- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT02485912
Bewertung eines neuen Ebola-Impfstoffs unter Verwendung einer kurzzeitigen Prime-Boost-Impfung
Eine klinische Phase-Ib-Sicherheits- und Immunogenitätsstudie zur heterologen Prime-Boost-Immunisierung mit ChAd3-EBO Z und MVA-EBO Z bei gesunden senegalesischen erwachsenen Freiwilligen im Alter von 18 bis 50 Jahren.
Dies ist eine klinische Studie, in der gesunden Freiwilligen zwei experimentelle Ebola-Impfstoffe verabreicht werden: ChAd3-EBO Z und MVA-EBO Z. Zwei Gruppen von Freiwilligen werden nacheinander mit beiden Impfstoffen in einem Prime/Boost-Regime geimpft.
Alle ChAd3-EBO Z-Dosen sind 2,5 x 10^10 - 3,7 x 10^10 vp und alle MVA-EBO Z-Dosen sind 1,0 x 10^8 pfu.
Alle Freiwilligen erhalten 7 Tage später einen ChAd3-EBO Z-Primärimpfstoff und einen MVA-EBO Z-Booster-Impfstoff.
Der Ort der Verabreichung des MVA-EBO Z-Impfstoffs unterscheidet sich zwischen den beiden Gruppen:
Gruppe 1 erhält den MVA-EBO Z-Impfstoff im selben Arm wie den ChAd3-EBO Z-Impfstoff.
Gruppe 2 erhält den MVA-EBO Z-Impfstoff im entgegengesetzten Arm des ChAd3-EBO Z-Impfstoffs.
Die Studie wird die Sicherheit der Impfungen und die Immunantworten auf die Impfung bewerten. Immunantworten werden durch Tests an Blutproben gemessen.
Die Impfstoffe ChAd3-EBO Z und MVA-EBO Z werden als virale Vektorimpfstoffe bezeichnet. Sie bestehen aus Viren, die so modifiziert sind, dass sie sich nicht vermehren können. Die Viren haben zusätzliche DNA in sich, so dass der Körper nach der Injektion Ebola-Proteine herstellt (aber Ebola entwickelt sich nicht), sodass das Immunsystem eine Reaktion auf Ebola aufbaut, ohne sich damit infiziert zu haben.
Gesunde Freiwillige werden in Dakar, Senegal, rekrutiert. Die Studie wird von GSK finanziert.
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Das CHUD-Studienteam wird Sensibilisierungstreffen in bestimmten Bereichen abhalten, die auf bestimmte Bevölkerungsgruppen abzielen, um potenziellen Freiwilligen die Studie zu erklären. Während dieser Treffen erklären die Ermittler Folgendes: die Notwendigkeit eines Impfstoffs (einschließlich eines einfachen Bildes der Belastung durch die Ebola-Krankheit und ihrer Auswirkungen auf die Gemeinschaft); der aktuelle Stand der Impfstoffentwicklung (einschließlich der Tatsache, dass dies wahrscheinlich ein langwieriger Prozess ist, der den Verlauf der aktuellen Epidemie wahrscheinlich nicht beeinflussen wird); das Studien-Screening und das Verfahren der Einwilligung nach Aufklärung; Risiken der Impfung und die unbewiesenen Vorteile dieser Impfung. Es wird betont, dass dies ein experimenteller Impfstoff ist und es derzeit keine Beweise dafür gibt, dass er Schutz bietet, und dass es daher immer noch notwendig sein wird, vorbeugende Maßnahmen zu ergreifen und sich behandeln zu lassen, wenn Sie aus irgendeinem Grund nach der Impfung krank werden.
Nach diesen Sensibilisierungsgesprächen wird das CT-Team aktiv identifizieren. Die Studie wird den berechtigten Teilnehmern auf individueller Basis näher erläutert. Potenzielle Freiwillige werden zur weiteren Diskussion auf die CHUD CT-Website eingeladen. Potenzielle Freiwillige werden darüber informiert, dass sie jederzeit ohne Angabe von Gründen aus dem CT austreten können. Personen, die der Meinung sind, dass die Studie für sie geeignet ist, werden zu einem formellen Screening-Besuch eingeladen.
Detaillierte Informationen über die Studie werden mindestens 24 Stunden vor der Zustimmung in einem Teilnehmerinformationsblatt (PIS) bereitgestellt. Das Einwilligungsverfahren beginnt vor dem Screening-Besuch. Der Freiwillige erhält die Möglichkeit, nach Einzelheiten der Studie zu fragen, und hat dann Zeit zu überlegen, ob er teilnehmen möchte oder nicht. Die Ermittler stellen sicher, dass die Freiwilligen in der Sprache, die sie verstehen, über die Inhalte des PIS informiert werden. Die Ermittler werden auch sicherstellen, dass alle Freiwilligen die Risiken vollständig verstehen. Jeder Freiwillige, der weniger als vollständiges Verständnis zu haben scheint, wird nicht eingeschrieben.
