- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT05054257
Effetti delle cellule CART19 nei pazienti con leucemia linfoblastica acuta recidivante o refrattaria e linfoma non Hodgkin (UHKT-CAR19-01)
Sicurezza ed efficacia delle cellule T autologhe modificate dal recettore dell'antigene chimerico anti-CD19 (CART19) in pazienti con leucemia linfoblastica acuta CD19+ recidivante/refrattaria e linfoma non-Hodgkin. Uno studio di fase I di aumento della dose, in aperto.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Fase
- Fase 1
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Jan Vydra
- Numero di telefono: +420221977182
- Email: jan.vydra@uhk.cz
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Petr Lesny
- Numero di telefono: +420221977629
- Email: petr.lesny@uhkt.cz
Luoghi di studio
-
-
-
Prague, Cechia, 12800
- Reclutamento
- Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
-
Contatto:
- Jan Vydra, MD
- Numero di telefono: +420 221977182
- Email: jan.vydra@uhkt.cz
-
Contatto:
- Petr Lesny, MD
- Numero di telefono: +420221977629
- Email: petr.lesny@uhkt.cz
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Descrizione
Criterio di inclusione:
Paziente con B-ALL o B-NHL positivo per CD19 refrattario o recidivante definito come:
- B-ALL refrattaria al trattamento o nella seconda o successiva recidiva (ematologica O molecolare), OPPURE
- B-NHL refrattario al trattamento o in prima recidiva non idoneo al trapianto autologo di cellule staminali (ASCT) o in seconda-quarta recidiva, OPPURE
- B-ALL o B-NHL recidivante dopo trapianto autologo o allogenico di cellule ematopoietiche (HCT).
- Espressione di CD19 su cellule maligne confermata dalla citometria a flusso o dall'immunoistochimica.
- Età ≥18 anni e ≤ 80 anni.
- Paziente in grado di comprendere e firmare il consenso informato.
- Donne in età fertile: test di gravidanza negativo all'arruolamento (PSV) e alla Visita 1.
Criteri generali di esclusione:
- Ipersensibilità nota a qualsiasi componente del medicinale sperimentale (IMP).
- HCT autologo o allogenico nei 3 mesi precedenti alla somministrazione di IMP.
- Infezione attiva grave e incontrollata.
- Aspettativa di vita < 6 settimane.
- Coinvolgimento del sistema nervoso centrale parenchimale.
- Insufficienza respiratoria (necessità di ossigenoterapia).
- Compromissione epatica significativa: bilirubina > 50 µmol/L, AST o ALT > 4 volte il limite superiore normale.
- Danno renale acuto con creatinina sierica > 180 µmol/L, oliguria o necessità di dialisi acuta.
- Insufficienza cardiaca con FE <30% mediante ecocardiografia.
- Presenza di GvHD acuta di grado 3-4 attivo.
- Grave comorbidità neurologica incontrollata.
- Vaccinazione con vaccini a virus vivi nelle 4 settimane precedenti la somministrazione di IMP ed entro 90 giorni dopo la dose di IMP.
- Donne: gravidanza o allattamento.
Soggetti in età fertile, a meno che l'astinenza sessuale permanente non sia la loro scelta di vita:
- pazienti di sesso femminile in età fertile non disposte a utilizzare un metodo contraccettivo altamente efficace durante lo studio,
- pazienti di sesso maschile i cui partner sessuali sono donne in età fertile che non sono disposte a utilizzare un metodo contraccettivo altamente efficace durante lo studio.
Criteri di esclusione per l'approvvigionamento di materie prime per la fabbricazione di IMP
- Infezione attiva grave incontrollata.
- Risultati dei test positivi per HIV1/2, epatite B/C e lues.
Terapie precedenti concomitanti o recenti prima dell'aferesi:
- Trapianto di cellule ematopoietiche autologhe o allogeniche entro 12 settimane.
- Clofarabina, Fludarabina, Alemtuzumab entro 8 settimane.
