Stempeucel® 对 Buerger 病导致的严重肢体缺血 (CLI) 患者的疗效和安全性
一项观察性、基于实践、开放标签、可行性研究,以观察肌肉注射 Stempeucel® 对因 Buerger 病导致的马来西亚严重肢体缺血 (CLI) 患者的疗效和安全性
这项基于实践的观察性可行性研究的目的是观察肌肉注射 Stempeucel® 对因 Buerger 病导致严重肢体缺血 (CLI) 的马来西亚患者的疗效和安全性。 它旨在回答的主要问题是:
- 肌内注射 Stempeucel® 能否减轻 Buerger 病引起的 CLI 症状,同时提高治愈率和功能结果?
- 肌内注射 Stempeucel® 是否会导致 Buerger 病患者出现任何严重的 CLI 不良事件? 在为任何其他有炎症的器官施用 Stempeucel 之前,研究患者将由 PI 进行评估。 研究患者还将在研究治疗给药后随访 1 年,以进行安全性和有效性评估。
研究概览
详细说明
标题:一项观察性、基于实践、开放标签、可行性研究,以观察肌肉注射 Stempeucel® 对因 Buerger 病导致的马来西亚严重肢体缺血 (CLI) 患者的疗效和安全性
研究设计:单臂、基于实践的可行性研究
研究持续时间:主要方案的估计持续时间(例如从筛选开始到最后一个受试者处理和研究结束)大约为 18 个月
学习中心:马来西亚国民大学医学中心 (UKMMMC), Jalan Yaacob Latif, Bandar Tun Razak, 56000 Kuala Lumpur, Wilayah Persekutuan, Malaysia
目的:观察 Stempeucel®(成人人骨髓来源、培养、汇集的同种异体间充质基质细胞)在因布尔格氏病导致严重肢体缺血 (CLI) 的马来西亚患者中的疗效和安全性。
研究药物产品
描述
• 体外培养的同种异体间充质干细胞 (MSC) 提供在冷冻袋中,由 150 或 2 亿个组成,悬浮在 50 毫升含有 1.5% 人血清白蛋白 (HSA) 和 3% 二甲亚砜 (DMSO) 的 Plasmalyte A 中。
剂量 • Stempeucel® 的剂量基于体重。 推荐剂量为 200 万个细胞/kg 体重。
行政
• 以0.6 ml/kg(2 亿袋)或0.8 ml/kg(1.5 亿袋)的剂量肌肉注射40 - 60 次,注射到肌肉的不同点。 溃疡周围追加注射2毫升(2亿袋)或3毫升(1.5亿袋)
受试者人数 3 名患者
数据分析
数据管理:
- 电子病例记录表 (eCRF) 将用于数据输入。
- Oracle 临床(或其他具有审计跟踪的合适替代方案)将用于数据管理。
统计方法:
- SPSS® 软件包(IBM Inc.,美国,版本 22)将用于统计评估。
- 研究中所有具有相关疗效和安全性数据的患者都将被考虑用于分析。
- 将酌情使用 GEE(广义估计方程)方法或配对 t 检验进行功效分析。
- 使用患者自愿披露的信息监测的不良事件以及 PI 观察到的不良事件将通过 AE 总数进行描述性总结。
- AE 将被分类为:所有 AE、所有治疗紧急 AE、所有严重 AE、治疗相关 AE 和严重治疗相关 AE。 这些事件将酌情报告和总结。
研究类型
注册 (估计的)
阶段
- 第四阶段
联系人和位置
学习联系方式
- 姓名:Jezamine Lim, PhD
- 电话号码:+60176073103
- 邮箱:info@cellbiopeutics.com
学习地点
-
-
-
Kuala Lumpur、马来西亚、56000
- 招聘中
- Hospital Canselor Tunku Mukhriz
-
接触:
- Farhana Raduan, MS
- 电话号码:8299 +603-9145
- 邮箱:farhana@ppukm.ukm.edu.my
-
首席研究员:
- Hanafiah Harunarashid, MS
-
副研究员:
- Lenny Suryani Safri, MS
-
副研究员:
- Mohamad Azim Md Idris, MS
-
-
参与标准
资格标准
适合学习的年龄
- 成人
- 年长者
接受健康志愿者
描述
纳入标准:
- 年龄在 18-65 岁之间的男性或女性(在研究过程中愿意使用公认的避孕方法)。
- 根据 Shionoya 标准诊断的 Buerger 病
- 患者应至少有一处溃疡(目标溃疡):面积在 0.5 至 10 平方厘米(包括两者)之间
- 踝臂压力指数 (ABPI) ≤ 0.6。 如果 ABPI ≥ 1.1,则将执行趾臂指数 (TBI),TBI 应≤ 0.5
- 患者能够理解研究要求,自愿提供书面知情同意书,遵守研究要求,并同意返回进行必要的随访
排除标准:
- 被诊断患有动脉粥样硬化性外周动脉疾病的患者
- 适合手术或经皮血运重建的患者
- 3个月内有参加过另一项干细胞试验或治疗史的患者
- 研究者确定不适合参加临床试验的患者
学习计划
研究是如何设计的?
