- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT05054257
Effets des cellules CART19 chez les patients atteints de leucémie aiguë lymphoblastique récidivante ou réfractaire et de lymphome non hodgkinien (UHKT-CAR19-01)
Innocuité et efficacité des cellules T autologues modifiées par le récepteur de l'antigène chimérique anti-CD19 (CART19) chez les patients atteints de leucémie aiguë lymphoblastique CD19+ récidivante/réfractaire et de lymphome non hodgkinien. Une escalade de dose, une étude ouverte de phase I.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- La phase 1
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Jan Vydra
- Numéro de téléphone: +420221977182
- E-mail: jan.vydra@uhk.cz
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Petr Lesny
- Numéro de téléphone: +420221977629
- E-mail: petr.lesny@uhkt.cz
Lieux d'étude
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Prague, Tchéquie, 12800
- Recrutement
- Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
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Contact:
- Jan Vydra, MD
- Numéro de téléphone: +420 221977182
- E-mail: jan.vydra@uhkt.cz
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Contact:
- Petr Lesny, MD
- Numéro de téléphone: +420221977629
- E-mail: petr.lesny@uhkt.cz
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
Patient atteint d'une LAL-B ou d'un LNH-B réfractaire ou en rechute CD19 positif défini comme :
- LAL-B réfractaire au traitement ou en deuxième rechute ou ultérieure (hématologique OU moléculaire), OU
- B-NHL réfractaire au traitement ou en première rechute inéligible à la greffe de cellules souches autologues (ASCT) ou en deuxième à quatrième rechute, OU
- B-ALL ou B-NHL récidivant après autogreffe ou allogreffe de cellules hématopoïétiques (HCT).
- Expression de CD19 sur des cellules malignes confirmée par cytométrie en flux ou par immunohistochimie.
- Âge ≥18 ans et ≤ 80 ans.
- Patient capable de comprendre et de signer un consentement éclairé.
- Femmes en âge de procréer : test de grossesse négatif à l'inscription (PSV) et à la visite 1.
Critères généraux d'exclusion :
- Hypersensibilité connue à l'un des composants du médicament expérimental (IMP).
- HCT autologue ou allogénique dans les 3 mois précédant l'administration de l'IMP.
- Infection active grave et incontrôlée.
- Espérance de vie < 6 semaines.
- Atteinte du système nerveux central parenchymateux.
- Insuffisance respiratoire (besoin d'oxygénothérapie).
- Insuffisance hépatique significative : bilirubine > 50 µmol/L, AST ou ALT > 4 fois la limite supérieure normale.
- Insuffisance rénale aiguë avec créatinine sérique > 180 µmol/L, oligurie ou besoin de dialyse aiguë.
- Insuffisance cardiaque avec FE < 30 % par échocardiographie.
- Présence de GvHD aiguë active de grade 3-4.
- Comorbidité neurologique grave non contrôlée.
- Vaccination avec des vaccins à virus vivants dans les 4 semaines précédant l'administration de l'IMP et dans les 90 jours suivant l'administration de l'IMP.
- Femmes : grossesse ou allaitement.
Sujets en âge de procréer, sauf si l'abstinence sexuelle permanente est leur choix de mode de vie :
- les patientes en âge de procréer qui ne souhaitent pas utiliser une méthode de contraception très efficace pendant l'étude,
- patients de sexe masculin dont le ou les partenaires sexuels sont des femmes en âge de procréer qui ne souhaitent pas utiliser une méthode de contraception hautement efficace pendant l'étude.
Critères d'exclusion à l'approvisionnement en matière première de fabrication IMP
- Infection active grave non maîtrisée.
- Résultats de test positifs pour le VIH1/2, l'hépatite B/C et les virus.
Traitements antérieurs concomitants ou récents avant l'aphérèse :
- Transplantation autologue ou allogénique de cellules hématopoïétiques dans les 12 semaines.
- Clofarabine, Fludarabine, Alemtuzumab dans les 8 semaines.
- Perfusions de lymphocytes du donneur dans les 4 semaines.
