- ICH GCP
- US Clinical Trials Registry
- Klinisk forsøg NCT05054257
CART19-cellers virkninger hos patienter med recidiverende eller refraktær akut lymfoblastisk leukæmi og non-Hodgkins lymfom (UHKT-CAR19-01)
Sikkerhed og effektivitet af anti-CD19 kimæriske antigenreceptormodificerede autologe T-celler (CART19) hos patienter med recidiverende/refraktær CD19+ akut lymfatisk leukæmi og non-Hodgkins lymfom. En dosiseskalering, åbent, fase I-studie.
Studieoversigt
Status
Betingelser
Intervention / Behandling
Detaljeret beskrivelse
Undersøgelsestype
Tilmelding (Anslået)
Fase
- Fase 1
Kontakter og lokationer
Studiekontakt
- Navn: Jan Vydra
- Telefonnummer: +420221977182
- E-mail: jan.vydra@uhk.cz
Undersøgelse Kontakt Backup
- Navn: Petr Lesny
- Telefonnummer: +420221977629
- E-mail: petr.lesny@uhkt.cz
Studiesteder
-
-
-
Prague, Tjekkiet, 12800
- Rekruttering
- Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
-
Kontakt:
- Jan Vydra, MD
- Telefonnummer: +420 221977182
- E-mail: jan.vydra@uhkt.cz
-
Kontakt:
- Petr Lesny, MD
- Telefonnummer: +420221977629
- E-mail: petr.lesny@uhkt.cz
-
-
Deltagelseskriterier
Berettigelseskriterier
Aldre berettiget til at studere
Tager imod sunde frivillige
Beskrivelse
Inklusionskriterier:
Patient med refraktær eller recidiverende CD19 positiv B-ALL eller B-NHL defineret som:
- B-ALL refraktær over for behandling eller i det andet eller efterfølgende tilbagefald (hæmatologisk ELLER molekylært), ELLER
- B-NHL refraktær over for behandling eller i første tilbagefald uegnet til autolog stamcelletransplantation (ASCT) eller i andet til fjerde tilbagefald, ELLER
- B-ALL eller B-NHL recidiverende efter autolog eller allogen hæmatopoietisk celletransplantation (HCT).
- CD19-ekspression på maligne celler bekræftet ved flowcytometri eller ved immunhistokemi.
- Alder ≥18 år og ≤ 80 år.
- Patienten kan forstå og underskrive informeret samtykke.
- Kvinder i den fødedygtige alder: negativ graviditetstest ved tilmelding (PSV) og ved besøg 1.
Generelle udelukkelseskriterier:
- Kendt overfølsomhed over for en hvilken som helst komponent i Investigational Medicinal Product (IMP).
- Autolog eller allogen HCT i 3 måneder før IMP-administration.
- Alvorlig, ukontrolleret aktiv infektion.
- Forventet levetid < 6 uger.
- Parenkym involvering af centralnervesystemet.
- Respiratorisk insufficiens (behov for iltbehandling).
- Betydelig leverinsufficiens: bilirubin > 50 µmol/L, ASAT eller ALAT > 4 gange normal øvre grænse.
- Akut nyreskade med serumkreatinin > 180 µmol/L, oliguri eller behov for akut dialyse.
- Hjertesvigt med EF < 30 % ved ekkokardiografi.
- Tilstedeværelse af aktiv grad 3-4 akut GvHD.
- Alvorlig ukontrolleret neurologisk komorbiditet.
- Vaccination med levende virusvacciner i de 4 uger før IMP administration og inden for 90 dage efter IMP dosis.
- Kvinder: Graviditet eller amning.
Forsøgspersoner i fertil alder, medmindre permanent seksuel afholdenhed er deres livsstilsvalg:
- kvindelige patienter i den fødedygtige alder, der ikke er villige til at bruge en yderst effektiv præventionsmetode under undersøgelsen,
- mandlige patienter, hvis seksuelle partner(e) er kvinder i den fødedygtige alder, som ikke er villige til at bruge en højeffektiv præventionsmetode under undersøgelsen.
Udelukkelseskriterier for indkøb af IMP-fremstillingsudgangsmateriale
- Svær ukontrolleret aktiv infektion.
- Positive testresultater for HIV1/2, Hepatitis B/C og lues.
Samtidige eller nylige tidligere behandlinger før aferese:
- Autolog eller allogen hæmatopoietisk celletransplantation inden for 12 uger.
