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Estudio de monocitos posprandiales (PPMS)

7 de marzo de 2025 actualizado por: USDA, Western Human Nutrition Research Center

Estudio de monocitos posprandiales del Western Human Nutrition Research Center (WHNRC)

El propósito de esta investigación es determinar el papel de un tipo de célula inmunitaria en la sangre, llamada monocitos no clásicos (NCM), luego del consumo de una comida rica en grasas. Estudios previos han encontrado que los monocitos son importantes para la salud de los vasos sanguíneos. En este estudio, se usarán dos comidas ricas en grasas diferentes para estudiar el efecto de diferentes tipos de grasas en la dieta sobre las NCM posprandiales. Los investigadores caracterizarán los NCM tanto en condiciones de ayuno como después del consumo de dos comidas ricas en grasas diferentes, y evaluarán si el tipo de grasa en una comida afecta los NCM en la sangre.

Descripción general del estudio

Descripción detallada

Los monocitos son una población heterogénea de células sanguíneas circulantes que contribuyen a la integridad de los tejidos, así como a la defensa inmunitaria innata y adaptativa. Hay tres subconjuntos bien caracterizados en función de su expresión relativa de antígenos de superficie, grupo de diferenciación 14 (CD14) y grupo de diferenciación 16 (CD16). Los monocitos se originan a partir de precursores mieloides en la médula ósea y entran en la circulación como monocitos clásicos (CLM). Los CLM representan una población celular transitoria con un potencial de diferenciación diverso. Los CLM comprenden el 80-90% de la reserva de monocitos en sangre circulante y permanecen en circulación durante aproximadamente un día antes de migrar al tejido para repoblar la población de macrófagos residentes en el tejido o madurar en monocitos no clásicos (NCM). Los NCM comprenden solo el 5-10% del conjunto de monocitos en sangre circulante, pero tienen una vida útil circulante mucho más larga de aproximadamente 7 días. Los NCM exhiben funciones conflictivas como cuidadores antiinflamatorios del tejido vascular y como contribuyentes a la patogénesis de la enfermedad.

Las respuestas metabólicas al consumo de alimentos influyen en el riesgo de enfermedad cardiometabólica. La glucemia y la lipemia posprandiales modulan la salud vascular al alterar la función endotelial e inducir estrés oxidativo, inflamación y apoptosis. El consumo de una sola comida rica en grasas aumenta la interleucina 6 (IL-6) circulante, mejora la expresión de moléculas de adhesión de monocitos, reduce la dilatación mediada por el flujo y aumenta los marcadores de estrés oxidativo en sujetos humanos. Aunque los NCM se describen como amas de casa vasculares con motilidad distinta y patrones de rastreo que les permiten vigilar activamente el endotelio y eliminar los desechos luminales, actualmente se desconoce su papel en el estado posprandial.

Para comprender mejor la función de los NCM posprandiales después del consumo de una sola comida de desafío con macronutrientes mixtos ricos en grasas, los investigadores proponen un estudio siguiendo un diseño cruzado en el que los participantes consumirán una de dos comidas isocalóricas ricas en grasas espaciadas con dos semanas de diferencia. una comida de desafío de macronutrientes mixtos con alto contenido de grasas saturadas o una comida de desafío de macronutrientes mixtos con alto contenido de grasas monoinsaturadas. Se recolectará sangre en ayunas ya las seis horas posprandiales y se analizará la proporción de NCM y su expresión de integrinas mediante citometría de flujo, mientras que los cambios en la expresión génica global se medirán mediante secuenciación de ARN.

Tipo de estudio

Intervencionista

Inscripción (Actual)

32

Fase

  • No aplica

Contactos y Ubicaciones

Esta sección proporciona los datos de contacto de quienes realizan el estudio e información sobre dónde se lleva a cabo este estudio.

Ubicaciones de estudio

    • California
      • Davis, California, Estados Unidos, 95616
        • USDA Western Human Nutrition Research Center

Criterios de participación

Los investigadores buscan personas que se ajusten a una determinada descripción, denominada criterio de elegibilidad. Algunos ejemplos de estos criterios son el estado de salud general de una persona o tratamientos previos.