- Asparaginase pégylée dans les 4 semaines.
- Chimiothérapie d'entretien dans les 2 semaines.
- Facteur de stimulation des colonies de granulocytes à action prolongée (G-CSF) dans les 2 semaines.
- Vincristine dans les 2 semaines.
- Méthotrexate intrathécal dans la semaine.
- Facteur de stimulation des colonies de granulocytes (G-CSF) dans les 5 jours.
- Dose thérapeutique de corticostéroïdes dans les 3 jours.
- Cytostatiques à courte durée d'action dans les 3 jours
Critères d'exclusion à l'administration IMP
- Infections actives graves et incontrôlées.
- Espérance de vie < 6 semaines.
- Atteinte du système nerveux central parenchymateux
- Insuffisance respiratoire (besoin d'oxygénothérapie).
- Insuffisance hépatique significative : bilirubine > 50 µmol/L, aspartate aminotransférase (AST) ou alanine aminotransférase (ALT) > 4 fois la limite supérieure normale.
- Insuffisance rénale aiguë avec créatinine sérique > 180 µg/L, oligurie ou besoin de dialyse aiguë.
- Insuffisance cardiaque avec fraction d'éjection (FE) < 30 % par échocardiographie.
- Présence de GvHD aiguë active de grade 3 à 4
- Comorbidité neurologique grave non contrôlée.
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: N / A
- Modèle interventionnel: Affectation à un seul groupe
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Expérimental: Lymphocytes T CAR19 autologues
Lymphocytes T autologues humains exprimant le récepteur d'antigène chimérique spécifique au CD19
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Premier essai chez l'homme examinant l'innocuité et l'efficacité de CART19 dans r/r B-ALL et B-NHL
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Incidence des événements indésirables
Délai: Jusqu'à 2 ans après le traitement
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Incidence cumulée des événements indésirables (EI) liés à l'IMP classés par les critères de classement consensuels de l'ASTCT pour le syndrome de libération des cytokines (CRS) et le syndrome de neurotoxicité associé aux cellules effectrices immunitaires (ICANS) et par les critères de terminologie communs pour les événements indésirables (CTCAE) v 5.0 pour les autres AE.
Les toxicités seront suivies depuis le début du prélèvement sanguin ou de l'aphérèse jusqu'à la fin de l'étude.
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Jusqu'à 2 ans après le traitement
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Évaluation des toxicités limitant la dose (DLT)
Délai: Jusqu'à 28 jours après l'administration de l'IMP
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Incidence des toxicités limitant la dose (DLT) au cours des 28 premiers jours suivant l'administration de l'IMP
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Jusqu'à 28 jours après l'administration de l'IMP
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Taux de rémission complète (RC)
Délai: Taux de RC à 100 jours et 6 mois après l'administration de l'IMP
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Évaluation de l'efficacité de l'administration de cellules IMP chez les patients atteints de LNH CD19+ réfractaire ou en rechute et de LAL-B évaluée par le taux de rémission complète
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Taux de RC à 100 jours et 6 mois après l'administration de l'IMP
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La survie globale
Délai: SG à 1 an après l'administration de l'IMP
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Évaluation de l'efficacité de l'administration de cellules IMP chez les patients atteints de LNH CD19+ réfractaire ou en rechute et de LAL-B évaluée par la survie globale
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SG à 1 an après l'administration de l'IMP
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Qualité de vie à l'aide du questionnaire à 30 items de l'Organisation européenne pour la recherche et le traitement du cancer (EORTC QLQ-C30).
Délai: À 6 mois et 1 an après l'administration de l'IMP
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L'EORTC-QLQ-C30 est un questionnaire d'auto-évaluation de 30 items composé d'échelles multi-items et d'échelles uniques, y compris une échelle d'état de santé global/qualité de vie (GHS/QoL).
Les participants évaluent les éléments sur une échelle de quatre points, 1 correspondant à « pas du tout » et 4 à « tout à fait ».
Un changement de 5 à 10 points est considéré comme un petit.
Un changement de 10 à 20 points est considéré comme un changement modéré.
