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Profilage immunologique des patients atteints de COVID-19 en détresse respiratoire (ACTICOV-2)

3 décembre 2025 mis à jour par: Centre Hospitalier Universitaire de Nīmes
Les enquêteurs de l'étude émettent l'hypothèse que la pneumonie survenant chez les patients atteints de COVID-19 est en grande partie d'origine immunopathologique. Les investigateurs chercheront donc à définir le phénotype d'activation immunitaire des patients en détresse respiratoire et à voir si cette signature immunitaire est prédictive de la mortalité. Enfin, les chercheurs rechercheront des médiateurs inflammatoires surproduits pour identifier des cibles thérapeutiques potentielles.

Aperçu de l'étude

Statut

Complété

Les conditions

Intervention / Traitement

Description détaillée

Le SRAS-CoV inhibe les systèmes de détection virale et les voies de signalisation des interférons de type I (IFN-I). La faiblesse de la réponse initiale à l'interféron est prédictive de la gravité d'une future maladie pulmonaire. L'efficacité de cette stratégie d'échappement semble permettre à ces coronavirus de se répliquer dans le corps humain sans déclencher une réponse immunitaire innée efficace. Cela pourrait expliquer la contagiosité des personnes infectées asymptomatiques.

Cependant, cette réplication initiale provoque une tempête de cytokines impliquant des cytokines inflammatoires. L'intensité de cette tempête de cytokines est corrélée à la gravité des cas de COVID-19.

L'atteinte pulmonaire, qui est la principale cause de décès dans les infections à SRAS-CoV, a été attribuée à une inflammation locale, avec une infiltration de lymphocytes T CD8+, de polynucléaires, de monocytes et de macrophages, une infiltration proportionnelle à la gravité de l'insuffisance respiratoire ainsi qu'une augmentation perméabilité vasculaire.

Le SRAS-CoV induit également l'apoptose des lymphocytes T. Cet effet pro-apoptotique pourrait contribuer à la lymphopénie observée dans 37 à 63% des cas de COVID-19, prédictive de formes sévères.

Ainsi l'atteinte pulmonaire pourrait être en partie causée par des mécanismes immunopathologiques.

Les troubles immunologiques associés à l'insuffisance respiratoire doivent être mieux définis. Récemment, nous avons mesuré un panel de marqueurs solubles et membranaires permettant de caractériser T CD4+, T CD8+, B, monocytaire, NK, l'activation endothéliale ainsi que l'inflammation dans un échantillon constitué de 150 volontaires issus d'une population générale fournissant une population contrôle .

Les investigateurs de l'étude visent à utiliser ce panel pour définir l'état d'activation immunitaire des patients infectés par le SRAS-CoV-2 hospitalisés pour détresse respiratoire. De plus, les chercheurs identifieront les facteurs solubles liés à l'activation immunitaire surproduite par les cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC) de ces patients. Enfin, les chercheurs veulent caractériser le transcriptome des principales sous-populations immunitaires circulantes. Ces paramètres seront comparés à ceux de patients infectés par le SARS-CoV-2 hospitalisés avant de vivre une détresse respiratoire.

Type d'étude

Observationnel

Inscription (Réel)

120

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Lieux d'étude

      • Nîmes, France
        • CHU de Nîmes

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

18 ans et plus (Adulte, Adulte plus âgé)

Accepte les volontaires sains

Oui

Méthode d'échantillonnage

Échantillon non probabiliste

Population étudiée

Patients en réanimation ou en hospitalisation normale au CHU de Nîmes pour une infection au SRAS-CoV-2, confirmée par PT-PCR ou par un test antigénique

Volontaires en bonne santé

La description

Critère d'intégration:

  • Le patient doit être membre ou bénéficiaire d'un régime d'assurance maladie
  • Patient hospitalisé en réanimation respiratoire ou dans le service des Maladies Infectieuses et Tropicales du CHU de Nîmes avec infection par le SRAS-CoV-2, confirmée par RT-PCR ou par un test antigénique.

