Intravitalmikroskopie (IVM) bei Patienten mit Peritonealkarzinose (PC)
Studienübersicht
Status
Status
Bedingungen
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Primäre(s) Ziel(e): Bestimmung der Durchführbarkeit und des klinischen Nutzens der Durchführung von HIVM bei Patienten mit Peritonealkarzinose während des Standardbehandlungsverlaufs (zytoreduktive Chirurgie mit hyperthermischer intraperitonealer Chemotherapie oder CRS-HIPEC).
Nebenziel(e):
- Vergleichen Sie die mikroskopische Beobachtung der tumorassoziierten Gefäße mit normalem Gewebe (Peritonealoberfläche) in jedem einzelnen Subjekt.
- Korrelieren Sie die mikroskopischen Beobachtungen der tumorassoziierten Gefäße mit dem pathologischen Grad der Tumorimplantate.
- Korrelieren Sie die mikroskopische Beobachtung der Mikrovaskulatur mit tumorspezifischem und Gesamtüberleben.
Studientyp
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Einschreibung
Phase
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienorte
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Florida
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Jacksonville, Florida, Vereinigte Staaten, 32224
- Mayo Clinic Florida
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Alter ≥ 18 Jahre.
- Einen ECOG-Leistungsstatus von ≤ 2 haben. Siehe Anhang C.
- Haben Sie eine messbare Erkrankung im Peritoneum durch direkte Visualisierung (sichtbare Läsion typischerweise > 0,5 cm im maximalen Durchmesser).
- Karzinomatose, die die Indikationen für CRS-HIPEC erfüllt.
- Der Proband muss den Untersuchungscharakter dieser Studie verstehen und eine schriftliche Einverständniserklärung unterzeichnen, die von der unabhängigen Ethikkommission/dem Institutional Review Board genehmigt wurde, bevor er ein studienbezogenes Verfahren erhält.
- Ein negativer Pricktest auf Fluorescein.
Ausschlusskriterien:
- Unkontrollierte interkurrente Erkrankung, einschließlich, aber nicht beschränkt auf, andauernde oder aktive Infektion, symptomatische dekompensierte Herzinsuffizienz, instabile Angina pectoris, Herzrhythmusstörungen oder psychiatrische Erkrankungen/soziale Situationen.
- Nierenfunktionsstörung, definiert als GFR < 45.
- Leberfunktionsstörung, definiert durch Child-Pugh-Score > 5 oder LFTs 1,5x über dem Normalbereich.
- Jede bekannte Allergie oder frühere Reaktion auf Fluorescein oder ICG oder ein positiver Haut-Prick-Test auf Fluorescein.
- Schwangere oder stillende weibliche Probanden, präoperativ bestimmt mit einem Urin-Schwangerschaftstest.
- Nicht willens oder nicht in der Lage, die Protokollanforderungen zu befolgen.
- Jeder Zustand, der nach Ansicht der Ermittler den Patienten für ungeeignet hält (z. B. abnormales EKG).
- Jeder Zustand, der CRS-HIPEC als Behandlungsstandard für den Patienten ausschließt.
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Diagnose
- Zuteilung: N / A
- Interventionsmodell: Einzelgruppenzuweisung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Anzahl der Arme
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / ArmTeilnehmergruppe / Arm |
Intervention / BehandlungIntervention / Behandlung |
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Experimental: Arm 1
Bestimmen Sie die Durchführbarkeit und den klinischen Nutzen der Durchführung einer humanen intravitalen Mikroskopie (HIVM) bei Patienten mit Peritonealkarzinose während des Standardbehandlungsverlaufs (zytoreduktive Chirurgie mit hyperthermischer intraperitonealer Chemotherapie oder CRS-HIPEC).
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Die Intravitalmikroskopie (IVM) ermöglicht die direkte Visualisierung mikroskopisch kleiner Blutgefäße in Echtzeit und die Berechnung des Blutflusses.
