- ICH GCP
- 미국 임상 시험 레지스트리
- 임상시험 NCT05854615
버거씨병으로 인한 중증 하지 허혈(CLI) 환자에서 Stempeucel®의 효능 및 안전성
버거병으로 인한 중증 사지 허혈(CLI)이 있는 말레이시아 환자에서 Stempeucel®의 근육내 투여의 효능 및 안전성을 관찰하기 위한 관찰, 실습 기반, 공개 라벨 타당성 연구
이 관찰 및 실제 기반 타당성 조사의 목표는 버거씨병으로 인한 중증 사지 허혈(CLI)이 있는 말레이시아 환자에서 Stempeucel®의 근육내 투여의 효능과 안전성을 관찰하는 것입니다. 대답하려는 주요 질문은 다음과 같습니다.
- Stempeucel®의 근육내 투여는 치유율과 기능적 결과를 향상시키면서 버거병으로 인한 CLI의 증상을 감소시킬 수 있습니까?
- Stempeucel®의 근육내 투여는 버거병 환자로 인해 CLI에서 심각한 부작용을 유발합니까? 연구 환자는 염증이 있는 다른 장기에 Stempeusel®을 투여하기 전에 PI에 의해 평가됩니다. 연구 환자는 또한 안전성 및 효능 평가를 위해 연구 치료제 투여 후 최대 1년 동안 추적될 것입니다.
연구 개요
상세 설명
제목: 버거병으로 인한 중증 사지 허혈(CLI)이 있는 말레이시아 환자에서 Stempeucel®의 근육내 투여의 효능 및 안전성을 관찰하기 위한 관찰, 실습 기반, 공개 라벨 타당성 연구
연구 설계: 단일 부문, 실습 기반, 타당성 조사
연구 기간: 주요 프로토콜의 예상 기간(예: 스크리닝 시작부터 마지막 피험자 처리 및 연구 종료까지)은 약 18개월입니다.
연구 센터: Universiti Kebangsaan Malaysia Medical Center(UKMMMC), Jalan Yaacob Latif, Bandar Tun Razak, 56000 Kuala Lumpur, Wilayah Persekutuan, Malaysia
목표: 버거병으로 인한 중증 사지 허혈(CLI)이 있는 말레이시아 환자에서 Stempeucel®(성인 인간 골수 유래, 배양, 혼합, 동종 간엽 간질 세포)의 효능과 안전성을 관찰합니다.
연구 의약품
설명
• 1.5% HSA(Human Serum Albumin) 및 3% dimethyl sulfoxide(DMSO)가 포함된 Plasmalyte A 50 ml에 현탁된 1억 5000만 또는 2억 개로 구성된 cryo-bag에 공급되는 생체 외 배양 동종 간엽 줄기 세포(MSC).
투여량 • Stempeusel®의 투여량은 체중을 기준으로 합니다. 권장 용량은 2백만 세포/kg 체중입니다.
관리
• 0.6 ml/kg(2억 백) 또는 0.8 ml/kg(1억 5천만 백)을 근육의 여러 지점에 40 - 60회 주사. 궤양 주변에 2ml(2억 bag) 또는 3ml(1억5000만 bag) 추가 주사
피험자 수 3명
데이터 분석
데이터 관리:
- 데이터 입력에는 전자 사례 기록 양식(eCRF)이 사용됩니다.
- Oracle 임상(또는 감사 추적이 있는 다른 적절한 대안)이 데이터 관리에 사용됩니다.
통계적 방법:
- 통계적 평가에는 SPSS® 패키지(IBM Inc., USA, 버전 22)가 사용됩니다.
- 관련 효능 및 안전성 데이터가 있는 연구의 모든 환자가 분석을 위해 고려됩니다.
- GEE(Generalized Estimating Equations) 방법 또는 paired t test를 적절하게 사용하여 효능 분석을 수행합니다.
- 환자에 의해 자발적으로 공개되고 PI에 의해 관찰된 정보를 사용하여 모니터링된 유해 사례는 총 AE(들) 수로 기술적으로 요약될 것이다.
- AE는 다음과 같이 분류될 것이다: 모든 AE, 모든 치료 긴급 AE, 모든 중증 AE, 치료 관련 AE 및 중증 치료 관련 AE. 이러한 이벤트는 적절하게 보고되고 요약됩니다.
