脂質酸化を促進する新規な骨格筋由来因子の同定 (Columbus) (Columbus)
2026年3月25日 更新者:AdventHealth Translational Research Institute
骨格筋と脂肪組織の両方で脂質酸化を促進する新規な骨格筋由来因子の同定
この研究の目的は、運動の有益な効果に関連する筋肉から分泌される特定のタンパク質や遺伝コードなどの要因を研究者が特定するのに役立つデータを収集することです。
調査の概要
詳細な説明
研究の目的:
- ミトコンドリア容量および脂肪酸化の相対的尺度の高低に関連する、筋肉におけるメッセンジャーリボ核酸 (mRNA)/マイクロリボ核酸 (miRNA) 発現の特定の変化を特定する。
- 筋肉の代謝反応に特に関連し、最初の 1 回の運動後に存在する分泌因子/miRNA を同定する。
- 適切な臨床サンプル (筋肉および脂肪組織、血漿/血清) を収集し、in vivo および in vitro での発見努力を通じて、酸素消費量/ミトコンドリア含有量の変化に関連するミオカインの検証を可能にします。
研究の種類
介入
入学 (推定)
56
段階
- 適用できない
連絡先と場所
このセクションには、調査を実施する担当者の連絡先の詳細と、この調査が実施されている場所に関する情報が記載されています。
研究場所
-
-
Florida
-
Orlando、Florida、アメリカ、32804
- Translational Research Institute for Metabolism and Diabetes
-
-
参加基準
研究者は、適格基準と呼ばれる特定の説明に適合する人を探します。これらの基準のいくつかの例は、人の一般的な健康状態または以前の治療です。
適格基準
就学可能な年齢
18年~40年 (大人)
健康ボランティアの受け入れ
はい
説明
包含基準:
すべてのグループに適用
- 18歳から40歳までの健康な男女。
- 各採血の48時間前にアルコールとカフェインの摂取を控える意思がある
グループ 1 に適用
- BMI 22 ~ 29.9 kg/m2
- 定期的な運動プログラムに参加していない
- 学習期間中は毎日運動する意欲がある
グループ2に適用
- BMI 22 ~ 29.9 kg/m2
最大酸素摂取量 (VO2max) ≥ 45 ml/kg 除脂肪体重
/分
- 週に 3 回、少なくとも 1.5 時間の中程度から激しい強度の有酸素運動に取り組む
グループ 3 に適用
- BMI ≥ 30 kg/m2 および体重 ≤ 350 lbs
- 定期的な運動プログラムに参加していない
除外基準:
すべてのグループに適用可能
- 2 型糖尿病の歴史
- 継続的な静脈血サンプル採取のための「不利な解剖学」
- 安静時心電図の異常
- 重大な腎疾患、心臓疾患、肝臓疾患、肺疾患、または神経疾患(投薬によりベースライン血圧が140/90未満の場合、高血圧は許容されます)
- エネルギー代謝または体重に影響を与えることが知られている薬物の使用: オルリスタット、シブトラミン、エフェドリン、フェニルプロパノールアミン、コルチコステロンなどが含まれますが、これらに限定されません。
- 抗血小板薬または抗血小板薬による現在の治療が、検査のために安全に中止できない
- 経口避妊薬またはホルモン補充療法の新規使用(安定した投与計画で3か月未満)
- アルコールまたはその他の薬物乱用
- 過去3か月以内に喫煙している
- 現在妊娠中または妊娠している女性、または過去 12 か月以内に現在または授乳中である女性(少なくとも)。
- 子供の幸福を損なう研究への親の参加[パートナーまたは関係のある介護者がいない]
- 代謝率測定の48時間前にカフェインまたはアルコールを控えたくない、または控えることができない
- 肝機能検査の増加
- 体内に埋め込まれたロッド、手術用クリップなど、体組成測定や磁気共鳴分光法を妨げる可能性のある金属製の物体
- ニューヨーク心臓協会のうっ血性心不全のクラス
- 深部静脈血栓症または肺塞栓症の病歴
- 重篤な静脈瘤
- 過去 2 か月以内に血球数の異常/貧血、または献血があった
- 過去3か月以内に腹部、骨盤、または下肢の大手術を受けた
- 過去3年以内に肥満手術または脂肪吸引を受けたことがある
- がん(同時化学療法の有無にかかわらず活動性悪性腫瘍)
- リウマチ性疾患
- 四肢のバイパス移植
- 既知の遺伝的要因(第 V 因子ライデンなど)または凝固亢進状態
- 末梢動脈疾患または末梢血管疾患、または間欠性跛行と診断されている
