- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT05054257
Auswirkungen von CART19-Zellen bei Patienten mit rezidivierter oder refraktärer akuter lymphoblastischer Leukämie und Non-Hodgkin-Lymphom (UHKT-CAR19-01)
Sicherheit und Wirksamkeit von chimären Anti-CD19-Antigenrezeptor-modifizierten autologen T-Zellen (CART19) bei Patienten mit rezidivierter/refraktärer CD19+ akuter lymphoblastischer Leukämie und Non-Hodgkin-Lymphom. Eine Open-Label-Phase-I-Studie zur Dosiseskalation.
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Phase
- Phase 1
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Jan Vydra
- Telefonnummer: +420221977182
- E-Mail: jan.vydra@uhk.cz
Studieren Sie die Kontaktsicherung
- Name: Petr Lesny
- Telefonnummer: +420221977629
- E-Mail: petr.lesny@uhkt.cz
Studienorte
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Prague, Tschechien, 12800
- Rekrutierung
- Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
-
Kontakt:
- Jan Vydra, MD
- Telefonnummer: +420 221977182
- E-Mail: jan.vydra@uhkt.cz
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Kontakt:
- Petr Lesny, MD
- Telefonnummer: +420221977629
- E-Mail: petr.lesny@uhkt.cz
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
Patient mit refraktärer oder rezidivierender CD19-positiver B-ALL oder B-NHL, definiert als:
- B-ALL behandlungsresistent oder im zweiten oder nachfolgenden Rückfall (hämatologisch ODER molekular), ODER
- B-NHL therapierefraktär oder im ersten Rückfall ungeeignet für eine autologe Stammzelltransplantation (ASCT) oder im zweiten bis vierten Rückfall, ODER
- Rezidive von B-ALL oder B-NHL nach autologer oder allogener hämatopoetischer Zelltransplantation (HCT).
- CD19-Expression auf malignen Zellen, bestätigt durch Durchflusszytometrie oder durch Immunhistochemie.
- Alter ≥18 Jahre und ≤ 80 Jahre.
- Der Patient ist in der Lage, die Einverständniserklärung zu verstehen und zu unterschreiben.
- Frauen im gebärfähigen Alter: negativer Schwangerschaftstest bei der Einschreibung (PSV) und bei Besuch 1.
Allgemeine Ausschlusskriterien:
- Bekannte Überempfindlichkeit gegen einen Bestandteil des Prüfpräparats (IMP).
- Autologe oder allogene HCT in 3 Monaten vor IMP-Verabreichung.
- Schwere, unkontrollierte aktive Infektion.
- Lebenserwartung < 6 Wochen.
- Beteiligung des parenchymalen Zentralnervensystems.
- Ateminsuffizienz (Notwendigkeit einer Sauerstofftherapie).
- Signifikante Leberfunktionsstörung: Bilirubin > 50 µmol/l, AST oder ALT > 4-fache der normalen Obergrenze.
- Akute Nierenschädigung mit Serum-Kreatinin > 180 µmol/l, Oligurie oder Notwendigkeit einer akuten Dialyse.
- Herzinsuffizienz mit EF < 30 % durch Echokardiographie.
- Vorhandensein einer aktiven akuten GvHD Grad 3-4.
- Schwerwiegende unkontrollierte neurologische Komorbidität.
- Impfung mit Lebendimpfstoffen in den 4 Wochen vor der IMP-Verabreichung und innerhalb von 90 Tagen nach der IMP-Dosis.
- Frauen: Schwangerschaft oder Stillzeit.
Personen im fruchtbaren Alter, es sei denn, dauerhafte sexuelle Abstinenz ist ihre Wahl des Lebensstils:
- Patientinnen im gebärfähigen Alter, die während der Studie nicht bereit sind, eine hochwirksame Verhütungsmethode anzuwenden,
- männliche Patienten, deren Sexualpartner Frauen im gebärfähigen Alter sind, die nicht bereit sind, während der Studie eine hochwirksame Verhütungsmethode anzuwenden.
Ausschlusskriterien für die Beschaffung von IMP-Herstellungsausgangsmaterial
- Schwere unkontrollierte aktive Infektion.
- Positive Testergebnisse für HIV1/2, Hepatitis B/C und Lues.
Gleichzeitige oder kürzlich vorangegangene Therapien vor der Apherese:
- Autologe oder allogene hämatopoetische Zelltransplantation innerhalb von 12 Wochen.
- Clofarabin, Fludarabin, Alemtuzumab innerhalb von 8 Wochen.
