Protocole de maintenance pour les prothèses hybrides implanto-portées.

La population étudiée sera composée de patients se présentant dans les départements de parodontologie des universités de Cagliari et qui ont besoin d'un entretien pour des prothèses hybrides implanto-portées.

Les patients seront exclus de l'étude s'ils sont atteints de bronchite chronique ou d'asthme et de maladies systémiques majeures (c. diabète sucré, cancer, VIH, maladies du métabolisme osseux ou troubles qui compromettent la cicatrisation des plaies, la radiothérapie ou la thérapie immunosuppressive). La prise d'antibiotiques ou d'autres médicaments pris au cours des 28 jours précédents pouvant affecter le résultat de l'étude empêchera l'inclusion dans l'étude ainsi que l'intolérance confirmée ou suspectée à l'érythritol ou à la chlorhexidine.

Le protocole de maintenance des prothèses dentaires complètes fixes implanto-portées comprendra les étapes suivantes :

1. Rinçage d'une minute avec de la chlorhexidine à 0,12 % afin de réduire la charge microbienne de la cavité buccale
2. Exposer les radiographies péri-apicales avec la technique parallèle sans retirer la prothèse afin de faciliter l'alignement (Fig 2)
3. Observer les manœuvres d'hygiène buccale du patient, l'utilisation de la brosse à dents, du super fil dentaire et des dispositifs interproximaux
4. Retirer/dévisser la prothèse hybride
5. Positionner la prothèse sur un bureau ou un plan plat avec la surface en creux vers le haut
6. Prendre une photo de la surface en creux de la prothèse
7. Prendre une photo clinique de l'arcade édentée juste après le retrait de la prothèse
8. Appliquer un agent révélateur de plaque sur la crête édentée
9. Montrez au patient les zones colorées par l'agent révélateur de plaque.
10. Montrez au patient sur un moniteur l'image de la surface en creux de la prothèse pour indiquer les zones où l'hygiène domestique peut être améliorée.
11. Remettez au patient une impression de l'image de la prothèse avec les zones de plaque et de tartre surlignées par des flèches pour mieux communiquer et réitérer l'importance d'une bonne hygiène (Fig 3)
12. Sonder circonférentiellement les implants dentaires à l'aide d'une sonde parodontale UNC 15. Enregistrez le saignement au sondage (BoP), la présence de plaque et la profondeur de la poche de sondage (PPD) sur quatre sites par implant. Évalue le tonus et la consistance des tissus mous péri-implantaires.
13. Décontaminez la muqueuse buccale, la gencive, les joues et la langue à l'aide d'un embout supragingival et de poudre d'érythritol. Réglez la machine à 50 % de puissance, 100 % d'irrigation, maintenez la pointe à 5 mm de distance des tissus mous et déplacez-la avec de courts mouvements de va-et-vient à une inclinaison de 30 à 60°.
14. Décontaminer les composants secondaires de l'implant. Éliminer l'agent révélateur de plaque, le biofilm et la coloration à l'aide d'un embout supragingival et d'une poudre d'érythritol. Réglez la machine à 60-100 % de puissance, 100 % d'irrigation, maintenez la pointe à une distance de 3 à 5 mm du composant de l'implant et déplacez-la avec de courts mouvements de va-et-vient à une inclinaison de 60 à 90°.

15. L'élimination du biofilm sous-gingival dépend de la PPD. Chaque site est traité spécifiquement. Si un site a un PPD < 5 mm, décontaminez à l'aide d'un embout supragingival et d'une poudre d'érythritol. Réglez la machine à 60 % de puissance, 100 % d'irrigation, maintenez la pointe à une distance de 5 mm du sulcus péri-implantaire et déplacez-la avec de courts mouvements de va-et-vient à une inclinaison de 30-60 ° et jamais à 90 °. Utilisez la pointe 5 secondes par site au maximum.

    Si un site a PPD > 5 mm PPD < 10 mm, décontaminé à l'aide d'un embout sous-gingival (Perioflow®) et de poudre d'érythritol. Réglez la machine à 20-50 % de puissance, 70-100 % d'irrigation (le % dépend de la fermeté des tissus péri-implantaires), insérez la pointe dans le sulcus péri-implantaire et déplacez-la avec de courts mouvements de va-et-vient dans une direction apical-coronaire et est de le maintenir aussi parallèle que possible au grand axe de l'implant. Utilisez le conseil 5 secondes consécutives par site au maximum.