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Identifizierung von Tumorgefäßen (# sichtbare Tumorgefäße pro Hochleistungsfeld)
Zeitfenster: 15-20 Minuten
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Identifizieren und messen Sie Gefäße, die mit peritonealen Tumorimplantaten assoziiert sind
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15-20 Minuten
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Tumorgefäßdichte (Anzahl Tumorgefäße pro Quadratzentimeter Fläche beobachtet)
Zeitfenster: 15-20 Minuten
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Bestimmen Sie die Gefäßdichte pro 10x Feld
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15-20 Minuten
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Fluoreszenzfarbstoffaufnahme (# Tumorgefäße mit Fluoreszenzfarbstoffaufnahme und # Tumorgefäße ohne Farbstoffaufnahme)
Zeitfenster: 15-20 Minuten
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Visualisierung lebenswichtiger Farbstoffe in den Gefäßen [Fluorescein und Indocyaningrün (ICG)]
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15-20 Minuten
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Tumordurchblutung (Geschwindigkeit, mm/s)
Zeitfenster: 15-20 Minuten
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Berechnen Sie die Durchblutungsgeschwindigkeit der Gefäße und Gewebepenetration von Fluoreszenzfarbstoffen als Marker der Gefäßpermeabilität.
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15-20 Minuten
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Sekundäre Ergebnismessungen
Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
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Postoperativer Vergleich der Mikrovaskulatur der Peritonealkarzinose mit normalem Gewebe (Peritoneum)
Zeitfenster: 15-20 Minuten
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Die Ermittler vergleichen die Mikrovaskulatur der Peritonealkarzinose mit normalem Gewebe (Peritoneum) bei jedem einzelnen Probanden anhand von Gefäßmerkmalen (Durchmesser, Gefäßdichte, Nachweis von intravitalem Farbstoff und Flussraten).
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15-20 Minuten
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Postoperative Korrelation der Mikrovaskulatur mit pathologischen Merkmalen der Tumorimplantate (d. h. Tumorgrad) zum Zeitpunkt des endgültigen Pathologieberichts (5-7 Tage nach der Operation).
Zeitfenster: 5-7 Tage
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Die Ermittler werden feststellen, ob eine Korrelation zwischen der Mikrovaskulatur und pathologischen Merkmalen der Tumorimplantate (d. h.
Tumorgrad) zum Zeitpunkt des endgültigen pathologischen Berichts (5-7 Tage nach der Operation).
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5-7 Tage
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Postoperative Korrelation der mikroskopischen Beobachtung der tumorspezifischen Mikrovaskulatur des Tumors und des Gesamtüberlebens.
Zeitfenster: 5 Jahre
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Die Forscher werden feststellen, ob es eine Korrelation zwischen der mikroskopischen Beobachtung der tumorspezifischen Mikrovaskulatur des Tumors und dem Gesamtüberleben gibt.
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5 Jahre
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Sponsor
Ermittler
Ermittler
- Hauptermittler: Emmanuel M Gabriel, M.D., Ph.D., Mayo Clinic
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Fisher DT, Chen Q, Skitzki JJ, Muhitch JB, Zhou L, Appenheimer MM, Vardam TD, Weis EL, Passanese J, Wang WC, Gollnick SO, Dewhirst MW, Rose-John S, Repasky EA, Baumann H, Evans SS. IL-6 trans-signaling licenses mouse and human tumor microvascular gateways for trafficking of cytotoxic T cells. J Clin Invest. 2011 Oct;121(10):3846-59. doi: 10.1172/JCI44952. Epub 2011 Sep 19.
- Fisher DT, Muhitch JB, Kim M, Doyen KC, Bogner PN, Evans SS, Skitzki JJ. Intraoperative intravital microscopy permits the study of human tumour vessels. Nat Commun. 2016 Feb 17;7:10684. doi: 10.1038/ncomms10684.
- Nagy JA, Chang SH, Shih SC, Dvorak AM, Dvorak HF. Heterogeneity of the tumor vasculature. Semin Thromb Hemost. 2010 Apr;36(3):321-31. doi: 10.1055/s-0030-1253454. Epub 2010 May 20.
- Nagy JA, Chang SH, Dvorak AM, Dvorak HF. Why are tumour blood vessels abnormal and why is it important to know? Br J Cancer. 2009 Mar 24;100(6):865-9. doi: 10.1038/sj.bjc.6604929. Epub 2009 Feb 24.
- Abdollahi A, Folkman J. Evading tumor evasion: current concepts and perspectives of anti-angiogenic cancer therapy. Drug Resist Updat. 2010 Feb-Apr;13(1-2):16-28. doi: 10.1016/j.drup.2009.12.001. Epub 2010 Jan 12.
- Fukumura D, Duda DG, Munn LL, Jain RK. Tumor microvasculature and microenvironment: novel insights through intravital imaging in pre-clinical models. Microcirculation. 2010 Apr;17(3):206-25. doi: 10.1111/j.1549-8719.2010.00029.x.