연구 유형
등록 (추정된)
단계
- 4단계
연락처 및 위치
연구 연락처
- 이름: Jezamine Lim, PhD
- 전화번호: +60176073103
- 이메일: info@cellbiopeutics.com
연구 장소
-
-
-
Kuala Lumpur, 말레이시아, 56000
- 모병
- Hospital Canselor Tunku Mukhriz
-
연락하다:
- Farhana Raduan, MS
- 전화번호: 8299 +603-9145
- 이메일: farhana@ppukm.ukm.edu.my
-
수석 연구원:
- Hanafiah Harunarashid, MS
-
부수사관:
- Lenny Suryani Safri, MS
-
부수사관:
- Mohamad Azim Md Idris, MS
-
-
참여기준
자격 기준
공부할 수 있는 나이
- 성인
- 고령자
건강한 자원 봉사자를 받아들입니다
설명
포함 기준:
- 18-65세 연령 그룹의 남성 또는 여성(연구 과정 동안 허용된 피임 방법을 기꺼이 사용함).
- 시오노야 기준으로 진단된 버거병
- 환자는 적어도 하나의 궤양(표적 궤양)이 있어야 합니다: 0.5~10cm2 사이의 면적(둘 다 포함)
- 발목 상완 압력 지수(ABPI) ≤ 0.6. ABPI가 ≥ 1.1이면 발가락 상완 지수(TBI)가 수행되고 TBI는 ≤ 0.5여야 합니다.
- 연구의 요구 사항을 이해할 수 있고 자발적인 서면 동의서를 제공하고 연구 요구 사항을 준수하며 필요한 후속 방문을 위해 다시 방문하는 데 동의하는 환자
제외 기준:
- 죽상 경화성 말초 동맥 질환으로 진단받은 환자
- 외과적 또는 경피적 재관류술을 받을 수 있는 환자
- 3개월 이내에 다른 줄기세포 임상시험 또는 치료에 참여한 이력이 있는 환자
- 연구자가 판단하여 임상시험 참여가 부적합하다고 판단되는 환자
공부 계획
연구는 어떻게 설계됩니까?
디자인 세부사항
- 주 목적: 치료
- 할당: 해당 없음
- 중재 모델: 단일 그룹 할당
- 마스킹: 없음(오픈 라벨)
무기와 개입
참가자 그룹 / 팔 |
개입 / 치료 |
---|---|
실험적: 스테푸셀®
총 부피 15ml의 2억 또는 1억 5천만 MSC, 85% PlasmaLyte-A, 5% HSA 및 10% DMSO로 구성된 15ml 냉동 백에 공급되는 Stempeucel®(생체외 배양 MSC).
해동 후 PlasmaLyte A 35ml를 Stempeucel®에 추가하여 총 부피를 50ml로 만듭니다.
구성 요소의 최종 농도는 1.5% HSA 및 3% DMSO입니다.
|
• 1.5% HSA(Human Serum Albumin) 및 3% dimethyl sulfoxide(DMSO)가 포함된 Plasmalyte A 50 ml에 현탁된 1억 5000만 또는 2억 개로 구성된 cryo-bag에 공급되는 생체 외 배양 동종 간엽 줄기 세포(MSC).
다른 이름들:
|
연구는 무엇을 측정합니까?
주요 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
---|---|---|
허혈성 휴식 통증의 변화
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
스크리닝과 비교한 시각적 아날로그 점수(VAS)의 변화
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
궤양의 크기 변화
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
스크리닝과 비교한 궤양의 크기 변화
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
발목 상완 압력 지수(ABPI)의 변화
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
스크리닝과 비교한 발목 상완 압력 지수(ABPI)의 변화
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
총 도보 거리의 변화
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
스크리닝과 비교하여 런닝머신에서 총 걷는 거리의 변화
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
주요 절단 없는 생존의 변화
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
스크리닝 대비 절단 없는 생존율의 변화
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 30일, 90일, 180일 및 360일
|
혈관신생의 변화
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 180일
|
스크리닝과 비교하여 디지털 감산 혈관조영술(DSA)로 측정한 혈관신생의 변화
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 180일
|
2차 결과 측정
결과 측정 |
측정값 설명 |
기간 |
---|---|---|
AE(들)의 유형, AE(들)의 수 및 AE(들)가 있는 환자의 비율
기간: 스크리닝(-14일에서 -1일)
|
AE(들)은 환자에 의해 자발적으로 공개되고 연구 전반에 걸쳐 조사자가 관찰한 바와 같이 모니터링되고 기록될 것이다.