- Infusioni di linfociti del donatore entro 4 settimane.
- Asparaginasi pegilata entro 4 settimane.
- Chemioterapia di mantenimento entro 2 settimane.
- Fattore stimolante le colonie di granulociti (G-CSF) a lunga durata d'azione entro 2 settimane.
- Vincristina entro 2 settimane.
- Metotrexato intratecale entro 1 settimana.
- Fattore stimolante le colonie di granulociti (G-CSF) entro 5 giorni.
- Dose terapeutica di corticosteroidi entro 3 giorni.
- Citostatici a breve durata d'azione entro 3 giorni
Criteri di esclusione dall'amministrazione IMP
- Infezioni attive gravi e non controllate.
- Aspettativa di vita < 6 settimane.
- Coinvolgimento del sistema nervoso centrale parenchimale
- Insufficienza respiratoria (necessità di ossigenoterapia).
- Compromissione epatica significativa: bilirubina > 50 µmol/L, aspartato aminotransferasi (AST) o alanina aminotransferasi (ALT) > 4 volte il limite superiore normale.
- Danno renale acuto con creatinina sierica > 180 µg/L, oliguria o necessità di dialisi acuta.
- Insufficienza cardiaca con frazione di eiezione (EF) < 30% mediante ecocardiografia.
- Presenza di GvHD acuta di grado 3-4 attivo
- Grave comorbidità neurologica incontrollata.
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: N / A
- Modello interventistico: Assegnazione di gruppo singolo
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
---|---|
Sperimentale: Linfociti T CAR19 autologhi
Linfociti T autologhi umani che esprimono il recettore dell'antigene chimerico specifico per CD19
|
Primo studio sull'uomo che esamina la sicurezza e l'efficacia di CART19 in r/r B-ALL e B-NHL
|
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
---|---|---|
Incidenza di eventi avversi
Lasso di tempo: Fino a 2 anni dopo il trattamento
|
Incidenza cumulativa di eventi avversi correlati a IMP (AE) classificati in base ai criteri di classificazione del consenso ASTCT per la sindrome da rilascio di citochine (CRS) e la sindrome da neurotossicità associata a cellule effettrici immunitarie (ICANS) e in base ai criteri di terminologia comune per gli eventi avversi (CTCAE) v 5.0 per altri eventi avversi.
Le tossicità saranno seguite dall'inizio del prelievo di sangue o dell'aferesi fino alla fine dello studio.
|
Fino a 2 anni dopo il trattamento
|
Valutazione delle tossicità limitanti la dose (DLT)
Lasso di tempo: Fino a 28 giorni dopo la somministrazione di IMP
|
Incidenza di tossicità limitanti la dose (DLT) durante i primi 28 giorni dopo la somministrazione di IMP
|
Fino a 28 giorni dopo la somministrazione di IMP
|
Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
---|---|---|
Tasso di remissione completa (CR).
Lasso di tempo: Tasso di CR a 100 giorni e 6 mesi dopo la somministrazione di IMP
|
Valutazione dell'efficacia della somministrazione di cellule IMP in pazienti con NHL CD19+ refrattario o recidivato e B-ALL valutata in base al tasso di remissione completa
|
Tasso di CR a 100 giorni e 6 mesi dopo la somministrazione di IMP
|
Sopravvivenza globale
Lasso di tempo: Sistema operativo a 1 anno dalla somministrazione di IMP
|
Valutazione dell'efficacia della somministrazione di cellule IMP in pazienti con NHL CD19+ refrattario o recidivante e B-ALL valutata in base alla sopravvivenza globale
|
Sistema operativo a 1 anno dalla somministrazione di IMP
|
Qualità della vita utilizzando il questionario a 30 voci dell'Organizzazione europea per la ricerca e la cura del cancro (EORTC QLQ-C30).
