- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT06436937
Calidad de la proteína de las habas y la clorella de miel en humanos (Giant Leaps)
Calidad de la proteína del análogo de la carne de habas y de la clorella de miel ingerida como comidas mixtas en voluntarios sanos
Descripción general del estudio
Estado
Descripción detallada
El objetivo es determinar la calidad nutricional de la proteína de la miel chlorella y el análogo de la carne de habas en humanos sanos, especialmente en términos de digestibilidad de proteínas y aminoácidos, así como de retención de nitrógeno. La digestibilidad ileal se determina en la digesta ileal recogida posprandial con una sonda nasoileal. Las fuentes de proteínas están intrínsecamente marcadas en 15N para rastrear el nitrógeno y los aminoácidos de la dieta en las muestras.
Aspectos éticos y regulatorios:
El protocolo ha sido aprobado por el Comité Ético y autorizado por la Agencia Francesa del Medicamento y de la Salud. La gestión de los datos personales se realizará de conformidad con el reglamento sobre protección de datos personales ("reglamento n° 2018-493 del 20 de junio de 2018").
Comida:
La comida consistirá en una bebida que contenga 40 g de miel chlorella o una comida mixta que contenga 80 g de análogo de carne, para proporcionar 20 g de proteína. Se realizarán pruebas sensoriales para optimizar las propiedades organolépticas de la comida.
Voluntarios:
Se incluirán dieciséis sujetos en el estudio. Los investigadores planean reclutar alrededor de 40 voluntarios para dar cabida al habitual 60% de abandonos.
Cuatro días antes del experimento, los voluntarios seguirán una dieta estándar adaptada a su peso corporal para controlar su ingesta proteica (1,3 g de proteína/kg de peso corporal).
Los voluntarios llegarán al Centro de Investigación en Nutrición Humana del Hospital Avicenne la mañana anterior al día del experimento. Estarán equipados con un tubo intestinal de doble luz que se permitirá avanzar a través del tracto intestinal durante 24 horas. Una de las luces es radioopaca y sirve para perfundir un agente no absorbible en el intestino (método de marcador lento). El otro lumen está dedicado a la aspiración continua de los efluentes, 15 cm por debajo del lugar de perfusión. La medición del marcador no absorbible en los efluentes permite determinar el caudal del efluente.
La noche anterior al día experimental, ingerirán 3 dosis orales de agua deuterada al 99 % para alcanzar 5 g/kg de agua corporal total, para etiquetar las proteínas endógenas intestinales.
El día del experimento, se comprobará mediante radiografía la posición del tubo para verificar su ubicación en el íleon terminal. Se insertará un catéter en la vena del antebrazo para tomar muestras de sangre. La perfusión del marcador no absorbible, PEG-4000 (20 g/l), se iniciará con un caudal de 1 ml/min. El flujo intestinal y la muestra ileal basal se recolectarán durante 30 min. Se tomará una muestra de plasma basal.
Luego, en t=0, los voluntarios beberán la comida de prueba. Hasta t = 8 h, el contenido intestinal se recogerá continuamente mediante aspiración y se combinará cada 30 minutos. Se tomarán muestras de sangre cada 30 minutos durante 4 horas y posteriormente cada hora. La orina se recolectará cada 2 h durante 8 h.
Mediciones:
En la digesta ilel:
PEG-4000 por método turbidimétrico, enriquecimiento de N total y 15N por EA-IRMS, concentraciones de aminoácidos por UPLC (después de hidrólisis ácida HCl 6N a 110°C durante 24 h), enriquecimiento de aminoácidos 15N por GC-c-IRMS (después de purificación en resina de intercambio catiónico y derivatización), enriquecimiento de aminoácidos 2H mediante GC-c-IRMS, análisis de microbioma (secuenciación de ADN), análisis de péptidos (LC-MS).
En el plasma:
Glucosa, urea (métodos colorimétricos), insulina (ELISA), concentraciones de aminoácidos (UPLC), enriquecimiento 15N en proteína plasmática, urea y aminoácidos libres (EA-IRMS, previa purificación en resina de intercambio catiónico y derivatización).
En la orina:
Urea (método colorimétrico) y urea 15 N (EA-IRMS, previa purificación sobre resina de intercambio catiónico y derivatización).
Los principales resultados son:
Digestibilidad ileal real de proteínas y aminoácidos (pérdidas digestivas), Deaminación posprandial (pérdidas metabólicas), Utilización neta de proteínas posprandiales
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Gheorghe Airinei, MD
- Correo electrónico: gheorghe.airinei@aphp.fr
Copia de seguridad de contactos de estudio
- Nombre: Claire Gaudichon, PhD, Prof
- Número de teléfono: 33189100852
- Correo electrónico: claire.gaudichon@agroparistech.fr
Ubicaciones de estudio
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Bobigny, Francia, 93000
- Reclutamiento
- Research Center on Volunteers
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Contacto:
- Claire Gaudichon
- Número de teléfono: 33 1 89 10 08 52
- Correo electrónico: claire.gaudichon@agroparistech.fr
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
- Adulto
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
- 18<IMC<30
- Buena salud (OMS=0)
- Para la mujer: uso de anticonceptivos.