|
스크리닝(-14일에서 -1일)
|
비정상적인 실험실 검사 결과의 발생률(혈청 화학, 혈액학, 간 기능 검사)
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 7일, 30일, 90일, 180일 및 360일
|
다음 실험실 테스트가 실시됩니다: 혈청 화학, 혈액학, 간 기능 테스트.
비정상적인 결과의 경우 부작용으로 기록하거나 연구(선별)에서 제외해야 합니다.
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 7일, 30일, 90일, 180일 및 360일
|
비정상적인 소변 검사 결과의 발생률
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 180일
|
소변검사를 시행하게 됩니다.
비정상적인 결과의 경우 부작용으로 기록하거나 연구(선별)에서 제외해야 합니다.
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 180일
|
비정상적인 TNF-α의 발생
기간: 스크리닝(-14일에서 -1일), 7일 및 30일
|
TNF-α 검사를 시행합니다.
비정상적인 결과의 경우 부작용으로 기록하거나 연구(선별)에서 제외해야 합니다.
|
스크리닝(-14일에서 -1일), 7일 및 30일
|
비정상적인 활력 징후의 발생
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 베이스라인, 7일, 30일, 90일, 180일 및 360일
|
다음 평가가 수행됩니다: 혈압, 심박수, 호흡수 및 체온.
비정상적인 결과의 경우 부작용으로 기록하거나 연구(선별)에서 제외해야 합니다.
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 베이스라인, 7일, 30일, 90일, 180일 및 360일
|
비정상적인 신체 검사의 부각
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 베이스라인, 7일, 30일, 90일, 180일 및 360일
|
시각, 심장, 폐, 복부, 신경계, 근골격계 등의 검사가 실시됩니다.
비정상적인 조건의 경우 부작용으로 기록하거나 연구에서 제외(스크리닝)해야 합니다.
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 베이스라인, 7일, 30일, 90일, 180일 및 360일
|
비정상적인 ECG 매개변수의 발생률
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 베이스라인, 7일, 30일, 90일, 180일 및 360일
|
다음 평가가 수행됩니다: 긴 리드 II를 포함한 12개의 리드 ECG 기록 및 2차원 심초음파(2D ECHO, 필요한 경우).
비정상적인 조건의 경우 부작용으로 기록하거나 연구에서 제외(스크리닝)해야 합니다.
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 베이스라인, 7일, 30일, 90일, 180일 및 360일
|
비정상적인 흉부 상태의 발생
기간: 스크리닝(-14일 내지 -1일), 180일
|
흉부 엑스레이를 시행하게 됩니다.
비정상적인 조건의 경우 부작용으로 기록하거나 연구에서 제외(스크리닝)해야 합니다.
|
스크리닝(-14일 내지 -1일), 180일
|
공동 작업자 및 조사자
수사관
- 수석 연구원: Hanafiah Harunarashid, MS, National University of Malaysia
간행물 및 유용한 링크
일반 간행물
- Sprengers RW, Lips DJ, Moll FL, Verhaar MC. Progenitor cell therapy in patients with critical limb ischemia without surgical options. Ann Surg. 2008 Mar;247(3):411-20. doi: 10.1097/SLA.0b013e318153fdcb.
- Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC, Jaiswal RK, Douglas R, Mosca JD, Moorman MA, Simonetti DW, Craig S, Marshak DR. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 1999 Apr 2;284(5411):143-7. doi: 10.1126/science.284.5411.143.
- Asahara T, Murohara T, Sullivan A, Silver M, van der Zee R, Li T, Witzenbichler B, Schatteman G, Isner JM. Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis. Science. 1997 Feb 14;275(5302):964-7. doi: 10.1126/science.275.5302.964.