Lasso di tempo: A 6 mesi e 1 anno dopo la somministrazione di IMP
|
EORTC-QLQ-C30 è un questionario self-report di 30 item composto da scale multi-item e singole, inclusa una scala sullo stato di salute globale/qualità della vita (GHS/QoL).
I partecipanti valutano gli elementi su una scala di quattro punti, con 1 come "per niente" e 4 come "molto".
Un cambiamento di 5 - 10 punti è considerato piccolo.
Un cambiamento di 10 - 20 punti è considerato un cambiamento moderato.
|
A 6 mesi e 1 anno dopo la somministrazione di IMP
|
Altre misure di risultato
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
---|---|---|
Cellule CART19 nel sangue periferico, nel midollo osseo e nel liquido cerebrospinale
Lasso di tempo: Fino a 24 mesi
|
Valutazione della quantità e del fenotipo delle cellule CART19 nel sangue periferico, nel midollo osseo e nel liquido cerebrospinale utilizzando la citometria a flusso
|
Fino a 24 mesi
|
Collaboratori e investigatori
Investigatori
- Cattedra di studio: Petr Lesny, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
- Investigatore principale: Jan Vydra, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Porter DL, Hwang WT, Frey NV, Lacey SF, Shaw PA, Loren AW, Bagg A, Marcucci KT, Shen A, Gonzalez V, Ambrose D, Grupp SA, Chew A, Zheng Z, Milone MC, Levine BL, Melenhorst JJ, June CH. Chimeric antigen receptor T cells persist and induce sustained remissions in relapsed refractory chronic lymphocytic leukemia. Sci Transl Med. 2015 Sep 2;7(303):303ra139. doi: 10.1126/scitranslmed.aac5415.
- Maude SL, Frey N, Shaw PA, Aplenc R, Barrett DM, Bunin NJ, Chew A, Gonzalez VE, Zheng Z, Lacey SF, Mahnke YD, Melenhorst JJ, Rheingold SR, Shen A, Teachey DT, Levine BL, June CH, Porter DL, Grupp SA. Chimeric antigen receptor T cells for sustained remissions in leukemia. N Engl J Med. 2014 Oct 16;371(16):1507-17. doi: 10.1056/NEJMoa1407222. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Kassim SH, Somerville RP, Carpenter RO, Stetler-Stevenson M, Yang JC, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Raffeld M, Feldman S, Lu L, Li YF, Ngo LT, Goy A, Feldman T, Spaner DE, Wang ML, Chen CC, Kranick SM, Nath A, Nathan DA, Morton KE, Toomey MA, Rosenberg SA. Chemotherapy-refractory diffuse large B-cell lymphoma and indolent B-cell malignancies can be effectively treated with autologous T cells expressing an anti-CD19 chimeric antigen receptor. J Clin Oncol. 2015 Feb 20;33(6):540-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2025. Epub 2014 Aug 25.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Feldman SA, Wilson WH, Spaner DE, Maric I, Stetler-Stevenson M, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Yang JC, Kammula US, Devillier L, Carpenter R, Nathan DA, Morgan RA, Laurencot C, Rosenberg SA. B-cell depletion and remissions of malignancy along with cytokine-associated toxicity in a clinical trial of anti-CD19 chimeric-antigen-receptor-transduced T cells. Blood. 2012 Mar 22;119(12):2709-20. doi: 10.1182/blood-2011-10-384388. Epub 2011 Dec 8.
- Davila ML, Riviere I, Wang X, Bartido S, Park J, Curran K, Chung SS, Stefanski J, Borquez-Ojeda O, Olszewska M, Qu J, Wasielewska T, He Q, Fink M, Shinglot H, Youssif M, Satter M, Wang Y, Hosey J, Quintanilla H, Halton E, Bernal Y, Bouhassira DC, Arcila ME, Gonen M, Roboz GJ, Maslak P, Douer D, Frattini MG, Giralt S, Sadelain M, Brentjens R. Efficacy and toxicity management of 19-28z CAR T cell therapy in B cell acute lymphoblastic leukemia. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra25. doi: 10.1126/scitranslmed.3008226.
