- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT06436937
Qualidade da proteína da fava e da clorela do mel em humanos (Giant Leaps)
Qualidade da proteína do análogo da carne de feijão fava e da clorela de mel ingerida como refeições mistas em voluntários saudáveis
Visão geral do estudo
Status
Descrição detalhada
O objetivo é determinar a qualidade nutricional da proteína do mel chlorella e do análogo da carne de fava em humanos saudáveis, especialmente em termos de digestibilidade de proteínas e aminoácidos, bem como retenção de nitrogênio. A digestibilidade ileal é determinada na digesta ileal coletada pós-prandialmente com um tubo naso-ileal. As fontes de proteína são intrinsecamente rotuladas em 15N para rastrear nitrogênio dietético e aminoácidos nas amostras.
Aspectos éticos e regulatórios:
O protocolo foi aprovado pelo Comitê de Ética e autorizado pela Agência Francesa de Medicamentos e Saúde. A gestão dos dados pessoais estará de acordo com o regulamento sobre proteção de dados pessoais (“regulamento n° 2018-493 de 20 de junho de 2018”).
Refeição:
A refeição consistirá em uma bebida contendo 40 g de chlorella de mel ou em uma refeição mista contendo 80 g de análogo de carne, para fornecer 20 g de proteína. Serão realizados testes sensoriais para optimizar as propriedades organolépticas da refeição.
Voluntários:
Dezesseis sujeitos serão incluídos no estudo. Os investigadores planejam recrutar cerca de 40 voluntários para acomodar os habituais 60% de desistências.
Quatro dias antes do experimento, os voluntários seguirão uma dieta padrão adaptada ao peso corporal para controlar a ingestão de proteínas (1,3 g de proteína/kg de peso corporal).
Os voluntários chegarão ao Centro de Pesquisa em Nutrição Humana do Hospital Avicenne na manhã anterior ao dia do experimento. Eles serão equipados com um tubo intestinal de duplo lúmen que poderá progredir pelo trato intestinal por 24h. Um dos lúmens é radiopaco e serve para perfundir um marcador não absorvível no intestino (método de marcador lento). O outro lúmen é dedicado à aspiração contínua dos efluentes, 15 cm abaixo do local de perfusão. A medição do marcador não absorvível nos efluentes permite a determinação da vazão do efluente.
Na noite anterior ao dia experimental, eles ingerirão 3 doses orais de água deuterada 99% para atingir 5g/kg de água corporal total, para marcar as proteínas endógenas intestinais.
No dia do experimento, a posição do tubo será verificada por radiografia para verificar sua localização no íleo terminal. Um cateter será inserido na veia do antebraço para coleta de sangue. A perfusão do marcador não absorvível, PEG-4000 (20g/l), começará com fluxo de 1ml/min. O fluxo intestinal e a amostra basal ileal serão coletados durante 30 min. Amostra de plasma basal será amostrada.
Então, em t=0, os voluntários beberão a refeição teste. Até t=8h, o conteúdo intestinal será coletado continuamente por aspiração e reunido a cada 30 minutos. O sangue será coletado a cada 30 minutos durante 4h e depois de hora em hora. A urina será coletada a cada 2 horas durante 8 horas.
Medidas:
No resumo do Ilel:
PEG-4000 pelo método turbidimétrico, enriquecimento total de N e 15N por EA-IRMS, concentrações de aminoácidos por UPLC (após hidrólise ácida HCl 6N a 110°C por 24h), enriquecimento de aminoácidos 15N por GC-c-IRMS (após purificação em resina de troca catiônica e derivatização), enriquecimento de aminoácidos 2H por GC-c-IRMS, análise de microbioma (sequenciamento de DNA), análise de peptídeos (LC-MS).
No plasma:
Glicose, uréia (métodos colorimétricos), insulina (ELISA), concentrações de aminoácidos (UPLC), enriquecimento de 15N em proteínas plasmáticas, uréia e aminoácidos livres (EA-IRMS, após purificação em resina de troca catiônica e derivatização).
Na urina:
Uréia (método colorimétrico) e uréia 15N (EA-IRMS, após purificação em resina de troca catiônica e derivatização).
