- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT05850273
Meccanismo d'azione dell'interferone nel trattamento delle neoplasie mieloproliferative (IFN&SMP)
Le neoplasie mieloproliferative (MPN) negative per BCR-ABL classiche includono: policitemia vera (PV), trombocitemia essenziale (ET) e mielofibrosi primaria (PMF). Sono neoplasie mieloidi risultanti dalla trasformazione di una cellula staminale ematopoietica multipotente (HSC) causata da mutazioni che attivano la via JAK2/STAT. La mutazione più diffusa è JAK2V617F. Mutazioni della calreticulina di tipo 1 e di tipo 2 (CALR) e del recettore della trombopoietina (MPL) sono state osservate anche in ET e PMF. Sono state trovate anche ulteriori mutazioni non-MPN che interessano percorsi diversi, in particolare nella PMF, e sono coinvolte nell'inizio della malattia e/o nei cambiamenti fenotipici e/o nella progressione della malattia e/o nella risposta alla terapia.
C'è un evidente e urgente bisogno di una terapia efficace per MPN. In particolare, la PMF rimane senza trattamento curativo, tranne che il trapianto allogenico di HSC e gli inibitori JAK hanno effetti limitati sull'esito della malattia. Tra i nuovi approcci terapeutici, Peg-IFNα2a (IFN) è il più efficiente e ospita sia alti tassi di risposte ematologiche nei pazienti JAK2V617F e CALRmut MPN sia alcune risposte molecolari principalmente nei pazienti JAK2V617F, inclusa la risposta molecolare profonda (DMR). Tuttavia, diversi studi, incluso il nostro, hanno dimostrato che la risposta molecolare dell'IFN nei pazienti con CALRmut è eterogenea e complessivamente molto inferiore rispetto ai pazienti con JAK2V617F. Inoltre, alcuni pazienti con MPN JAK2V617F non rispondono a IFN e il DMR si osserva solo in circa il 20% dei pazienti con JAK2V617F. Infine, sono necessari trattamenti a lungo termine (2-5 anni) per ottenere un DMR, compromettendone il successo a causa della possibile tossicità a lungo termine.
Le ragioni alla base del fallimento, della resistenza ai farmaci, della risposta molecolare eterogenea nei pazienti CALRmut e dei lunghi ritardi per DMR nei pazienti JAK2V617F rimangono poco chiare, in gran parte perché i meccanismi con cui l'IFNα prende di mira i cloni maligni MPN rimangono sfuggenti.
Non è possibile ottenere un miglioramento significativo dell'efficacia dell'IFN senza la ricerca clinica e di base. Quindi le nostre due linee di ricerca sono a
- Comprendere come l'IFNα si rivolge specificamente alle HSC neoplastiche
- Prevedere e migliorare la risposta del paziente durante la terapia con IFNα
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Descrizione dettagliata
Le neoplasie mieloproliferative (MPN) negative per BCR-ABL classiche includono: policitemia vera (PV), trombocitemia essenziale (ET) e mielofibrosi primaria (PMF). Sono neoplasie mieloidi risultanti dalla trasformazione di una cellula staminale ematopoietica multipotente (HSC) causata da mutazioni che attivano la via JAK2/STAT. La mutazione più diffusa è JAK2V617F. Mutazioni della calreticulina di tipo 1 e di tipo 2 (CALR) e del recettore della trombopoietina (MPL) sono state osservate anche in ET e PMF. Sono state trovate anche ulteriori mutazioni non-MPN che interessano percorsi diversi, in particolare nella PMF, e sono coinvolte nell'inizio della malattia e/o nei cambiamenti fenotipici e/o nella progressione della malattia e/o nella risposta alla terapia.
C'è un evidente e urgente bisogno di una terapia efficace per MPN. In particolare, la PMF rimane senza trattamento curativo, tranne che il trapianto allogenico di HSC e gli inibitori JAK hanno effetti limitati sull'esito della malattia. Tra i nuovi approcci terapeutici, Peg-IFNα2a (IFN) è il più efficiente e ospita sia alti tassi di risposte ematologiche nei pazienti JAK2V617F e CALRmut MPN sia alcune risposte molecolari principalmente nei pazienti JAK2V617F, inclusa la risposta molecolare profonda (DMR). Tuttavia, diversi studi, incluso il nostro, hanno dimostrato che la risposta molecolare dell'IFN nei pazienti con CALRmut è eterogenea e complessivamente molto inferiore rispetto ai pazienti con JAK2V617F. Inoltre, alcuni pazienti con MPN JAK2V617F non rispondono a IFN e il DMR si osserva solo in circa il 20% dei pazienti con JAK2V617F. Infine, sono necessari trattamenti a lungo termine (2-5 anni) per ottenere un DMR, compromettendone il successo a causa della possibile tossicità a lungo termine.
