- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT06436937
Qualité des protéines de la fève et du miel chlorelle chez l'homme (Giant Leaps)
Qualité protéique de l'analogue de viande de fève et de la chlorelle de miel ingérée sous forme de repas mixtes chez des volontaires en bonne santé
Aperçu de l'étude
Statut
Description détaillée
L'objectif est de déterminer la qualité nutritionnelle des protéines issues du miel de chlorelle et de l'analogue de la viande de féverole chez l'homme en bonne santé, notamment en termes de digestibilité des protéines et des acides aminés ainsi que de rétention d'azote. La digestibilité iléale est déterminée dans le digesta iléal collecté après le repas avec une sonde naso-iléale. Les sources de protéines sont intrinsèquement marquées en 15N afin de suivre l'azote alimentaire et les acides aminés présents dans les échantillons.
Aspects éthiques et réglementaires :
Le protocole a été approuvé par le Comité d'éthique et autorisé par l'Agence française du médicament et de la santé. La gestion des données personnelles sera conforme au règlement sur la protection des données personnelles (« règlement n° 2018-493 du 20 juin 2018 »).
Repas:
Le repas consistera soit en une boisson contenant 40 g de miel chlorelle, soit en un repas mixte contenant 80 g d'analogue de viande, pour apporter 20 g de protéines. Des tests sensoriels seront réalisés pour optimiser les propriétés organoleptiques du repas.
Bénévoles:
Seize sujets seront inclus dans l'étude. Les enquêteurs prévoient de recruter une quarantaine de volontaires pour répondre aux abandons habituels de 60 %.
Quatre jours avant l'expérimentation, les volontaires suivront un régime alimentaire standard adapté à leur poids corporel pour contrôler leur apport en protéines (1,3 g de protéines/kg de poids corporel).
Les volontaires arriveront au Centre de Recherche en Nutrition Humaine de l'Hôpital Avicenne la veille du jour de l'expérimentation. Ils seront équipés d'un tube intestinal à double lumière qui pourra progresser dans le tractus intestinal pendant 24h. L'une des lumières est radio-opaque et sert à perfuser un agent non résorbable dans l'intestin (méthode du marqueur lent). L'autre lumière est dédiée à l'aspiration continue des effluents, 15 cm sous le site de perfusion. La mesure du marqueur non résorbable dans les effluents permet de déterminer le débit des effluents.
La veille du jour expérimental, ils ingéreront 3 doses orales d'eau deutérée à 99 % pour atteindre 5 g/kg d'eau corporelle totale, pour marquer les protéines endogènes intestinales.
Le jour de l'expérience, la position du tube sera vérifiée par radiographie pour vérifier sa localisation au niveau de l'iléon terminal. Un cathéter sera inséré dans la veine de l'avant-bras pour un prélèvement sanguin. La perfusion du marqueur non résorbable, PEG-4000 (20 g/l), débutera à un débit de 1 ml/min. Le flux intestinal et l'échantillon iléal basal seront collectés pendant 30 min. Un échantillon de plasma basal sera échantillonné.
Ensuite, à t=0, les volontaires boiront le repas test. Jusqu'à t=8h, le contenu intestinal sera collecté en continu par aspiration et regroupé toutes les 30 minutes. Le sang sera prélevé toutes les 30 minutes pendant 4 heures et toutes les heures par la suite. L'urine sera collectée toutes les 2 h pendant 8 h.
Des mesures:
Dans le digesta ilel :
PEG-4000 par méthode turbidimétrique, enrichissement en N total et 15N par EA-IRMS, concentrations en acides aminés par UPLC (après hydrolyse acide HCl 6N à 110°C pendant 24h), enrichissement en acides aminés 15N par GC-c-IRMS (après purification sur résine échangeuse de cations et dérivatisation), enrichissement en acides aminés 2H par GC-c-IRMS, analyse du microbiome (séquençage d'ADN), analyse peptidique (LC-MS).
Dans le plasma :
Glucose, urée (méthodes colorimétriques), insuline (ELISA), concentrations d'acides aminés (UPLC), enrichissement en 15N en protéines plasmatiques, urée et acides aminés libres (EA-IRMS, après purification sur résine échangeuse de cations et dérivatisation).
Dans les urines :
Urée (méthode colorimétrique) et urée 15N (EA-IRMS, après purification sur résine échangeuse de cations et dérivatisation).