Os principais resultados são:
Digestibilidade ileal real de proteínas e aminoácidos (perdas digestivas), Desaminação pós-prandial (perdas metabólicas), Utilização líquida de proteína pós-prandial
Tipo de estudo
Inscrição (Estimado)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Gheorghe Airinei, MD
- E-mail: gheorghe.airinei@aphp.fr
Estude backup de contato
- Nome: Claire Gaudichon, PhD, Prof
- Número de telefone: 33189100852
- E-mail: claire.gaudichon@agroparistech.fr
Locais de estudo
-
-
-
Bobigny, França, 93000
- Recrutamento
- Research Center on Volunteers
-
Contato:
- Claire Gaudichon
- Número de telefone: 33 1 89 10 08 52
- E-mail: claire.gaudichon@agroparistech.fr
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
- Adulto
Aceita Voluntários Saudáveis
Descrição
Critério de inclusão:
- 18<IMC<30
- Boa saúde (OMS=0)
- Para mulher: uso de controle de natalidade
Critério de exclusão:
- alergia alimentar
- alergia contra látex
- mulheres grávidas
- Sorologia positiva para AgHBS, AcHbc, HCV, HIV
- Anemia
- Consumo excessivo de álcool
- Hipertensão, diabetes, doenças digestivas, hepáticas ou renais, doenças cardíacas
- Exercício>7h/semana
- Doação de sangue dentro de 3 meses antes do estudo
- Participação em outro estudo clínico dentro de 3 meses antes do estudo
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Ciência básica
- Alocação: Não randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
- Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
|---|---|
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Experimental: Mel Clorela
Os sujeitos ingerem uma única refeição: uma bebida incluindo 40 g de mel chlorella intrinsecamente rotulado com 15N, para fornecer 20g de proteína de chlorella
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Ingestão de uma refeição teste marcada com 15N.
Os indivíduos estão equipados com um tubo nasoileal.
O 15N é seguido em fluidos biológicos (plasma, efluentes, urinas).
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Experimental: Análogo de carne de fava
Os indivíduos ingerem uma única refeição: uma refeição mista incluindo 80 g de análogo de carne de fava intrinsecamente rotulado com 15N, para fornecer 20g de proteína de fava
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Ingestão de uma refeição teste marcada com 15N.
Os indivíduos estão equipados com um tubo nasoileal.
O 15N é seguido em fluidos biológicos (plasma, efluentes, urinas).
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Utilização líquida de proteína pós-prandial (NPPU)
Prazo: 0 a 8 horas após a refeição teste
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A dosagem de ureia (mmol) e o enriquecimento de 15N da ureia (átomo %) permitem determinar a quantidade de N da dieta que foi transferida para a ureia, contabilizando assim as perdas metabólicas.
As perdas metabólicas de N dietético, juntamente com as perdas digestivas de N dietético, não são retidas no corpo.
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0 a 8 horas após a refeição teste
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Digestibilidade ileal de proteínas e aminoácidos
Prazo: -30 minutos a 8 horas após a refeição teste
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A medição do nitrogênio (mmol) e do enriquecimento de 15N (% de átomos) em amostras ileais permite determinar a quantidade de nitrogênio dietético no lúmen.
O nitrogênio dietético recuperado nas amostras ileais é então considerado como não absorvido.
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-30 minutos a 8 horas após a refeição teste
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Digestibilidade ileal de aminoácidos
Prazo: -30 minutos a 8 horas após a refeição teste
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A medição da concentração de aminoácidos (mmol) e seu enriquecimento individual de 15N (% de átomos) permite a determinação dos aminoácidos dietéticos remanescentes no lúmen.
Os aminoácidos dietéticos recuperados nas amostras ileais são então considerados como não absorvidos.
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-30 minutos a 8 horas após a refeição teste
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
|---|---|---|
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Metabólitos de nitrogênio no sangue em resposta à ingestão de fava 15N
Prazo: 0 a 8 horas após a refeição teste
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uréia e aminoácidos (mmol/l)
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0 a 8 horas após a refeição teste
|
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Glicose plasmática no sangue em resposta à ingestão de fava 15N
Prazo: 0 a 8 horas após a refeição teste
|
glicose plasmática (mmol/l)
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0 a 8 horas após a refeição teste
|
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Insulina plasmática no sangue em resposta à ingestão de fava 15N
Prazo: 0 a 8 horas após a refeição teste
|
insulina plasmática (pmol/l)
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0 a 8 horas após a refeição teste
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Microbiota ileal
Prazo: -0,5 h antes da refeição
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Sequenciamento de DNA microbiano
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-0,5 h antes da refeição
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Composição peptídica da digesta ileal
Prazo: 0-8 horas após a refeição teste
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Análise peptidômica por LC-MS
|
0-8 horas após a refeição teste
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Colaboradores e Investigadores
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Robert Benamouzig, MD, PhD, Assistance Publique - Hôpitaux de Paris
- Diretor de estudo: Claire Gaudichon, PhD, Prof, INRAE
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Estimado)
Conclusão do estudo (Estimado)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
Primeira postagem (Real)
Atualizações de registro de estudo
Última Atualização Postada (Estimado)
Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade
Última verificação
Mais Informações
Termos relacionados a este estudo
Palavras-chave
Outros números de identificação do estudo
- GIANT LEAPS
Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo
Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
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