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À 6 mois et 1 an après l'administration de l'IMP
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Autres mesures de résultats
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Cellules CART19 dans le sang périphérique, la moelle osseuse et le liquide céphalo-rachidien
Délai: Jusqu'à 24 mois
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Évaluation de la quantité et du phénotype des cellules CART19 dans le sang périphérique, la moelle osseuse et le liquide céphalo-rachidien à l'aide de la cytométrie en flux
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Jusqu'à 24 mois
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Collaborateurs et enquêteurs
Les enquêteurs
- Chaise d'étude: Petr Lesny, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
- Chercheur principal: Jan Vydra, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
Publications et liens utiles
Publications générales
- Porter DL, Hwang WT, Frey NV, Lacey SF, Shaw PA, Loren AW, Bagg A, Marcucci KT, Shen A, Gonzalez V, Ambrose D, Grupp SA, Chew A, Zheng Z, Milone MC, Levine BL, Melenhorst JJ, June CH. Chimeric antigen receptor T cells persist and induce sustained remissions in relapsed refractory chronic lymphocytic leukemia. Sci Transl Med. 2015 Sep 2;7(303):303ra139. doi: 10.1126/scitranslmed.aac5415.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Kassim SH, Somerville RP, Carpenter RO, Stetler-Stevenson M, Yang JC, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Raffeld M, Feldman S, Lu L, Li YF, Ngo LT, Goy A, Feldman T, Spaner DE, Wang ML, Chen CC, Kranick SM, Nath A, Nathan DA, Morton KE, Toomey MA, Rosenberg SA. Chemotherapy-refractory diffuse large B-cell lymphoma and indolent B-cell malignancies can be effectively treated with autologous T cells expressing an anti-CD19 chimeric antigen receptor. J Clin Oncol. 2015 Feb 20;33(6):540-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2025. Epub 2014 Aug 25.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Feldman SA, Wilson WH, Spaner DE, Maric I, Stetler-Stevenson M, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Yang JC, Kammula US, Devillier L, Carpenter R, Nathan DA, Morgan RA, Laurencot C, Rosenberg SA. B-cell depletion and remissions of malignancy along with cytokine-associated toxicity in a clinical trial of anti-CD19 chimeric-antigen-receptor-transduced T cells. Blood. 2012 Mar 22;119(12):2709-20. doi: 10.1182/blood-2011-10-384388. Epub 2011 Dec 8.
- Davila ML, Riviere I, Wang X, Bartido S, Park J, Curran K, Chung SS, Stefanski J, Borquez-Ojeda O, Olszewska M, Qu J, Wasielewska T, He Q, Fink M, Shinglot H, Youssif M, Satter M, Wang Y, Hosey J, Quintanilla H, Halton E, Bernal Y, Bouhassira DC, Arcila ME, Gonen M, Roboz GJ, Maslak P, Douer D, Frattini MG, Giralt S, Sadelain M, Brentjens R. Efficacy and toxicity management of 19-28z CAR T cell therapy in B cell acute lymphoblastic leukemia. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra25. doi: 10.1126/scitranslmed.3008226.
- Turtle CJ, Hanafi LA, Berger C, Gooley TA, Cherian S, Hudecek M, Sommermeyer D, Melville K, Pender B, Budiarto TM, Robinson E, Steevens NN, Chaney C, Soma L, Chen X, Yeung C, Wood B, Li D, Cao J, Heimfeld S, Jensen MC, Riddell SR, Maloney DG. CD19 CAR-T cells of defined CD4+:CD8+ composition in adult B cell ALL patients. J Clin Invest. 2016 Jun 1;126(6):2123-38. doi: 10.1172/JCI85309. Epub 2016 Apr 25.
- Lamers CH, Sleijfer S, van Steenbergen S, van Elzakker P, van Krimpen B, Groot C, Vulto A, den Bakker M, Oosterwijk E, Debets R, Gratama JW. Treatment of metastatic renal cell carcinoma with CAIX CAR-engineered T cells: clinical evaluation and management of on-target toxicity. Mol Ther. 2013 Apr;21(4):904-12. doi: 10.1038/mt.2013.17. Epub 2013 Feb 19.