- Clofarabin, Fludarabin, Alemtuzumab inden for 8 uger.
- Donorlymfocytinfusioner inden for 4 uger.
- Pegyleret asparaginase inden for 4 uger.
- Vedligeholdelseskemoterapi inden for 2 uger.
- Langtidsvirkende granulocytkolonistimulerende faktor (G-CSF) inden for 2 uger.
- Vincristine inden for 2 uger.
- Intratekal methotrexat inden for 1 uge.
- Granulocytkolonistimulerende faktor (G-CSF) inden for 5 dage.
- Terapeutisk dosis af kortikosteroider inden for 3 dage.
- Korttidsvirkende cytostatika inden for 3 dage
Udelukkelseskriterier til IMP-administration
- Alvorlige, ukontrollerede aktive infektioner.
- Forventet levetid < 6 uger.
- Parenkym involvering af centralnervesystemet
- Respiratorisk insufficiens (behov for iltbehandling).
- Betydelig leverinsufficiens: bilirubin > 50 µmol/L, aspartataminotransferase (AST) eller alaninaminotransferase (ALT) > 4 gange normal øvre grænse.
- Akut nyreskade med serumkreatinin > 180 µg/L, oliguri eller behov for akut dialyse.
- Hjertesvigt med ejektionsfraktion (EF) < 30 % ved ekkokardiografi.
- Tilstedeværelse af aktiv grad 3 - 4 akut GvHD
- Alvorlig ukontrolleret neurologisk komorbiditet.
Studieplan
Hvordan er undersøgelsen tilrettelagt?
Design detaljer
- Primært formål: Behandling
- Tildeling: N/A
- Interventionel model: Enkelt gruppeopgave
- Maskning: Ingen (Åben etiket)
Våben og indgreb
Deltagergruppe / Arm |
Intervention / Behandling |
|---|---|
|
Eksperimentel: Autologe CAR19 T-lymfocytter
Humane autologe T-lymfocytter, der udtrykker den kimære antigenreceptor, der er specifik for CD19
|
First-in-human forsøg, der undersøger sikkerheden og effektiviteten af CART19 i r/r B-ALL og B-NHL
|
Hvad måler undersøgelsen?
Primære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Forekomst af uønskede hændelser
Tidsramme: Op til 2 år efter behandling
|
Kumulativ forekomst af IMP-relaterede uønskede hændelser (AE'er) klassificeret efter ASTCT-konsensusgradueringskriterier for Cytokine Release Syndrome (CRS) og immuneffektorcelle-associeret neurotoksicitetssyndrom (ICANS) og efter Common Terminology Criteria for Adverse Events (CTCAE) v 5.0 for andre AE'er.
Toksiciteter vil blive fulgt fra starten af blodopsamling eller aferese indtil afslutningen af undersøgelsen.
|
Op til 2 år efter behandling
|
|
Vurdering af dosisbegrænsende toksiciteter (DLT'er)
Tidsramme: Op til 28 dage efter IMP administration
|
Forekomst af dosisbegrænsende toksiciteter (DLT'er) i løbet af de første 28 dage efter IMP administration
|
Op til 28 dage efter IMP administration
|
Sekundære resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
Fuldstændig remission (CR) rate
Tidsramme: CR rate ved 100 dage og 6 måneder efter IMP administration
|
Vurdering af effektiviteten af IMP-celleadministration hos patienter med refraktær eller recidiverende CD19+ NHL og B-ALL evalueret ved Complete Remission rate
|
CR rate ved 100 dage og 6 måneder efter IMP administration
|
|
Samlet overlevelse
Tidsramme: OS 1 år efter IMP-administration
|
Vurdering af effektiviteten af IMP-celleadministration hos patienter med refraktær eller recidiverende CD19+ NHL og B-ALL evalueret af Overall Survival
|
OS 1 år efter IMP-administration
|
|
Livskvalitet ved hjælp af den europæiske organisation for forskning og behandling af kræft 30 spørgsmål (EORTC QLQ-C30).
Tidsramme: 6 måneder og 1 år efter IMP-administration
|
EORTC-QLQ-C30 er et selvrapporterende spørgeskema med 30 punkter, der består af både multi-item og enkeltskalaer, inklusive en global sundhedsstatus/livskvalitetsskala (GHS/QoL).