Criterio de elegibilidad

Edades elegibles para estudiar

18 años a 39 años (Adulto)

Acepta Voluntarios Saludables

Descripción

Criterios de inclusión:

  • IMC 18,5 - 29,9 kg/m²
  • tener una cuenta bancaria y número de seguro social o identificación de contribuyente para compensación económica

Criterio de exclusión:

  • Mujeres embarazadas o lactantes
  • Alergia conocida o intolerancia obstructiva para estudiar los ingredientes de la comida.
  • Presión arterial sistólica superior a 140 mmHg o presión arterial diastólica superior a 90 mmHg medida
  • Glucosa en ayunas por encima de 105 mg/dL
  • Triglicéridos por encima de 150 mg/dL
  • Colesterol HDL inferior a 40 mg/dL (hombres) y 50 mg/dL (mujeres)
  • Historial autoinformado de dificultades con los procedimientos de extracción de sangre, incluidos desmayos o mareos previos, o venas evaluadas como no aptas para cuatro venopunciones separadas por flebotomistas autorizados
  • Enfermedades crónicas activas diagnosticadas para las cuales el individuo toma actualmente medicación diaria, incluidas, entre otras, diabetes mellitus, enfermedad cardiovascular, cáncer, trastornos gastrointestinales, enfermedad renal, enfermedad hepática, trastornos hemorrágicos, asma, trastornos autoinmunes, hipertensión, osteoporosis
  • Cirugía menor reciente (dentro de las 4 semanas) o cirugía mayor (dentro de las 16 semanas)
  • Antecedentes de cirugía gastrointestinal, incluida la cirugía o resección de bypass gástrico
  • Terapia antibiótica reciente (dentro de las 4 semanas)
  • Enfermedad de la vesícula biliar conocida o antecedentes de colecistectomía
  • Hospitalización reciente (dentro de las 4 semanas)
  • Uso de medicamentos recetados en el momento del estudio que afectan directamente los criterios de valoración de interés (p. hiperlipidemia, control glucémico, esteroides, estatinas, agentes antiinflamatorios y ayudas para perder peso de venta libre)
  • Participación actual en otro estudio de investigación
  • Menores de 18 y mayores de 39 años
  • IMC inferior a 18,5 y superior a 29,9 kg/m²
  • Tiene VIH/SIDA u otra enfermedad que afecta el sistema inmunológico
  • Incapaz de ayunar durante 12 horas.
  • Da donaciones de sangre regulares y no está dispuesto a parar durante el estudio.
  • Tiene monocitosis (>0,8 x 10³/microlitro) u otras anomalías en los parámetros hematológicos según un hemograma completo (CBC) de detección con diferencial

Plan de estudios

Esta sección proporciona detalles del plan de estudio, incluido cómo está diseñado el estudio y qué mide el estudio.

¿Cómo está diseñado el estudio?

Detalles de diseño

  • Propósito principal: Ciencia básica
  • Asignación: Aleatorizado
  • Modelo Intervencionista: Asignación cruzada
  • Enmascaramiento: Triple

Armas e Intervenciones

Grupo de participantes/brazo
Intervención / Tratamiento
Experimental: Comida de desafío con alto contenido de grasas saturadas seguida de comida de desafío con alto contenido de grasas monoinsaturadas
Comida de desafío de macronutrientes mixtos con alto contenido de grasas saturadas con aceite de palma seguida de comida de desafío de macronutrientes mixtos con alto contenido de grasas monoinsaturadas y aceite de oliva dos semanas después
Comida de desafío alta en grasas saturadas hecha con aceite de palma
Comida de desafío con alto contenido de grasas monoinsaturadas elaborada con aceite de oliva
Experimental: Comida de desafío con alto contenido de grasas monoinsaturadas seguida de comida de desafío con alto contenido de grasas saturadas
Comida de desafío de macronutrientes mixtos con alto contenido de grasas monoinsaturadas con aceite de oliva seguida de comida de desafío de macronutrientes mixtos con alto contenido de grasas saturadas y aceite de palma dos semanas después
Comida de desafío alta en grasas saturadas hecha con aceite de palma
Comida de desafío con alto contenido de grasas monoinsaturadas elaborada con aceite de oliva

¿Qué mide el estudio?