- Lee DW, Santomasso BD, Locke FL, Ghobadi A, Turtle CJ, Brudno JN, Maus MV, Park JH, Mead E, Pavletic S, Go WY, Eldjerou L, Gardner RA, Frey N, Curran KJ, Peggs K, Pasquini M, DiPersio JF, van den Brink MRM, Komanduri KV, Grupp SA, Neelapu SS. ASTCT Consensus Grading for Cytokine Release Syndrome and Neurologic Toxicity Associated with Immune Effector Cells. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 Apr;25(4):625-638. doi: 10.1016/j.bbmt.2018.12.758. Epub 2018 Dec 25.
- Simon R, Freidlin B, Rubinstein L, Arbuck SG, Collins J, Christian MC. Accelerated titration designs for phase I clinical trials in oncology. J Natl Cancer Inst. 1997 Aug 6;89(15):1138-47. doi: 10.1093/jnci/89.15.1138.
- Comerota AJ, Throm RC, Miller KA, Henry T, Chronos N, Laird J, Sequeira R, Kent CK, Bacchetta M, Goldman C, Salenius JP, Schmieder FA, Pilsudski R. Naked plasmid DNA encoding fibroblast growth factor type 1 for the treatment of end-stage unreconstructible lower extremity ischemia: preliminary results of a phase I trial. J Vasc Surg. 2002 May;35(5):930-6. doi: 10.1067/mva.2002.123677.
- Hartmann J, Schussler-Lenz M, Bondanza A, Buchholz CJ. Clinical development of CAR T cells-challenges and opportunities in translating innovative treatment concepts. EMBO Mol Med. 2017 Sep;9(9):1183-1197. doi: 10.15252/emmm.201607485.
- Hamada M, Nishio N, Okuno Y, Suzuki S, Kawashima N, Muramatsu H, Tsubota S, Wilson MH, Morita D, Kataoka S, Ichikawa D, Murakami N, Taniguchi R, Suzuki K, Kojima D, Sekiya Y, Nishikawa E, Narita A, Hama A, Kojima S, Nakazawa Y, Takahashi Y. Integration Mapping of piggyBac-Mediated CD19 Chimeric Antigen Receptor T Cells Analyzed by Novel Tagmentation-Assisted PCR. EBioMedicine. 2018 Aug;34:18-26. doi: 10.1016/j.ebiom.2018.07.008. Epub 2018 Aug 3.
- Tipanee J, VandenDriessche T, Chuah MK. Transposons: Moving Forward from Preclinical Studies to Clinical Trials. Hum Gene Ther. 2017 Nov;28(11):1087-1104. doi: 10.1089/hum.2017.128. Epub 2017 Aug 22.
- Kebriaei P, Singh H, Huls MH, Figliola MJ, Bassett R, Olivares S, Jena B, Dawson MJ, Kumaresan PR, Su S, Maiti S, Dai J, Moriarity B, Forget MA, Senyukov V, Orozco A, Liu T, McCarty J, Jackson RN, Moyes JS, Rondon G, Qazilbash M, Ciurea S, Alousi A, Nieto Y, Rezvani K, Marin D, Popat U, Hosing C, Shpall EJ, Kantarjian H, Keating M, Wierda W, Do KA, Largaespada DA, Lee DA, Hackett PB, Champlin RE, Cooper LJ. Phase I trials using Sleeping Beauty to generate CD19-specific CAR T cells. J Clin Invest. 2016 Sep 1;126(9):3363-76. doi: 10.1172/JCI86721. Epub 2016 Aug 2.
- Otahal P, Prukova D, Kral V, Fabry M, Vockova P, Lateckova L, Trneny M, Klener P. Lenalidomide enhances antitumor functions of chimeric antigen receptor modified T cells. Oncoimmunology. 2015 Dec 3;5(4):e1115940. doi: 10.1080/2162402X.2015.1115940. eCollection 2016 Apr.