- Molavi B, Zafarghandi MR, Aminizadeh E, Hosseini SE, Mirzayi H, Arab L, Baharvand H, Aghdami N. Safety and Efficacy of Repeated Bone Marrow Mononuclear Cell Therapy in Patients with Critical Limb Ischemia in a Pilot Randomized Controlled Trial. Arch Iran Med. 2016 Jun;19(6):388-96.
- Conte MS, Geraghty PJ, Bradbury AW, Hevelone ND, Lipsitz SR, Moneta GL, Nehler MR, Powell RJ, Sidawy AN. Suggested objective performance goals and clinical trial design for evaluating catheter-based treatment of critical limb ischemia. J Vasc Surg. 2009 Dec;50(6):1462-73.e1-3. doi: 10.1016/j.jvs.2009.09.044. Epub 2009 Nov 7.
- Kalka C, Masuda H, Takahashi T, Kalka-Moll WM, Silver M, Kearney M, Li T, Isner JM, Asahara T. Transplantation of ex vivo expanded endothelial progenitor cells for therapeutic neovascularization. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000 Mar 28;97(7):3422-7. doi: 10.1073/pnas.97.7.3422.
- Di Nicola M, Carlo-Stella C, Magni M, Milanesi M, Longoni PD, Matteucci P, Grisanti S, Gianni AM. Human bone marrow stromal cells suppress T-lymphocyte proliferation induced by cellular or nonspecific mitogenic stimuli. Blood. 2002 May 15;99(10):3838-43. doi: 10.1182/blood.v99.10.3838.
- Bura A, Planat-Benard V, Bourin P, Silvestre JS, Gross F, Grolleau JL, Saint-Lebese B, Peyrafitte JA, Fleury S, Gadelorge M, Taurand M, Dupuis-Coronas S, Leobon B, Casteilla L. Phase I trial: the use of autologous cultured adipose-derived stroma/stem cells to treat patients with non-revascularizable critical limb ischemia. Cytotherapy. 2014 Feb;16(2):245-57. doi: 10.1016/j.jcyt.2013.11.011.
- Gupta PK, Chullikana A, Parakh R, Desai S, Das A, Gottipamula S, Krishnamurthy S, Anthony N, Pherwani A, Majumdar AS. A double blind randomized placebo controlled phase I/II study assessing the safety and efficacy of allogeneic bone marrow derived mesenchymal stem cell in critical limb ischemia. J Transl Med. 2013 Jun 10;11:143. doi: 10.1186/1479-5876-11-143.
- Reyes M, Verfaillie CM. Characterization of multipotent adult progenitor cells, a subpopulation of mesenchymal stem cells. Ann N Y Acad Sci. 2001 Jun;938:231-3; discussion 233-5. doi: 10.1111/j.1749-6632.2001.tb03593.x.
- Norgren L, Hiatt WR, Dormandy JA, Nehler MR, Harris KA, Fowkes FG; TASC II Working Group; Bell K, Caporusso J, Durand-Zaleski I, Komori K, Lammer J, Liapis C, Novo S, Razavi M, Robbs J, Schaper N, Shigematsu H, Sapoval M, White C, White J, Clement D, Creager M, Jaff M, Mohler E 3rd, Rutherford RB, Sheehan P, Sillesen H, Rosenfield K. Inter-Society Consensus for the Management of Peripheral Arterial Disease (TASC II). Eur J Vasc Endovasc Surg. 2007;33 Suppl 1:S1-75. doi: 10.1016/j.ejvs.2006.09.024. Epub 2006 Nov 29. No abstract available.
- Tateishi-Yuyama E, Matsubara H, Murohara T, Ikeda U, Shintani S, Masaki H, Amano K, Kishimoto Y, Yoshimoto K, Akashi H, Shimada K, Iwasaka T, Imaizumi T; Therapeutic Angiogenesis using Cell Transplantation (TACT) Study Investigators. Therapeutic angiogenesis for patients with limb ischaemia by autologous transplantation of bone-marrow cells: a pilot study and a randomised controlled trial. Lancet. 2002 Aug 10;360(9331):427-35. doi: 10.1016/S0140-6736(02)09670-8.
- Shi Q, Rafii S, Wu MH, Wijelath ES, Yu C, Ishida A, Fujita Y, Kothari S, Mohle R, Sauvage LR, Moore MA, Storb RF, Hammond WP. Evidence for circulating bone marrow-derived endothelial cells. Blood. 1998 Jul 15;92(2):362-7.
