Angereicherte Sauerstoffmischungen bei Sportlern (OXY-SPORT)

Die Probanden werden durch öffentliche Ankündigungen in örtlichen Fitnessstudios rekrutiert und versammelt, um das Protokoll zu erklären. Diejenigen, die zur Teilnahme bereit sind, unterzeichnen eine schriftliche Einverständniserklärung und werden rekrutiert. Um aufgenommen zu werden, werden alle Probanden einem allgemeinen medizinischen Screening unterzogen, um hyperbare Behandlungen zu ermöglichen. Dazu gehören Gewicht, Größe, nicht-invasiver arterieller Blutdruck und Herzfrequenzmessungen.

Nach der Aufnahme werden die Probanden von nicht direkt am Experiment beteiligtem Personal mithilfe eines elektronischen Nummerngenerators zufällig drei Armen zugeordnet:

• Arm 1 (Kontrolle): keine Intervention.
• Arm 2 (L-HBO): behandelt mit Sauerstoff bei 1,45 ATA für 60 min (einschließlich Kompressions- und Dekompressionszeiten und einer Luftpause von 3 Minuten Atemluft);
• Arm 3 (HBO): Behandlung mit Sauerstoff bei 2,5 ATA für 60 min (einschließlich Kompressions- und Dekompressionszeiten und einer Luftpause von 3 Minuten Atemluft).
• Arm 4 (30 % O2): Atmen eines Luftgemisches mit 30 % Sauerstoff bei atmosphärischem Druck (1 ATA).
• Arm 5 (50 % O2): Atmen eines Luftgemisches mit 50 % Sauerstoff bei atmosphärischem Druck (1 ATA).

Probanden, die in Arm 2, 3, 4, 5 enthalten sind, werden insgesamt 20 Behandlungen unterzogen. Sie folgen einer personalisierten Diät, die proportional zu ihrem Energieverbrauch ist.

Die Autoren werden 3 Zeitpunkte im Protokoll identifizieren:

ZEIT 0 (T0): unmittelbar nach Aufnahme, vor jeglicher Behandlung oder Versuch; ZEIT 1 (T1): am Ende der HBO-Behandlungen; ZEIT 2 (T2): 2 Monate nach Ende der HBO-Behandlungen.

Zu den eingeschlossenen Fächern werden folgende Prüfungen abgelegt:

• ein standardisiertes Panel mit komplettem Blutbild (CBC), Kreatinin, Blut-Harnstoff-Stickstoff (BUN), C-reaktivem Protein und VES wird zu T0, T1 und T2 durchgeführt.
• oxidative Stressmarker werden in Blut-, Urin- und Speichelproben analysiert. An Blutproben (T0; T1; T2) messen die Autoren IL-1 beta, IL-6, TNF-alpha, reaktive Sauerstoffspezies und die gesamte antioxidative Kapazität (durch paramagnetische Resonanz), insgesamt (tot) und reduziert (rot) Aminothiole (durch Fluoreszenzspektroskopie), 3-Nitrotyrosin (3-NT) (durch kompetitiven Immunoassay).

An Urinproben (T0; T1; T2) werden die Autoren die Lipidperoxidation durch Messen der 8-Isoprostan-Konzentration (durch kompetitiven Immunoassay), der Nitrit- und Nitratkonzentration (NO2/NO3) (durch Kolorimetrie basierend auf der Griess-Reaktion) und der induzierbaren Salpetersäure bestimmen Oxidsynthase (mittels im Handel erhältlichem ELISA-Kit), Kreatinin-, Neopterin- und Harnsäurekonzentrationen, 8-oh-2-Desoxyguanosin (mittels kompetitivem Immunoassay).

An Speichelproben (T0; T1; T2) werden die Autoren reaktive Sauerstoffspezies und die gesamte antioxidative Kapazität (durch paramagnetische Resonanz) und Cortisol (durch kompetitiven Immunoassay) messen.

• Stammzellen werden anhand von Blutproben (bei T0, T1, T2) (mittels Durchflusszytometrie) analysiert.

Blutproben (ca. 6-12 ml) werden aus den Venen der Unterarme (vorzugsweise an der nicht dominanten Extremität) entnommen; Plasma und Erythrozyten werden durch Zentrifugation bei 1000 × g für 10 min bei 4 °C getrennt. Urinproben werden durch freiwillige Entleerung in sterilen Behältern gesammelt. 1 ml Speichel wird mit Salivette-Geräten (Sarstedt, Nümbrecht, Deutschland) gewonnen. Die Probanden werden angewiesen, in den 30 Minuten vor der Speichelsammlung auf Trinken, Essen, Rauchen, Zähneputzen und die Verwendung von Mundwasser zu verzichten.

Alle Proben werden bis zur Untersuchung in mehreren Aliquots bei -80 °C gelagert und vor der Analyse nur einmal aufgetaut.

Bei dieser Einstellung ist eine Verblindung von Patienten und Untersuchern aufgrund unterschiedlicher struktureller Merkmale ausgeschlossen. Die Ergebnisbewerter werden jedoch gegenüber der Patientenzuteilung verblindet sein.