- Spender-Lymphozyten-Infusionen innerhalb von 4 Wochen.
- Pegylierte Asparaginase innerhalb von 4 Wochen.
- Erhaltungschemotherapie innerhalb von 2 Wochen.
- Langwirksamer Granulozyten-Kolonie-stimulierender Faktor (G-CSF) innerhalb von 2 Wochen.
- Vincristin innerhalb von 2 Wochen.
- Intrathekales Methotrexat innerhalb von 1 Woche.
- Granulocyte Colony Stimulating Factor (G-CSF) innerhalb von 5 Tagen.
- Therapeutische Dosis von Kortikosteroiden innerhalb von 3 Tagen.
- Kurzwirksame Zytostatika innerhalb von 3 Tagen
Ausschlusskriterien für die IMP-Verwaltung
- Schwere, unkontrollierte aktive Infektionen.
- Lebenserwartung < 6 Wochen.
- Beteiligung des parenchymalen Zentralnervensystems
- Ateminsuffizienz (Notwendigkeit einer Sauerstofftherapie).
- Signifikante Leberfunktionsstörung: Bilirubin > 50 µmol/L, Aspartat-Aminotransferase (AST) oder Alanin-Aminotransferase (ALT) > 4-fache der normalen Obergrenze.
- Akute Nierenschädigung mit Serum-Kreatinin > 180 µg/l, Oligurie oder Notwendigkeit einer akuten Dialyse.
- Herzinsuffizienz mit Ejektionsfraktion (EF) < 30 % durch Echokardiographie.
- Vorhandensein einer aktiven akuten GvHD Grad 3–4
- Schwerwiegende unkontrollierte neurologische Komorbidität.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: N / A
- Interventionsmodell: Einzelgruppenzuweisung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
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Experimental: Autologe CAR19-T-Lymphozyten
Menschliche autologe T-Lymphozyten, die den für CD19 spezifischen chimären Antigenrezeptor exprimieren
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Erste Studie am Menschen zur Untersuchung der Sicherheit und Wirksamkeit von CART19 bei r/r B-ALL und B-NHL
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Häufigkeit unerwünschter Ereignisse
Zeitfenster: Bis zu 2 Jahre nach der Behandlung
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Kumulative Inzidenz von IMP-bezogenen unerwünschten Ereignissen (AEs), bewertet nach den ASTCT-Konsensus-Einstufungskriterien für das Zytokinfreisetzungssyndrom (CRS) und das Immuneffektorzell-assoziierte Neurotoxizitätssyndrom (ICANS) und nach den Common Terminology Criteria for Adverse Events (CTCAE) v 5.0 für andere AE.
Toxizitäten werden vom Beginn der Blutentnahme oder Apherese bis zum Ende der Studie verfolgt.
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Bis zu 2 Jahre nach der Behandlung
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Bewertung dosisbegrenzender Toxizitäten (DLTs)
Zeitfenster: Bis zu 28 Tage nach IMP-Verabreichung
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Auftreten von dosislimitierenden Toxizitäten (DLTs) während der ersten 28 Tage nach IMP-Verabreichung
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Bis zu 28 Tage nach IMP-Verabreichung
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Rate der vollständigen Remission (CR).
Zeitfenster: CR-Rate 100 Tage und 6 Monate nach IMP-Verabreichung
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Bewertung der Wirksamkeit der Verabreichung von IMP-Zellen bei Patienten mit refraktärem oder rezidivierendem CD19+ NHL und B-ALL, bewertet anhand der vollständigen Remissionsrate
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CR-Rate 100 Tage und 6 Monate nach IMP-Verabreichung
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Gesamtüberleben
Zeitfenster: OS 1 Jahr nach IMP-Verabreichung
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Bewertung der Wirksamkeit der Verabreichung von IMP-Zellen bei Patienten mit refraktärem oder rezidivierendem CD19+ NHL und B-ALL, bewertet anhand des Gesamtüberlebens
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OS 1 Jahr nach IMP-Verabreichung
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Lebensqualität unter Verwendung des 30-Punkte-Fragebogens der Europäischen Organisation für die Erforschung und Behandlung von Krebs (EORTC QLQ-C30).
Zeitfenster: 6 Monate und 1 Jahr nach IMP-Verabreichung
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EORTC-QLQ-C30 ist ein Selbstberichtsfragebogen mit 30 Punkten, der sowohl aus mehreren Punkten als auch Einzelskalen besteht, einschließlich einer globalen Skala für Gesundheitszustand/Lebensqualität (GHS/QoL).