Criterio de exclusión:
- alergia a la comida
- alergia al látex
- mujeres embarazadas
- Serología positiva para AgHBS, AcHbc, VHC, VIH
- Anemia
- Consumo excesivo de alcohol
- Hipertensión, diabetes, enfermedades digestivas, hepáticas o renales, enfermedades cardíacas.
- Ejercicio>7h/semana
- Donación de sangre dentro de los 3 meses anteriores al estudio.
- Participación en otro estudio clínico dentro de los 3 meses anteriores al estudio.
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Ciencia básica
- Asignación: No aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
|---|---|
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Experimental: Clorella de miel
Los sujetos ingieren una sola comida: una bebida que incluye 40 g de miel chlorella intrínsecamente marcada con 15N, para proporcionar 20 g de proteína de chlorella.
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Ingestión de una comida de prueba etiquetada con 15N.
Los sujetos están equipados con un tubo nasoileal.
El 15N se sigue en fluidos biológicos (plasma, efluentes, orinas).
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Experimental: Análogo de carne de habas
Los sujetos ingieren una sola comida: una comida mixta que incluye 80 g de un análogo de carne de habas intrínsecamente etiquetado con 15N, para proporcionar 20 g de proteína de habas.
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Ingestión de una comida de prueba etiquetada con 15N.
Los sujetos están equipados con un tubo nasoileal.
El 15N se sigue en fluidos biológicos (plasma, efluentes, orinas).
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Utilización neta posprandial de proteínas (NPPU)
Periodo de tiempo: 0 a 8 horas después de la comida de prueba
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La medición de urea (mmol) y el enriquecimiento de urea en 15N (% de átomos) permiten determinar la cantidad de N dietético que se transfirió a urea, contabilizando así las pérdidas metabólicas.
Las pérdidas metabólicas de N dietético, junto con las pérdidas digestivas de N dietético, no se retienen en el cuerpo.
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0 a 8 horas después de la comida de prueba
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Digestibilidad ileal de proteínas y aminoácidos.
Periodo de tiempo: -30 minutos a 8 horas después de la comida de prueba
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La medición de nitrógeno (mmol) y enriquecimiento de 15N (% de átomos) en muestras ileales permite determinar la cantidad de nitrógeno dietético en la luz.
El nitrógeno de la dieta que se recupera en las muestras ileales se considera entonces no absorbido.
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-30 minutos a 8 horas después de la comida de prueba
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Digestibilidad ileal de aminoácidos.
Periodo de tiempo: -30 minutos a 8 horas después de la comida de prueba
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La medición de la concentración de aminoácidos (mmol) y su enriquecimiento individual en 15N (% de átomos) permite determinar los aminoácidos de la dieta que quedan en la luz.
Los aminoácidos de la dieta que se recuperan en las muestras ileales se consideran no absorbidos.
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-30 minutos a 8 horas después de la comida de prueba
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Metabolitos de nitrógeno en sangre en respuesta a la ingestión de habas 15N
Periodo de tiempo: 0 a 8 horas después de la comida de prueba
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urea y aminoácidos (mmol/l)
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0 a 8 horas después de la comida de prueba
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Glucosa plasmática en sangre en respuesta a la ingestión de habas 15N
Periodo de tiempo: 0 a 8 horas después de la comida de prueba
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glucosa plasmática (mmol/l)
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0 a 8 horas después de la comida de prueba
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Insulina plasmática en sangre en respuesta a la ingestión de habas 15N
Periodo de tiempo: 0 a 8 horas después de la comida de prueba
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insulina plasmática (pmol/l)
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0 a 8 horas después de la comida de prueba
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Microbiota ileal
Periodo de tiempo: -0,5 h antes de la comida
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Secuenciación de ADN microbiano.
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-0,5 h antes de la comida
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Composición peptídica de la digesta ileal.
Periodo de tiempo: 0-8 h después de la comida de prueba
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Análisis peptidómico por LC-MS.
|
0-8 h después de la comida de prueba
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Colaboradores e Investigadores
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Robert Benamouzig, MD, PhD, Assistance Publique - Hôpitaux de Paris
- Director de estudio: Claire Gaudichon, PhD, Prof, INRAE
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
Inicio del estudio (Actual)
Finalización primaria (Estimado)
Finalización del estudio (Estimado)
Fechas de registro del estudio
Enviado por primera vez
Primero enviado que cumplió con los criterios de control de calidad
Publicado por primera vez (Actual)
Actualizaciones de registros de estudio
Última actualización publicada (Estimado)
Última actualización enviada que cumplió con los criterios de control de calidad
Última verificación
Más información
Términos relacionados con este estudio
Palabras clave
Otros números de identificación del estudio
- GIANT LEAPS
Información sobre medicamentos y dispositivos, documentos del estudio
Estudia un producto farmacéutico regulado por la FDA de EE. UU.
Estudia un producto de dispositivo regulado por la FDA de EE. UU.
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