- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT05054257
Efeitos das Células CART19 em Pacientes com Leucemia Linfoblástica Aguda Recidivante ou Refratária e Linfoma Não-Hodgkin (UHKT-CAR19-01)
Segurança e Eficácia de Células T Autólogas Modificadas por Receptor de Antígeno Quimérico Anti-CD19 (CART19) em Pacientes com Leucemia Linfoblástica Aguda CD19+ Recidivante/Refratária e Linfoma Não-Hodgkin. Um escalonamento de dose, aberto, estudo de fase I.
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
Tipo de estudo
Inscrição (Estimado)
Estágio
- Fase 1
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Jan Vydra
- Número de telefone: +420221977182
- E-mail: jan.vydra@uhk.cz
Estude backup de contato
- Nome: Petr Lesny
- Número de telefone: +420221977629
- E-mail: petr.lesny@uhkt.cz
Locais de estudo
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-
Prague, Tcheca, 12800
- Recrutamento
- Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
-
Contato:
- Jan Vydra, MD
- Número de telefone: +420 221977182
- E-mail: jan.vydra@uhkt.cz
-
Contato:
- Petr Lesny, MD
- Número de telefone: +420221977629
- E-mail: petr.lesny@uhkt.cz
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
Aceita Voluntários Saudáveis
Descrição
Critério de inclusão:
Paciente com B-ALL ou B-NHL CD19 positivo refratário ou recidivante definido como:
- B-ALL refratária ao tratamento ou na segunda ou subsequente recidiva (hematológica OU molecular), OU
- B-NHL refratário ao tratamento ou na primeira recaída inelegível para transplante autólogo de células-tronco (ASCT) ou na segunda à quarta recaída, OU
- B-ALL ou B-NHL recidivante após transplante autólogo ou alogênico de células hematopoiéticas (HCT).
- Expressão de CD19 em células malignas confirmada por citometria de fluxo ou por imuno-histoquímica.
- Idade ≥18 anos e ≤ 80 anos.
- Paciente capaz de entender e assinar o consentimento informado.
- Mulheres com potencial para engravidar: teste de gravidez negativo na inscrição (PSV) e na Visita 1.
Critérios Gerais de Exclusão:
- Hipersensibilidade conhecida a qualquer componente do Medicamento Experimental (PIM).
- HCT autólogo ou alogênico em 3 meses antes da administração do IMP.
- Infecção ativa grave e descontrolada.
- Expectativa de vida < 6 semanas.
- Envolvimento parenquimatoso do sistema nervoso central.
- Insuficiência respiratória (necessidade de oxigenoterapia).
- Insuficiência hepática significativa: bilirrubina > 50 µmol/L, AST ou ALT > 4 vezes o limite superior normal.
- Lesão renal aguda com creatinina sérica > 180 µmol/L, oligúria ou necessidade de diálise aguda.
- Insuficiência cardíaca com FE < 30% ao ecocardiograma.
- Presença de GvHD aguda de grau 3-4 ativo.
- Comorbidade neurológica grave não controlada.
- Vacinação com vacinas de vírus vivo nas 4 semanas antes da administração de IMP e dentro de 90 dias após a administração de IMP.
- Mulheres: gravidez ou amamentação.
Indivíduos em idade fértil, a menos que a abstinência sexual permanente seja sua escolha de estilo de vida:
- pacientes do sexo feminino com potencial para engravidar que não desejam usar um método contraceptivo altamente eficaz durante o estudo,
- pacientes do sexo masculino cujo(s) parceiro(s) sexual(is) são mulheres em idade fértil que não estão dispostas a usar um método contraceptivo altamente eficaz durante o estudo.
Critérios de exclusão para Aquisição de matéria-prima de fabricação IMP
- Infecção ativa grave descontrolada.
- Resultados de testes positivos para HIV1/2, Hepatite B/C e lues.
Terapias anteriores concomitantes ou recentes antes da aférese:
- Transplante autólogo ou alogênico de células hematopoiéticas em até 12 semanas.
- Clofarabina, Fludarabina, Alentuzumabe em 8 semanas.
- Infusões de linfócitos de doadores dentro de 4 semanas.
- Asparaginase peguilada em 4 semanas.
- Quimioterapia de manutenção em 2 semanas.
- Fator Estimulante de Colônias de Granulócitos (G-CSF) de ação prolongada em 2 semanas.
- Vincristina em 2 semanas.
- Metotrexato intratecal em 1 semana.
- Fator Estimulante de Colônias de Granulócitos (G-CSF) em 5 dias.
- Dose terapêutica de corticosteroides em 3 dias.
- Citostáticos de ação curta em 3 dias
Critérios de exclusão para administração do IMP
- Infecções ativas graves e descontroladas.
- Expectativa de vida < 6 semanas.
- Envolvimento parenquimatoso do sistema nervoso central
- Insuficiência respiratória (necessidade de oxigenoterapia).
- Insuficiência hepática significativa: bilirrubina > 50 µmol/L, Aspartato aminotransferase (AST) ou Alanina aminotransferase (ALT) > 4 vezes o limite superior normal.