- 原発性深部静脈血栓症または肺塞栓症の家族歴
- 末梢神経障害
- 閉所恐怖症
- 頻繁な夜間排尿および/または睡眠時無呼吸
- 研究者の意見において、参加者の安全性、データの完全性、またはトレーニングプロトコルを完了する参加者の能力を損なう条件の存在
グループ2に適用
- 歩行の問題
- 大うつ病
- 摂食障害の存在、または研究の完了を妨げる可能性のある食事態度/行動
- プロトコールを完了する気がない、または完了できない
グループ 3 に適用
- HbA1c ≧ 6.5% (○)
研究計画
このセクションでは、研究がどのように設計され、研究が何を測定しているかなど、研究計画の詳細を提供します。
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:基礎科学
- 割り当て:非ランダム化
- 介入モデル:並列代入
- マスキング:なし(オープンラベル)
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
|---|---|
|
実験的:グループ 1 - 定期的な運動
交互インターバルトレーニングと有酸素トレーニングと運動
|
各エクササイズセッションの前後に、それぞれ5分間のウォームアップと5分間のクールダウン。
インターバルトレーニングと有酸素トレーニングを日替わりで行います。
インターバルトレーニングはアップライトエアロバイクで行われ、有酸素トレーニングはトレッドミルで行われます。
インターバルトレーニングは、高強度の 5 分間の運動と低強度の 4 分間を交互に行い、合計 45 分間行います。
強度は毎週増加します。
有酸素トレーニングのコンポーネントは中程度の強度に固定されますが、第 3 週と最終週には毎週 45 分から 75 分から 90 分へと継続時間が増加します。
|
|
介入なし:グループ 2 - アスリートのエクササイズ
アスリートには一切の介入が与えられない
|
|
|
介入なし:グループ 3 - 肥満で運動なし
肥満グループは介入を受けられません
|
この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
ミトコンドリア容量の変化を測定する
時間枠:ベースライン (-6 日目)、18 日目
|
その違いは、肥満、痩せ型、運動能力のある参加者で測定されます。 ホスホクレアチン (PCr) 回復時定数と安静時の酸素供給された筋肉の PCr レベルを使用して、最大ミトコンドリア容量を計算します。 |
ベースライン (-6 日目)、18 日目
|
二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
タンパク質の発現変化を測定する
時間枠:ベースライン (-6 日目)、0 日目、5 日目、12 日目、18 日目
|
その違いは、肥満、痩せ型、運動能力のある参加者で測定されます。 これは、ベースライン時、運動前後に採取された筋生検および/または血漿サンプルから採取されます。 |
ベースライン (-6 日目)、0 日目、5 日目、12 日目、18 日目
|
|
MRNA/miRNAレベルの変化を測定
時間枠:ベースライン (-6 日目)、0 日目、5 日目、12 日目、18 日目
|
その違いは、肥満、痩せ型、運動能力のある参加者で測定されます。 これは、ベースライン時、運動前後に採取された筋生検および/または血漿サンプルから採取されます。 |
ベースライン (-6 日目)、0 日目、5 日目、12 日目、18 日目
|
協力者と研究者
ここでは、この調査に関係する人々や組織を見つけることができます。
捜査官
- 主任研究者:Lauren Sparks, PhD、Translational Research Institute for Metabolism and Diabetes
出版物と役立つリンク
研究に関する情報を入力する責任者は、自発的にこれらの出版物を提供します。これらは、研究に関連するあらゆるものに関するものである可能性があります。
一般刊行物
- Fabian MR, Sonenberg N, Filipowicz W. Regulation of mRNA translation and stability by microRNAs. Annu Rev Biochem. 2010;79:351-79. doi: 10.1146/annurev-biochem-060308-103103.