Deltagerne bedømmer elementer på en fire-punkts skala, med 1 som "slet ikke" og 4 som "meget meget."
En ændring på 5 - 10 point betragtes som en lille.
En ændring på 10 - 20 point betragtes som en moderat ændring.
|
6 måneder og 1 år efter IMP-administration
|
Andre resultatmål
Resultatmål |
Foranstaltningsbeskrivelse |
Tidsramme |
|---|---|---|
|
CART19-celler i perifert blod, knoglemarv og cerebrospinalvæske
Tidsramme: Op til 24 måneder
|
Vurdering af mængde og fænotype af CART19-celler i perifert blod, knoglemarv og cerebrospinalvæske ved hjælp af flow-cytometri
|
Op til 24 måneder
|
Samarbejdspartnere og efterforskere
Efterforskere
- Studiestol: Petr Lesny, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
- Ledende efterforsker: Jan Vydra, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
Publikationer og nyttige links
Generelle publikationer
- Porter DL, Hwang WT, Frey NV, Lacey SF, Shaw PA, Loren AW, Bagg A, Marcucci KT, Shen A, Gonzalez V, Ambrose D, Grupp SA, Chew A, Zheng Z, Milone MC, Levine BL, Melenhorst JJ, June CH. Chimeric antigen receptor T cells persist and induce sustained remissions in relapsed refractory chronic lymphocytic leukemia. Sci Transl Med. 2015 Sep 2;7(303):303ra139. doi: 10.1126/scitranslmed.aac5415.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Kassim SH, Somerville RP, Carpenter RO, Stetler-Stevenson M, Yang JC, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Raffeld M, Feldman S, Lu L, Li YF, Ngo LT, Goy A, Feldman T, Spaner DE, Wang ML, Chen CC, Kranick SM, Nath A, Nathan DA, Morton KE, Toomey MA, Rosenberg SA. Chemotherapy-refractory diffuse large B-cell lymphoma and indolent B-cell malignancies can be effectively treated with autologous T cells expressing an anti-CD19 chimeric antigen receptor. J Clin Oncol. 2015 Feb 20;33(6):540-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2025. Epub 2014 Aug 25.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Feldman SA, Wilson WH, Spaner DE, Maric I, Stetler-Stevenson M, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Yang JC, Kammula US, Devillier L, Carpenter R, Nathan DA, Morgan RA, Laurencot C, Rosenberg SA. B-cell depletion and remissions of malignancy along with cytokine-associated toxicity in a clinical trial of anti-CD19 chimeric-antigen-receptor-transduced T cells. Blood. 2012 Mar 22;119(12):2709-20. doi: 10.1182/blood-2011-10-384388. Epub 2011 Dec 8.
- Davila ML, Riviere I, Wang X, Bartido S, Park J, Curran K, Chung SS, Stefanski J, Borquez-Ojeda O, Olszewska M, Qu J, Wasielewska T, He Q, Fink M, Shinglot H, Youssif M, Satter M, Wang Y, Hosey J, Quintanilla H, Halton E, Bernal Y, Bouhassira DC, Arcila ME, Gonen M, Roboz GJ, Maslak P, Douer D, Frattini MG, Giralt S, Sadelain M, Brentjens R. Efficacy and toxicity management of 19-28z CAR T cell therapy in B cell acute lymphoblastic leukemia. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra25. doi: 10.1126/scitranslmed.3008226.
- Turtle CJ, Hanafi LA, Berger C, Gooley TA, Cherian S, Hudecek M, Sommermeyer D, Melville K, Pender B, Budiarto TM, Robinson E, Steevens NN, Chaney C, Soma L, Chen X, Yeung C, Wood B, Li D, Cao J, Heimfeld S, Jensen MC, Riddell SR, Maloney DG. CD19 CAR-T cells of defined CD4+:CD8+ composition in adult B cell ALL patients. J Clin Invest. 2016 Jun 1;126(6):2123-38. doi: 10.1172/JCI85309. Epub 2016 Apr 25.
- Lamers CH, Sleijfer S, van Steenbergen S, van Elzakker P, van Krimpen B, Groot C, Vulto A, den Bakker M, Oosterwijk E, Debets R, Gratama JW. Treatment of metastatic renal cell carcinoma with CAIX CAR-engineered T cells: clinical evaluation and management of on-target toxicity. Mol Ther. 2013 Apr;21(4):904-12. doi: 10.1038/mt.2013.17. Epub 2013 Feb 19.