设计细节
- 主要用途:治疗
- 分配:不适用
- 介入模型:单组作业
- 屏蔽:无(打开标签)
武器和干预
参与者组/臂 |
干预/治疗 |
|---|---|
|
实验性的:Stempeucel®
Stempeucel®(离体培养的 MSCs)以 15 ml 冷冻袋提供,其中包含 2 亿或 1.5 亿个 MSC、85% PlasmaLyte-A、5% HSA 和 10% DMSO,总体积为 15 ml。
解冻后,将 35 毫升的 PlasmaLyte A 添加到 Stempeucel® 中,使总体积达到 50 毫升。
成分的最终浓度为 1.5% HSA 和 3% DMSO。
|
• 体外培养的同种异体间充质干细胞 (MSC) 提供在冷冻袋中,由 150 或 2 亿个组成,悬浮在 50 毫升含有 1.5% 人血清白蛋白 (HSA) 和 3% 二甲亚砜 (DMSO) 的 Plasmalyte A 中。
其他名称:
|
研究衡量的是什么?
主要结果指标
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
|---|---|---|
|
缺血性静息痛的变化
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
与筛查相比视觉模拟评分 (VAS) 的变化
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
|
溃疡大小的变化
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
与筛查相比溃疡大小的变化
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
|
踝臂压力指数 (ABPI) 的变化
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
与筛查相比,踝臂压力指数 (ABPI) 的变化
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
|
总步行距离的变化
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
与筛查相比,跑步机上总步行距离的变化
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
|
主要无截肢生存率的变化
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
与筛查相比,无截肢生存率的变化
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、第 30、90、180 和 360 天
|
|
血管生成的变化
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天),第 180 天
|
与筛查相比,数字减影血管造影 (DSA) 测量的血管生成变化
|
筛选(第 -14 至 -1 天),第 180 天
|
次要结果测量
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
|---|---|---|
|
AE 的类型、AE 的数量和 AE 患者的比例
大体时间:筛选(第-14至-1天)
|
在整个研究过程中,将监测和记录患者自愿披露的 AE 和研究者观察到的 AE
|
筛选(第-14至-1天)
|
|
实验室检查结果异常的发生率(血清化学、血液学、肝功能检查)
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、第 7、30、90、180 和 360 天
|
将进行以下实验室测试:血清化学、血液学、肝功能测试。
如果出现异常结果,则应将其记录为不良事件或从研究(筛选)中排除。
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、第 7、30、90、180 和 360 天
|
|
尿检结果异常的发生率
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天),第 180 天
|
将进行尿检。
如果出现异常结果,则应将其记录为不良事件或从研究(筛选)中排除。
|
筛选(第 -14 至 -1 天),第 180 天
|
|
TNF-α异常发生率
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、第 7 天和第 30 天
|
将进行TNF-α测试。
如果出现异常结果,则应将其记录为不良事件或从研究(筛选)中排除。
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、第 7 天和第 30 天
|
|
异常生命体征的发生率
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、基线、第 7、30、90、180 和 360 天
|
将进行以下评估:血压、心率、呼吸频率和体温。
如果出现异常结果,则应将其记录为不良事件或从研究(筛选)中排除。
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、基线、第 7、30、90、180 和 360 天
|
|
异常体检发生率
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、基线、第 7、30、90、180 和 360 天
|
将进行以下检查:视力、心脏、肺、腹部、神经系统、肌肉骨骼系统等。
如果出现异常情况,则应将其记录为不良事件或从研究(筛选)中排除。
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、基线、第 7、30、90、180 和 360 天
|
|
心电图参数异常的发生率
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天)、基线、第 7、30、90、180 和 360 天
|
将进行以下评估:具有长导联 II 的 12 导联 ECG 记录和二维超声心动图(2D ECHO;如果需要)。
如果出现异常情况,则应将其记录为不良事件或从研究(筛选)中排除。
|
筛选(第 -14 至 -1 天)、基线、第 7、30、90、180 和 360 天
|
|
异常胸部状况的发生率
大体时间:筛选(第 -14 至 -1 天),第 180 天
|
将进行胸部 X 光检查。
如果出现异常情况,则应将其记录为不良事件或从研究(筛选)中排除。
|
筛选(第 -14 至 -1 天),第 180 天
|
合作者和调查者
调查人员
- 首席研究员:Hanafiah Harunarashid, MS、National University of Malaysia
出版物和有用的链接
一般刊物
- Sprengers RW, Lips DJ, Moll FL, Verhaar MC. Progenitor cell therapy in patients with critical limb ischemia without surgical options. Ann Surg. 2008 Mar;247(3):411-20. doi: 10.1097/SLA.0b013e318153fdcb.
- Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC, Jaiswal RK, Douglas R, Mosca JD, Moorman MA, Simonetti DW, Craig S, Marshak DR. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 1999 Apr 2;284(5411):143-7. doi: 10.1126/science.284.5411.143.
- Asahara T, Murohara T, Sullivan A, Silver M, van der Zee R, Li T, Witzenbichler B, Schatteman G, Isner JM. Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis. Science. 1997 Feb 14;275(5302):964-7. doi: 10.1126/science.275.5302.964.
- Molavi B, Zafarghandi MR, Aminizadeh E, Hosseini SE, Mirzayi H, Arab L, Baharvand H, Aghdami N. Safety and Efficacy of Repeated Bone Marrow Mononuclear Cell Therapy in Patients with Critical Limb Ischemia in a Pilot Randomized Controlled Trial. Arch Iran Med. 2016 Jun;19(6):388-96.
- Conte MS, Geraghty PJ, Bradbury AW, Hevelone ND, Lipsitz SR, Moneta GL, Nehler MR, Powell RJ, Sidawy AN. Suggested objective performance goals and clinical trial design for evaluating catheter-based treatment of critical limb ischemia. J Vasc Surg. 2009 Dec;50(6):1462-73.e1-3. doi: 10.1016/j.jvs.2009.09.044. Epub 2009 Nov 7.
- Kalka C, Masuda H, Takahashi T, Kalka-Moll WM, Silver M, Kearney M, Li T, Isner JM, Asahara T. Transplantation of ex vivo expanded endothelial progenitor cells for therapeutic neovascularization. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000 Mar 28;97(7):3422-7. doi: 10.1073/pnas.97.7.3422.
- Di Nicola M, Carlo-Stella C, Magni M, Milanesi M, Longoni PD, Matteucci P, Grisanti S, Gianni AM. Human bone marrow stromal cells suppress T-lymphocyte proliferation induced by cellular or nonspecific mitogenic stimuli. Blood. 2002 May 15;99(10):3838-43. doi: 10.1182/blood.v99.10.3838.
- Bura A, Planat-Benard V, Bourin P, Silvestre JS, Gross F, Grolleau JL, Saint-Lebese B, Peyrafitte JA, Fleury S, Gadelorge M, Taurand M, Dupuis-Coronas S, Leobon B, Casteilla L. Phase I trial: the use of autologous cultured adipose-derived stroma/stem cells to treat patients with non-revascularizable critical limb ischemia. Cytotherapy. 2014 Feb;16(2):245-57. doi: 10.1016/j.jcyt.2013.11.011.
- Gupta PK, Chullikana A, Parakh R, Desai S, Das A, Gottipamula S, Krishnamurthy S, Anthony N, Pherwani A, Majumdar AS. A double blind randomized placebo controlled phase I/II study assessing the safety and efficacy of allogeneic bone marrow derived mesenchymal stem cell in critical limb ischemia. J Transl Med. 2013 Jun 10;11:143. doi: 10.1186/1479-5876-11-143.
- Reyes M, Verfaillie CM. Characterization of multipotent adult progenitor cells, a subpopulation of mesenchymal stem cells. Ann N Y Acad Sci. 2001 Jun;938:231-3; discussion 233-5. doi: 10.1111/j.1749-6632.2001.tb03593.x.