- Jubrias SA, Crowther GJ, Shankland EG, Gronka RK, Conley KE. Acidosis inhibits oxidative phosphorylation in contracting human skeletal muscle in vivo. J Physiol. 2003 Dec 1;553(Pt 2):589-99. doi: 10.1113/jphysiol.2003.045872. Epub 2003 Sep 26.
- Mitchell PS, Parkin RK, Kroh EM, Fritz BR, Wyman SK, Pogosova-Agadjanyan EL, Peterson A, Noteboom J, O'Briant KC, Allen A, Lin DW, Urban N, Drescher CW, Knudsen BS, Stirewalt DL, Gentleman R, Vessella RL, Nelson PS, Martin DB, Tewari M. Circulating microRNAs as stable blood-based markers for cancer detection. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008 Jul 29;105(30):10513-8. doi: 10.1073/pnas.0804549105. Epub 2008 Jul 28.
- Pedersen BK, Febbraio MA. Muscles, exercise and obesity: skeletal muscle as a secretory organ. Nat Rev Endocrinol. 2012 Apr 3;8(8):457-65. doi: 10.1038/nrendo.2012.49.
- Coskun T, Bina HA, Schneider MA, Dunbar JD, Hu CC, Chen Y, Moller DE, Kharitonenkov A. Fibroblast growth factor 21 corrects obesity in mice. Endocrinology. 2008 Dec;149(12):6018-27. doi: 10.1210/en.2008-0816. Epub 2008 Aug 7.
- Tuomilehto J, Lindstrom J, Eriksson JG, Valle TT, Hamalainen H, Ilanne-Parikka P, Keinanen-Kiukaanniemi S, Laakso M, Louheranta A, Rastas M, Salminen V, Uusitupa M; Finnish Diabetes Prevention Study Group. Prevention of type 2 diabetes mellitus by changes in lifestyle among subjects with impaired glucose tolerance. N Engl J Med. 2001 May 3;344(18):1343-50. doi: 10.1056/NEJM200105033441801.
- Nocon M, Hiemann T, Muller-Riemenschneider F, Thalau F, Roll S, Willich SN. Association of physical activity with all-cause and cardiovascular mortality: a systematic review and meta-analysis. Eur J Cardiovasc Prev Rehabil. 2008 Jun;15(3):239-46. doi: 10.1097/HJR.0b013e3282f55e09.
- Pedersen BK, Febbraio MA. Muscle as an endocrine organ: focus on muscle-derived interleukin-6. Physiol Rev. 2008 Oct;88(4):1379-406. doi: 10.1152/physrev.90100.2007.
- Pedersen BK, Fischer CP. Beneficial health effects of exercise--the role of IL-6 as a myokine. Trends Pharmacol Sci. 2007 Apr;28(4):152-6. doi: 10.1016/j.tips.2007.02.002. Epub 2007 Feb 28.
- Pedersen BK, Steensberg A, Fischer C, Keller C, Keller P, Plomgaard P, Febbraio M, Saltin B. Searching for the exercise factor: is IL-6 a candidate? J Muscle Res Cell Motil. 2003;24(2-3):113-9. doi: 10.1023/a:1026070911202.
- MacIntyre DL, Sorichter S, Mair J, Berg A, McKenzie DC. Markers of inflammation and myofibrillar proteins following eccentric exercise in humans. Eur J Appl Physiol. 2001 Mar;84(3):180-6. doi: 10.1007/s004210170002.
- Nielsen AR, Pedersen BK. The biological roles of exercise-induced cytokines: IL-6, IL-8, and IL-15. Appl Physiol Nutr Metab. 2007 Oct;32(5):833-9. doi: 10.1139/H07-054.
- Krabbe KS, Nielsen AR, Krogh-Madsen R, Plomgaard P, Rasmussen P, Erikstrup C, Fischer CP, Lindegaard B, Petersen AM, Taudorf S, Secher NH, Pilegaard H, Bruunsgaard H, Pedersen BK. Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) and type 2 diabetes. Diabetologia. 2007 Feb;50(2):431-8. doi: 10.1007/s00125-006-0537-4. Epub 2006 Dec 7.