- Yusa K, Zhou L, Li MA, Bradley A, Craig NL. A hyperactive piggyBac transposase for mammalian applications. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 Jan 25;108(4):1531-6. doi: 10.1073/pnas.1008322108. Epub 2011 Jan 4.
- Ptackova P, Musil J, Stach M, Lesny P, Nemeckova S, Kral V, Fabry M, Otahal P. A new approach to CAR T-cell gene engineering and cultivation using piggyBac transposon in the presence of IL-4, IL-7 and IL-21. Cytotherapy. 2018 Apr;20(4):507-520. doi: 10.1016/j.jcyt.2017.10.001. Epub 2018 Feb 21.
- Riviere I, Sadelain M. Chimeric Antigen Receptors: A Cell and Gene Therapy Perspective. Mol Ther. 2017 May 3;25(5):1117-1124. doi: 10.1016/j.ymthe.2017.03.034. Epub 2017 Apr 26.
- Norelli M, Casucci M, Bonini C, Bondanza A. Clinical pharmacology of CAR-T cells: Linking cellular pharmacodynamics to pharmacokinetics and antitumor effects. Biochim Biophys Acta. 2016 Jan;1865(1):90-100. doi: 10.1016/j.bbcan.2015.12.001. Epub 2015 Dec 31.
- Till BG, Jensen MC, Wang J, Chen EY, Wood BL, Greisman HA, Qian X, James SE, Raubitschek A, Forman SJ, Gopal AK, Pagel JM, Lindgren CG, Greenberg PD, Riddell SR, Press OW. Adoptive immunotherapy for indolent non-Hodgkin lymphoma and mantle cell lymphoma using genetically modified autologous CD20-specific T cells. Blood. 2008 Sep 15;112(6):2261-71. doi: 10.1182/blood-2007-12-128843. Epub 2008 May 28.
- Mueller KT, Waldron E, Grupp SA, Levine JE, Laetsch TW, Pulsipher MA, Boyer MW, August KJ, Hamilton J, Awasthi R, Stein AM, Sickert D, Chakraborty A, Levine BL, June CH, Tomassian L, Shah SS, Leung M, Taran T, Wood PA, Maude SL. Clinical Pharmacology of Tisagenlecleucel in B-cell Acute Lymphoblastic Leukemia. Clin Cancer Res. 2018 Dec 15;24(24):6175-6184. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-18-0758. Epub 2018 Sep 6.
- Schuster SJ, Bishop MR, Tam CS, Waller EK, Borchmann P, McGuirk JP, Jager U, Jaglowski S, Andreadis C, Westin JR, Fleury I, Bachanova V, Foley SR, Ho PJ, Mielke S, Magenau JM, Holte H, Pantano S, Pacaud LB, Awasthi R, Chu J, Anak O, Salles G, Maziarz RT; JULIET Investigators. Tisagenlecleucel in Adult Relapsed or Refractory Diffuse Large B-Cell Lymphoma. N Engl J Med. 2019 Jan 3;380(1):45-56. doi: 10.1056/NEJMoa1804980. Epub 2018 Dec 1.
- Singh H, Figliola MJ, Dawson MJ, Olivares S, Zhang L, Yang G, Maiti S, Manuri P, Senyukov V, Jena B, Kebriaei P, Champlin RE, Huls H, Cooper LJ. Manufacture of clinical-grade CD19-specific T cells stably expressing chimeric antigen receptor using Sleeping Beauty system and artificial antigen presenting cells. PLoS One. 2013 May 31;8(5):e64138. doi: 10.1371/journal.pone.0064138. Print 2013.
- Kershaw MH, Westwood JA, Parker LL, Wang G, Eshhar Z, Mavroukakis SA, White DE, Wunderlich JR, Canevari S, Rogers-Freezer L, Chen CC, Yang JC, Rosenberg SA, Hwu P. A phase I study on adoptive immunotherapy using gene-modified T cells for ovarian cancer. Clin Cancer Res. 2006 Oct 15;12(20 Pt 1):6106-15. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-06-1183.