Alle Freiwilligen unterschreiben und datieren die Einverständniserklärung, bevor studienspezifische Verfahren (einschließlich Screening-Besuch) durchgeführt werden. Wenn der/die Freiwillige Analphabet/in ist, unterschreibt er/sie die Einverständniserklärung; Im letzteren Fall wird während des gesamten Zustimmungsprozesses ein lesekundiger, erwachsener und unparteiischer Zeuge anwesend sein, den Namen und das Datum der Unterschrift der Person schreiben und das Zustimmungsformular unterzeichnen und datieren. Die Freiwilligen unterschreiben und datieren zwei Kopien der Einverständniserklärung, eine zum Mitnehmen und Aufbewahren und eine zur Aufbewahrung in den Krankenakten des Probanden.
Impfungen in Gruppe 1 können 7 Tage nach der Impfung nach einer vorläufigen Sicherheitsüberprüfung der ersten 5 Freiwilligen beginnen, die dieselbe Dosis im UK CT erhalten haben. Die ersten 5 Freiwilligen werden gestaffelt geimpft.
Der erste Freiwillige, der die ChAd63-EBO Z-Impfstoffdosis in Gruppe 1 erhält, wird allein geimpft, und wir werden 24 Stunden warten, bevor wir nachfolgende Freiwillige in dieser Gruppe impfen. Zwei weitere Freiwillige der Gruppe 1 werden 24 Stunden nach der ersten geimpft, und dann vergehen mindestens weitere 24 Stunden, bevor weitere Probanden geimpft werden, die den ChAd63-EBO Z-Impfstoff in den Gruppen 1 und 2 erhalten.
Das gleiche gestaffelte Impfstoffverabreichungsverfahren wird für Impfungen mit dem MVA-EBO Z-Impfstoff angewendet. Insgesamt 20 Freiwillige werden in dieser Gruppe eingeschrieben.
In Gruppe 2 kann mit der Impfung begonnen werden, nachdem 5 Freiwillige in Gruppe 1 die ChAd63-EBO Z-Impfstoffdosis erhalten haben. Für Impfungen mit dem MVA-EBO Z-Impfstoff wird das gleiche gestaffelte Impfstoffverabreichungsverfahren wie für Gruppe 1 angewendet. Insgesamt 20 Freiwillige werden in dieser Gruppe eingeschrieben.
Die Freiwilligen werden täglich zu Hause von einem Studienfeldmitarbeiter oder einer Krankenschwester besucht, um unerwünschte Ereignisse aufzuzeichnen (aufgefordert und unaufgefordert an sechs aufeinanderfolgenden Tagen nach der Impfung). Zusätzliche geplante Besuche in der CHUD-Klinik finden an den Tagen 7, 14, 28, 35, 56, 90, 180 nach der ersten Impfung statt, während der eine Zwischenanamnese erhoben, eine körperliche Untersuchung und Bluttests zu den im angegebenen Zeitpunkten durchgeführt werden Zeitplan der Anwesenheiten. Blut wird auch für die explorative immunologische Analyse entnommen.
Alle Freiwilligen werden ab dem Tag der ersten Impfung 6 Monate lang nachbeobachtet.
Studientyp
Einschreibung (Tatsächlich)
Phase
- Phase 1
Kontakte und Standorte
Studienorte
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-
-
Dakar, Senegal, BP 7325
- Centre Hospitalier Universitaire le Dantec
-
-
Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Studienberechtigte Geschlechter
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Gesunde Erwachsene im Alter von 18 bis 50 Jahren
- In der Lage und bereit (nach Meinung des Ermittlers), alle Studienanforderungen zu erfüllen
- Nur für Frauen, Bereitschaft zur kontinuierlichen wirksamen Empfängnisverhütung (siehe Abschnitt 6.4.3) während der Studie und ein negativer Schwangerschaftstest am Tag/an den Tagen des Screenings und der Impfung
- Zustimmung zum Verzicht auf Blutspenden im Studienverlauf
- Geben Sie eine schriftliche Einverständniserklärung ab
Ausschlusskriterien:
- Teilnahme an einer anderen Forschungsstudie mit Erhalt eines Prüfpräparats in den 30 Tagen vor der Aufnahme oder geplante Teilnahme während des Studienzeitraums
- Vorheriger Erhalt eines Ebola- oder Marburg-Prüfimpfstoffs, eines Schimpansen-Adenovirus-Vektorimpfstoffs, eines MVA-Impfstoffs oder eines anderen Prüfimpfstoffs, der sich wahrscheinlich auf die Interpretation der Studiendaten auswirkt
- Erhalt eines attenuierten Lebendimpfstoffs innerhalb von 28 Tagen vor der Registrierung
- Erhalt einer Untereinheit oder eines abgetöteten Impfstoffs innerhalb von 14 Tagen vor der Registrierung
- Verabreichung von Immunglobulinen und/oder Blutprodukten innerhalb von drei Monaten vor der geplanten Verabreichung des Impfstoffkandidaten
- Jeder bestätigte oder vermutete immunsuppressive oder immundefiziente Zustand, einschließlich einer HIV-Infektion; Asplenie; wiederkehrende, schwere Infektionen und chronische (mehr als 14 Tage) immunsuppressive Medikation innerhalb der letzten 6 Monate (inhalative und topische Steroide sind erlaubt)
- Vorgeschichte allergischer Erkrankungen oder Reaktionen, die wahrscheinlich durch einen Bestandteil des Impfstoffs verschlimmert werden (z. Eiprodukte) einschließlich Nesselsucht, Atembeschwerden oder Bauchschmerzen
- Jegliche Vorgeschichte von hereditärem Angioödem, erworbenem Angioödem oder idiopathischem Angioödem.