- Arner P, Pettersson A, Mitchell PJ, Dunbar JD, Kharitonenkov A, Ryden M. FGF21 attenuates lipolysis in human adipocytes - a possible link to improved insulin sensitivity. FEBS Lett. 2008 May 28;582(12):1725-30. doi: 10.1016/j.febslet.2008.04.038. Epub 2008 May 5.
- Badman MK, Pissios P, Kennedy AR, Koukos G, Flier JS, Maratos-Flier E. Hepatic fibroblast growth factor 21 is regulated by PPARalpha and is a key mediator of hepatic lipid metabolism in ketotic states. Cell Metab. 2007 Jun;5(6):426-37. doi: 10.1016/j.cmet.2007.05.002.
- Inagaki T, Dutchak P, Zhao G, Ding X, Gautron L, Parameswara V, Li Y, Goetz R, Mohammadi M, Esser V, Elmquist JK, Gerard RD, Burgess SC, Hammer RE, Mangelsdorf DJ, Kliewer SA. Endocrine regulation of the fasting response by PPARalpha-mediated induction of fibroblast growth factor 21. Cell Metab. 2007 Jun;5(6):415-25. doi: 10.1016/j.cmet.2007.05.003.
- Kharitonenkov A, Shiyanova TL, Koester A, Ford AM, Micanovic R, Galbreath EJ, Sandusky GE, Hammond LJ, Moyers JS, Owens RA, Gromada J, Brozinick JT, Hawkins ED, Wroblewski VJ, Li DS, Mehrbod F, Jaskunas SR, Shanafelt AB. FGF-21 as a novel metabolic regulator. J Clin Invest. 2005 Jun;115(6):1627-35. doi: 10.1172/JCI23606. Epub 2005 May 2.
- Kharitonenkov A, Wroblewski VJ, Koester A, Chen YF, Clutinger CK, Tigno XT, Hansen BC, Shanafelt AB, Etgen GJ. The metabolic state of diabetic monkeys is regulated by fibroblast growth factor-21. Endocrinology. 2007 Feb;148(2):774-81. doi: 10.1210/en.2006-1168. Epub 2006 Oct 26.
- Lundasen T, Hunt MC, Nilsson LM, Sanyal S, Angelin B, Alexson SE, Rudling M. PPARalpha is a key regulator of hepatic FGF21. Biochem Biophys Res Commun. 2007 Aug 24;360(2):437-40. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.06.068. Epub 2007 Jun 21.
- Wente W, Efanov AM, Brenner M, Kharitonenkov A, Koster A, Sandusky GE, Sewing S, Treinies I, Zitzer H, Gromada J. Fibroblast growth factor-21 improves pancreatic beta-cell function and survival by activation of extracellular signal-regulated kinase 1/2 and Akt signaling pathways. Diabetes. 2006 Sep;55(9):2470-8. doi: 10.2337/db05-1435.
- Mashili FL, Austin RL, Deshmukh AS, Fritz T, Caidahl K, Bergdahl K, Zierath JR, Chibalin AV, Moller DE, Kharitonenkov A, Krook A. Direct effects of FGF21 on glucose uptake in human skeletal muscle: implications for type 2 diabetes and obesity. Diabetes Metab Res Rev. 2011 Mar;27(3):286-97. doi: 10.1002/dmrr.1177.
- Lee MS, Choi SE, Ha ES, An SY, Kim TH, Han SJ, Kim HJ, Kim DJ, Kang Y, Lee KW. Fibroblast growth factor-21 protects human skeletal muscle myotubes from palmitate-induced insulin resistance by inhibiting stress kinase and NF-kappaB. Metabolism. 2012 Aug;61(8):1142-51. doi: 10.1016/j.metabol.2012.01.012. Epub 2012 Mar 6.