Medidas de resultado primarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Cambio en los subconjuntos de monocitos
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los subconjuntos de monocitos se analizarán mediante citometría de flujo. El análisis de subconjuntos se realizará mediante el etiquetado de células inmunitarias con anticuerpos anti-grupo de antígeno de diferenciación 45 (anti-CD45), grupo de antígeno de diferenciación 91 (anti-CD91), anti-CD14 y anti-CD16 marcados con fluorescencia.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba

Medidas de resultado secundarias

Medida de resultado
Medida Descripción
Periodo de tiempo
Cambio en la expresión del antígeno-4 muy tardío
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La expresión de la molécula de adhesión de monocitos del antígeno 4 muy tardío (VLA-4) se evaluará mediante citometría de flujo.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la expresión del receptor 1 de quimiocinas con motivo C-X3-C
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La expresión de la molécula de adhesión de monocitos del receptor 1 de quimiocinas con motivo C-X3-C (CX3CR1) se evaluará mediante citometría de flujo.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la expresión de Notch2
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La expresión de la molécula de adhesión de monocitos de Notch2 se evaluará mediante citometría de flujo.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la expresión del receptor del factor 1 estimulante de colonias
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La expresión de la molécula de adhesión de monocitos del receptor del factor 1 estimulante de colonias (CSFR1) se evaluará mediante citometría de flujo.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la expresión del receptor depurador clase B, miembro 3
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La expresión de la molécula de adhesión de monocitos del receptor scavenger clase B, miembro 3 (CD36) se evaluará mediante citometría de flujo.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la intensidad de la actina filamentosa
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La intensidad de la actina filamentosa (actina F) se evaluará mediante faloidina.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el recuento de glóbulos blancos
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El recuento de glóbulos blancos (WBC) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el recuento de linfocitos.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El recuento de linfocitos (LY) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el recuento de monocitos
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El recuento de monocitos (MO) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el cambio en el recuento de granulocitos de neutrófilos
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El recuento de granulocitos de neutrófilos (NE) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el recuento de eosinófilos
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El recuento de eosinófilos (EO) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el recuento de basófilos
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El recuento de basófilos (BA) se medirá con un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el recuento de glóbulos rojos
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El recuento de glóbulos rojos (RBC) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la hemoglobina
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La hemoglobina (HGB) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el hematocrito
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El hematocrito (HCT) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el volumen corpuscular medio
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El volumen corpuscular medio (MCV) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la hemoglobina corpuscular media
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La hemoglobina corpuscular media (MCH) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la concentración media de hemoglobina corpuscular
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La concentración media de hemoglobina corpuscular (MCHC) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el ancho de distribución de los glóbulos rojos.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El ancho de distribución de los glóbulos rojos (RDW) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la desviación estándar del ancho de distribución de los glóbulos rojos
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La desviación estándar del ancho de distribución de los glóbulos rojos (RDW-SD) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el recuento de plaquetas
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El recuento de plaquetas (PLT) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el volumen medio de plaquetas
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
El volumen medio de plaquetas (MPV) se medirá mediante un analizador de hematología DxH 520.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en el grupo soluble del antígeno de diferenciación 146
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La activación endotelial, incluido el grupo soluble del antígeno de diferenciación 146 (CD146), se medirá mediante ELISA.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la expresión del gen CD45.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los cambios transcripcionales en monocitos clásicos y no clásicos se medirán mediante secuenciación de ARN después del aislamiento de monocitos no clásicos de sangre periférica mediante clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS) utilizando anticuerpos anti-CD45 marcados con fluorescencia.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la expresión del gen CD91.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los cambios transcripcionales en monocitos clásicos y no clásicos se medirán mediante secuenciación de ARN después del aislamiento de monocitos no clásicos de sangre periférica mediante clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS) utilizando anticuerpos anti-CD91 marcados con fluorescencia.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la expresión del gen CD14.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los cambios transcripcionales en monocitos clásicos y no clásicos se medirán mediante secuenciación de ARN después del aislamiento de monocitos no clásicos de sangre periférica mediante clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS) utilizando anticuerpos anti-CD14 marcados con fluorescencia.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en la expresión del gen CD16.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los cambios transcripcionales en monocitos clásicos y no clásicos se medirán mediante secuenciación de ARN después del aislamiento de monocitos no clásicos de sangre periférica mediante clasificación de células activadas por fluorescencia (FACS) utilizando anticuerpos anti-CD16 marcados con fluorescencia.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de interleucina-6.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los marcadores plasmáticos de inflamación sistémica, incluida la interleucina-6, se medirán mediante ELISA.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de interleucina-8.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los marcadores plasmáticos de inflamación sistémica, incluida la interleucina-8, se medirán mediante ELISA.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de proteína C reactiva
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los reactivos de fase aguda, incluida la proteína C reactiva (PCR), se medirán mediante ELISA.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de amiloide A sérico
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los reactivos de fase aguda, incluido el amiloide A sérico (SAA), se medirán mediante ELISA.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles del ligando 2 de quimiocina
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Las quimiocinas, incluido el ligando 2 de quimiocina, se medirán mediante ELISA.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de 8-isoprostano F2alfa
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los marcadores plasmáticos de estrés oxidativo, incluido el 8-isoprostano F2alfa, se medirán mediante ELISA.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de triglicéridos.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los marcadores relacionados con los lípidos, incluidos los triglicéridos, se medirán mediante el autoanalizador, el instrumento Cobas Integra 400+.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de colesterol total.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los marcadores relacionados con los lípidos, incluido el colesterol total, se medirán mediante el autoanalizador, el instrumento Cobas Integra 400+.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de colesterol HDL.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los marcadores relacionados con los lípidos, incluido el colesterol HDL (HDL-C), se medirán mediante el autoanalizador, el instrumento Cobas Integra 400+.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de colesterol LDL.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Los marcadores relacionados con los lípidos, incluido el colesterol LDL (LDL-C), se medirán mediante el autoanalizador, el instrumento Cobas Integra 400+.
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
Cambio en los niveles de glucosa.
Periodo de tiempo: Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba
La glucosa plasmática se medirá mediante el autoanalizador, instrumento Cobas Integra 400+
Medido a partir de muestras tomadas a las 0 horas (en ayunas) y a las 6 horas (posprandial) en 2 días de prueba