- Ikenaga S, Hamano K, Nishida M, Kobayashi T, Li TS, Kobayashi S, Matsuzaki M, Zempo N, Esato K. Autologous bone marrow implantation induced angiogenesis and improved deteriorated exercise capacity in a rat ischemic hindlimb model. J Surg Res. 2001 Apr;96(2):277-83. doi: 10.1006/jsre.2000.6080.
- Iba O, Matsubara H, Nozawa Y, Fujiyama S, Amano K, Mori Y, Kojima H, Iwasaka T. Angiogenesis by implantation of peripheral blood mononuclear cells and platelets into ischemic limbs. Circulation. 2002 Oct 8;106(15):2019-25. doi: 10.1161/01.cir.0000031332.45480.79.
- Lawall H, Bramlage P, Amann B. Stem cell and progenitor cell therapy in peripheral artery disease. A critical appraisal. Thromb Haemost. 2010 Apr;103(4):696-709. doi: 10.1160/TH09-10-0688. Epub 2010 Feb 19.
- Amann B, Luedemann C, Ratei R, Schmidt-Lucke JA. Autologous bone marrow cell transplantation increases leg perfusion and reduces amputations in patients with advanced critical limb ischemia due to peripheral artery disease. Cell Transplant. 2009;18(3):371-80. doi: 10.3727/096368909788534942. Epub 2009 Apr 2.
- Tse WT, Pendleton JD, Beyer WM, Egalka MC, Guinan EC. Suppression of allogeneic T-cell proliferation by human marrow stromal cells: implications in transplantation. Transplantation. 2003 Feb 15;75(3):389-97. doi: 10.1097/01.TP.0000045055.63901.A9.
- Shintani S, Murohara T, Ikeda H, Ueno T, Sasaki K, Duan J, Imaizumi T. Augmentation of postnatal neovascularization with autologous bone marrow transplantation. Circulation. 2001 Feb 13;103(6):897-903. doi: 10.1161/01.cir.103.6.897.
- Haugen S, Casserly IP, Regensteiner JG, Hiatt WR. Risk assessment in the patient with established peripheral arterial disease. Vasc Med. 2007 Nov;12(4):343-50. doi: 10.1177/1358863X07083278.
- Dormandy J, Heeck L, Vig S. The fate of patients with critical leg ischemia. Semin Vasc Surg. 1999 Jun;12(2):142-7.
- Gottsater A. Managing risk factors for atherosclerosis in critical limb ischaemia. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2006 Nov;32(5):478-83. doi: 10.1016/j.ejvs.2006.03.007. Epub 2006 Apr 24.
- Schiavetta A, Maione C, Botti C, Marino G, Lillo S, Garrone A, Lanza L, Pagliari S, Silvestroni A, Signoriello G, Sica V, Cobellis G. A phase II trial of autologous transplantation of bone marrow stem cells for critical limb ischemia: results of the Naples and Pietra Ligure Evaluation of Stem Cells study. Stem Cells Transl Med. 2012 Jul;1(7):572-8. doi: 10.5966/sctm.2012-0021. Epub 2012 Jul 6.
- Fadini GP, Agostini C, Avogaro A. Autologous stem cell therapy for peripheral arterial disease meta-analysis and systematic review of the literature. Atherosclerosis. 2010 Mar;209(1):10-7. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2009.08.033. Epub 2009 Aug 21.
- Marston WA, Davies SW, Armstrong B, Farber MA, Mendes RC, Fulton JJ, Keagy BA. Natural history of limbs with arterial insufficiency and chronic ulceration treated without revascularization. J Vasc Surg. 2006 Jul;44(1):108-114. doi: 10.1016/j.jvs.2006.03.026.
- Gupta NK, Armstrong EJ, Parikh SA. The current state of stem cell therapy for peripheral artery disease. Curr Cardiol Rep. 2014 Feb;16(2):447. doi: 10.1007/s11886-013-0447-2.
- Tachi Y, Fukui D, Wada Y, Koshikawa M, Shimodaira S, Ikeda U, Amano J. Changes in angiogenesis-related factors in serum following autologous bone marrow cell implantation for severe limb ischemia. Expert Opin Biol Ther. 2008 Jun;8(6):705-12. doi: 10.1517/14712598.8.6.705.