Die Teilnehmer bewerten Items auf einer vierstufigen Skala, wobei 1 „überhaupt nicht“ und 4 „sehr stark“ bedeutet.
Eine Änderung von 5 - 10 Punkten wird als gering angesehen.
Eine Änderung von 10 - 20 Punkten gilt als moderate Änderung.
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6 Monate und 1 Jahr nach IMP-Verabreichung
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Andere Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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CART19-Zellen in peripherem Blut, Knochenmark und Liquor cerebrospinalis
Zeitfenster: Bis zu 24 Monate
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Bestimmung der Menge und des Phänotyps von CART19-Zellen in peripherem Blut, Knochenmark und Liquor unter Verwendung von Durchflusszytometrie
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Bis zu 24 Monate
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Mitarbeiter und Ermittler
Ermittler
- Studienstuhl: Petr Lesny, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
- Hauptermittler: Jan Vydra, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Porter DL, Hwang WT, Frey NV, Lacey SF, Shaw PA, Loren AW, Bagg A, Marcucci KT, Shen A, Gonzalez V, Ambrose D, Grupp SA, Chew A, Zheng Z, Milone MC, Levine BL, Melenhorst JJ, June CH. Chimeric antigen receptor T cells persist and induce sustained remissions in relapsed refractory chronic lymphocytic leukemia. Sci Transl Med. 2015 Sep 2;7(303):303ra139. doi: 10.1126/scitranslmed.aac5415.
- Maude SL, Frey N, Shaw PA, Aplenc R, Barrett DM, Bunin NJ, Chew A, Gonzalez VE, Zheng Z, Lacey SF, Mahnke YD, Melenhorst JJ, Rheingold SR, Shen A, Teachey DT, Levine BL, June CH, Porter DL, Grupp SA. Chimeric antigen receptor T cells for sustained remissions in leukemia. N Engl J Med. 2014 Oct 16;371(16):1507-17. doi: 10.1056/NEJMoa1407222. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Kassim SH, Somerville RP, Carpenter RO, Stetler-Stevenson M, Yang JC, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Raffeld M, Feldman S, Lu L, Li YF, Ngo LT, Goy A, Feldman T, Spaner DE, Wang ML, Chen CC, Kranick SM, Nath A, Nathan DA, Morton KE, Toomey MA, Rosenberg SA. Chemotherapy-refractory diffuse large B-cell lymphoma and indolent B-cell malignancies can be effectively treated with autologous T cells expressing an anti-CD19 chimeric antigen receptor. J Clin Oncol. 2015 Feb 20;33(6):540-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2025. Epub 2014 Aug 25.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Feldman SA, Wilson WH, Spaner DE, Maric I, Stetler-Stevenson M, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Yang JC, Kammula US, Devillier L, Carpenter R, Nathan DA, Morgan RA, Laurencot C, Rosenberg SA. B-cell depletion and remissions of malignancy along with cytokine-associated toxicity in a clinical trial of anti-CD19 chimeric-antigen-receptor-transduced T cells. Blood. 2012 Mar 22;119(12):2709-20. doi: 10.1182/blood-2011-10-384388. Epub 2011 Dec 8.
- Davila ML, Riviere I, Wang X, Bartido S, Park J, Curran K, Chung SS, Stefanski J, Borquez-Ojeda O, Olszewska M, Qu J, Wasielewska T, He Q, Fink M, Shinglot H, Youssif M, Satter M, Wang Y, Hosey J, Quintanilla H, Halton E, Bernal Y, Bouhassira DC, Arcila ME, Gonen M, Roboz GJ, Maslak P, Douer D, Frattini MG, Giralt S, Sadelain M, Brentjens R. Efficacy and toxicity management of 19-28z CAR T cell therapy in B cell acute lymphoblastic leukemia. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra25. doi: 10.1126/scitranslmed.3008226.
- Turtle CJ, Hanafi LA, Berger C, Gooley TA, Cherian S, Hudecek M, Sommermeyer D, Melville K, Pender B, Budiarto TM, Robinson E, Steevens NN, Chaney C, Soma L, Chen X, Yeung C, Wood B, Li D, Cao J, Heimfeld S, Jensen MC, Riddell SR, Maloney DG. CD19 CAR-T cells of defined CD4+:CD8+ composition in adult B cell ALL patients. J Clin Invest. 2016 Jun 1;126(6):2123-38. doi: 10.1172/JCI85309. Epub 2016 Apr 25.