- Lee DW, Santomasso BD, Locke FL, Ghobadi A, Turtle CJ, Brudno JN, Maus MV, Park JH, Mead E, Pavletic S, Go WY, Eldjerou L, Gardner RA, Frey N, Curran KJ, Peggs K, Pasquini M, DiPersio JF, van den Brink MRM, Komanduri KV, Grupp SA, Neelapu SS. ASTCT Consensus Grading for Cytokine Release Syndrome and Neurologic Toxicity Associated with Immune Effector Cells. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 Apr;25(4):625-638. doi: 10.1016/j.bbmt.2018.12.758. Epub 2018 Dec 25.
- Simon R, Freidlin B, Rubinstein L, Arbuck SG, Collins J, Christian MC. Accelerated titration designs for phase I clinical trials in oncology. J Natl Cancer Inst. 1997 Aug 6;89(15):1138-47. doi: 10.1093/jnci/89.15.1138.
- Comerota AJ, Throm RC, Miller KA, Henry T, Chronos N, Laird J, Sequeira R, Kent CK, Bacchetta M, Goldman C, Salenius JP, Schmieder FA, Pilsudski R. Naked plasmid DNA encoding fibroblast growth factor type 1 for the treatment of end-stage unreconstructible lower extremity ischemia: preliminary results of a phase I trial. J Vasc Surg. 2002 May;35(5):930-6. doi: 10.1067/mva.2002.123677.
- Hartmann J, Schussler-Lenz M, Bondanza A, Buchholz CJ. Clinical development of CAR T cells-challenges and opportunities in translating innovative treatment concepts. EMBO Mol Med. 2017 Sep;9(9):1183-1197. doi: 10.15252/emmm.201607485.
- Hamada M, Nishio N, Okuno Y, Suzuki S, Kawashima N, Muramatsu H, Tsubota S, Wilson MH, Morita D, Kataoka S, Ichikawa D, Murakami N, Taniguchi R, Suzuki K, Kojima D, Sekiya Y, Nishikawa E, Narita A, Hama A, Kojima S, Nakazawa Y, Takahashi Y. Integration Mapping of piggyBac-Mediated CD19 Chimeric Antigen Receptor T Cells Analyzed by Novel Tagmentation-Assisted PCR. EBioMedicine. 2018 Aug;34:18-26. doi: 10.1016/j.ebiom.2018.07.008. Epub 2018 Aug 3.
- Tipanee J, VandenDriessche T, Chuah MK. Transposons: Moving Forward from Preclinical Studies to Clinical Trials. Hum Gene Ther. 2017 Nov;28(11):1087-1104. doi: 10.1089/hum.2017.128. Epub 2017 Aug 22.
- Kebriaei P, Singh H, Huls MH, Figliola MJ, Bassett R, Olivares S, Jena B, Dawson MJ, Kumaresan PR, Su S, Maiti S, Dai J, Moriarity B, Forget MA, Senyukov V, Orozco A, Liu T, McCarty J, Jackson RN, Moyes JS, Rondon G, Qazilbash M, Ciurea S, Alousi A, Nieto Y, Rezvani K, Marin D, Popat U, Hosing C, Shpall EJ, Kantarjian H, Keating M, Wierda W, Do KA, Largaespada DA, Lee DA, Hackett PB, Champlin RE, Cooper LJ. Phase I trials using Sleeping Beauty to generate CD19-specific CAR T cells. J Clin Invest. 2016 Sep 1;126(9):3363-76. doi: 10.1172/JCI86721. Epub 2016 Aug 2.
- Otahal P, Prukova D, Kral V, Fabry M, Vockova P, Lateckova L, Trneny M, Klener P. Lenalidomide enhances antitumor functions of chimeric antigen receptor modified T cells. Oncoimmunology. 2015 Dec 3;5(4):e1115940. doi: 10.1080/2162402X.2015.1115940. eCollection 2016 Apr.
- Yusa K, Zhou L, Li MA, Bradley A, Craig NL. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 Jan 25;108(4):1531-6. doi: 10.1073/pnas.1008322108. Epub 2011 Jan 4.
- Ptackova P, Musil J, Stach M, Lesny P, Nemeckova S, Kral V, Fabry M, Otahal P. A new approach to CAR T-cell gene engineering and cultivation using piggyBac transposon in the presence of IL-4, IL-7 and IL-21. Cytotherapy. 2018 Apr;20(4):507-520. doi: 10.1016/j.jcyt.2017.10.001. Epub 2018 Feb 21.
