- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04351711
Profilage immunologique des patients atteints de COVID-19 en détresse respiratoire (ACTICOV-2)
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Le SRAS-CoV inhibe les systèmes de détection virale et les voies de signalisation des interférons de type I (IFN-I). La faiblesse de la réponse initiale à l'interféron est prédictive de la gravité d'une future maladie pulmonaire. L'efficacité de cette stratégie d'échappement semble permettre à ces coronavirus de se répliquer dans le corps humain sans déclencher une réponse immunitaire innée efficace. Cela pourrait expliquer la contagiosité des personnes infectées asymptomatiques.
Cependant, cette réplication initiale provoque une tempête de cytokines impliquant des cytokines inflammatoires. L'intensité de cette tempête de cytokines est corrélée à la gravité des cas de COVID-19.
L'atteinte pulmonaire, qui est la principale cause de décès dans les infections à SRAS-CoV, a été attribuée à une inflammation locale, avec une infiltration de lymphocytes T CD8+, de polynucléaires, de monocytes et de macrophages, une infiltration proportionnelle à la gravité de l'insuffisance respiratoire ainsi qu'une augmentation perméabilité vasculaire.
Le SRAS-CoV induit également l'apoptose des lymphocytes T. Cet effet pro-apoptotique pourrait contribuer à la lymphopénie observée dans 37 à 63% des cas de COVID-19, prédictive de formes sévères.
Ainsi l'atteinte pulmonaire pourrait être en partie causée par des mécanismes immunopathologiques.
Les troubles immunologiques associés à l'insuffisance respiratoire doivent être mieux définis. Récemment, nous avons mesuré un panel de marqueurs solubles et membranaires permettant de caractériser T CD4+, T CD8+, B, monocytaire, NK, l'activation endothéliale ainsi que l'inflammation dans un échantillon constitué de 150 volontaires issus d'une population générale fournissant une population contrôle .
Les investigateurs de l'étude visent à utiliser ce panel pour définir l'état d'activation immunitaire des patients infectés par le SRAS-CoV-2 hospitalisés pour détresse respiratoire. De plus, les chercheurs identifieront les facteurs solubles liés à l'activation immunitaire surproduite par les cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC) de ces patients. Enfin, les chercheurs veulent caractériser le transcriptome des principales sous-populations immunitaires circulantes. Ces paramètres seront comparés à ceux de patients infectés par le SARS-CoV-2 hospitalisés avant de vivre une détresse respiratoire.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
-
Nîmes, France
- CHU de Nîmes
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
Patients en réanimation ou en hospitalisation normale au CHU de Nîmes pour une infection au SRAS-CoV-2, confirmée par PT-PCR ou par un test antigénique
Volontaires en bonne santé
La description
Critère d'intégration:
- Le patient doit être membre ou bénéficiaire d'un régime d'assurance maladie
- Patient hospitalisé en réanimation respiratoire ou dans le service des Maladies Infectieuses et Tropicales du CHU de Nîmes avec infection par le SRAS-CoV-2, confirmée par RT-PCR ou par un test antigénique.
Critère d'exclusion:
- Le sujet est dans une période d'exclusion déterminée par une étude antérieure
- Le patient est sous sauvegarde de justice
- Patient déjà sous ventilation transféré d'un autre centre
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
|---|---|
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Patients SARS-CoV-2 avec insuffisance respiratoire
Patients en soins intensifs
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Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
|
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Patients SARS-CoV-2 sans insuffisance respiratoire
Patients hospitalisés dans les services hospitaliers normaux
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Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
|
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BÉNÉVOLES EN SANTÉ
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Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
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PATIENTS NON COVID-19
Patient hospitalisé au CHU de Nîmes pour une infection par un autre virus que le SARS-CoV-2
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Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
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PATIENTS SARS-COV-2+ PAUCISYMPTOMATIQUES
Patient positif au SRAS-CoV-2 par RT-PCR au CHU de Nîmes et présentant des signes cliniques au plus modérés sans insuffisance respiratoire (saturation en O2 supérieure ou égale à 96%) pendant la période de confinement
|
Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
|
|
malades convalescents
Visite de suivi supplémentaire à 1 an
|
Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Expression membranaire de l'isotype Human Leukocyte Antigen -DR par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 38 par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire de la protéine Programmed cell death 1 par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 45RA par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 27 (naïf/mémoire centrale/mémoire effectrice) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire de CD57 sur les cellules T CD4+ et T CD8+ par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 27 sur les cellules T CD4+ et T CD8+ par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 28 sur les cellules T CD4+ et T CD8+ par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire de l'isotype Human Leukocyte Antigen -DR sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 69 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 56 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 57 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 14 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Expression membranaire du cluster de différenciation 16 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Nombre de lymphocytes T régulateurs (CD4+CD25hiCD127loFoxP3+).
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Pourcentage de lymphocytes T régulateurs (CD4+CD25hiCD127loFoxP3+).
