
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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总胆固醇水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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包括总胆固醇在内的脂质相关标志物将通过自动分析仪 Cobas Integra 400+ 仪器进行测量
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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高密度脂蛋白胆固醇水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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包括 HDL-胆固醇 (HDL-C) 在内的脂质相关标记物将通过自动分析仪 Cobas Integra 400+ 仪器进行测量
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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低密度脂蛋白胆固醇水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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包括低密度脂蛋白胆固醇 (LDL-C) 在内的脂质相关标志物将通过自动分析仪 Cobas Integra 400+ 仪器进行测量
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血糖水平的变化
大体时间：根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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血浆葡萄糖将通过自动分析仪 Cobas Integra 400+ 仪器测量
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根据 2 个测试日 0 小时（空腹）和 6 小时（餐后）采集的样本进行测量
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合作者和调查者
在这里您可以找到参与这项研究的人员和组织。
调查人员
- 首席研究员：Ryan Snodgrass, PhD、USDA, Western Human Nutrition Research Center
研究记录日期
这些日期跟踪向 ClinicalTrials.gov 提交研究记录和摘要结果的进度。研究记录和报告的结果由国家医学图书馆 (NLM) 审查，以确保它们在发布到公共网站之前符合特定的质量控制标准。
研究主要日期
学习开始 (实际的)
2023年11月14日
初级完成 (实际的)
2024年10月11日
研究完成 (实际的)
2024年10月11日
研究注册日期
首次提交
2023年3月15日
首先提交符合 QC 标准的
2023年3月29日
首次发布 (实际的)
2023年3月31日
研究记录更新
最后更新发布 (实际的)
2025年3月25日
上次提交的符合 QC 标准的更新
2025年3月7日
最后验证
2025年3月1日
更多信息
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