- Riviere I, Sadelain M. Chimeric Antigen Receptors: A Cell and Gene Therapy Perspective. Mol Ther. 2017 May 3;25(5):1117-1124. doi: 10.1016/j.ymthe.2017.03.034. Epub 2017 Apr 26.
- Norelli M, Casucci M, Bonini C, Bondanza A. Clinical pharmacology of CAR-T cells: Linking cellular pharmacodynamics to pharmacokinetics and antitumor effects. Biochim Biophys Acta. 2016 Jan;1865(1):90-100. doi: 10.1016/j.bbcan.2015.12.001. Epub 2015 Dec 31.
- Till BG, Jensen MC, Wang J, Chen EY, Wood BL, Greisman HA, Qian X, James SE, Raubitschek A, Forman SJ, Gopal AK, Pagel JM, Lindgren CG, Greenberg PD, Riddell SR, Press OW. Adoptive immunotherapy for indolent non-Hodgkin lymphoma and mantle cell lymphoma using genetically modified autologous CD20-specific T cells. Blood. 2008 Sep 15;112(6):2261-71. doi: 10.1182/blood-2007-12-128843. Epub 2008 May 28.
- Mueller KT, Waldron E, Grupp SA, Levine JE, Laetsch TW, Pulsipher MA, Boyer MW, August KJ, Hamilton J, Awasthi R, Stein AM, Sickert D, Chakraborty A, Levine BL, June CH, Tomassian L, Shah SS, Leung M, Taran T, Wood PA, Maude SL. Clinical Pharmacology of Tisagenlecleucel in B-cell Acute Lymphoblastic Leukemia. Clin Cancer Res. 2018 Dec 15;24(24):6175-6184. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-18-0758. Epub 2018 Sep 6.
- Schuster SJ, Bishop MR, Tam CS, Waller EK, Borchmann P, McGuirk JP, Jager U, Jaglowski S, Andreadis C, Westin JR, Fleury I, Bachanova V, Foley SR, Ho PJ, Mielke S, Magenau JM, Holte H, Pantano S, Pacaud LB, Awasthi R, Chu J, Anak O, Salles G, Maziarz RT; JULIET Investigators. Tisagenlecleucel in Adult Relapsed or Refractory Diffuse Large B-Cell Lymphoma. N Engl J Med. 2019 Jan 3;380(1):45-56. doi: 10.1056/NEJMoa1804980. Epub 2018 Dec 1.
- Singh H, Figliola MJ, Dawson MJ, Olivares S, Zhang L, Yang G, Maiti S, Manuri P, Senyukov V, Jena B, Kebriaei P, Champlin RE, Huls H, Cooper LJ. Manufacture of clinical-grade CD19-specific T cells stably expressing chimeric antigen receptor using Sleeping Beauty system and artificial antigen presenting cells. PLoS One. 2013 May 31;8(5):e64138. doi: 10.1371/journal.pone.0064138. Print 2013.
- Kershaw MH, Westwood JA, Parker LL, Wang G, Eshhar Z, Mavroukakis SA, White DE, Wunderlich JR, Canevari S, Rogers-Freezer L, Chen CC, Yang JC, Rosenberg SA, Hwu P. A phase I study on adoptive immunotherapy using gene-modified T cells for ovarian cancer. Clin Cancer Res. 2006 Oct 15;12(20 Pt 1):6106-15. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-06-1183.
- Park JR, Digiusto DL, Slovak M, Wright C, Naranjo A, Wagner J, Meechoovet HB, Bautista C, Chang WC, Ostberg JR, Jensen MC. Adoptive transfer of chimeric antigen receptor re-directed cytolytic T lymphocyte clones in patients with neuroblastoma. Mol Ther. 2007 Apr;15(4):825-33. doi: 10.1038/sj.mt.6300104. Epub 2007 Feb 13.
- Hay KA, Hanafi LA, Li D, Gust J, Liles WC, Wurfel MM, Lopez JA, Chen J, Chung D, Harju-Baker S, Cherian S, Chen X, Riddell SR, Maloney DG, Turtle CJ. Kinetics and biomarkers of severe cytokine release syndrome after CD19 chimeric antigen receptor-modified T-cell therapy. Blood. 2017 Nov 23;130(21):2295-2306. doi: 10.1182/blood-2017-06-793141. Epub 2017 Sep 18.