Le ragioni alla base del fallimento, della resistenza ai farmaci, della risposta molecolare eterogenea nei pazienti CALRmut e dei lunghi ritardi per DMR nei pazienti JAK2V617F rimangono poco chiare, in gran parte perché i meccanismi con cui l'IFNα prende di mira i cloni maligni MPN rimangono sfuggenti.
Non è possibile ottenere un miglioramento significativo dell'efficacia dell'IFN senza la ricerca clinica e di base. Quindi le nostre due linee di ricerca sono a
- Comprendere come l'IFNα si rivolge specificamente alle HSC neoplastiche
- Prevedere e migliorare la risposta del paziente durante la terapia con IFNα
L'obiettivo principale dal punto di vista di base è disegnare l'architettura clonale delle cellule mutate dei pazienti durante il trattamento con IFN per fornire una migliore comprensione del meccanismo d'azione dell'IFN in MPN: ovvero come e a quale livello di differenziazione ematopoietica il L'IFN si rivolge specificamente alle HSC JAK2V617F e se e perché non ha lo stesso effetto sui pazienti CALRm.
Il nostro precedente studio clinico che utilizzava dati sull'architettura clonale combinati con un modello matematico indica che l'esaurimento dell'HSC JAK2V617F mediante differenziazione in progenitori e quindi la perdita dell'auto-rinnovamento può essere il meccanismo critico per l'eradicazione della malattia JAK2V617F da parte dell'IFN. Speriamo di confermare questa ipotesi in un numero maggiore di pazienti e di comprendere le basi degli effetti differenziali delle mutazioni JAK2V617F e CALRm sulle cellule staminali che danno inizio alla malattia.
Gli obiettivi secondari sono:
- Convalidare la resistenza dei pazienti CALRm al trattamento con IFN in un numero maggiore di pazienti. Inoltre, alte dosi di IFN, contrariamente ai pazienti JAK2V617F, sono deleterie per la risposta molecolare per ragioni che restano da capire.
- Indagare il ruolo delle mutazioni associate nelle risposte molecolari indotte da IFN.
È stato dimostrato che i trattamenti con IFN promuovono la comparsa di cloni (JAK2V617F positivi o JAK2V617F negativi) con mutazioni aggiuntive, come Tet2 o DNMT3a, che potrebbero essere responsabili della resistenza al trattamento con IFN . Vorremmo aumentare il numero di pazienti e il loro follow-up per analizzare il ruolo di queste mutazioni nel successo del trattamento. Inoltre, queste mutazioni aggiuntive (nuove o selezionate dal trattamento) potrebbero favorire lo sviluppo di patologie più gravi (MF, MDS, AML) rispetto a PV o TE e sarebbero importanti da monitorare nel follow-up dei pazienti trattati con IFN.
-Esplorare in vitro l'effetto dell'IFN in combinazione con altre molecole sulle cellule primarie dei pazienti. In effetti, il nostro studio di base ha già mostrato il coinvolgimento della PML nel meccanismo d'azione dell'IFN e abbiamo scoperto che l'arsenico potenzia notevolmente l'effetto dell'IFN. Indagheremo a fondo con quali esatti meccanismi.
Tutti i dati saranno raccolti in pazienti prima del trattamento con IFN o durante il trattamento con IFN e i dati saranno raccolti mediante genotipizzazione di singole cellule di colonie e/o mediante sequenziamento di RNA di singola cellula accoppiato alla genotipizzazione di mutazioni e/o saggi in vitro.
Tipo di studio
Iscrizione (Anticipato)
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Isabelle Plo, PhD
- Numero di telefono: +33 1 42 11 54 93
- Email: isabelle.plo@gustaveroussy.fr
Backup dei contatti dello studio
- Nome: Léa Durix, MD,PhD
- Email: lea.durix@gustaveroussy.fr
Luoghi di studio
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Ile De France
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Villejuif, Ile De France, Francia, 94805
- Reclutamento
- Inserm U1287
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Contatto:
- Isabelle Plo, PhD
- Numero di telefono: +33 1 42 11 54 93
- Email: isabelle.plo@gustaveroussy.fr
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Contatto:
- Léa Durix
- Numero di telefono: +33 1 42 11 54 93
- Email: lea.durix@gustaveroussy.fr
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Investigatore principale:
- Florence Pasquier, MD, PhD
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Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
- Adulto più anziano
Accetta volontari sani
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Maschio o femmina adulto di età pari o superiore a 18 anni
- La diagnosi di MPN è stata precedentemente stabilita dal medico di riferimento e quel medico avrà deciso di trattare con IFN pegilato. I pazienti saranno trattati o non trattati al momento dell'inclusione e potrebbero essere pazienti di nuova diagnosi.