- Jegliche Anaphylaxie in der Vorgeschichte als Reaktion auf die Impfung
- Schwangerschaft, Stillzeit oder Bereitschaft/Absicht, während der Studie schwanger zu werden
- Vorgeschichte von Krebs (außer Basalzellkarzinom der Haut und Zervixkarzinom in situ)
- Vorgeschichte einer aktuellen oder früheren psychiatrischen Erkrankung.
- Schlecht kontrolliertes Asthma oder Schilddrüsenerkrankung
- Krampfanfall in den letzten 3 Jahren oder Behandlung eines Anfallsleidens in den letzten 3 Jahren
- Blutgerinnungsstörungen (zB. Faktormangel, Koagulopathie oder Thrombozytenstörung) oder signifikante Blutungen oder Blutergüsse in der Vorgeschichte nach IM-Injektionen oder Venenpunktion
- Jede andere schwere chronische Krankheit
- Aktuelle Anti-Tuberkulose-Prophylaxe oder -Therapie
- Vermuteter oder bekannter aktueller Alkoholmissbrauch, definiert durch einen Alkoholkonsum von mehr als 42 Einheiten pro Woche
- Verdacht auf oder bekannten injizierenden Drogenmissbrauch in den 5 Jahren vor der Einschreibung
- Seropositiv für Hepatitis-B-Oberflächenantigen (HBsAg)
- Vorgeschichte des Kontakts mit vermuteten, wahrscheinlichen oder bestätigten Ebola-Fällen in den letzten 21 Tagen
- Jeder klinisch signifikante abnormale Befund bei biochemischen oder hämatologischen Screening-Bluttests oder Urinanalysen (siehe Anhang A & B)
- Alle anderen signifikanten Krankheiten, Störungen oder Befunde, die das Risiko für den Freiwilligen aufgrund der Teilnahme an der Studie erheblich erhöhen, die Fähigkeit des Freiwilligen zur Teilnahme an der Studie beeinträchtigen oder die Interpretation der Studiendaten beeinträchtigen können
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Verhütung
- Zuteilung: Zufällig
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
|
Aktiver Komparator: Gruppe 1
ChAd3-EBO Z (2,5–3,7 x 10^10 vp) und MVA-EBO Z (1,0 x 10^8 pfu) 7 Tage später.
Beide Impfungen werden im selben Arm verabreicht.
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Dies ist ein viraler Vektorimpfstoff, der ein Schimpansen-Adenovirus als Vektor verwendet, der für ein Ebola-Glykoprotein des Zaire-Stammes kodiert
Dies ist ein viraler Vektorimpfstoff, der ein modifiziertes Vaccinia-Ankara-Virus als Vektor verwendet, der für ein Glykoprotein des Zaire-Stamm-Ebola-Virus kodiert
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Aktiver Komparator: Gruppe 2
ChAd3-EBO Z (2,5–3,7 x 10^10 vp) und MVA-EBO Z (1,0 x 10^8 pfu) 7 Tage später.
Das MVA-EBO Z wird dem ChAd3-EBO Z am gegenüberliegenden Arm verabreicht.
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Dies ist ein viraler Vektorimpfstoff, der ein Schimpansen-Adenovirus als Vektor verwendet, der für ein Ebola-Glykoprotein des Zaire-Stammes kodiert
Dies ist ein viraler Vektorimpfstoff, der ein modifiziertes Vaccinia-Ankara-Virus als Vektor verwendet, der für ein Glykoprotein des Zaire-Stamm-Ebola-Virus kodiert
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Sicherheit und Verträglichkeit der Verabreichung von ChAd3-EBO Z und MVA-EBO Z 7 Tage später. Dies erfolgt durch Aufzeichnung der Anzahl der Teilnehmer, bei denen unerwünschte Ereignisse aufgetreten sind, sowie der Schweregrad etwaiger unerwünschter Ereignisse.