- Norgren L, Hiatt WR, Dormandy JA, Nehler MR, Harris KA, Fowkes FG; TASC II Working Group; Bell K, Caporusso J, Durand-Zaleski I, Komori K, Lammer J, Liapis C, Novo S, Razavi M, Robbs J, Schaper N, Shigematsu H, Sapoval M, White C, White J, Clement D, Creager M, Jaff M, Mohler E 3rd, Rutherford RB, Sheehan P, Sillesen H, Rosenfield K. Inter-Society Consensus for the Management of Peripheral Arterial Disease (TASC II). Eur J Vasc Endovasc Surg. 2007;33 Suppl 1:S1-75. doi: 10.1016/j.ejvs.2006.09.024. Epub 2006 Nov 29. No abstract available.
- Tateishi-Yuyama E, Matsubara H, Murohara T, Ikeda U, Shintani S, Masaki H, Amano K, Kishimoto Y, Yoshimoto K, Akashi H, Shimada K, Iwasaka T, Imaizumi T; Therapeutic Angiogenesis using Cell Transplantation (TACT) Study Investigators. Therapeutic angiogenesis for patients with limb ischaemia by autologous transplantation of bone-marrow cells: a pilot study and a randomised controlled trial. Lancet. 2002 Aug 10;360(9331):427-35. doi: 10.1016/S0140-6736(02)09670-8.
- Shi Q, Rafii S, Wu MH, Wijelath ES, Yu C, Ishida A, Fujita Y, Kothari S, Mohle R, Sauvage LR, Moore MA, Storb RF, Hammond WP. Evidence for circulating bone marrow-derived endothelial cells. Blood. 1998 Jul 15;92(2):362-7.
- Ikenaga S, Hamano K, Nishida M, Kobayashi T, Li TS, Kobayashi S, Matsuzaki M, Zempo N, Esato K. Autologous bone marrow implantation induced angiogenesis and improved deteriorated exercise capacity in a rat ischemic hindlimb model. J Surg Res. 2001 Apr;96(2):277-83. doi: 10.1006/jsre.2000.6080.
- Iba O, Matsubara H, Nozawa Y, Fujiyama S, Amano K, Mori Y, Kojima H, Iwasaka T. Angiogenesis by implantation of peripheral blood mononuclear cells and platelets into ischemic limbs. Circulation. 2002 Oct 8;106(15):2019-25. doi: 10.1161/01.cir.0000031332.45480.79.
- Lawall H, Bramlage P, Amann B. Stem cell and progenitor cell therapy in peripheral artery disease. A critical appraisal. Thromb Haemost. 2010 Apr;103(4):696-709. doi: 10.1160/TH09-10-0688. Epub 2010 Feb 19.
- Amann B, Luedemann C, Ratei R, Schmidt-Lucke JA. Autologous bone marrow cell transplantation increases leg perfusion and reduces amputations in patients with advanced critical limb ischemia due to peripheral artery disease. Cell Transplant. 2009;18(3):371-80. doi: 10.3727/096368909788534942. Epub 2009 Apr 2.
- Tse WT, Pendleton JD, Beyer WM, Egalka MC, Guinan EC. Suppression of allogeneic T-cell proliferation by human marrow stromal cells: implications in transplantation. Transplantation. 2003 Feb 15;75(3):389-97. doi: 10.1097/01.TP.0000045055.63901.A9.
- Shintani S, Murohara T, Ikeda H, Ueno T, Sasaki K, Duan J, Imaizumi T. Augmentation of postnatal neovascularization with autologous bone marrow transplantation. Circulation. 2001 Feb 13;103(6):897-903. doi: 10.1161/01.cir.103.6.897.
- Haugen S, Casserly IP, Regensteiner JG, Hiatt WR. Risk assessment in the patient with established peripheral arterial disease. Vasc Med. 2007 Nov;12(4):343-50. doi: 10.1177/1358863X07083278.
- Dormandy J, Heeck L, Vig S. The fate of patients with critical leg ischemia. Semin Vasc Surg. 1999 Jun;12(2):142-7.
- Gottsater A. Managing risk factors for atherosclerosis in critical limb ischaemia. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2006 Nov;32(5):478-83. doi: 10.1016/j.ejvs.2006.03.007. Epub 2006 Apr 24.
- Schiavetta A, Maione C, Botti C, Marino G, Lillo S, Garrone A, Lanza L, Pagliari S, Silvestroni A, Signoriello G, Sica V, Cobellis G. A phase II trial of autologous transplantation of bone marrow stem cells for critical limb ischemia: results of the Naples and Pietra Ligure Evaluation of Stem Cells study. Stem Cells Transl Med. 2012 Jul;1(7):572-8. doi: 10.5966/sctm.2012-0021. Epub 2012 Jul 6.