- Questi pazienti saranno affiliati o beneficeranno di un piano di previdenza sociale
- Per tutti questi pazienti verranno raccolti ulteriori 20-40 mL ad eccezione di alcuni pazienti PV che sono trattati convenzionalmente mediante flebotomia. In questo caso, raccoglieremo sacche di sangue da questi pazienti. I volumi variano tra 300 e 450 ml di sangue a seconda del peso e della corporatura dei pazienti.
- Includeremo anche in questo protocollo qualsiasi paziente il cui MPN, PV, TE o MF, sarà progredito verso la leucemia acuta (AL) durante il trattamento. Questi saranno pazienti con AP di MPN (MPN può anche progredire in leucemia mieloide acuta (AML) mediante trasformazione acuta (AT) di MPN).
- Paziente con consenso informato firmato
Criteri di esclusione:
- Il criterio di non inclusione riguarda l'anemia di cui possono soffrire alcuni pazienti affetti da MF. Pertanto, i pazienti con anemia (Hb<10g) o dipendenza da trasfusioni (≥ 1 globuli rossi concentrati al mese) al momento della visita di monitoraggio di riferimento non sono inclusi nella ricerca.
- Persone sotto tutela giudiziaria, tutela o curatela
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
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Architettura clonale dei progenitori emopoietici dei pazienti
Lasso di tempo: Durante 5 anni dal giorno 0 del trattamento con IFN, da 3 a 4 volte all'anno
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I campioni di sangue vengono elaborati per separare le cellule mature (granulociti) dai progenitori (marcatore CD34+).
I progenitori sono isolati e separati da FACS secondo il loro fenotipo CD34+/CD38±/CD90± più o meno maturo e poi coltivati per 14 giorni a livello di singola cellula.
Le cellule risultanti dalla loro differenziazione in coltura vengono lisate e il loro DNA viene isolato e conservato per l'analisi PCR o NGS al fine di definire il loro profilo mutazionale.
Una volta stabilita la genotipizzazione di queste cellule, il DNA viene distrutto e non rimane nulla del campione biologico iniziale.
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Durante 5 anni dal giorno 0 del trattamento con IFN, da 3 a 4 volte all'anno
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Sequenziamento dell'RNA a singola cellula accoppiato alla genotipizzazione
Lasso di tempo: al giorno 0 del trattamento con IFN e in altri due momenti (tra 3 e 24 mesi di trattamento)
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I campioni di sangue vengono elaborati per separare le cellule mature (granulociti) dai progenitori (marcatore CD34+).
I progenitori sono isolati e sottoposti a scRNA-seq utilizzando tecniche di lettura lunga (PromethION).
In ogni cellula verranno analizzate le traiettorie del differenziamento emopoietico e del sequenziamento dell'RNA
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al giorno 0 del trattamento con IFN e in altri due momenti (tra 3 e 24 mesi di trattamento)
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Cultura dei progenitori in vitro
Lasso di tempo: per 5 anni dal giorno 0
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I campioni di sangue vengono elaborati per separare le cellule mature (granulociti) dai progenitori (marcatore CD34+).
I progenitori (CD34+) vengono poi coltivati in terreno privo di siero con citochine o in terreno semisolido in presenza di IFN da solo o in associazione.
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per 5 anni dal giorno 0
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Collaboratori e investigatori
Investigatori
- Investigatore principale: Florence Pasquier, MD,PhD, florence.pasquier@gustaveroussy.fr
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- James C, Ugo V, Le Couedic JP, Staerk J, Delhommeau F, Lacout C, Garcon L, Raslova H, Berger R, Bennaceur-Griscelli A, Villeval JL, Constantinescu SN, Casadevall N, Vainchenker W. A unique clonal JAK2 mutation leading to constitutive signalling causes polycythaemia vera. Nature. 2005 Apr 28;434(7037):1144-8. doi: 10.1038/nature03546.
- Klampfl T, Gisslinger H, Harutyunyan AS, Nivarthi H, Rumi E, Milosevic JD, Them NC, Berg T, Gisslinger B, Pietra D, Chen D, Vladimer GI, Bagienski K, Milanesi C, Casetti IC, Sant'Antonio E, Ferretti V, Elena C, Schischlik F, Cleary C, Six M, Schalling M, Schonegger A, Bock C, Malcovati L, Pascutto C, Superti-Furga G, Cazzola M, Kralovics R. Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms. N Engl J Med. 2013 Dec 19;369(25):2379-90. doi: 10.1056/NEJMoa1311347. Epub 2013 Dec 10.