Zeitfenster: 26 Wochen
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Die spezifischen Endpunkte für Sicherheit und Reaktogenität werden aktiv und passiv gesammelte Daten zu unerwünschten Ereignissen sein. Die folgenden Parameter werden für beide Gruppen bewertet:
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26 Wochen
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Bewertung der durch heterologe Prime-Boost-Immunisierung mit monovalentem ChAd3-EBO Z (2,5 x 1010 vp - 3,7 x 1010 vp) und MVA-EBO Z (1,0 x 108 Pfu) bei gesunden senegalesischen Freiwilligen im Alter von 18-50 Jahren erzeugten Immunogenität
Zeitfenster: 26 Wochen
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Die Ebolavirus-spezifische Immunogenität wird durch eine Vielzahl von immunologischen Assays bewertet. Die primären Immunogenitäts-Ergebnismessungen sind ELISA- und Antigen-spezifische Assays für die Neutralisierung für Antikörperreaktionen und intrazelluläre Zytokin-Färbungstests (ICS) für T-Zell-Reaktionen. Zu den explorativen Ergebnismessungen gehören Ex-vivo-ELISPOT, Plasma-Blast-Assays und Durchflusszytometrie, die mit Forschungsproben durchgeführt werden, die zu verschiedenen Studienzeitpunkten entnommen wurden, sowie andere Immunogenitätsassays während der gesamten Studie. Eine Bewertung genetischer Faktoren, die mit Immunantworten assoziiert sind, kann als explorative Bewertung durchgeführt werden. Impfstoffinduzierte mRNA-Expressionsprofile während 1 Woche nach der Impfung können auch als explorative Bewertung durchgeführt werden. |
26 Wochen
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Ermittler
- Hauptermittler: Souleymane Mboup, MD; PhD, Centre Hospitalier Universitaire le Dantec (CHUD), Dakar, Senegal
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Ledgerwood JE, DeZure AD, Stanley DA, Coates EE, Novik L, Enama ME, Berkowitz NM, Hu Z, Joshi G, Ploquin A, Sitar S, Gordon IJ, Plummer SA, Holman LA, Hendel CS, Yamshchikov G, Roman F, Nicosia A, Colloca S, Cortese R, Bailer RT, Schwartz RM, Roederer M, Mascola JR, Koup RA, Sullivan NJ, Graham BS; VRC 207 Study Team. Chimpanzee Adenovirus Vector Ebola Vaccine. N Engl J Med. 2017 Mar 9;376(10):928-938. doi: 10.1056/NEJMoa1410863. Epub 2014 Nov 26.
- Venkatraman N, Ndiaye BP, Bowyer G, Wade D, Sridhar S, Wright D, Powlson J, Ndiaye I, Dieye S, Thompson C, Bakhoum M, Morter R, Capone S, Del Sorbo M, Jamieson S, Rampling T, Datoo M, Roberts R, Poulton I, Griffiths O, Ballou WR, Roman F, Lewis DJM, Lawrie A, Imoukhuede E, Gilbert SC, Dieye TN, Ewer KJ, Mboup S, Hill AVS. Safety and Immunogenicity of a Heterologous Prime-Boost Ebola Virus Vaccine Regimen in Healthy Adults in the United Kingdom and Senegal. J Infect Dis. 2019 Apr 8;219(8):1187-1197. doi: 10.1093/infdis/jiy639.
- Geisbert TW, Jahrling PB. Exotic emerging viral diseases: progress and challenges. Nat Med. 2004 Dec;10(12 Suppl):S110-21. doi: 10.1038/nm1142.
- Meslin FX. Global aspects of emerging and potential zoonoses: a WHO perspective. Emerg Infect Dis. 1997 Apr-Jun;3(2):223-8. doi: 10.3201/eid0302.970220.
- Okware SI, Omaswa FG, Zaramba S, Opio A, Lutwama JJ, Kamugisha J, Rwaguma EB, Kagwa P, Lamunu M. An outbreak of Ebola in Uganda. Trop Med Int Health. 2002 Dec;7(12):1068-75. doi: 10.1046/j.1365-3156.2002.00944.x.
- Goepfert PA, Elizaga ML, Sato A, Qin L, Cardinali M, Hay CM, Hural J, DeRosa SC, DeFawe OD, Tomaras GD, Montefiori DC, Xu Y, Lai L, Kalams SA, Baden LR, Frey SE, Blattner WA, Wyatt LS, Moss B, Robinson HL; National Institute of Allergy and Infectious Diseases HIV Vaccine Trials Network. Phase 1 safety and immunogenicity testing of DNA and recombinant modified vaccinia Ankara vaccines expressing HIV-1 virus-like particles. J Infect Dis. 2011 Mar 1;203(5):610-9. doi: 10.1093/infdis/jiq105. Epub 2011 Jan 31.
- Ogwang C, Afolabi M, Kimani D, Jagne YJ, Sheehy SH, Bliss CM, Duncan CJ, Collins KA, Garcia Knight MA, Kimani E, Anagnostou NA, Berrie E, Moyle S, Gilbert SC, Spencer AJ, Soipei P, Mueller J, Okebe J, Colloca S, Cortese R, Viebig NK, Roberts R, Gantlett K, Lawrie AM, Nicosia A, Imoukhuede EB, Bejon P, Urban BC, Flanagan KL, Ewer KJ, Chilengi R, Hill AV, Bojang K. Safety and immunogenicity of heterologous prime-boost immunisation with Plasmodium falciparum malaria candidate vaccines, ChAd63 ME-TRAP and MVA ME-TRAP, in healthy Gambian and Kenyan adults. PLoS One. 2013;8(3):e57726. doi: 10.1371/journal.pone.0057726. Epub 2013 Mar 19.