- Skitzki JJ, Chen Q, Wang WC, Evans SS. Primary immune surveillance: some like it hot. J Mol Med (Berl). 2007 Dec;85(12):1361-7. doi: 10.1007/s00109-007-0245-7. Epub 2007 Aug 18.
- Jain RK, Munn LL, Fukumura D. Dissecting tumour pathophysiology using intravital microscopy. Nat Rev Cancer. 2002 Apr;2(4):266-76. doi: 10.1038/nrc778.
- Murooka TT, Mempel TR. Multiphoton intravital microscopy to study lymphocyte motility in lymph nodes. Methods Mol Biol. 2012;757:247-57. doi: 10.1007/978-1-61779-166-6_16.
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- Patsialou A, Bravo-Cordero JJ, Wang Y, Entenberg D, Liu H, Clarke M, Condeelis JS. Intravital multiphoton imaging reveals multicellular streaming as a crucial component of in vivo cell migration in human breast tumors. Intravital. 2013 Apr 1;2(2):e25294. doi: 10.4161/intv.25294.
- Franko J, Shi Q, Goldman CD, Pockaj BA, Nelson GD, Goldberg RM, Pitot HC, Grothey A, Alberts SR, Sargent DJ. Treatment of colorectal peritoneal carcinomatosis with systemic chemotherapy: a pooled analysis of north central cancer treatment group phase III trials N9741 and N9841. J Clin Oncol. 2012 Jan 20;30(3):263-7. doi: 10.1200/JCO.2011.37.1039. Epub 2011 Dec 12.
- Glehen O, Gilly FN, Boutitie F, Bereder JM, Quenet F, Sideris L, Mansvelt B, Lorimier G, Msika S, Elias D; French Surgical Association. Toward curative treatment of peritoneal carcinomatosis from nonovarian origin by cytoreductive surgery combined with perioperative intraperitoneal chemotherapy: a multi-institutional study of 1,290 patients. Cancer. 2010 Dec 15;116(24):5608-18. doi: 10.1002/cncr.25356. Epub 2010 Aug 24.
- Elias D, Gilly F, Boutitie F, Quenet F, Bereder JM, Mansvelt B, Lorimier G, Dube P, Glehen O. Peritoneal colorectal carcinomatosis treated with surgery and perioperative intraperitoneal chemotherapy: retrospective analysis of 523 patients from a multicentric French study. J Clin Oncol. 2010 Jan 1;28(1):63-8. doi: 10.1200/JCO.2009.23.9285. Epub 2009 Nov 16. Erratum In: J Clin Oncol. 2010 Apr 1;28(10):1808.
- Glehen O, Gilly FN, Arvieux C, Cotte E, Boutitie F, Mansvelt B, Bereder JM, Lorimier G, Quenet F, Elias D; Association Francaise de Chirurgie. Peritoneal carcinomatosis from gastric cancer: a multi-institutional study of 159 patients treated by cytoreductive surgery combined with perioperative intraperitoneal chemotherapy. Ann Surg Oncol. 2010 Sep;17(9):2370-7. doi: 10.1245/s10434-010-1039-7. Epub 2010 Mar 25.
- Kalogeromitros DC, Makris MP, Aggelides XS, Mellios AI, Giannoula FC, Sideri KA, Rouvas AA, Theodossiadis PG. Allergy skin testing in predicting adverse reactions to fluorescein: a prospective clinical study. Acta Ophthalmol. 2011 Aug;89(5):480-3. doi: 10.1111/j.1755-3768.2009.01722.x. Epub 2009 Nov 10.
- Jaffer FA. Intravital fluorescence microscopic molecular imaging of atherosclerosis. Methods Mol Biol. 2011;680:131-40. doi: 10.1007/978-1-60761-901-7_9.
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- Entenberg D, Kedrin D, Wyckoff J, Sahai E, Condeelis J, Segall JE. Imaging tumor cell movement in vivo. Curr Protoc Cell Biol. 2013 Mar;Chapter 19:19.7.1-19.7.19. doi: 10.1002/0471143030.cb1907s58.
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Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Studienbeginn
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Primärer Abschluss
Studienabschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Zuerst gepostet
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Geschätzt)
Letztes Update gepostet
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
Zuletzt verifiziert
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Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie
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- 17-009823
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Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
Produkt, das in den USA hergestellt und aus den USA exportiert wird
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