- Mascarenhas J, Kosiorek HE, Prchal JT, Rambaldi A, Berenzon D, Yacoub A, Harrison CN, McMullin MF, Vannucchi AM, Ewing J, O'Connell CL, Kiladjian JJ, Mead AJ, Winton EF, Leibowitz DS, De Stefano V, Arcasoy MO, Kessler CM, Catchatourian R, Rondelli D, Silver RT, Bacigalupo A, Nagler A, Kremyanskaya M, Levine MF, Arango Ossa JE, McGovern E, Sandy L, Salama ME, Najfeld V, Tripodi J, Farnoud N, Penson AV, Weinberg RS, Price L, Goldberg JD, Barbui T, Marchioli R, Tognoni G, Rampal RK, Mesa RA, Dueck AC, Hoffman R. A randomized phase 3 trial of interferon-alpha vs hydroxyurea in polycythemia vera and essential thrombocythemia. Blood. 2022 May 12;139(19):2931-2941. doi: 10.1182/blood.2021012743.
- Mosca M, Hermange G, Tisserand A, Noble R, Marzac C, Marty C, Le Sueur C, Campario H, Vertenoeil G, El-Khoury M, Catelain C, Rameau P, Gella C, Lenglet J, Casadevall N, Favier R, Solary E, Cassinat B, Kiladjian JJ, Constantinescu SN, Pasquier F, Hochberg ME, Raslova H, Villeval JL, Girodon F, Vainchenker W, Cournede PH, Plo I. Inferring the dynamics of mutated hematopoietic stem and progenitor cells induced by IFNalpha in myeloproliferative neoplasms. Blood. 2021 Dec 2;138(22):2231-2243. doi: 10.1182/blood.2021010986.
- Dagher T, Maslah N, Edmond V, Cassinat B, Vainchenker W, Giraudier S, Pasquier F, Verger E, Niwa-Kawakita M, Lallemand-Breitenbach V, Plo I, Kiladjian JJ, Villeval JL, de The H. JAK2V617F myeloproliferative neoplasm eradication by a novel interferon/arsenic therapy involves PML. J Exp Med. 2021 Feb 1;218(2):e20201268. doi: 10.1084/jem.20201268.
- Gisslinger H, Klade C, Georgiev P, Krochmalczyk D, Gercheva-Kyuchukova L, Egyed M, Rossiev V, Dulicek P, Illes A, Pylypenko H, Sivcheva L, Mayer J, Yablokova V, Krejcy K, Grohmann-Izay B, Hasselbalch HC, Kralovics R, Kiladjian JJ; PROUD-PV Study Group. Ropeginterferon alfa-2b versus standard therapy for polycythaemia vera (PROUD-PV and CONTINUATION-PV): a randomised, non-inferiority, phase 3 trial and its extension study. Lancet Haematol. 2020 Mar;7(3):e196-e208. doi: 10.1016/S2352-3026(19)30236-4. Epub 2020 Jan 31. Erratum In: Lancet Haematol. 2020 Feb 25;:
- Verger E, Cassinat B, Chauveau A, Dosquet C, Giraudier S, Schlageter MH, Ianotto JC, Yassin MA, Al-Dewik N, Carillo S, Legouffe E, Ugo V, Chomienne C, Kiladjian JJ. Clinical and molecular response to interferon-alpha therapy in essential thrombocythemia patients with CALR mutations. Blood. 2015 Dec 10;126(24):2585-91. doi: 10.1182/blood-2015-07-659060. Epub 2015 Oct 20.
- Knudsen TA, Skov V, Stevenson K, Werner L, Duke W, Laurore C, Gibson CJ, Nag A, Thorner AR, Wollison B, Hansen DL, Ellervik C, El Fassi D, de Stricker K, Ocias LF, Brabrand M, Bjerrum OW, Overgaard UM, Frederiksen M, Kristensen TK, Kruse TA, Thomassen M, Mourits-Andersen T, Severinsen MT, Stentoft J, Starklint J, Neuberg DS, Kjaer L, Larsen TS, Hasselbalch HC, Lindsley RC, Mullally A. Genomic profiling of a randomized trial of interferon-alpha vs hydroxyurea in MPN reveals mutation-specific responses. Blood Adv. 2022 Apr 12;6(7):2107-2119. doi: 10.1182/bloodadvances.2021004856.
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Termini relativi a questo studio
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- C21-46
- 2021-A03067-34 (Altro identificatore: INSERM)
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