- Colloca S, Barnes E, Folgori A, Ammendola V, Capone S, Cirillo A, Siani L, Naddeo M, Grazioli F, Esposito ML, Ambrosio M, Sparacino A, Bartiromo M, Meola A, Smith K, Kurioka A, O'Hara GA, Ewer KJ, Anagnostou N, Bliss C, Hill AV, Traboni C, Klenerman P, Cortese R, Nicosia A. Vaccine vectors derived from a large collection of simian adenoviruses induce potent cellular immunity across multiple species. Sci Transl Med. 2012 Jan 4;4(115):115ra2. doi: 10.1126/scitranslmed.3002925.
- Dixon MG, Schafer IJ; Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Ebola viral disease outbreak--West Africa, 2014. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2014 Jun 27;63(25):548-51.
- Kuhn JH, Bao Y, Bavari S, Becker S, Bradfute S, Brister JR, Bukreyev AA, Chandran K, Davey RA, Dolnik O, Dye JM, Enterlein S, Hensley LE, Honko AN, Jahrling PB, Johnson KM, Kobinger G, Leroy EM, Lever MS, Muhlberger E, Netesov SV, Olinger GG, Palacios G, Patterson JL, Paweska JT, Pitt L, Radoshitzky SR, Saphire EO, Smither SJ, Swanepoel R, Towner JS, van der Groen G, Volchkov VE, Wahl-Jensen V, Warren TK, Weidmann M, Nichol ST. Virus nomenclature below the species level: a standardized nomenclature for natural variants of viruses assigned to the family Filoviridae. Arch Virol. 2013 Jan;158(1):301-11. doi: 10.1007/s00705-012-1454-0. Epub 2012 Sep 23.
- Sanchez A, Kiley MP, Holloway BP, Auperin DD. Sequence analysis of the Ebola virus genome: organization, genetic elements, and comparison with the genome of Marburg virus. Virus Res. 1993 Sep;29(3):215-40. doi: 10.1016/0168-1702(93)90063-s.
- Sanchez A, Kiley MP, Klenk HD, Feldmann H. Sequence analysis of the Marburg virus nucleoprotein gene: comparison to Ebola virus and other non-segmented negative-strand RNA viruses. J Gen Virol. 1992 Feb;73 ( Pt 2):347-57. doi: 10.1099/0022-1317-73-2-347.
- Hart MK. Vaccine research efforts for filoviruses. Int J Parasitol. 2003 May;33(5-6):583-95. doi: 10.1016/s0020-7519(03)00064-x.
- Hensley LE, Jones SM, Feldmann H, Jahrling PB, Geisbert TW. Ebola and Marburg viruses: pathogenesis and development of countermeasures. Curr Mol Med. 2005 Dec;5(8):761-72. doi: 10.2174/156652405774962344.
- Sullivan N, Yang ZY, Nabel GJ. Ebola virus pathogenesis: implications for vaccines and therapies. J Virol. 2003 Sep;77(18):9733-7. doi: 10.1128/jvi.77.18.9733-9737.2003. No abstract available.
- Martin JE, Sullivan NJ, Enama ME, Gordon IJ, Roederer M, Koup RA, Bailer RT, Chakrabarti BK, Bailey MA, Gomez PL, Andrews CA, Moodie Z, Gu L, Stein JA, Nabel GJ, Graham BS. A DNA vaccine for Ebola virus is safe and immunogenic in a phase I clinical trial. Clin Vaccine Immunol. 2006 Nov;13(11):1267-77. doi: 10.1128/CVI.00162-06. Epub 2006 Sep 20.
- Ledgerwood JE, Costner P, Desai N, Holman L, Enama ME, Yamshchikov G, Mulangu S, Hu Z, Andrews CA, Sheets RA, Koup RA, Roederer M, Bailer R, Mascola JR, Pau MG, Sullivan NJ, Goudsmit J, Nabel GJ, Graham BS; VRC 205 Study Team. A replication defective recombinant Ad5 vaccine expressing Ebola virus GP is safe and immunogenic in healthy adults. Vaccine. 2010 Dec 16;29(2):304-13. doi: 10.1016/j.vaccine.2010.10.037. Epub 2010 Oct 27.
- Yang ZY, Duckers HJ, Sullivan NJ, Sanchez A, Nabel EG, Nabel GJ. Identification of the Ebola virus glycoprotein as the main viral determinant of vascular cell cytotoxicity and injury. Nat Med. 2000 Aug;6(8):886-9. doi: 10.1038/78645.