- Lesão renal aguda com creatinina sérica > 180 µg/L, oligúria ou necessidade de diálise aguda.
- Insuficiência cardíaca com Fração de Ejeção (FE) < 30% pela ecocardiografia.
- Presença de GvHD aguda de grau 3 - 4 ativo
- Comorbidade neurológica grave não controlada.
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Tratamento
- Alocação: N / D
- Modelo Intervencional: Atribuição de grupo único
- Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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Experimental: Linfócitos T CAR19 autólogos
Linfócitos T autólogos humanos que expressam o receptor de antígeno quimérico específico para CD19
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Primeiro estudo em humanos examinando a segurança e eficácia do CART19 em r/r B-ALL e B-NHL
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Incidência de eventos adversos
Prazo: Até 2 anos após o tratamento
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Incidência cumulativa de eventos adversos (AEs) relacionados a IMP classificados por critérios de classificação de consenso ASTCT para Síndrome de Liberação de Citocina (CRS) e síndrome de neurotoxicidade associada a células efetoras imunes (ICANS) e por Critérios de Terminologia Comum para Eventos Adversos (CTCAE) v 5.0 para outros EAs.
As toxicidades serão acompanhadas desde o início da coleta de sangue ou aférese até o final do estudo.
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Até 2 anos após o tratamento
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Avaliação de Toxicidades Limitantes de Dose (DLTs)
Prazo: Até 28 dias após a administração do IMP
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Incidência de toxicidades limitantes de dose (DLTs) durante os primeiros 28 dias após a administração de IMP
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Até 28 dias após a administração do IMP
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Taxa de remissão completa (CR)
Prazo: Taxa de CR em 100 dias e 6 meses após a administração de IMP
|
Avaliação da eficácia da administração de células IMP em pacientes com LNH e B-ALL CD19+ refratários ou recidivantes avaliados pela taxa de remissão completa
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Taxa de CR em 100 dias e 6 meses após a administração de IMP
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Sobrevivência geral
Prazo: OS em 1 ano após a administração do IMP
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Avaliação da eficácia da administração de células IMP em pacientes com LNH e B-ALL CD19+ refratários ou recidivantes avaliados por sobrevida geral
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OS em 1 ano após a administração do IMP
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Qualidade de vida usando o questionário de 30 itens da Organização Européia para Pesquisa e Tratamento do Câncer (EORTC QLQ-C30).
Prazo: Aos 6 meses e 1 ano após a administração de IMP
|
O EORTC-QLQ-C30 é um questionário de autorrelato de 30 itens composto por escalas de vários itens e escalas únicas, incluindo uma escala global de estado de saúde/qualidade de vida (GHS/QoL).
Os participantes classificam os itens em uma escala de quatro pontos, com 1 como "nada" e 4 como "muito".
Uma mudança de 5 a 10 pontos é considerada pequena.
Uma mudança de 10 a 20 pontos é considerada uma mudança moderada.
|
Aos 6 meses e 1 ano após a administração de IMP
|
Outras medidas de resultado
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
---|---|---|
Células CART19 no sangue periférico, medula óssea e líquido cefalorraquidiano
Prazo: Até 24 meses
|
Avaliação da quantidade e fenótipo de células CART19 em sangue periférico, medula óssea e líquido cefalorraquidiano por meio de citometria de fluxo
|
Até 24 meses
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Colaboradores e Investigadores
Investigadores
- Cadeira de estudo: Petr Lesny, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
- Investigador principal: Jan Vydra, Institute of Hematology and Blood Transfusion, Czech Republic
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
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- Maude SL, Frey N, Shaw PA, Aplenc R, Barrett DM, Bunin NJ, Chew A, Gonzalez VE, Zheng Z, Lacey SF, Mahnke YD, Melenhorst JJ, Rheingold SR, Shen A, Teachey DT, Levine BL, June CH, Porter DL, Grupp SA. Chimeric antigen receptor T cells for sustained remissions in leukemia. N Engl J Med. 2014 Oct 16;371(16):1507-17. doi: 10.1056/NEJMoa1407222. Erratum In: N Engl J Med. 2016 Mar 10;374(10):998.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Kassim SH, Somerville RP, Carpenter RO, Stetler-Stevenson M, Yang JC, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Raffeld M, Feldman S, Lu L, Li YF, Ngo LT, Goy A, Feldman T, Spaner DE, Wang ML, Chen CC, Kranick SM, Nath A, Nathan DA, Morton KE, Toomey MA, Rosenberg SA. Chemotherapy-refractory diffuse large B-cell lymphoma and indolent B-cell malignancies can be effectively treated with autologous T cells expressing an anti-CD19 chimeric antigen receptor. J Clin Oncol. 2015 Feb 20;33(6):540-9. doi: 10.1200/JCO.2014.56.2025. Epub 2014 Aug 25.