- Liang TW, Jester A, Motaganahalli RL, Wilson MG, G'Sell P, Akingba GA, Fajardo A, Murphy MP. Autologous bone marrow mononuclear cell therapy for critical limb ischemia is effective and durable. J Vasc Surg. 2016 Jun;63(6):1541-5. doi: 10.1016/j.jvs.2016.01.022. Epub 2016 Mar 23.
- Lu Y, Wang Z, Zhu M. Human bone marrow mesenchymal stem cells transfected with human insulin genes can secrete insulin stably. Ann Clin Lab Sci. 2006 Spring;36(2):127-36.
- Oswald J, Boxberger S, Jorgensen B, Feldmann S, Ehninger G, Bornhauser M, Werner C. Mesenchymal stem cells can be differentiated into endothelial cells in vitro. Stem Cells. 2004;22(3):377-84. doi: 10.1634/stemcells.22-3-377.
- Muraglia A, Cancedda R, Quarto R. Clonal mesenchymal progenitors from human bone marrow differentiate in vitro according to a hierarchical model. J Cell Sci. 2000 Apr;113 ( Pt 7):1161-6. doi: 10.1242/jcs.113.7.1161.
- Devine SM, Bartholomew AM, Mahmud N, Nelson M, Patil S, Hardy W, Sturgeon C, Hewett T, Chung T, Stock W, Sher D, Weissman S, Ferrer K, Mosca J, Deans R, Moseley A, Hoffman R. Mesenchymal stem cells are capable of homing to the bone marrow of non-human primates following systemic infusion. Exp Hematol. 2001 Feb;29(2):244-55. doi: 10.1016/s0301-472x(00)00635-4.
- Bhatia R, Hare JM. Mesenchymal stem cells: future source for reparative medicine. Congest Heart Fail. 2005 Mar-Apr;11(2):87-91; quiz 92-3. doi: 10.1111/j.1527-5299.2005.03618.x.
- Kamihata H, Matsubara H, Nishiue T, Fujiyama S, Tsutsumi Y, Ozono R, Masaki H, Mori Y, Iba O, Tateishi E, Kosaki A, Shintani S, Murohara T, Imaizumi T, Iwasaka T. Implantation of bone marrow mononuclear cells into ischemic myocardium enhances collateral perfusion and regional function via side supply of angioblasts, angiogenic ligands, and cytokines. Circulation. 2001 Aug 28;104(9):1046-52. doi: 10.1161/hc3501.093817.
- Wu Y, Chen L, Scott PG, Tredget EE. Mesenchymal stem cells enhance wound healing through differentiation and angiogenesis. Stem Cells. 2007 Oct;25(10):2648-59. doi: 10.1634/stemcells.2007-0226. Epub 2007 Jul 5.
- Mahmud N, Pang W, Cobbs C, Alur P, Borneman J, Dodds R, Archambault M, Devine S, Turian J, Bartholomew A, Vanguri P, Mackay A, Young R, Hoffman R. Studies of the route of administration and role of conditioning with radiation on unrelated allogeneic mismatched mesenchymal stem cell engraftment in a nonhuman primate model. Exp Hematol. 2004 May;32(5):494-501. doi: 10.1016/j.exphem.2004.02.010.
- Bhattacharya V, McSweeney PA, Shi Q, Bruno B, Ishida A, Nash R, Storb RF, Sauvage LR, Hammond WP, Wu MH. Enhanced endothelialization and microvessel formation in polyester grafts seeded with CD34(+) bone marrow cells. Blood. 2000 Jan 15;95(2):581-5.
- Hirata K, Li TS, Nishida M, Ito H, Matsuzaki M, Kasaoka S, Hamano K. Autologous bone marrow cell implantation as therapeutic angiogenesis for ischemic hindlimb in diabetic rat model. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2003 Jan;284(1):H66-70. doi: 10.1152/ajpheart.00547.2002. Epub 2002 Sep 19.
