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Étude postprandiale sur les monocytes (PPMS)

Étude postprandiale sur les monocytes du Western Human Nutrition Research Center (WHNRC)

Le but de cette recherche est de déterminer le rôle d'un type de cellule immunitaire dans le sang, appelé monocytes non classiques (NCM), suite à la consommation d'un repas riche en graisses. Des études antérieures ont montré que les monocytes sont importants pour la santé des vaisseaux sanguins. Dans cette étude, deux repas riches en graisses différents seront utilisés pour étudier l'effet de différents types de graisses alimentaires sur les MCN postprandiaux. Les chercheurs caractériseront les NCM à la fois dans des conditions de jeûne et après la consommation de deux repas riches en graisses différents, et évalueront si le type de graisse dans un repas affecte les NCM dans le sang.

Aperçu de l'étude

Description détaillée

Les monocytes sont une population hétérogène de cellules sanguines circulantes qui contribuent à l'intégrité des tissus ainsi qu'à la défense immunitaire innée et adaptative. Il existe trois sous-ensembles bien caractérisés en fonction de leur expression relative des antigènes de surface, du groupe de différenciation 14 (CD14) et du groupe de différenciation 16 (CD16). Les monocytes proviennent de précurseurs myéloïdes de la moelle osseuse et entrent dans la circulation sous forme de monocytes classiques (CLM). Les CLM représentent une population cellulaire transitoire avec un potentiel de différenciation diversifié. Les CLM représentent 80 à 90 % du pool de monocytes sanguins circulants et restent en circulation pendant environ un jour avant de migrer dans les tissus pour repeupler la population de macrophages résidents des tissus ou de mûrir en monocytes non classiques (NCM). Les NCM ne représentent que 5 à 10 % du pool de monocytes sanguins circulants, mais ont une durée de vie en circulation beaucoup plus longue d'environ 7 jours. Les NCM présentent des fonctions contradictoires en tant que gardiens anti-inflammatoires du tissu vasculaire et en tant que contributeurs à la pathogenèse de la maladie.

Les réponses métaboliques à la consommation alimentaire influencent le risque de maladie cardiométabolique. La glycémie et la lipémie postprandiale modulent la santé vasculaire en altérant la fonction endothéliale et en induisant un stress oxydatif, une inflammation et une apoptose. La consommation d'un seul repas riche en graisses augmente l'interleukine 6 (IL-6) circulante, améliore l'expression des molécules d'adhésion des monocytes, réduit la dilatation médiée par le flux et augmente les marqueurs du stress oxydatif chez les sujets humains. Bien que les NCM soient décrits comme des aides ménagères vasculaires avec une motilité distincte et des schémas de rampement leur permettant de surveiller activement l'endothélium et de nettoyer les débris luminaux, leur rôle dans l'état postprandial est actuellement inconnu.

Pour mieux comprendre la fonction des MCN postprandiaux après la consommation d'un seul repas de défi riche en graisses mélangées à macronutriments, les chercheurs proposent une étude suivant une conception croisée dans laquelle les participants consommeront l'un des deux repas de défi isocaloriques riches en graisses espacés de deux semaines, un repas de défi macronutriments mixtes riches en graisses saturées ou un repas de défi macronutriments mixtes riches en graisses monoinsaturées. Le sang à jeun et à six heures postprandiale sera prélevé et la proportion de NCM et leur expression d'intégrine seront analysées par cytométrie en flux tandis que les changements dans l'expression globale des gènes seront mesurés par séquençage d'ARN.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Réel)

32

Phase

  • N'est pas applicable

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Lieux d'étude

    • California
      • Davis, California, États-Unis, 95616
        • USDA Western Human Nutrition Research Center

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

18 ans à 39 ans (Adulte)

Accepte les volontaires sains

Oui

La description

Critère d'intégration:

  • IMC 18,5 - 29,9 kg/m²
  • avoir un compte bancaire et un numéro de sécurité sociale ou une identification fiscale pour une compensation financière

Critère d'exclusion:

  • Femmes enceintes ou allaitantes
  • Allergie connue ou intolérance gênante pour étudier les ingrédients des repas
  • Pression artérielle systolique supérieure à 140 mmHg ou pression artérielle diastolique supérieure à 90 mmHg mesurée
  • Glycémie à jeun supérieure à 105 mg/dL
  • Triglycérides supérieurs à 150 mg/dL
  • Cholestérol HDL inférieur à 40 mg/dL (hommes) et 50 mg/dL (femmes)
  • Antécédents autodéclarés de difficultés avec les procédures de prélèvement sanguin, y compris des évanouissements ou des étourdissements antérieurs, ou des veines évaluées comme ne convenant pas à quatre ponctions veineuses distinctes par un phlébotomiste agréé
  • Maladies chroniques actives diagnostiquées pour lesquelles la personne prend actuellement des médicaments quotidiennement, y compris, mais sans s'y limiter, le diabète sucré, les maladies cardiovasculaires, le cancer, les troubles gastro-intestinaux, les maladies rénales, les maladies du foie, les troubles hémorragiques, l'asthme, les troubles auto-immuns, l'hypertension, l'ostéoporose
  • Chirurgie mineure récente (dans les 4 semaines) ou chirurgie majeure (dans les 16 semaines)
  • Antécédents de chirurgie gastro-intestinale, y compris pontage gastrique ou résection
  • Antibiothérapie récente (dans les 4 semaines)
  • Maladie connue de la vésicule biliaire ou antécédents de cholécystectomie
  • Hospitalisation récente (dans les 4 semaines)
  • Utilisation de médicaments sur ordonnance au moment de l'étude qui affectent directement les paramètres d'intérêt (par ex. hyperlipidémie, contrôle glycémique, stéroïdes, statines, agents anti-inflammatoires et aides à la perte de poids en vente libre)
  • Participation actuelle à une autre étude de recherche
  • Moins de 18 ans et plus de 39 ans
  • IMC inférieur à 18,5 et supérieur à 29,9 kg/m²
  • A le VIH/SIDA ou une autre maladie qui affecte le système immunitaire
  • Impossible de jeûner pendant 12 heures
  • Donne régulièrement du sang et ne veut pas s'arrêter pendant l'étude
  • Présente une monocytose (>0,8 x 10³/microlitre) ou d'autres anomalies des paramètres hématologiques d'après une numération globulaire complète (CBC) de dépistage avec différentiel

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: Science basique
  • Répartition: Randomisé
  • Modèle interventionnel: Affectation croisée
  • Masquage: Tripler

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Expérimental: Repas challenge riche en graisses saturées suivi d'un repas challenge riche en graisses mono-insaturées
Repas de défi macronutriments mixtes riches en graisses saturées avec de l'huile de palme suivi d'un repas de défi macronutriments mixtes riches en graisses mono-insaturées avec de l'huile d'olive deux semaines plus tard
Repas défi riche en graisses saturées à base d'huile de palme
Repas riche en graisses mono insaturées à base d'huile d'olive
Expérimental: Repas challenge riche en graisses mono-insaturées suivi d'un repas challenge riche en graisses saturées
Repas de défi macronutriments mixtes riches en graisses mono-insaturées avec de l'huile d'olive suivi d'un repas de défi macronutriments mixtes riches en graisses saturées avec de l'huile de palme deux semaines plus tard
Repas défi riche en graisses saturées à base d'huile de palme
Repas riche en graisses mono insaturées à base d'huile d'olive