- Turtle CJ, Hanafi LA, Berger C, Gooley TA, Cherian S, Hudecek M, Sommermeyer D, Melville K, Pender B, Budiarto TM, Robinson E, Steevens NN, Chaney C, Soma L, Chen X, Yeung C, Wood B, Li D, Cao J, Heimfeld S, Jensen MC, Riddell SR, Maloney DG. CD19 CAR-T cells of defined CD4+:CD8+ composition in adult B cell ALL patients. J Clin Invest. 2016 Jun 1;126(6):2123-38. doi: 10.1172/JCI85309. Epub 2016 Apr 25.
- Lamers CH, Sleijfer S, van Steenbergen S, van Elzakker P, van Krimpen B, Groot C, Vulto A, den Bakker M, Oosterwijk E, Debets R, Gratama JW. Treatment of metastatic renal cell carcinoma with CAIX CAR-engineered T cells: clinical evaluation and management of on-target toxicity. Mol Ther. 2013 Apr;21(4):904-12. doi: 10.1038/mt.2013.17. Epub 2013 Feb 19.
- Porter DL, Levine BL, Kalos M, Bagg A, June CH. Chimeric antigen receptor-modified T cells in chronic lymphoid leukemia. N Engl J Med. 2011 Aug 25;365(8):725-33. doi: 10.1056/NEJMoa1103849. Epub 2011 Aug 10. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998.
- Milone MC, Fish JD, Carpenito C, Carroll RG, Binder GK, Teachey D, Samanta M, Lakhal M, Gloss B, Danet-Desnoyers G, Campana D, Riley JL, Grupp SA, June CH. Chimeric receptors containing CD137 signal transduction domains mediate enhanced survival of T cells and increased antileukemic efficacy in vivo. Mol Ther. 2009 Aug;17(8):1453-64. doi: 10.1038/mt.2009.83. Epub 2009 Apr 21. Erratum In: Mol Ther. 2015 Jul;23(7):1278.
- Lee DW, Santomasso BD, Locke FL, Ghobadi A, Turtle CJ, Brudno JN, Maus MV, Park JH, Mead E, Pavletic S, Go WY, Eldjerou L, Gardner RA, Frey N, Curran KJ, Peggs K, Pasquini M, DiPersio JF, van den Brink MRM, Komanduri KV, Grupp SA, Neelapu SS. ASTCT Consensus Grading for Cytokine Release Syndrome and Neurologic Toxicity Associated with Immune Effector Cells. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 Apr;25(4):625-638. doi: 10.1016/j.bbmt.2018.12.758. Epub 2018 Dec 25.
- Fraietta JA, Lacey SF, Orlando EJ, Pruteanu-Malinici I, Gohil M, Lundh S, Boesteanu AC, Wang Y, O'Connor RS, Hwang WT, Pequignot E, Ambrose DE, Zhang C, Wilcox N, Bedoya F, Dorfmeier C, Chen F, Tian L, Parakandi H, Gupta M, Young RM, Johnson FB, Kulikovskaya I, Liu L, Xu J, Kassim SH, Davis MM, Levine BL, Frey NV, Siegel DL, Huang AC, Wherry EJ, Bitter H, Brogdon JL, Porter DL, June CH, Melenhorst JJ. Determinants of response and resistance to CD19 chimeric antigen receptor (CAR) T cell therapy of chronic lymphocytic leukemia. Nat Med. 2018 May;24(5):563-571. doi: 10.1038/s41591-018-0010-1. Epub 2018 Apr 30. Erratum In: Nat Med. 2021 Mar;27(3):561.
- Simon R, Freidlin B, Rubinstein L, Arbuck SG, Collins J, Christian MC. Accelerated titration designs for phase I clinical trials in oncology. J Natl Cancer Inst. 1997 Aug 6;89(15):1138-47. doi: 10.1093/jnci/89.15.1138.