- Powell RJ, Simons M, Mendelsohn FO, Daniel G, Henry TD, Koga M, Morishita R, Annex BH. Results of a double-blind, placebo-controlled study to assess the safety of intramuscular injection of hepatocyte growth factor plasmid to improve limb perfusion in patients with critical limb ischemia. Circulation. 2008 Jul 1;118(1):58-65. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.107.727347. Epub 2008 Jun 16.
- Gonin P, Gaillard C. Gene transfer vector biodistribution: pivotal safety studies in clinical gene therapy development. Gene Ther. 2004 Oct;11 Suppl 1:S98-S108. doi: 10.1038/sj.gt.3302378.
- Dotti G. T lymphocytes are not immune. Mol Ther. 2013 Jun;21(6):1114-5. doi: 10.1038/mt.2013.102. No abstract available.
- Saha S, Woodard LE, Charron EM, Welch RC, Rooney CM, Wilson MH. Evaluating the potential for undesired genomic effects of the piggyBac transposon system in human cells. Nucleic Acids Res. 2015 Feb 18;43(3):1770-82. doi: 10.1093/nar/gkv017. Epub 2015 Jan 20.
- Heinrich T, Rengstl B, Muik A, Petkova M, Schmid F, Wistinghausen R, Warner K, Crispatzu G, Hansmann ML, Herling M, von Laer D, Newrzela S. Mature T-cell lymphomagenesis induced by retroviral insertional activation of Janus kinase 1. Mol Ther. 2013 Jun;21(6):1160-8. doi: 10.1038/mt.2013.67. Epub 2013 Apr 23.
- Hacein-Bey-Abina S, von Kalle C, Schmidt M, Le Deist F, Wulffraat N, McIntyre E, Radford I, Villeval JL, Fraser CC, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. A serious adverse event after successful gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2003 Jan 16;348(3):255-6. doi: 10.1056/NEJM200301163480314. No abstract available.
- Wang W, Lin C, Lu D, Ning Z, Cox T, Melvin D, Wang X, Bradley A, Liu P. Chromosomal transposition of PiggyBac in mouse embryonic stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Jul 8;105(27):9290-5. doi: 10.1073/pnas.0801017105. Epub 2008 Jun 25.
- Rad R, Rad L, Wang W, Cadinanos J, Vassiliou G, Rice S, Campos LS, Yusa K, Banerjee R, Li MA, de la Rosa J, Strong A, Lu D, Ellis P, Conte N, Yang FT, Liu P, Bradley A. PiggyBac transposon mutagenesis: a tool for cancer gene discovery in mice. Science. 2010 Nov 19;330(6007):1104-7. doi: 10.1126/science.1193004. Epub 2010 Oct 14.
- Fedoroff NV. Presidential address. Transposable elements, epigenetics, and genome evolution. Science. 2012 Nov 9;338(6108):758-67. doi: 10.1126/science.338.6108.758. No abstract available.
- Hackett PB, Largaespada DA, Switzer KC, Cooper LJ. Evaluating risks of insertional mutagenesis by DNA transposons in gene therapy. Transl Res. 2013 Apr;161(4):265-83. doi: 10.1016/j.trsl.2012.12.005. Epub 2013 Jan 10.
- Zhao S, Jiang E, Chen S, Gu Y, Shangguan AJ, Lv T, Luo L, Yu Z. PiggyBac transposon vectors: the tools of the human gene encoding. Transl Lung Cancer Res. 2016 Feb;5(1):120-5. doi: 10.3978/j.issn.2218-6751.2016.01.05.
- Milone MC, Bhoj VG. The Pharmacology of T Cell Therapies. Mol Ther Methods Clin Dev. 2018 Jan 31;8:210-221. doi: 10.1016/j.omtm.2018.01.010. eCollection 2018 Mar 16.
- Maude SL, Laetsch TW, Buechner J, Rives S, Boyer M, Bittencourt H, Bader P, Verneris MR, Stefanski HE, Myers GD, Qayed M, De Moerloose B, Hiramatsu H, Schlis K, Davis KL, Martin PL, Nemecek ER, Yanik GA, Peters C, Baruchel A, Boissel N, Mechinaud F, Balduzzi A, Krueger J, June CH, Levine BL, Wood P, Taran T, Leung M, Mueller KT, Zhang Y, Sen K, Lebwohl D, Pulsipher MA, Grupp SA. Tisagenlecleucel in Children and Young Adults with B-Cell Lymphoblastic Leukemia. N Engl J Med. 2018 Feb 1;378(5):439-448. doi: 10.1056/NEJMoa1709866.