- Fadini GP, Agostini C, Avogaro A. Autologous stem cell therapy for peripheral arterial disease meta-analysis and systematic review of the literature. Atherosclerosis. 2010 Mar;209(1):10-7. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2009.08.033. Epub 2009 Aug 21.
- Marston WA, Davies SW, Armstrong B, Farber MA, Mendes RC, Fulton JJ, Keagy BA. Natural history of limbs with arterial insufficiency and chronic ulceration treated without revascularization. J Vasc Surg. 2006 Jul;44(1):108-114. doi: 10.1016/j.jvs.2006.03.026.
- Gupta NK, Armstrong EJ, Parikh SA. The current state of stem cell therapy for peripheral artery disease. Curr Cardiol Rep. 2014 Feb;16(2):447. doi: 10.1007/s11886-013-0447-2.
- Tachi Y, Fukui D, Wada Y, Koshikawa M, Shimodaira S, Ikeda U, Amano J. Changes in angiogenesis-related factors in serum following autologous bone marrow cell implantation for severe limb ischemia. Expert Opin Biol Ther. 2008 Jun;8(6):705-12. doi: 10.1517/14712598.8.6.705.
- Liang TW, Jester A, Motaganahalli RL, Wilson MG, G'Sell P, Akingba GA, Fajardo A, Murphy MP. Autologous bone marrow mononuclear cell therapy for critical limb ischemia is effective and durable. J Vasc Surg. 2016 Jun;63(6):1541-5. doi: 10.1016/j.jvs.2016.01.022. Epub 2016 Mar 23.
- Lu Y, Wang Z, Zhu M. Human bone marrow mesenchymal stem cells transfected with human insulin genes can secrete insulin stably. Ann Clin Lab Sci. 2006 Spring;36(2):127-36.
- Oswald J, Boxberger S, Jorgensen B, Feldmann S, Ehninger G, Bornhauser M, Werner C. Mesenchymal stem cells can be differentiated into endothelial cells in vitro. Stem Cells. 2004;22(3):377-84. doi: 10.1634/stemcells.22-3-377.
- Muraglia A, Cancedda R, Quarto R. Clonal mesenchymal progenitors from human bone marrow differentiate in vitro according to a hierarchical model. J Cell Sci. 2000 Apr;113 ( Pt 7):1161-6. doi: 10.1242/jcs.113.7.1161.
- Devine SM, Bartholomew AM, Mahmud N, Nelson M, Patil S, Hardy W, Sturgeon C, Hewett T, Chung T, Stock W, Sher D, Weissman S, Ferrer K, Mosca J, Deans R, Moseley A, Hoffman R. Mesenchymal stem cells are capable of homing to the bone marrow of non-human primates following systemic infusion. Exp Hematol. 2001 Feb;29(2):244-55. doi: 10.1016/s0301-472x(00)00635-4.
- Bhatia R, Hare JM. Mesenchymal stem cells: future source for reparative medicine. Congest Heart Fail. 2005 Mar-Apr;11(2):87-91; quiz 92-3. doi: 10.1111/j.1527-5299.2005.03618.x.
- Kamihata H, Matsubara H, Nishiue T, Fujiyama S, Tsutsumi Y, Ozono R, Masaki H, Mori Y, Iba O, Tateishi E, Kosaki A, Shintani S, Murohara T, Imaizumi T, Iwasaka T. Implantation of bone marrow mononuclear cells into ischemic myocardium enhances collateral perfusion and regional function via side supply of angioblasts, angiogenic ligands, and cytokines. Circulation. 2001 Aug 28;104(9):1046-52. doi: 10.1161/hc3501.093817.
- Wu Y, Chen L, Scott PG, Tredget EE. Mesenchymal stem cells enhance wound healing through differentiation and angiogenesis. Stem Cells. 2007 Oct;25(10):2648-59. doi: 10.1634/stemcells.2007-0226. Epub 2007 Jul 5.
- Mahmud N, Pang W, Cobbs C, Alur P, Borneman J, Dodds R, Archambault M, Devine S, Turian J, Bartholomew A, Vanguri P, Mackay A, Young R, Hoffman R. Studies of the route of administration and role of conditioning with radiation on unrelated allogeneic mismatched mesenchymal stem cell engraftment in a nonhuman primate model. Exp Hematol. 2004 May;32(5):494-501. doi: 10.1016/j.exphem.2004.02.010.