- Gupta PK, Krishna M, Chullikana A, Desai S, Murugesan R, Dutta S, Sarkar U, Raju R, Dhar A, Parakh R, Jeyaseelan L, Viswanathan P, Vellotare PK, Seetharam RN, Thej C, Rengasamy M, Balasubramanian S, Majumdar AS. Administration of Adult Human Bone Marrow-Derived, Cultured, Pooled, Allogeneic Mesenchymal Stromal Cells in Critical Limb Ischemia Due to Buerger's Disease: Phase II Study Report Suggests Clinical Efficacy. Stem Cells Transl Med. 2017 Mar;6(3):689-699. doi: 10.5966/sctm.2016-0237. Epub 2016 Oct 5.
- Wester T, Jorgensen JJ, Stranden E, Sandbaek G, Tjonnfjord G, Bay D, Kolleros D, Kroese AJ, Brinchmann JE. Treatment with autologous bone marrow mononuclear cells in patients with critical lower limb ischaemia. A pilot study. Scand J Surg. 2008;97(1):56-62. doi: 10.1177/145749690809700108.
- Debin L, Youzhao J, Ziwen L, et al. Autologous transplantation of bone marrow mesenchymal stem cells on diabetic patients with lower limb ischemia. Journal of Medical Colleges of PLA. 2008; 23(2): 106-155. doi: 10.1016/S1000-1948(08)60031-3
- Idei N, Soga J, Hata T, Fujii Y, Fujimura N, Mikami S, Maruhashi T, Nishioka K, Hidaka T, Kihara Y, Chowdhury M, Noma K, Taguchi A, Chayama K, Sueda T, Higashi Y. Autologous bone-marrow mononuclear cell implantation reduces long-term major amputation risk in patients with critical limb ischemia: a comparison of atherosclerotic peripheral arterial disease and Buerger disease. Circ Cardiovasc Interv. 2011 Feb 1;4(1):15-25. doi: 10.1161/CIRCINTERVENTIONS.110.955724. Epub 2011 Jan 4.
- Rasmusson I. Immune modulation by mesenchymal stem cells. Exp Cell Res. 2006 Jul 15;312(12):2169-79. doi: 10.1016/j.yexcr.2006.03.019. Epub 2006 Apr 24.
- ICH Topic E 2 A:Clinical Safety Data Management: Definitions and Standards for Expedited Reporting-(CPMP/ICH/377/95)
- Central Drugs Standard Control Organization, Directorate General of Health Services, Ministry of Health & Family Welfare, Govt. of India. Draft Guidelines on Audio-Visual Recording of Informed Consent Process in Clinical Trial. 2014. [cited 2016 Jul 29]. Available from: http://www.cdsco.nic.in/writereaddata/Guidance_for_AV%20Recording_09.January.14.pdf.
- ClinicalTrials.gov. Identifier NCT01257776, Human Adipose Derived Mesenchymal Stem Cells for Critical Limb Ischemia (CLI) in Diabetic Patients. Available from: http://clinicaltrials.gov/ct2/show/NCT01079403
연구 기록 날짜
연구 주요 날짜
연구 시작 (실제)
기본 완료 (추정된)
연구 완료 (추정된)
연구 등록 날짜
최초 제출
QC 기준을 충족하는 최초 제출
처음 게시됨 (실제)
연구 기록 업데이트
마지막 업데이트 게시됨 (실제)
QC 기준을 충족하는 마지막 업데이트 제출
마지막으로 확인됨
추가 정보
이 연구와 관련된 용어
키워드
추가 관련 MeSH 약관
기타 연구 ID 번호
- CBR-BD-22-003
개별 참가자 데이터(IPD) 계획
개별 참가자 데이터(IPD)를 공유할 계획입니까?
약물 및 장치 정보, 연구 문서
미국 FDA 규제 의약품 연구
미국 FDA 규제 기기 제품 연구
이 정보는 변경 없이 clinicaltrials.gov 웹사이트에서 직접 가져온 것입니다. 귀하의 연구 세부 정보를 변경, 제거 또는 업데이트하도록 요청하는 경우 register@clinicaltrials.gov. 문의하십시오. 변경 사항이 clinicaltrials.gov에 구현되는 즉시 저희 웹사이트에도 자동으로 업데이트됩니다. .
중요한 사지 허혈에 대한 임상 시험
-
University Hospital of North NorwayUniversity of Tromso; Norwegian Muscle Disease Association (FFM); Norwegian National Advisory... 그리고 다른 협력자들모집하지 않고 적극적으로