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- Milone MC, Fish JD, Carpenito C, Carroll RG, Binder GK, Teachey D, Samanta M, Lakhal M, Gloss B, Danet-Desnoyers G, Campana D, Riley JL, Grupp SA, June CH. Chimeric receptors containing CD137 signal transduction domains mediate enhanced survival of T cells and increased antileukemic efficacy in vivo. Mol Ther. 2009 Aug;17(8):1453-64. doi: 10.1038/mt.2009.83. Epub 2009 Apr 21. Erratum In: Mol Ther. 2015 Jul;23(7):1278.
- Lee DW, Santomasso BD, Locke FL, Ghobadi A, Turtle CJ, Brudno JN, Maus MV, Park JH, Mead E, Pavletic S, Go WY, Eldjerou L, Gardner RA, Frey N, Curran KJ, Peggs K, Pasquini M, DiPersio JF, van den Brink MRM, Komanduri KV, Grupp SA, Neelapu SS. ASTCT Consensus Grading for Cytokine Release Syndrome and Neurologic Toxicity Associated with Immune Effector Cells. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 Apr;25(4):625-638. doi: 10.1016/j.bbmt.2018.12.758. Epub 2018 Dec 25.
- Fraietta JA, Lacey SF, Orlando EJ, Pruteanu-Malinici I, Gohil M, Lundh S, Boesteanu AC, Wang Y, O'Connor RS, Hwang WT, Pequignot E, Ambrose DE, Zhang C, Wilcox N, Bedoya F, Dorfmeier C, Chen F, Tian L, Parakandi H, Gupta M, Young RM, Johnson FB, Kulikovskaya I, Liu L, Xu J, Kassim SH, Davis MM, Levine BL, Frey NV, Siegel DL, Huang AC, Wherry EJ, Bitter H, Brogdon JL, Porter DL, June CH, Melenhorst JJ. Determinants of response and resistance to CD19 chimeric antigen receptor (CAR) T cell therapy of chronic lymphocytic leukemia. Nat Med. 2018 May;24(5):563-571. doi: 10.1038/s41591-018-0010-1. Epub 2018 Apr 30. Erratum In: Nat Med. 2021 Mar;27(3):561.
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- Hamada M, Nishio N, Okuno Y, Suzuki S, Kawashima N, Muramatsu H, Tsubota S, Wilson MH, Morita D, Kataoka S, Ichikawa D, Murakami N, Taniguchi R, Suzuki K, Kojima D, Sekiya Y, Nishikawa E, Narita A, Hama A, Kojima S, Nakazawa Y, Takahashi Y. Integration Mapping of piggyBac-Mediated CD19 Chimeric Antigen Receptor T Cells Analyzed by Novel Tagmentation-Assisted PCR. EBioMedicine. 2018 Aug;34:18-26. doi: 10.1016/j.ebiom.2018.07.008. Epub 2018 Aug 3.
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- Kebriaei P, Singh H, Huls MH, Figliola MJ, Bassett R, Olivares S, Jena B, Dawson MJ, Kumaresan PR, Su S, Maiti S, Dai J, Moriarity B, Forget MA, Senyukov V, Orozco A, Liu T, McCarty J, Jackson RN, Moyes JS, Rondon G, Qazilbash M, Ciurea S, Alousi A, Nieto Y, Rezvani K, Marin D, Popat U, Hosing C, Shpall EJ, Kantarjian H, Keating M, Wierda W, Do KA, Largaespada DA, Lee DA, Hackett PB, Champlin RE, Cooper LJ. Phase I trials using Sleeping Beauty to generate CD19-specific CAR T cells. J Clin Invest. 2016 Sep 1;126(9):3363-76. doi: 10.1172/JCI86721. Epub 2016 Aug 2.
- Otahal P, Prukova D, Kral V, Fabry M, Vockova P, Lateckova L, Trneny M, Klener P. Lenalidomide enhances antitumor functions of chimeric antigen receptor modified T cells. Oncoimmunology. 2015 Dec 3;5(4):e1115940. doi: 10.1080/2162402X.2015.1115940. eCollection 2016 Apr.
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- Ptackova P, Musil J, Stach M, Lesny P, Nemeckova S, Kral V, Fabry M, Otahal P. A new approach to CAR T-cell gene engineering and cultivation using piggyBac transposon in the presence of IL-4, IL-7 and IL-21. Cytotherapy. 2018 Apr;20(4):507-520. doi: 10.1016/j.jcyt.2017.10.001. Epub 2018 Feb 21.