Critère d'exclusion:

  • Le sujet est dans une période d'exclusion déterminée par une étude antérieure
  • Le patient est sous sauvegarde de justice
  • Patient déjà sous ventilation transféré d'un autre centre

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

Cohortes et interventions

Groupe / Cohorte
Intervention / Traitement
Patients SARS-CoV-2 avec insuffisance respiratoire
Patients en soins intensifs
Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
  • Visite de suivi supplémentaire à 1 an pour 30 patients convalescents
Patients SARS-CoV-2 sans insuffisance respiratoire
Patients hospitalisés dans les services hospitaliers normaux
Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
  • Visite de suivi supplémentaire à 1 an pour 30 patients convalescents
BÉNÉVOLES EN SANTÉ
Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
  • Visite de suivi supplémentaire à 1 an pour 30 patients convalescents
PATIENTS NON COVID-19
Patient hospitalisé au CHU de Nîmes pour une infection par un autre virus que le SARS-CoV-2
Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
  • Visite de suivi supplémentaire à 1 an pour 30 patients convalescents
PATIENTS SARS-COV-2+ PAUCISYMPTOMATIQUES
Patient positif au SRAS-CoV-2 par RT-PCR au CHU de Nîmes et présentant des signes cliniques au plus modérés sans insuffisance respiratoire (saturation en O2 supérieure ou égale à 96%) pendant la période de confinement
Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
  • Visite de suivi supplémentaire à 1 an pour 30 patients convalescents
malades convalescents
Visite de suivi supplémentaire à 1 an
Le phénotype d'activation immunitaire sera évalué à l'aide d'un panel standardisé de marqueurs d'activation immunitaire solubles et membranaires
Autres noms:
  • Visite de suivi supplémentaire à 1 an pour 30 patients convalescents

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Expression membranaire de l'isotype Human Leukocyte Antigen -DR par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 38 par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire de la protéine Programmed cell death 1 par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 45RA par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 27 (naïf/mémoire centrale/mémoire effectrice) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire de CD57 sur les cellules T CD4+ et T CD8+ par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 27 sur les cellules T CD4+ et T CD8+ par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 28 sur les cellules T CD4+ et T CD8+ par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire de l'isotype Human Leukocyte Antigen -DR sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 69 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 56 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 57 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 14 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Expression membranaire du cluster de différenciation 16 sur les cellules Naturel Killer par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Nombre de lymphocytes T régulateurs (CD4+CD25hiCD127loFoxP3+).
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Pourcentage de lymphocytes T régulateurs (CD4+CD25hiCD127loFoxP3+).
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'immunoglobuline A circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'immunoglobuline G circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'immunoglobuline M circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de cluster soluble circulant de différenciation 14 par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de cluster soluble circulant de différenciation 163 par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de protéine C-réactive ultrasensible circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de circulation du récepteur alpha du facteur de nécrose tumorale soluble de type I par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de sélectine E circulante (cluster de différenciation 62E) par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains préalablement prélevés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de facteur de stimulation des colonies de granulocytes macrophages circulants par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux
Jour 0
Taux de circulation InterCellular Adhesion Molecule-1 par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interféron alpha circulant par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interféron bêta circulant par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interféron gamma circulant par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interleukine-1 alpha circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interleukine-1 bêta circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interleukine-4 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interleukine-6 ​​circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interleukine-8 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interleukine-10 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interleukine-12p70 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux
Jour 0
Taux d'interleukine-13 circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'interleukine-17A circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de protéine 10 induite circulante (chimiokine à motif C-X-C 10) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de circulation de Monocyte Chemoattractant Protein-1 (C-C Motif Chemokine Ligand 2) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de circulation de la protéine inflammatoire macrophage-1 alpha (C-C Motif Chemokine Ligand 3) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de circulation de la protéine inflammatoire macrophage-1 bêta (C-C Motif Chemokine Ligand 4) par rapport aux valeurs normales (sur la base de 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de P-sélectine circulante par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de facteur de nécrose tumorale alpha par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux d'activateur tissulaire du plasminogène par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains préalablement prélevés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de forme soluble du récepteur endothélial de la protéine C par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains précédemment échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0
Taux de D-Dimères par rapport aux valeurs normales (basé sur 150 volontaires sains préalablement échantillonnés)
Délai: Jour 0
Quantifié par cytométrie en flux ; % variation / valeurs normales
Jour 0