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Modification des sous-ensembles de monocytes
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
Les sous-ensembles de monocytes seront analysés par cytométrie en flux. L'analyse de sous-ensemble sera effectuée en marquant les cellules immunitaires avec des anticorps anti-cluster of differentiation antigen 45 (anti-CD45), cluster of differentiation antigen 91 (anti-CD91), anti-CD14 et anti-CD16 marqués par fluorescence.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Modification de l'expression de l'antigène 4 très tardif
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
L'expression de la molécule d'adhésion des monocytes de l'antigène 4 très tardif (VLA-4) sera évaluée par cytométrie en flux.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
Modification de l'expression du récepteur 1 des chimiokines à motif C-X3-C
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
L'expression de la molécule d'adhésion des monocytes du récepteur 1 des chimiokines à motif C-X3-C (CX3CR1) sera évaluée par cytométrie en flux.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
Changement d'expression de Notch2
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
L'expression de la molécule d'adhésion des monocytes de Notch2 sera évaluée par cytométrie en flux.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
Modification de l'expression du récepteur du facteur 1 stimulant les colonies
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
L'expression de la molécule d'adhésion des monocytes du récepteur du facteur 1 stimulant les colonies (CSFR1) sera évaluée par cytométrie en flux.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
Modification de l'expression du récepteur piégeur de classe B, membre 3
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
L'expression de la molécule d'adhésion des monocytes du récepteur piégeur de classe B, membre 3 (CD36) sera évaluée par cytométrie en flux.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
Changement d'intensité de l'actine filamenteuse
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
L'intensité de l'actine filamenteuse (F-actine) sera évaluée à l'aide de la phalloïdine.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandial) sur 2 jours de test
Modification du nombre de globules blancs
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le nombre de globules blancs (WBC) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du nombre de lymphocytes
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le nombre de lymphocytes (LY) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du nombre de monocytes
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le nombre de monocytes (MO) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du nombre de granulocytes neutrophiles
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le nombre de granulocytes neutrophiles (NE) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du nombre d'éosinophiles
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le nombre d'éosinophiles (EO) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du nombre de basophiles
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le nombre de basophiles (BA) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du nombre de globules rouges
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le nombre de globules rouges (RBC) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de l'hémoglobine
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
L'hémoglobine (HGB) sera mesurée par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de l'hématocrite
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
L'hématocrite (HCT) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du volume corpusculaire moyen
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le volume corpusculaire moyen (MCV) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de l'hémoglobine corpusculaire moyenne
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
L'hémoglobine corpusculaire moyenne (MCH) sera mesurée par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de la concentration moyenne d'hémoglobine corpusculaire
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
La concentration moyenne d'hémoglobine corpusculaire (MCHC) sera mesurée par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de la largeur de distribution des globules rouges
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
La largeur de distribution des globules rouges (RDW) sera mesurée par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de l'écart type de la largeur de distribution des globules rouges
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
L'écart type de largeur de distribution des globules rouges (RDW-SD) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de la numération plaquettaire
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
La numération plaquettaire (PLT) sera mesurée par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du volume plaquettaire moyen
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le volume plaquettaire moyen (MPV) sera mesuré par un analyseur d'hématologie DxH 520.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification du groupe soluble de l'antigène de différenciation 146
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
L'activation endothéliale, y compris le groupe soluble d'antigène de différenciation 146 (CD146), sera mesurée par ELISA.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de l'expression du gène CD45
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les changements transcriptionnels dans les monocytes non classiques et classiques seront mesurés par séquençage d'ARN après l'isolement des monocytes non classiques du sang périphérique par tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) à l'aide d'anticorps anti-CD45 marqués par fluorescence.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de l'expression du gène CD91
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les changements transcriptionnels dans les monocytes non classiques et classiques seront mesurés par séquençage d'ARN après l'isolement des monocytes non classiques du sang périphérique par tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) à l'aide d'anticorps anti-CD91 marqués par fluorescence.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de l'expression du gène CD14
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les changements transcriptionnels dans les monocytes non classiques et classiques seront mesurés par séquençage d'ARN après l'isolement des monocytes non classiques du sang périphérique par tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) à l'aide d'anticorps anti-CD14 marqués par fluorescence.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification de l'expression du gène CD16
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les changements transcriptionnels dans les monocytes non classiques et classiques seront mesurés par séquençage d'ARN après l'isolement des monocytes non classiques du sang périphérique par tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) à l'aide d'anticorps anti-CD16 marqués par fluorescence.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux d'interleukine-6
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les marqueurs plasmatiques de l'inflammation systémique, dont l'interleukine-6, seront mesurés par ELISA.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux d'interleukine-8
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les marqueurs plasmatiques de l'inflammation systémique, dont l'interleukine-8, seront mesurés par ELISA.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux de protéine C-réactive
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les réactifs de phase aiguë, y compris la protéine C-réactive (CRP), seront mesurés par ELISA.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des taux d'amyloïde A sérique
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les réactifs de phase aiguë, y compris l'amyloïde sérique A (SAA), seront mesurés par ELISA.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux de ligand de chimiokine 2
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les chimiokines, y compris le ligand de chimiokine 2, seront mesurées par ELISA.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux de 8-isoprostane F2alpha
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les marqueurs plasmatiques du stress oxydatif dont le 8-isoprostane F2alpha seront mesurés par ELISA.
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux de triglycérides
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les marqueurs liés aux lipides, y compris les triglycérides, seront mesurés par un auto-analyseur, l'instrument Cobas Integra 400+
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux de cholestérol total
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les marqueurs liés aux lipides, y compris le cholestérol total, seront mesurés par un auto-analyseur, l'instrument Cobas Integra 400+
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux de cholestérol HDL
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les marqueurs liés aux lipides, y compris le cholestérol HDL (HDL-C), seront mesurés par un auto-analyseur, l'instrument Cobas Integra 400+
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux de cholestérol LDL
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Les marqueurs liés aux lipides, y compris le cholestérol LDL (LDL-C), seront mesurés par un auto-analyseur, l'instrument Cobas Integra 400+
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Modification des niveaux de glucose
Délai: Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test
Le glucose plasmatique sera mesuré par un auto-analyseur, un instrument Cobas Integra 400+
Mesuré à partir d'échantillons prélevés à 0 heure (à jeun) et 6 heures (postprandiale) sur 2 jours de test

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Les enquêteurs

  • Chercheur principal: Ryan Snodgrass, PhD, USDA, Western Human Nutrition Research Center

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

14 novembre 2023

Achèvement primaire (Réel)

11 octobre 2024

Achèvement de l'étude (Réel)

11 octobre 2024

Dates d'inscription aux études

Première soumission

15 mars 2023

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

29 mars 2023

Première publication (Réel)

31 mars 2023

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

25 mars 2025

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

7 mars 2025

Dernière vérification

1 mars 2025

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Termes MeSH pertinents supplémentaires

Autres numéros d'identification d'étude

  • 1999385

Plan pour les données individuelles des participants (IPD)

Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?

NON

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

produit fabriqué et exporté des États-Unis.

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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