- Sullivan NJ, Geisbert TW, Geisbert JB, Shedlock DJ, Xu L, Lamoreaux L, Custers JH, Popernack PM, Yang ZY, Pau MG, Roederer M, Koup RA, Goudsmit J, Jahrling PB, Nabel GJ. Immune protection of nonhuman primates against Ebola virus with single low-dose adenovirus vectors encoding modified GPs. PLoS Med. 2006 Jun;3(6):e177. doi: 10.1371/journal.pmed.0030177. Epub 2006 May 16.
- Bett AJ, Haddara W, Prevec L, Graham FL. An efficient and flexible system for construction of adenovirus vectors with insertions or deletions in early regions 1 and 3. Proc Natl Acad Sci U S A. 1994 Sep 13;91(19):8802-6. doi: 10.1073/pnas.91.19.8802.
- Top FH Jr, Grossman RA, Bartelloni PJ, Segal HE, Dudding BA, Russell PK, Buescher EL. Immunization with live types 7 and 4 adenovirus vaccines. I. Safety, infectivity, antigenicity, and potency of adenovirus type 7 vaccine in humans. J Infect Dis. 1971 Aug;124(2):148-54. doi: 10.1093/infdis/124.2.148. No abstract available.
- Tatsis N, Blejer A, Lasaro MO, Hensley SE, Cun A, Tesema L, Li Y, Gao GP, Xiang ZQ, Zhou D, Wilson JM, Ertl HC. A CD46-binding chimpanzee adenovirus vector as a vaccine carrier. Mol Ther. 2007 Mar;15(3):608-17. doi: 10.1038/sj.mt.6300078. Epub 2007 Jan 16.
- Bruna-Romero O, Gonzalez-Aseguinolaza G, Hafalla JC, Tsuji M, Nussenzweig RS. Complete, long-lasting protection against malaria of mice primed and boosted with two distinct viral vectors expressing the same plasmodial antigen. Proc Natl Acad Sci U S A. 2001 Sep 25;98(20):11491-6. doi: 10.1073/pnas.191380898. Epub 2001 Sep 11.
- Farina SF, Gao GP, Xiang ZQ, Rux JJ, Burnett RM, Alvira MR, Marsh J, Ertl HC, Wilson JM. Replication-defective vector based on a chimpanzee adenovirus. J Virol. 2001 Dec;75(23):11603-13. doi: 10.1128/JVI.75.23.11603-11613.2001.
- Tatsis N, Tesema L, Robinson ER, Giles-Davis W, McCoy K, Gao GP, Wilson JM, Ertl HC. Chimpanzee-origin adenovirus vectors as vaccine carriers. Gene Ther. 2006 Mar;13(5):421-9. doi: 10.1038/sj.gt.3302675.
- Barnes E, Folgori A, Capone S, Swadling L, Aston S, Kurioka A, Meyer J, Huddart R, Smith K, Townsend R, Brown A, Antrobus R, Ammendola V, Naddeo M, O'Hara G, Willberg C, Harrison A, Grazioli F, Esposito ML, Siani L, Traboni C, Oo Y, Adams D, Hill A, Colloca S, Nicosia A, Cortese R, Klenerman P. Novel adenovirus-based vaccines induce broad and sustained T cell responses to HCV in man. Sci Transl Med. 2012 Jan 4;4(115):115ra1. doi: 10.1126/scitranslmed.3003155.
- O'Hara GA, Duncan CJ, Ewer KJ, Collins KA, Elias SC, Halstead FD, Goodman AL, Edwards NJ, Reyes-Sandoval A, Bird P, Rowland R, Sheehy SH, Poulton ID, Hutchings C, Todryk S, Andrews L, Folgori A, Berrie E, Moyle S, Nicosia A, Colloca S, Cortese R, Siani L, Lawrie AM, Gilbert SC, Hill AV. Clinical assessment of a recombinant simian adenovirus ChAd63: a potent new vaccine vector. J Infect Dis. 2012 Mar 1;205(5):772-81. doi: 10.1093/infdis/jir850. Epub 2012 Jan 24.
- Peruzzi D, Dharmapuri S, Cirillo A, Bruni BE, Nicosia A, Cortese R, Colloca S, Ciliberto G, La Monica N, Aurisicchio L. A novel chimpanzee serotype-based adenoviral vector as delivery tool for cancer vaccines. Vaccine. 2009 Feb 25;27(9):1293-300. doi: 10.1016/j.vaccine.2008.12.051. Epub 2009 Jan 20.
- Quinn KM, Da Costa A, Yamamoto A, Berry D, Lindsay RW, Darrah PA, Wang L, Cheng C, Kong WP, Gall JG, Nicosia A, Folgori A, Colloca S, Cortese R, Gostick E, Price DA, Gomez CE, Esteban M, Wyatt LS, Moss B, Morgan C, Roederer M, Bailer RT, Nabel GJ, Koup RA, Seder RA. Comparative analysis of the magnitude, quality, phenotype, and protective capacity of simian immunodeficiency virus gag-specific CD8+ T cells following human-, simian-, and chimpanzee-derived recombinant adenoviral vector immunization. J Immunol. 2013 Mar 15;190(6):2720-35. doi: 10.4049/jimmunol.1202861. Epub 2013 Feb 6.