- Park JR, Digiusto DL, Slovak M, Wright C, Naranjo A, Wagner J, Meechoovet HB, Bautista C, Chang WC, Ostberg JR, Jensen MC. Adoptive transfer of chimeric antigen receptor re-directed cytolytic T lymphocyte clones in patients with neuroblastoma. Mol Ther. 2007 Apr;15(4):825-33. doi: 10.1038/sj.mt.6300104. Epub 2007 Feb 13.
- Hay KA, Hanafi LA, Li D, Gust J, Liles WC, Wurfel MM, Lopez JA, Chen J, Chung D, Harju-Baker S, Cherian S, Chen X, Riddell SR, Maloney DG, Turtle CJ. Kinetics and biomarkers of severe cytokine release syndrome after CD19 chimeric antigen receptor-modified T-cell therapy. Blood. 2017 Nov 23;130(21):2295-2306. doi: 10.1182/blood-2017-06-793141. Epub 2017 Sep 18.
- Powell RJ, Simons M, Mendelsohn FO, Daniel G, Henry TD, Koga M, Morishita R, Annex BH. Results of a double-blind, placebo-controlled study to assess the safety of intramuscular injection of hepatocyte growth factor plasmid to improve limb perfusion in patients with critical limb ischemia. Circulation. 2008 Jul 1;118(1):58-65. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.107.727347. Epub 2008 Jun 16.
- Gonin P, Gaillard C. Gene transfer vector biodistribution: pivotal safety studies in clinical gene therapy development. Gene Ther. 2004 Oct;11 Suppl 1:S98-S108. doi: 10.1038/sj.gt.3302378.
- Dotti G. T lymphocytes are not immune. Mol Ther. 2013 Jun;21(6):1114-5. doi: 10.1038/mt.2013.102. No abstract available.
- Saha S, Woodard LE, Charron EM, Welch RC, Rooney CM, Wilson MH. Evaluating the potential for undesired genomic effects of the piggyBac transposon system in human cells. Nucleic Acids Res. 2015 Feb 18;43(3):1770-82. doi: 10.1093/nar/gkv017. Epub 2015 Jan 20.
- Heinrich T, Rengstl B, Muik A, Petkova M, Schmid F, Wistinghausen R, Warner K, Crispatzu G, Hansmann ML, Herling M, von Laer D, Newrzela S. Mature T-cell lymphomagenesis induced by retroviral insertional activation of Janus kinase 1. Mol Ther. 2013 Jun;21(6):1160-8. doi: 10.1038/mt.2013.67. Epub 2013 Apr 23.
- Hacein-Bey-Abina S, von Kalle C, Schmidt M, Le Deist F, Wulffraat N, McIntyre E, Radford I, Villeval JL, Fraser CC, Cavazzana-Calvo M, Fischer A. A serious adverse event after successful gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. N Engl J Med. 2003 Jan 16;348(3):255-6. doi: 10.1056/NEJM200301163480314. No abstract available.
- Wang W, Lin C, Lu D, Ning Z, Cox T, Melvin D, Wang X, Bradley A, Liu P. Chromosomal transposition of PiggyBac in mouse embryonic stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Jul 8;105(27):9290-5. doi: 10.1073/pnas.0801017105. Epub 2008 Jun 25.
- Rad R, Rad L, Wang W, Cadinanos J, Vassiliou G, Rice S, Campos LS, Yusa K, Banerjee R, Li MA, de la Rosa J, Strong A, Lu D, Ellis P, Conte N, Yang FT, Liu P, Bradley A. PiggyBac transposon mutagenesis: a tool for cancer gene discovery in mice. Science. 2010 Nov 19;330(6007):1104-7. doi: 10.1126/science.1193004. Epub 2010 Oct 14.
- Fedoroff NV. Presidential address. Transposable elements, epigenetics, and genome evolution. Science. 2012 Nov 9;338(6108):758-67. doi: 10.1126/science.338.6108.758. No abstract available.
- Hackett PB, Largaespada DA, Switzer KC, Cooper LJ. Evaluating risks of insertional mutagenesis by DNA transposons in gene therapy. Transl Res. 2013 Apr;161(4):265-83. doi: 10.1016/j.trsl.2012.12.005. Epub 2013 Jan 10.