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- Mueller KT, Waldron E, Grupp SA, Levine JE, Laetsch TW, Pulsipher MA, Boyer MW, August KJ, Hamilton J, Awasthi R, Stein AM, Sickert D, Chakraborty A, Levine BL, June CH, Tomassian L, Shah SS, Leung M, Taran T, Wood PA, Maude SL. Clinical Pharmacology of Tisagenlecleucel in B-cell Acute Lymphoblastic Leukemia. Clin Cancer Res. 2018 Dec 15;24(24):6175-6184. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-18-0758. Epub 2018 Sep 6.
- Schuster SJ, Bishop MR, Tam CS, Waller EK, Borchmann P, McGuirk JP, Jager U, Jaglowski S, Andreadis C, Westin JR, Fleury I, Bachanova V, Foley SR, Ho PJ, Mielke S, Magenau JM, Holte H, Pantano S, Pacaud LB, Awasthi R, Chu J, Anak O, Salles G, Maziarz RT; JULIET Investigators. Tisagenlecleucel in Adult Relapsed or Refractory Diffuse Large B-Cell Lymphoma. N Engl J Med. 2019 Jan 3;380(1):45-56. doi: 10.1056/NEJMoa1804980. Epub 2018 Dec 1.
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- Maude SL, Laetsch TW, Buechner J, Rives S, Boyer M, Bittencourt H, Bader P, Verneris MR, Stefanski HE, Myers GD, Qayed M, De Moerloose B, Hiramatsu H, Schlis K, Davis KL, Martin PL, Nemecek ER, Yanik GA, Peters C, Baruchel A, Boissel N, Mechinaud F, Balduzzi A, Krueger J, June CH, Levine BL, Wood P, Taran T, Leung M, Mueller KT, Zhang Y, Sen K, Lebwohl D, Pulsipher MA, Grupp SA. Tisagenlecleucel in Children and Young Adults with B-Cell Lymphoblastic Leukemia. N Engl J Med. 2018 Feb 1;378(5):439-448. doi: 10.1056/NEJMoa1709866.
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- UHKT-CAR19-01
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Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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Klinische Studien zur Non-Hodgkin-Lymphom, rezidiviert
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SWOG Cancer Research NetworkNational Cancer Institute (NCI); Genentech, Inc.RekrutierungDiffuses großzelliges B-Zell-Lymphom | Wiederkehrendes diffuses großzelliges B-Zell-Lymphom | Refraktäres diffuses großzelliges B-Zell-Lymphom | Primäres mediastinales (thymisches) großes B-Zell-Lymphom | Follikuläres Lymphom Grad 3b | Transformierte follikuläre Lymphe zu Diff Large B-Zell-Lymphom und andere BedingungenVereinigte Staaten
Klinische Studien zur Autologe CAR19-T-Lymphozyten
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University College, LondonAbgeschlossenCD19+-Malignome: Rückfall nach allogener TransplantationVereinigtes Königreich
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Henan Cancer HospitalThe Pregene (ShenZhen) Biotechnology Company, Ltd.UnbekanntRezidiviertes Non-Hodgkin-LymphomChina
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Masonic Cancer Center, University of MinnesotaNoch keine RekrutierungLymphom-LeukämieVereinigte Staaten
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University College, LondonAbgeschlossenDiffuses großzelliges B-Zell-LymphomVereinigtes Königreich
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Chinese PLA General HospitalUnbekanntRefraktäres oder rezidivierendes aggressives r/r B-NHL mit enormer TumorlastChina
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UNC Lineberger Comprehensive Cancer CenterThe Leukemia and Lymphoma Society; Bellicum PharmaceuticalsRekrutierungErkrankungen des Immunsystems | Immunproliferative Erkrankungen | Akute lymphatische LeukämieVereinigte Staaten
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UNC Lineberger Comprehensive Cancer CenterBellicum PharmaceuticalsNicht länger verfügbarErkrankungen des Immunsystems | Immunproliferative Erkrankungen | Akute lymphatische LeukämieVereinigte Staaten
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UNC Lineberger Comprehensive Cancer CenterThe V Foundation; Bellicum PharmaceuticalsRekrutierungErkrankungen des Immunsystems | Lymphom | Lymphom, B-Zell | Lymphatische Erkrankungen | Immunproliferative ErkrankungenVereinigte Staaten
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Han weidongRekrutierungRezidiviertes und refraktäres B-Zell-Non-Hodgkin-Lymphom | Decitabin-geprimte Tandem-CD19/CD20-CAR-T-ZellenChina