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'immunoglobuline A circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'immunoglobuline G circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'immunoglobuline M circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de cluster soluble circulant de différenciation 14 par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de cluster soluble circulant de différenciation 163 par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de protéine C-réactive ultrasensible circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de circulation du récepteur alpha du facteur de nécrose tumorale soluble de type I par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de sélectine E circulante (cluster de différenciation 62E) par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains préalablement prélevés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de facteur de stimulation des colonies de granulocytes macrophages circulants par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux
|
Jour 0
|
|
Taux de circulation InterCellular Adhesion Molecule-1 par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interféron alpha circulant par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interféron bêta circulant par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interféron gamma circulant par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-1 alpha circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-1 bêta circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-4 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-6 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-8 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-10 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-12p70 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-13 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'interleukine-17A circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de protéine 10 induite circulante (chimiokine à motif C-X-C 10) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de circulation de Monocyte Chemoattractant Protein-1 (C-C Motif Chemokine Ligand 2) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de circulation de la protéine inflammatoire macrophage-1 alpha (C-C Motif Chemokine Ligand 3) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de circulation de la protéine inflammatoire macrophage-1 bêta (C-C Motif Chemokine Ligand 4) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de P-sélectine circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de facteur de nécrose tumorale alpha par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux d'activateur tissulaire du plasminogène par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains préalablement prélevés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de forme soluble du récepteur endothélial de la protéine C par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
|
Taux de D-Dimères par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains préalablement échantillonnés)
Délai: Jour 0
|
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
|
Jour 0
|
Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Comparer le phénotype d'activation immunitaire (défini en critère de jugement principal) de patients atteints de COVID-19 avant toute détresse respiratoire à celui de 150 volontaires de la population générale (données déjà existantes).
Délai: Jour 0
|
Différence dans l'expression des biomarqueurs testés pour le résultat principal
|
Jour 0
|
|
Comparer le phénotype d'activation immunitaire (défini dans le critère de jugement principal) des patients atteints de COVID-19 avec insuffisance respiratoire contre ceux sans insuffisance respiratoire
Délai: Jour 0
|
Différence dans l'expression des biomarqueurs testés pour le résultat principal
|
Jour 0
|
|
Taux de mortalité
Délai: Fin d'études (2021)
|
Mortalité
|
Fin d'études (2021)
|
|
Comparaison des taux de sélectine E du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux de Granulocyte Macrophage Colony-Stimulating Factor du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des niveaux de molécules d'adhésion intercellulaire du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes précédemment établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interféron alpha du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interféron gamma du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interleukine-1alpha du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interleukine-1beta du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interleukine-4 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interleukine-6 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'Interleukine-8 (C-X-C motif ligand 8) du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interleukine-10 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interleukine-12p70 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interleukine-13 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux d'interleukine-17A du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des niveaux de protéine induite -10 (chimiokine à motif C-X-C 10) du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes précédemment établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des niveaux de Monocyte Chemoattractant Protein-1 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des niveaux de Macrophage Inflammatory Protein-1alpha du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des niveaux de Macrophage Inflammatory Protein -1beta du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux de P-sélectine du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Comparaison des taux de facteur de nécrose tumorale alpha du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes précédemment établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
|
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
|
Jour 0
|
|
Identifier les médiateurs inflammatoires surproduits par les PBMC des patients atteints de COVID-19 avant une détresse respiratoire
Délai: Jour 0
|
Différence d'expression des 20 marqueurs inflammatoires décrits dans les résultats 51-70
|
Jour 0
|
|
Comparer les médiateurs inflammatoires surproduits par les cellules mononucléaires du sang périphérique des patients atteints de COVID-19 avec versus sans insuffisance respiratoire
Délai: Jour 0
|
Différence d'expression des 20 marqueurs inflammatoires décrits dans les résultats 51-70
|
Jour 0
|
|
Comparaison du transcriptome des cellules mononucléaires du sang périphérique de 12 patients avec insuffisance respiratoire (en service de réanimation) et 10 sans (hospitalisation normale)
Délai: Jour 0
|
Interprété à l'Institut de Génétique Humaine (Montpellier)
|
Jour 0
|
|
Évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
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Activité caspase lymphocytaire
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1 an
|
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o évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
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niveau FasL circulant
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1 an
|
|
o évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
|
expression de la phosphatidylsérine à la surface des lymphocytes en phase aiguë
|
1 an
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o évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
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niveaux d'Ac
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1 an
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o évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
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plasmablastes et lymphocytes T spécifiques
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1 an
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Collaborateurs et enquêteurs
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Pierre Corbeau, CHU Nîmes
Publications et liens utiles
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
- Infections des voies respiratoires
- Infections
- Infections par virus à ARN
- Maladies virales
- Maladies des voies respiratoires
- Maladies pulmonaires
- Troubles respiratoires
- Pneumonie virale
- Pneumonie
- Infections à coronavirus
- Infections à Coronaviridae
- Infections à Nidovirales
- COVID-19 [feminine]
- Insuffisance respiratoire
Autres numéros d'identification d'étude
- NIMAO/2020-01/PC-01
- 2020-A00875-34 (Autre identifiant: ANSM)
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
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