- Kochenderfer JN, Dudley ME, Feldman SA, Wilson WH, Spaner DE, Maric I, Stetler-Stevenson M, Phan GQ, Hughes MS, Sherry RM, Yang JC, Kammula US, Devillier L, Carpenter R, Nathan DA, Morgan RA, Laurencot C, Rosenberg SA. B-cell depletion and remissions of malignancy along with cytokine-associated toxicity in a clinical trial of anti-CD19 chimeric-antigen-receptor-transduced T cells. Blood. 2012 Mar 22;119(12):2709-20. doi: 10.1182/blood-2011-10-384388. Epub 2011 Dec 8.
- Davila ML, Riviere I, Wang X, Bartido S, Park J, Curran K, Chung SS, Stefanski J, Borquez-Ojeda O, Olszewska M, Qu J, Wasielewska T, He Q, Fink M, Shinglot H, Youssif M, Satter M, Wang Y, Hosey J, Quintanilla H, Halton E, Bernal Y, Bouhassira DC, Arcila ME, Gonen M, Roboz GJ, Maslak P, Douer D, Frattini MG, Giralt S, Sadelain M, Brentjens R. Efficacy and toxicity management of 19-28z CAR T cell therapy in B cell acute lymphoblastic leukemia. Sci Transl Med. 2014 Feb 19;6(224):224ra25. doi: 10.1126/scitranslmed.3008226.
- Turtle CJ, Hanafi LA, Berger C, Gooley TA, Cherian S, Hudecek M, Sommermeyer D, Melville K, Pender B, Budiarto TM, Robinson E, Steevens NN, Chaney C, Soma L, Chen X, Yeung C, Wood B, Li D, Cao J, Heimfeld S, Jensen MC, Riddell SR, Maloney DG. CD19 CAR-T cells of defined CD4+:CD8+ composition in adult B cell ALL patients. J Clin Invest. 2016 Jun 1;126(6):2123-38. doi: 10.1172/JCI85309. Epub 2016 Apr 25.
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- Lee DW, Santomasso BD, Locke FL, Ghobadi A, Turtle CJ, Brudno JN, Maus MV, Park JH, Mead E, Pavletic S, Go WY, Eldjerou L, Gardner RA, Frey N, Curran KJ, Peggs K, Pasquini M, DiPersio JF, van den Brink MRM, Komanduri KV, Grupp SA, Neelapu SS. ASTCT Consensus Grading for Cytokine Release Syndrome and Neurologic Toxicity Associated with Immune Effector Cells. Biol Blood Marrow Transplant. 2019 Apr;25(4):625-638. doi: 10.1016/j.bbmt.2018.12.758. Epub 2018 Dec 25.
- Fraietta JA, Lacey SF, Orlando EJ, Pruteanu-Malinici I, Gohil M, Lundh S, Boesteanu AC, Wang Y, O'Connor RS, Hwang WT, Pequignot E, Ambrose DE, Zhang C, Wilcox N, Bedoya F, Dorfmeier C, Chen F, Tian L, Parakandi H, Gupta M, Young RM, Johnson FB, Kulikovskaya I, Liu L, Xu J, Kassim SH, Davis MM, Levine BL, Frey NV, Siegel DL, Huang AC, Wherry EJ, Bitter H, Brogdon JL, Porter DL, June CH, Melenhorst JJ. Determinants of response and resistance to CD19 chimeric antigen receptor (CAR) T cell therapy of chronic lymphocytic leukemia. Nat Med. 2018 May;24(5):563-571. doi: 10.1038/s41591-018-0010-1. Epub 2018 Apr 30. Erratum In: Nat Med. 2021 Mar;27(3):561.
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- Hamada M, Nishio N, Okuno Y, Suzuki S, Kawashima N, Muramatsu H, Tsubota S, Wilson MH, Morita D, Kataoka S, Ichikawa D, Murakami N, Taniguchi R, Suzuki K, Kojima D, Sekiya Y, Nishikawa E, Narita A, Hama A, Kojima S, Nakazawa Y, Takahashi Y. Integration Mapping of piggyBac-Mediated CD19 Chimeric Antigen Receptor T Cells Analyzed by Novel Tagmentation-Assisted PCR. EBioMedicine. 2018 Aug;34:18-26. doi: 10.1016/j.ebiom.2018.07.008. Epub 2018 Aug 3.
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- Kebriaei P, Singh H, Huls MH, Figliola MJ, Bassett R, Olivares S, Jena B, Dawson MJ, Kumaresan PR, Su S, Maiti S, Dai J, Moriarity B, Forget MA, Senyukov V, Orozco A, Liu T, McCarty J, Jackson RN, Moyes JS, Rondon G, Qazilbash M, Ciurea S, Alousi A, Nieto Y, Rezvani K, Marin D, Popat U, Hosing C, Shpall EJ, Kantarjian H, Keating M, Wierda W, Do KA, Largaespada DA, Lee DA, Hackett PB, Champlin RE, Cooper LJ. Phase I trials using Sleeping Beauty to generate CD19-specific CAR T cells. J Clin Invest. 2016 Sep 1;126(9):3363-76. doi: 10.1172/JCI86721. Epub 2016 Aug 2.
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