- Bhattacharya V, McSweeney PA, Shi Q, Bruno B, Ishida A, Nash R, Storb RF, Sauvage LR, Hammond WP, Wu MH. Enhanced endothelialization and microvessel formation in polyester grafts seeded with CD34(+) bone marrow cells. Blood. 2000 Jan 15;95(2):581-5.
- Hirata K, Li TS, Nishida M, Ito H, Matsuzaki M, Kasaoka S, Hamano K. Autologous bone marrow cell implantation as therapeutic angiogenesis for ischemic hindlimb in diabetic rat model. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2003 Jan;284(1):H66-70. doi: 10.1152/ajpheart.00547.2002. Epub 2002 Sep 19.
- Gupta PK, Krishna M, Chullikana A, Desai S, Murugesan R, Dutta S, Sarkar U, Raju R, Dhar A, Parakh R, Jeyaseelan L, Viswanathan P, Vellotare PK, Seetharam RN, Thej C, Rengasamy M, Balasubramanian S, Majumdar AS. Administration of Adult Human Bone Marrow-Derived, Cultured, Pooled, Allogeneic Mesenchymal Stromal Cells in Critical Limb Ischemia Due to Buerger's Disease: Phase II Study Report Suggests Clinical Efficacy. Stem Cells Transl Med. 2017 Mar;6(3):689-699. doi: 10.5966/sctm.2016-0237. Epub 2016 Oct 5.
- Wester T, Jorgensen JJ, Stranden E, Sandbaek G, Tjonnfjord G, Bay D, Kolleros D, Kroese AJ, Brinchmann JE. Treatment with autologous bone marrow mononuclear cells in patients with critical lower limb ischaemia. A pilot study. Scand J Surg. 2008;97(1):56-62. doi: 10.1177/145749690809700108.
- Debin L, Youzhao J, Ziwen L, et al. Autologous transplantation of bone marrow mesenchymal stem cells on diabetic patients with lower limb ischemia. Journal of Medical Colleges of PLA. 2008; 23(2): 106-155. doi: 10.1016/S1000-1948(08)60031-3
- Idei N, Soga J, Hata T, Fujii Y, Fujimura N, Mikami S, Maruhashi T, Nishioka K, Hidaka T, Kihara Y, Chowdhury M, Noma K, Taguchi A, Chayama K, Sueda T, Higashi Y. Autologous bone-marrow mononuclear cell implantation reduces long-term major amputation risk in patients with critical limb ischemia: a comparison of atherosclerotic peripheral arterial disease and Buerger disease. Circ Cardiovasc Interv. 2011 Feb 1;4(1):15-25. doi: 10.1161/CIRCINTERVENTIONS.110.955724. Epub 2011 Jan 4.
- Rasmusson I. Immune modulation by mesenchymal stem cells. Exp Cell Res. 2006 Jul 15;312(12):2169-79. doi: 10.1016/j.yexcr.2006.03.019. Epub 2006 Apr 24.
- ICH Topic E 2 A:Clinical Safety Data Management: Definitions and Standards for Expedited Reporting-(CPMP/ICH/377/95)
- Central Drugs Standard Control Organization, Directorate General of Health Services, Ministry of Health & Family Welfare, Govt. of India. Draft Guidelines on Audio-Visual Recording of Informed Consent Process in Clinical Trial. 2014. [cited 2016 Jul 29]. Available from: http://www.cdsco.nic.in/writereaddata/Guidance_for_AV%20Recording_09.January.14.pdf.
- ClinicalTrials.gov. Identifier NCT01257776, Human Adipose Derived Mesenchymal Stem Cells for Critical Limb Ischemia (CLI) in Diabetic Patients. Available from: http://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT01079403
研究记录日期
研究主要日期
学习开始 (实际的)
初级完成 (估计的)
研究完成 (估计的)
研究注册日期
首次提交
首先提交符合 QC 标准的
首次发布 (实际的)
研究记录更新
最后更新发布 (估计的)
上次提交的符合 QC 标准的更新
最后验证
更多信息
此信息直接从 clinicaltrials.gov 网站检索,没有任何更改。如果您有任何更改、删除或更新研究详细信息的请求,请联系 register@clinicaltrials.gov. clinicaltrials.gov 上实施更改,我们的网站上也会自动更新.