- Comerota AJ, Throm RC, Miller KA, Henry T, Chronos N, Laird J, Sequeira R, Kent CK, Bacchetta M, Goldman C, Salenius JP, Schmieder FA, Pilsudski R. Naked plasmid DNA encoding fibroblast growth factor type 1 for the treatment of end-stage unreconstructible lower extremity ischemia: preliminary results of a phase I trial. J Vasc Surg. 2002 May;35(5):930-6. doi: 10.1067/mva.2002.123677.
- Hartmann J, Schussler-Lenz M, Bondanza A, Buchholz CJ. Clinical development of CAR T cells-challenges and opportunities in translating innovative treatment concepts. EMBO Mol Med. 2017 Sep;9(9):1183-1197. doi: 10.15252/emmm.201607485.
- Hamada M, Nishio N, Okuno Y, Suzuki S, Kawashima N, Muramatsu H, Tsubota S, Wilson MH, Morita D, Kataoka S, Ichikawa D, Murakami N, Taniguchi R, Suzuki K, Kojima D, Sekiya Y, Nishikawa E, Narita A, Hama A, Kojima S, Nakazawa Y, Takahashi Y. Integration Mapping of piggyBac-Mediated CD19 Chimeric Antigen Receptor T Cells Analyzed by Novel Tagmentation-Assisted PCR. EBioMedicine. 2018 Aug;34:18-26. doi: 10.1016/j.ebiom.2018.07.008. Epub 2018 Aug 3.
- Tipanee J, VandenDriessche T, Chuah MK. Transposons: Moving Forward from Preclinical Studies to Clinical Trials. Hum Gene Ther. 2017 Nov;28(11):1087-1104. doi: 10.1089/hum.2017.128. Epub 2017 Aug 22.
- Kebriaei P, Singh H, Huls MH, Figliola MJ, Bassett R, Olivares S, Jena B, Dawson MJ, Kumaresan PR, Su S, Maiti S, Dai J, Moriarity B, Forget MA, Senyukov V, Orozco A, Liu T, McCarty J, Jackson RN, Moyes JS, Rondon G, Qazilbash M, Ciurea S, Alousi A, Nieto Y, Rezvani K, Marin D, Popat U, Hosing C, Shpall EJ, Kantarjian H, Keating M, Wierda W, Do KA, Largaespada DA, Lee DA, Hackett PB, Champlin RE, Cooper LJ. Phase I trials using Sleeping Beauty to generate CD19-specific CAR T cells. J Clin Invest. 2016 Sep 1;126(9):3363-76. doi: 10.1172/JCI86721. Epub 2016 Aug 2.
- Otahal P, Prukova D, Kral V, Fabry M, Vockova P, Lateckova L, Trneny M, Klener P. Lenalidomide enhances antitumor functions of chimeric antigen receptor modified T cells. Oncoimmunology. 2015 Dec 3;5(4):e1115940. doi: 10.1080/2162402X.2015.1115940. eCollection 2016 Apr.
- Yusa K, Zhou L, Li MA, Bradley A, Craig NL. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 Jan 25;108(4):1531-6. doi: 10.1073/pnas.1008322108. Epub 2011 Jan 4.
- Ptackova P, Musil J, Stach M, Lesny P, Nemeckova S, Kral V, Fabry M, Otahal P. A new approach to CAR T-cell gene engineering and cultivation using piggyBac transposon in the presence of IL-4, IL-7 and IL-21. Cytotherapy. 2018 Apr;20(4):507-520. doi: 10.1016/j.jcyt.2017.10.001. Epub 2018 Feb 21.
- Riviere I, Sadelain M. Chimeric Antigen Receptors: A Cell and Gene Therapy Perspective. Mol Ther. 2017 May 3;25(5):1117-1124. doi: 10.1016/j.ymthe.2017.03.034. Epub 2017 Apr 26.