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Comparer le phénotype d'activation immunitaire (défini en critère de jugement principal) de patients atteints de COVID-19 avant toute détresse respiratoire à celui de 150 volontaires de la population générale (données déjà existantes).
Délai: Jour 0
Différence dans l'expression des biomarqueurs testés pour le résultat principal
Jour 0
Comparer le phénotype d'activation immunitaire (défini dans le critère de jugement principal) des patients atteints de COVID-19 avec insuffisance respiratoire contre ceux sans insuffisance respiratoire
Délai: Jour 0
Différence dans l'expression des biomarqueurs testés pour le résultat principal
Jour 0
Taux de mortalité
Délai: Fin d'études (2021)
Mortalité
Fin d'études (2021)
Comparaison des taux de sélectine E du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux de Granulocyte Macrophage Colony-Stimulating Factor du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des niveaux de molécules d'adhésion intercellulaire du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes précédemment établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interféron alpha du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interféron gamma du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interleukine-1alpha du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interleukine-1beta du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interleukine-4 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interleukine-6 ​​du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'Interleukine-8 (C-X-C motif ligand 8) du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interleukine-10 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interleukine-12p70 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interleukine-13 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux d'interleukine-17A du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des niveaux de protéine induite -10 (chimiokine à motif C-X-C 10) du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes précédemment établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des niveaux de Monocyte Chemoattractant Protein-1 du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des niveaux de Macrophage Inflammatory Protein-1alpha du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des niveaux de Macrophage Inflammatory Protein -1beta du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux de P-sélectine du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes préalablement établies chez 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Comparaison des taux de facteur de nécrose tumorale alpha du plasma et du surnageant de PBMC activés ou non par le lipopolysaccharide et l'entérotoxine staphylococcique B par rapport aux normes précédemment établies à partir de 16 sujets sains
Délai: Jour 0
quantifié par Luminex (système de tubes TruCulture (Myriad RBM))
Jour 0
Identifier les médiateurs inflammatoires surproduits par les PBMC des patients atteints de COVID-19 avant une détresse respiratoire
Délai: Jour 0
Différence d'expression des 20 marqueurs inflammatoires décrits dans les résultats 51-70
Jour 0
Comparer les médiateurs inflammatoires surproduits par les cellules mononucléaires du sang périphérique des patients atteints de COVID-19 avec versus sans insuffisance respiratoire
Délai: Jour 0
Différence d'expression des 20 marqueurs inflammatoires décrits dans les résultats 51-70
Jour 0
Comparaison du transcriptome des cellules mononucléaires du sang périphérique de 12 patients avec insuffisance respiratoire (en service de réanimation) et 10 sans (hospitalisation normale)
Délai: Jour 0
Interprété à l'Institut de Génétique Humaine (Montpellier)
Jour 0
Évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
Activité caspase lymphocytaire
1 an
o évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
niveau FasL circulant
1 an
o évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
expression de la phosphatidylsérine à la surface des lymphocytes en phase aiguë
1 an
o évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
niveaux d'Ac
1 an
o évaluer si l'apoptose lymphocytaire mesurée en phase aiguë est prédictive des niveaux résiduels d'Ac spécifiques et de la mémoire immunitaire B et T un an plus tard.
Délai: 1 an
plasmablastes et lymphocytes T spécifiques
1 an

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Les enquêteurs

  • Chercheur principal: Pierre Corbeau, CHU Nîmes

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

9 avril 2020

Achèvement primaire (Réel)

12 décembre 2022

Achèvement de l'étude (Réel)

12 décembre 2022

Dates d'inscription aux études

Première soumission

10 avril 2020

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

14 avril 2020

Première publication (Réel)

17 avril 2020

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

10 décembre 2025

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

3 décembre 2025

Dernière vérification

1 décembre 2025

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

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