- Zhao S, Jiang E, Chen S, Gu Y, Shangguan AJ, Lv T, Luo L, Yu Z. PiggyBac transposon vectors: the tools of the human gene encoding. Transl Lung Cancer Res. 2016 Feb;5(1):120-5. doi: 10.3978/j.issn.2218-6751.2016.01.05.
- Milone MC, Bhoj VG. The Pharmacology of T Cell Therapies. Mol Ther Methods Clin Dev. 2018 Jan 31;8:210-221. doi: 10.1016/j.omtm.2018.01.010. eCollection 2018 Mar 16.
- Maude SL, Laetsch TW, Buechner J, Rives S, Boyer M, Bittencourt H, Bader P, Verneris MR, Stefanski HE, Myers GD, Qayed M, De Moerloose B, Hiramatsu H, Schlis K, Davis KL, Martin PL, Nemecek ER, Yanik GA, Peters C, Baruchel A, Boissel N, Mechinaud F, Balduzzi A, Krueger J, June CH, Levine BL, Wood P, Taran T, Leung M, Mueller KT, Zhang Y, Sen K, Lebwohl D, Pulsipher MA, Grupp SA. Tisagenlecleucel in Children and Young Adults with B-Cell Lymphoblastic Leukemia. N Engl J Med. 2018 Feb 1;378(5):439-448. doi: 10.1056/NEJMoa1709866.
- Maude SL, Frey N, Shaw PA, Aplenc R, Barrett DM, Bunin NJ, Chew A, Gonzalez VE, Zheng Z, Lacey SF, Mahnke YD, Melenhorst JJ, Rheingold SR, Shen A, Teachey DT, Levine BL, June CH, Porter DL, Grupp SA. Chimeric antigen receptor T cells for sustained remissions in leukemia. N Engl J Med. 2014 Oct 16;371(16):1507-17. doi: 10.1056/NEJMoa1407222. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998. doi: 10.1056/NEJMx160005.
- Fraietta JA, Lacey SF, Orlando EJ, Pruteanu-Malinici I, Gohil M, Lundh S, Boesteanu AC, Wang Y, O'Connor RS, Hwang WT, Pequignot E, Ambrose DE, Zhang C, Wilcox N, Bedoya F, Dorfmeier C, Chen F, Tian L, Parakandi H, Gupta M, Young RM, Johnson FB, Kulikovskaya I, Liu L, Xu J, Kassim SH, Davis MM, Levine BL, Frey NV, Siegel DL, Huang AC, Wherry EJ, Bitter H, Brogdon JL, Porter DL, June CH, Melenhorst JJ. Determinants of response and resistance to CD19 chimeric antigen receptor (CAR) T cell therapy of chronic lymphocytic leukemia. Nat Med. 2018 May;24(5):563-571. doi: 10.1038/s41591-018-0010-1. Epub 2018 Apr 30. Erratum In: Nat Med. 2021 Mar;27(3):561. doi: 10.1038/s41591-021-01248-2.
- Milone MC, Fish JD, Carpenito C, Carroll RG, Binder GK, Teachey D, Samanta M, Lakhal M, Gloss B, Danet-Desnoyers G, Campana D, Riley JL, Grupp SA, June CH. Chimeric receptors containing CD137 signal transduction domains mediate enhanced survival of T cells and increased antileukemic efficacy in vivo. Mol Ther. 2009 Aug;17(8):1453-64. doi: 10.1038/mt.2009.83. Epub 2009 Apr 21. Erratum In: Mol Ther. 2015 Jul;23(7):1278. doi: 10.1038/mt.2015.89.
- Porter DL, Levine BL, Kalos M, Bagg A, June CH. Chimeric antigen receptor-modified T cells in chronic lymphoid leukemia. N Engl J Med. 2011 Aug 25;365(8):725-33. doi: 10.1056/NEJMoa1103849. Epub 2011 Aug 10. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998. doi: 10.1056/NEJMx160005.
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