- Ewer K, Rampling T, Venkatraman N, Bowyer G, Wright D, Lambe T, Imoukhuede EB, Payne R, Fehling SK, Strecker T, Biedenkopf N, Krahling V, Tully CM, Edwards NJ, Bentley EM, Samuel D, Labbe G, Jin J, Gibani M, Minhinnick A, Wilkie M, Poulton I, Lella N, Roberts R, Hartnell F, Bliss C, Sierra-Davidson K, Powlson J, Berrie E, Tedder R, Roman F, De Ryck I, Nicosia A, Sullivan NJ, Stanley DA, Mbaya OT, Ledgerwood JE, Schwartz RM, Siani L, Colloca S, Folgori A, Di Marco S, Cortese R, Wright E, Becker S, Graham BS, Koup RA, Levine MM, Volkmann A, Chaplin P, Pollard AJ, Draper SJ, Ballou WR, Lawrie A, Gilbert SC, Hill AV. A Monovalent Chimpanzee Adenovirus Ebola Vaccine Boosted with MVA. N Engl J Med. 2016 Apr 28;374(17):1635-46. doi: 10.1056/NEJMoa1411627. Epub 2015 Jan 28.
- Mayr A, Stickl H, Muller HK, Danner K, Singer H. [The smallpox vaccination strain MVA: marker, genetic structure, experience gained with the parenteral vaccination and behavior in organisms with a debilitated defence mechanism (author's transl)]. Zentralbl Bakteriol B. 1978 Dec;167(5-6):375-90. German.
- Lohr V, Rath A, Genzel Y, Jordan I, Sandig V, Reichl U. New avian suspension cell lines provide production of influenza virus and MVA in serum-free media: studies on growth, metabolism and virus propagation. Vaccine. 2009 Aug 6;27(36):4975-82. doi: 10.1016/j.vaccine.2009.05.083. Epub 2009 Jun 14.
- Jordan I, Vos A, Beilfuss S, Neubert A, Breul S, Sandig V. An avian cell line designed for production of highly attenuated viruses. Vaccine. 2009 Jan 29;27(5):748-56. doi: 10.1016/j.vaccine.2008.11.066. Epub 2008 Dec 9.
- Howles S, Guimaraes-Walker A, Yang H, Hancock G, di Gleria K, Tarragona-Fiol T, Hayes P, Gilmour J, Bridgeman A, Hanke T, McMichael A, Dorrell L. Vaccination with a modified vaccinia virus Ankara (MVA)-vectored HIV-1 immunogen induces modest vector-specific T cell responses in human subjects. Vaccine. 2010 Oct 21;28(45):7306-12. doi: 10.1016/j.vaccine.2010.08.077. Epub 2010 Sep 16.
- Scriba TJ, Tameris M, Mansoor N, Smit E, van der Merwe L, Isaacs F, Keyser A, Moyo S, Brittain N, Lawrie A, Gelderbloem S, Veldsman A, Hatherill M, Hawkridge A, Hill AV, Hussey GD, Mahomed H, McShane H, Hanekom WA. Modified vaccinia Ankara-expressing Ag85A, a novel tuberculosis vaccine, is safe in adolescents and children, and induces polyfunctional CD4+ T cells. Eur J Immunol. 2010 Jan;40(1):279-90. doi: 10.1002/eji.200939754. Erratum In: Eur J Immunol. 2011 May;41(5):1501.
- Berthoud TK, Hamill M, Lillie PJ, Hwenda L, Collins KA, Ewer KJ, Milicic A, Poyntz HC, Lambe T, Fletcher HA, Hill AV, Gilbert SC. Potent CD8+ T-cell immunogenicity in humans of a novel heterosubtypic influenza A vaccine, MVA-NP+M1. Clin Infect Dis. 2011 Jan 1;52(1):1-7. doi: 10.1093/cid/ciq015.
- Dangoor A, Lorigan P, Keilholz U, Schadendorf D, Harris A, Ottensmeier C, Smyth J, Hoffmann K, Anderson R, Cripps M, Schneider J, Hawkins R. Clinical and immunological responses in metastatic melanoma patients vaccinated with a high-dose poly-epitope vaccine. Cancer Immunol Immunother. 2010 Jun;59(6):863-73. doi: 10.1007/s00262-009-0811-7. Epub 2009 Dec 31.
- Draper SJ, Heeney JL. Viruses as vaccine vectors for infectious diseases and cancer. Nat Rev Microbiol. 2010 Jan;8(1):62-73. doi: 10.1038/nrmicro2240.
- Bejon P, Mwacharo J, Kai O, Mwangi T, Milligan P, Todryk S, Keating S, Lang T, Lowe B, Gikonyo C, Molyneux C, Fegan G, Gilbert SC, Peshu N, Marsh K, Hill AV. A phase 2b randomised trial of the candidate malaria vaccines FP9 ME-TRAP and MVA ME-TRAP among children in Kenya. PLoS Clin Trials. 2006 Oct 20;1(6):e29. doi: 10.1371/journal.pctr.0010029.