- Norelli M, Casucci M, Bonini C, Bondanza A. Clinical pharmacology of CAR-T cells: Linking cellular pharmacodynamics to pharmacokinetics and antitumor effects. Biochim Biophys Acta. 2016 Jan;1865(1):90-100. doi: 10.1016/j.bbcan.2015.12.001. Epub 2015 Dec 31.
- Till BG, Jensen MC, Wang J, Chen EY, Wood BL, Greisman HA, Qian X, James SE, Raubitschek A, Forman SJ, Gopal AK, Pagel JM, Lindgren CG, Greenberg PD, Riddell SR, Press OW. Adoptive immunotherapy for indolent non-Hodgkin lymphoma and mantle cell lymphoma using genetically modified autologous CD20-specific T cells. Blood. 2008 Sep 15;112(6):2261-71. doi: 10.1182/blood-2007-12-128843. Epub 2008 May 28.
- Mueller KT, Waldron E, Grupp SA, Levine JE, Laetsch TW, Pulsipher MA, Boyer MW, August KJ, Hamilton J, Awasthi R, Stein AM, Sickert D, Chakraborty A, Levine BL, June CH, Tomassian L, Shah SS, Leung M, Taran T, Wood PA, Maude SL. Clinical Pharmacology of Tisagenlecleucel in B-cell Acute Lymphoblastic Leukemia. Clin Cancer Res. 2018 Dec 15;24(24):6175-6184. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-18-0758. Epub 2018 Sep 6.
- Schuster SJ, Bishop MR, Tam CS, Waller EK, Borchmann P, McGuirk JP, Jager U, Jaglowski S, Andreadis C, Westin JR, Fleury I, Bachanova V, Foley SR, Ho PJ, Mielke S, Magenau JM, Holte H, Pantano S, Pacaud LB, Awasthi R, Chu J, Anak O, Salles G, Maziarz RT; JULIET Investigators. Tisagenlecleucel in Adult Relapsed or Refractory Diffuse Large B-Cell Lymphoma. N Engl J Med. 2019 Jan 3;380(1):45-56. doi: 10.1056/NEJMoa1804980. Epub 2018 Dec 1.
- Singh H, Figliola MJ, Dawson MJ, Olivares S, Zhang L, Yang G, Maiti S, Manuri P, Senyukov V, Jena B, Kebriaei P, Champlin RE, Huls H, Cooper LJ. Manufacture of clinical-grade CD19-specific T cells stably expressing chimeric antigen receptor using Sleeping Beauty system and artificial antigen presenting cells. PLoS One. 2013 May 31;8(5):e64138. doi: 10.1371/journal.pone.0064138. Print 2013.
- Kershaw MH, Westwood JA, Parker LL, Wang G, Eshhar Z, Mavroukakis SA, White DE, Wunderlich JR, Canevari S, Rogers-Freezer L, Chen CC, Yang JC, Rosenberg SA, Hwu P. A phase I study on adoptive immunotherapy using gene-modified T cells for ovarian cancer. Clin Cancer Res. 2006 Oct 15;12(20 Pt 1):6106-15. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-06-1183.
- Park JR, Digiusto DL, Slovak M, Wright C, Naranjo A, Wagner J, Meechoovet HB, Bautista C, Chang WC, Ostberg JR, Jensen MC. Adoptive transfer of chimeric antigen receptor re-directed cytolytic T lymphocyte clones in patients with neuroblastoma. Mol Ther. 2007 Apr;15(4):825-33. doi: 10.1038/sj.mt.6300104. Epub 2007 Feb 13.
- Hay KA, Hanafi LA, Li D, Gust J, Liles WC, Wurfel MM, Lopez JA, Chen J, Chung D, Harju-Baker S, Cherian S, Chen X, Riddell SR, Maloney DG, Turtle CJ. Kinetics and biomarkers of severe cytokine release syndrome after CD19 chimeric antigen receptor-modified T-cell therapy. Blood. 2017 Nov 23;130(21):2295-2306. doi: 10.1182/blood-2017-06-793141. Epub 2017 Sep 18.