Colaboradores e Investigadores

Aquí es donde encontrará personas y organizaciones involucradas en este estudio.

Investigadores

  • Investigador principal: Ryan Snodgrass, PhD, USDA, Western Human Nutrition Research Center

Fechas de registro del estudio

Estas fechas rastrean el progreso del registro del estudio y los envíos de resultados resumidos a ClinicalTrials.gov. Los registros del estudio y los resultados informados son revisados ​​por la Biblioteca Nacional de Medicina (NLM) para asegurarse de que cumplan con los estándares de control de calidad específicos antes de publicarlos en el sitio web público.

Fechas importantes del estudio

Inicio del estudio (Actual)

14 de noviembre de 2023

Finalización primaria (Actual)

11 de octubre de 2024

Finalización del estudio (Actual)

11 de octubre de 2024

Fechas de registro del estudio

Enviado por primera vez

15 de marzo de 2023

Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad

29 de marzo de 2023

Publicado por primera vez (Actual)

31 de marzo de 2023

Actualizaciones de registros de estudio

Última actualización publicada (Actual)

25 de marzo de 2025

Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad

7 de marzo de 2025

Última verificación

1 de marzo de 2025

Más información

Términos relacionados con este estudio

Términos MeSH relevantes adicionales

Otros números de identificación del estudio

  • 1999385

Plan de datos de participantes individuales (IPD)

¿Planea compartir datos de participantes individuales (IPD)?

NO

Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio

Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.

No

Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.

No

producto fabricado y exportado desde los EE. UU.

No

Esta información se obtuvo directamente del sitio web clinicaltrials.gov sin cambios. Si tiene alguna solicitud para cambiar, eliminar o actualizar los detalles de su estudio, comuníquese con register@clinicaltrials.gov. Tan pronto como se implemente un cambio en clinicaltrials.gov, también se actualizará automáticamente en nuestro sitio web. .

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