Les principaux résultats sont :
Digestibilité iléale réelle des protéines et des acides aminés (pertes digestives), Désamination postprandiale (pertes métaboliques), Utilisation nette des protéines postprandiale
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Gheorghe Airinei, MD
- E-mail: gheorghe.airinei@aphp.fr
Sauvegarde des contacts de l'étude
- Nom: Claire Gaudichon, PhD, Prof
- Numéro de téléphone: 33189100852
- E-mail: claire.gaudichon@agroparistech.fr
Lieux d'étude
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-
Bobigny, France, 93000
- Recrutement
- Research Center on Volunteers
-
Contact:
- Claire Gaudichon
- Numéro de téléphone: 33 1 89 10 08 52
- E-mail: claire.gaudichon@agroparistech.fr
-
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Adulte
Accepte les volontaires sains
La description
Critère d'intégration:
- 18<IMC<30
- Bonne santé (OMS=0)
- Pour la femme : utilisation d’une méthode contraceptive
Critère d'exclusion:
- allergie alimentaire
- allergie au latex
- femmes enceintes
- Sérologie positive pour AgHBS, AcHbc, HCV, HIV
- Anémie
- Consommation excessive d'alcool
- Hypertension, diabète, maladies digestives, hépatiques ou rénales, maladies cardiaques
- Exercice>7h/semaine
- Don de sang dans les 3 mois précédant l'étude
- Participation à une autre étude clinique dans les 3 mois précédant l'étude
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Science basique
- Répartition: Non randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
|---|---|
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Expérimental: Miel Chlorelle
Les sujets ingèrent un seul repas : une boisson comprenant 40 g de miel de chlorelle intrinsèquement marqué au 15N, pour apporter 20 g de protéines de chlorelle
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Ingestion d'un repas test étiqueté 15N.
Les sujets sont équipés d'une sonde nasoïle.
Le 15N est suivi dans les fluides biologiques (plasma, effluents, urines).
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Expérimental: Analogue de viande de féverole
Les sujets ingèrent un seul repas : un repas mixte comprenant 80 g d'analogue de viande de féverole intrinsèquement marqué au 15N, pour apporter 20 g de protéines de féverole.
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Ingestion d'un repas test étiqueté 15N.
Les sujets sont équipés d'une sonde nasoïle.
Le 15N est suivi dans les fluides biologiques (plasma, effluents, urines).
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Utilisation nette des protéines postprandiales (NPPU)
Délai: 0 à 8 heures après le repas test
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La mesure de l'urée (mmol) et de l'enrichissement en 15N de l'urée (% atomique) permet de déterminer la quantité de N alimentaire qui a été transférée à l'urée, expliquant ainsi les pertes métaboliques.
Les pertes métaboliques de N alimentaire, ainsi que les pertes digestives de N alimentaire, ne sont pas retenues dans le corps.
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0 à 8 heures après le repas test
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Digestibilité iléale des protéines et des acides aminés
Délai: -30 minutes à 8 heures après le repas test
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La mesure de l'azote (mmol) et de l'enrichissement en 15N (% atomique) dans des échantillons iléaux permet de déterminer la quantité d'azote alimentaire dans la lumière.
L'azote alimentaire récupéré dans les échantillons iléaux est alors considéré comme non absorbé.
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-30 minutes à 8 heures après le repas test
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Digestibilité iléale des acides aminés
Délai: -30 minutes à 8 heures après le repas test
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La mesure de la concentration en acides aminés (mmol) et de leur enrichissement individuel en 15N (% atomique) permet de déterminer les acides aminés alimentaires restant dans la lumière.
Les acides aminés alimentaires récupérés dans les échantillons iléaux sont alors considérés comme non absorbés.
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-30 minutes à 8 heures après le repas test
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Métabolites azotés dans le sang en réponse à l'ingestion de fèves 15N
Délai: 0 à 8 heures après le repas test
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urée et acides aminés (mmol/l)
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0 à 8 heures après le repas test
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Glycémie plasmatique dans le sang en réponse à l'ingestion de fèves 15N
Délai: 0 à 8 heures après le repas test
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glucose plasmatique (mmol/l)
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0 à 8 heures après le repas test
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Insuline plasmatique dans le sang en réponse à l'ingestion de fèves 15N
Délai: 0 à 8 heures après le repas test
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insuline plasmatique (pmol/l)
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0 à 8 heures après le repas test
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Microbiote iléal
Délai: -0h30 avant le repas
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Séquençage de l'ADN microbien
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-0h30 avant le repas
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Composition peptidique du digesta iléal
Délai: 0-8 h après le repas test
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Analyse peptidomique par LC-MS
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0-8 h après le repas test
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Collaborateurs et enquêteurs
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Robert Benamouzig, MD, PhD, Assistance Publique - Hôpitaux de Paris
- Directeur d'études: Claire Gaudichon, PhD, Prof, INRAE
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Estimé)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Estimé)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Autres numéros d'identification d'étude
- GIANT LEAPS
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
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