- Powell RJ, Simons M, Mendelsohn FO, Daniel G, Henry TD, Koga M, Morishita R, Annex BH. Results of a double-blind, placebo-controlled study to assess the safety of intramuscular injection of hepatocyte growth factor plasmid to improve limb perfusion in patients with critical limb ischemia. Circulation. 2008 Jul 1;118(1):58-65. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.107.727347. Epub 2008 Jun 16.
- Gonin P, Gaillard C. Gene transfer vector biodistribution: pivotal safety studies in clinical gene therapy development. Gene Ther. 2004 Oct;11 Suppl 1:S98-S108. doi: 10.1038/sj.gt.3302378.
- Dotti G. T lymphocytes are not immune. Mol Ther. 2013 Jun;21(6):1114-5. doi: 10.1038/mt.2013.102. No abstract available.
- Saha S, Woodard LE, Charron EM, Welch RC, Rooney CM, Wilson MH. Evaluating the potential for undesired genomic effects of the piggyBac transposon system in human cells. Nucleic Acids Res. 2015 Feb 18;43(3):1770-82. doi: 10.1093/nar/gkv017. Epub 2015 Jan 20.
- Heinrich T, Rengstl B, Muik A, Petkova M, Schmid F, Wistinghausen R, Warner K, Crispatzu G, Hansmann ML, Herling M, von Laer D, Newrzela S. Mature T-cell lymphomagenesis induced by retroviral insertional activation of Janus kinase 1. Mol Ther. 2013 Jun;21(6):1160-8. doi: 10.1038/mt.2013.67. Epub 2013 Apr 23.
- Hacein-Bey-Abina S, von Kalle C, Schmidt M, Le Deist F, Wulffraat N, McIntyre E, Radford I, Villeval JL, Fraser CC, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. A serious adverse event after successful gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2003 Jan 16;348(3):255-6. doi: 10.1056/NEJM200301163480314. No abstract available.
- Wang W, Lin C, Lu D, Ning Z, Cox T, Melvin D, Wang X, Bradley A, Liu P. Chromosomal transposition of PiggyBac in mouse embryonic stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Jul 8;105(27):9290-5. doi: 10.1073/pnas.0801017105. Epub 2008 Jun 25.
- Rad R, Rad L, Wang W, Cadinanos J, Vassiliou G, Rice S, Campos LS, Yusa K, Banerjee R, Li MA, de la Rosa J, Strong A, Lu D, Ellis P, Conte N, Yang FT, Liu P, Bradley A. PiggyBac transposon mutagenesis: a tool for cancer gene discovery in mice. Science. 2010 Nov 19;330(6007):1104-7. doi: 10.1126/science.1193004. Epub 2010 Oct 14.
- Fedoroff NV. Presidential address. Transposable elements, epigenetics, and genome evolution. Science. 2012 Nov 9;338(6108):758-67. doi: 10.1126/science.338.6108.758. No abstract available.
- Hackett PB, Largaespada DA, Switzer KC, Cooper LJ. Evaluating risks of insertional mutagenesis by DNA transposons in gene therapy. Transl Res. 2013 Apr;161(4):265-83. doi: 10.1016/j.trsl.2012.12.005. Epub 2013 Jan 10.
- Zhao S, Jiang E, Chen S, Gu Y, Shangguan AJ, Lv T, Luo L, Yu Z. PiggyBac transposon vectors: the tools of the human gene encoding. Transl Lung Cancer Res. 2016 Feb;5(1):120-5. doi: 10.3978/j.issn.2218-6751.2016.01.05.
- Milone MC, Bhoj VG. The Pharmacology of T Cell Therapies. Mol Ther Methods Clin Dev. 2018 Jan 31;8:210-221. doi: 10.1016/j.omtm.2018.01.010. eCollection 2018 Mar 16.