- Moorthy VS, Imoukhuede EB, Milligan P, Bojang K, Keating S, Kaye P, Pinder M, Gilbert SC, Walraven G, Greenwood BM, Hill AS. A randomised, double-blind, controlled vaccine efficacy trial of DNA/MVA ME-TRAP against malaria infection in Gambian adults. PLoS Med. 2004 Nov;1(2):e33. doi: 10.1371/journal.pmed.0010033. Epub 2004 Oct 26.
- Webster DP, Dunachie S, McConkey S, Poulton I, Moore AC, Walther M, Laidlaw SM, Peto T, Skinner MA, Gilbert SC, Hill AV. Safety of recombinant fowlpox strain FP9 and modified vaccinia virus Ankara vaccines against liver-stage P. falciparum malaria in non-immune volunteers. Vaccine. 2006 Apr 5;24(15):3026-34. doi: 10.1016/j.vaccine.2005.10.058. Epub 2006 Feb 2.
- Sheehy SH, Duncan CJ, Elias SC, Biswas S, Collins KA, O'Hara GA, Halstead FD, Ewer KJ, Mahungu T, Spencer AJ, Miura K, Poulton ID, Dicks MD, Edwards NJ, Berrie E, Moyle S, Colloca S, Cortese R, Gantlett K, Long CA, Lawrie AM, Gilbert SC, Doherty T, Nicosia A, Hill AV, Draper SJ. Phase Ia clinical evaluation of the safety and immunogenicity of the Plasmodium falciparum blood-stage antigen AMA1 in ChAd63 and MVA vaccine vectors. PLoS One. 2012;7(2):e31208. doi: 10.1371/journal.pone.0031208. Epub 2012 Feb 21.
- Sheehy SH, Duncan CJ, Elias SC, Collins KA, Ewer KJ, Spencer AJ, Williams AR, Halstead FD, Moretz SE, Miura K, Epp C, Dicks MD, Poulton ID, Lawrie AM, Berrie E, Moyle S, Long CA, Colloca S, Cortese R, Gilbert SC, Nicosia A, Hill AV, Draper SJ. Phase Ia clinical evaluation of the Plasmodium falciparum blood-stage antigen MSP1 in ChAd63 and MVA vaccine vectors. Mol Ther. 2011 Dec;19(12):2269-76. doi: 10.1038/mt.2011.176. Epub 2011 Aug 23.
- Sheehy SH, Duncan CJ, Elias SC, Choudhary P, Biswas S, Halstead FD, Collins KA, Edwards NJ, Douglas AD, Anagnostou NA, Ewer KJ, Havelock T, Mahungu T, Bliss CM, Miura K, Poulton ID, Lillie PJ, Antrobus RD, Berrie E, Moyle S, Gantlett K, Colloca S, Cortese R, Long CA, Sinden RE, Gilbert SC, Lawrie AM, Doherty T, Faust SN, Nicosia A, Hill AV, Draper SJ. ChAd63-MVA-vectored blood-stage malaria vaccines targeting MSP1 and AMA1: assessment of efficacy against mosquito bite challenge in humans. Mol Ther. 2012 Dec;20(12):2355-68. doi: 10.1038/mt.2012.223. Epub 2012 Oct 23.
- Ewer KJ, O'Hara GA, Duncan CJ, Collins KA, Sheehy SH, Reyes-Sandoval A, Goodman AL, Edwards NJ, Elias SC, Halstead FD, Longley RJ, Rowland R, Poulton ID, Draper SJ, Blagborough AM, Berrie E, Moyle S, Williams N, Siani L, Folgori A, Colloca S, Sinden RE, Lawrie AM, Cortese R, Gilbert SC, Nicosia A, Hill AV. Protective CD8+ T-cell immunity to human malaria induced by chimpanzee adenovirus-MVA immunisation. Nat Commun. 2013;4:2836. doi: 10.1038/ncomms3836.
- Sullivan NJ, Hensley L, Asiedu C, Geisbert TW, Stanley D, Johnson J, Honko A, Olinger G, Bailey M, Geisbert JB, Reimann KA, Bao S, Rao S, Roederer M, Jahrling PB, Koup RA, Nabel GJ. CD8+ cellular immunity mediates rAd5 vaccine protection against Ebola virus infection of nonhuman primates. Nat Med. 2011 Aug 21;17(9):1128-31. doi: 10.1038/nm.2447.
- Malaeb BS, Gardner TA, Margulis V, Yang L, Gillenwater JY, Chung LW, Macik G, Koeneman KS. Elevated activated partial thromboplastin time during administration of first-generation adenoviral vectors for gene therapy for prostate cancer: identification of lupus anticoagulants. Urology. 2005 Oct;66(4):830-4. doi: 10.1016/j.urology.2005.04.041.
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