16. Retirer, le cas échéant, le tartre restant avec une pointe à ultrasons
17. Appliquer à nouveau l'agent révélateur de plaque pour vérifier l'élimination complète du biofilm
18. Si nécessaire, retirez le biofilm restant
19. Nettoyer et polir la prothèse hybride
20. Repositionner/Visser la prothèse en vérifiant l'absence de concavités et de zones non polies
21. Revoir et renforcer les instructions d'hygiène buccale
22. Planifier la prochaine visite d'entretien en fonction de la sensibilité du patient

Les sillons péri-implantaires seront sondés à l'aide d'une sonde parodontale UNC 15 sur quatre sites, mésial, distal, lingual/palatin et buccal et paramètres cliniques tels que l'indice de plaque (PlI), la profondeur de sondage (PD), le saignement au sondage (BOP) et la suppuration péri-implantaire (PS) sera enregistrée immédiatement après le retrait de la prothèse et à un mois de suivi.

L'indice de plaque (PlI) sera évalué grâce à l'utilisation d'une solution révélatrice, appliquée avec un coton-tige, aux mêmes 4 sites pour chaque implant. Le saignement péri-implantaire au sondage (BOP) sera également évalué sur les mêmes 4 sites pour chaque implant. Pour PlI et BOP, des valeurs de 0 à 4 seront enregistrées, en fonction du nombre de surfaces d'implant présentant une plaque/saignement, respectivement. La suppuration tissulaire péri-implantaire (PS) sera évaluée de manière dichotomique (présente/absente).

Le prélèvement de l'échantillon microbiologique sera effectué selon les procédures suivantes : l'implant sera isolé par aspiration et l'utilisation de rouleaux de coton, afin d'éviter la contamination de la salive. Quatre pointes de papier endodontique stériles seront insérées dans le sillon péri-implantaire de chaque implant, en les plaçant dans les sites mésial, distal, lingual/palatin et buccal et retirées après 30 secondes avec une pince à épiler en les plaçant dans un tube en plastique stérile qui sera scellé immédiatement. La même procédure sera effectuée pour chaque implant.

Une fois l'opération terminée, les tubes de chaque patient (un pour chaque implant et contenant chacun 4 pointes papier) seront envoyés pour analyse microbiologique. Les échantillons seront envoyés au Laboratoire de Microbiologie du Département des Sciences Chirurgicales de l'Université de Cagliari, afin d'analyser la présence de bactéries des sillons péri-implantaires. L'ADN des échantillons de liquide créviculaire sera ensuite isolé par centrifugation et analysé par PCR (amplification en chaîne par polymérase). Cette technique biomoléculaire est basée sur une réaction enzymatique, dans laquelle une ADN polymérase résistante à la chaleur (Taq Polymerase) catalyse l'amplification spécifique de séquences d'ADN connues. Cette intervention sera réalisée avant le protocole d'hygiène, immédiatement après et à un mois de suivi.

L'analyse de puissance a été utilisée pour déterminer la taille de l'échantillon en utilisant un .05 niveau de signification et une puissance de 90 % basés sur une taille d'effet de 0,25. Une taille d'échantillon de 130 implants (environ 25/30 patients porteurs de prothèses hybrides supportées par des implants) est nécessaire pour détecter une différence significative entre les paramètres mesurés aux différents moments à l'aide d'une ANOVA à mesures répétées. Des statistiques descriptives seront calculées, y compris les moyennes, les écarts-types, les médianes et les intervalles de confiance. Les résultats microbiologiques mesurés au départ, immédiatement après l'entretien et un mois seront analysés à l'aide du test ANOVA à mesures répétées unidirectionnelles, tandis que l'analyse statistique des mesures PD, BOP, PlI et PS au départ et un mois sera analysée à l'aide du McNemar's test. Le niveau de signification est établi à 5% (p = 0,05), et l'analyse sera effectuée à l'aide d'un logiciel statistique (SPSS version 26, IBM).