- Maude SL, Laetsch TW, Buechner J, Rives S, Boyer M, Bittencourt H, Bader P, Verneris MR, Stefanski HE, Myers GD, Qayed M, De Moerloose B, Hiramatsu H, Schlis K, Davis KL, Martin PL, Nemecek ER, Yanik GA, Peters C, Baruchel A, Boissel N, Mechinaud F, Balduzzi A, Krueger J, June CH, Levine BL, Wood P, Taran T, Leung M, Mueller KT, Zhang Y, Sen K, Lebwohl D, Pulsipher MA, Grupp SA. Tisagenlecleucel in Children and Young Adults with B-Cell Lymphoblastic Leukemia. N Engl J Med. 2018 Feb 1;378(5):439-448. doi: 10.1056/NEJMoa1709866.
Studiare le date dei record
Studia le date principali
Inizio studio (Effettivo)
Completamento primario (Stimato)
Completamento dello studio (Stimato)
Date di iscrizione allo studio
Primo inviato
Primo inviato che soddisfa i criteri di controllo qualità
Primo Inserito (Effettivo)
Aggiornamenti dei record di studio
Ultimo aggiornamento pubblicato (Effettivo)
Ultimo aggiornamento inviato che soddisfa i criteri QC
Ultimo verificato
Maggiori informazioni
Termini relativi a questo studio
Parole chiave
Termini MeSH pertinenti aggiuntivi
Altri numeri di identificazione dello studio
- UHKT-CAR19-01
- 2018-004789-32 (Numero EudraCT)
Piano per i dati dei singoli partecipanti (IPD)
Hai intenzione di condividere i dati dei singoli partecipanti (IPD)?
Informazioni su farmaci e dispositivi, documenti di studio
Studia un prodotto farmaceutico regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
Studia un dispositivo regolamentato dalla FDA degli Stati Uniti
Queste informazioni sono state recuperate direttamente dal sito web clinicaltrials.gov senza alcuna modifica. In caso di richieste di modifica, rimozione o aggiornamento dei dettagli dello studio, contattare register@clinicaltrials.gov. Non appena verrà implementata una modifica su clinicaltrials.gov, questa verrà aggiornata automaticamente anche sul nostro sito web .
Prove cliniche su Linfociti T autologhi CAR19
-
University College, LondonCompletatoTumori maligni CD19+: recidiva post-trapianto allogenicoRegno Unito
-
Henan Cancer HospitalThe Pregene (ShenZhen) Biotechnology Company, Ltd.SconosciutoLinfoma non Hodgkin recidivatoCina
-
Masonic Cancer Center, University of MinnesotaNon ancora reclutamentoLinfoma LeucemiaStati Uniti
-
University College, LondonCompletatoLinfoma diffuso a grandi cellule BRegno Unito
-
Chinese PLA General HospitalSconosciutoB-NHL refrattario o recidivato aggressivo r/r con enorme carico tumoraleCina
-
UNC Lineberger Comprehensive Cancer CenterThe Leukemia and Lymphoma Society; Bellicum PharmaceuticalsReclutamentoMalattie del sistema immunitario | Disturbi immunoproliferativi | Leucemia linfoblastica acutaStati Uniti
-
UNC Lineberger Comprehensive Cancer CenterBellicum PharmaceuticalsNon più disponibileMalattie del sistema immunitario | Disturbi immunoproliferativi | Leucemia linfoblastica acutaStati Uniti
-
UNC Lineberger Comprehensive Cancer CenterThe V Foundation; Bellicum PharmaceuticalsReclutamentoMalattie del sistema immunitario | Linfoma | Linfoma, cellule B | Malattie linfatiche | Disturbi immunoproliferativiStati Uniti
-
Han weidongReclutamentoLinfoma non Hodgkin a cellule B recidivato e refrattario | Cellule CAR T tandem CD19/CD20 innescate con decitabinaCina