- Maude SL, Frey N, Shaw PA, Aplenc R, Barrett DM, Bunin NJ, Chew A, Gonzalez VE, Zheng Z, Lacey SF, Mahnke YD, Melenhorst JJ, Rheingold SR, Shen A, Teachey DT, Levine BL, June CH, Porter DL, Grupp SA. Chimeric antigen receptor T cells for sustained remissions in leukemia. N Engl J Med. 2014 Oct 16;371(16):1507-17. doi: 10.1056/NEJMoa1407222. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998. doi: 10.1056/NEJMx160005.
- Fraietta JA, Lacey SF, Orlando EJ, Pruteanu-Malinici I, Gohil M, Lundh S, Boesteanu AC, Wang Y, O'Connor RS, Hwang WT, Pequignot E, Ambrose DE, Zhang C, Wilcox N, Bedoya F, Dorfmeier C, Chen F, Tian L, Parakandi H, Gupta M, Young RM, Johnson FB, Kulikovskaya I, Liu L, Xu J, Kassim SH, Davis MM, Levine BL, Frey NV, Siegel DL, Huang AC, Wherry EJ, Bitter H, Brogdon JL, Porter DL, June CH, Melenhorst JJ. Determinants of response and resistance to CD19 chimeric antigen receptor (CAR) T cell therapy of chronic lymphocytic leukemia. Nat Med. 2018 May;24(5):563-571. doi: 10.1038/s41591-018-0010-1. Epub 2018 Apr 30. Erratum In: Nat Med. 2021 Mar;27(3):561. doi: 10.1038/s41591-021-01248-2.
- Milone MC, Fish JD, Carpenito C, Carroll RG, Binder GK, Teachey D, Samanta M, Lakhal M, Gloss B, Danet-Desnoyers G, Campana D, Riley JL, Grupp SA, June CH. Chimeric receptors containing CD137 signal transduction domains mediate enhanced survival of T cells and increased antileukemic efficacy in vivo. Mol Ther. 2009 Aug;17(8):1453-64. doi: 10.1038/mt.2009.83. Epub 2009 Apr 21. Erratum In: Mol Ther. 2015 Jul;23(7):1278. doi: 10.1038/mt.2015.89.
- Porter DL, Levine BL, Kalos M, Bagg A, June CH. Chimeric antigen receptor-modified T cells in chronic lymphoid leukemia. N Engl J Med. 2011 Aug 25;365(8):725-33. doi: 10.1056/NEJMoa1103849. Epub 2011 Aug 10. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998. doi: 10.1056/NEJMx160005.
Datoer for undersøgelser
Studer store datoer
Studiestart (Faktiske)
Primær færdiggørelse (Anslået)
Studieafslutning (Anslået)
Datoer for studieregistrering
Først indsendt
Først indsendt, der opfyldte QC-kriterier
Først opslået (Faktiske)
Opdateringer af undersøgelsesjournaler
Sidste opdatering sendt (Faktiske)
Sidste opdatering indsendt, der opfyldte kvalitetskontrolkriterier
Sidst verificeret
Mere information
Begreber relateret til denne undersøgelse
Nøgleord
Yderligere relevante MeSH-vilkår
Andre undersøgelses-id-numre
- UHKT-CAR19-01
- 2018-004789-32 (EudraCT nummer)
Plan for individuelle deltagerdata (IPD)
Planlægger du at dele individuelle deltagerdata (IPD)?
Lægemiddel- og udstyrsoplysninger, undersøgelsesdokumenter
Studerer et amerikansk FDA-reguleret lægemiddelprodukt
Studerer et amerikansk FDA-reguleret enhedsprodukt
produkt fremstillet i og eksporteret fra U.S.A.
Disse oplysninger blev hentet direkte fra webstedet clinicaltrials.gov uden ændringer. Hvis du har nogen anmodninger om at ændre, fjerne eller opdatere dine undersøgelsesoplysninger, bedes du kontakte register@clinicaltrials.gov. Så snart en ændring er implementeret på clinicaltrials.gov, vil denne også blive opdateret automatisk på vores hjemmeside .