- Bostrom P, Wu J, Jedrychowski MP, Korde A, Ye L, Lo JC, Rasbach KA, Bostrom EA, Choi JH, Long JZ, Kajimura S, Zingaretti MC, Vind BF, Tu H, Cinti S, Hojlund K, Gygi SP, Spiegelman BM. A PGC1-alpha-dependent myokine that drives brown-fat-like development of white fat and thermogenesis. Nature. 2012 Jan 11;481(7382):463-8. doi: 10.1038/nature10777.
- Goodman MN. Tumor necrosis factor induces skeletal muscle protein breakdown in rats. Am J Physiol. 1991 May;260(5 Pt 1):E727-30. doi: 10.1152/ajpendo.1991.260.5.E727.
- Li YP, Chen Y, John J, Moylan J, Jin B, Mann DL, Reid MB. TNF-alpha acts via p38 MAPK to stimulate expression of the ubiquitin ligase atrogin1/MAFbx in skeletal muscle. FASEB J. 2005 Mar;19(3):362-70. doi: 10.1096/fj.04-2364com.
- Williamson DL, Kimball SR, Jefferson LS. Acute treatment with TNF-alpha attenuates insulin-stimulated protein synthesis in cultures of C2C12 myotubes through a MEK1-sensitive mechanism. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2005 Jul;289(1):E95-104. doi: 10.1152/ajpendo.00397.2004. Epub 2005 Feb 8.
- Nieman DC, Henson DA, Gojanovich G, Davis JM, Murphy EA, Mayer EP, Pearce S, Dumke CL, Utter AC, McAnulty SR, McAnulty LS. Influence of carbohydrate on immune function following 2 h cycling. Res Sports Med. 2006 Jul-Sep;14(3):225-37. doi: 10.1080/15438620600854793.
- Nieman DC, Davis JM, Henson DA, Walberg-Rankin J, Shute M, Dumke CL, Utter AC, Vinci DM, Carson JA, Brown A, Lee WJ, McAnulty SR, McAnulty LS. Carbohydrate ingestion influences skeletal muscle cytokine mRNA and plasma cytokine levels after a 3-h run. J Appl Physiol (1985). 2003 May;94(5):1917-25. doi: 10.1152/japplphysiol.01130.2002. Epub 2003 Jan 17.
- Thomas M, Langley B, Berry C, Sharma M, Kirk S, Bass J, Kambadur R. Myostatin, a negative regulator of muscle growth, functions by inhibiting myoblast proliferation. J Biol Chem. 2000 Dec 22;275(51):40235-43. doi: 10.1074/jbc.M004356200.
- McPherron AC, Lawler AM, Lee SJ. Regulation of skeletal muscle mass in mice by a new TGF-beta superfamily member. Nature. 1997 May 1;387(6628):83-90. doi: 10.1038/387083a0.
- McPherron AC, Lee SJ. Suppression of body fat accumulation in myostatin-deficient mice. J Clin Invest. 2002 Mar;109(5):595-601. doi: 10.1172/JCI13562.
- Tu P, Bhasin S, Hruz PW, Herbst KL, Castellani LW, Hua N, Hamilton JA, Guo W. Genetic disruption of myostatin reduces the development of proatherogenic dyslipidemia and atherogenic lesions in Ldlr null mice. Diabetes. 2009 Aug;58(8):1739-48. doi: 10.2337/db09-0349. Epub 2009 Jun 9.
- Zoll J, Sanchez H, N'Guessan B, Ribera F, Lampert E, Bigard X, Serrurier B, Fortin D, Geny B, Veksler V, Ventura-Clapier R, Mettauer B. Physical activity changes the regulation of mitochondrial respiration in human skeletal muscle. J Physiol. 2002 Aug 15;543(Pt 1):191-200. doi: 10.1113/jphysiol.2002.019661.
- Coggan AR, Spina RJ, King DS, Rogers MA, Brown M, Nemeth PM, Holloszy JO. Histochemical and enzymatic comparison of the gastrocnemius muscle of young and elderly men and women. J Gerontol. 1992 May;47(3):B71-6. doi: 10.1093/geronj/47.3.b71.
- Proctor DN, Sinning WE, Walro JM, Sieck GC, Lemon PW. Oxidative capacity of human muscle fiber types: effects of age and training status. J Appl Physiol (1985). 1995 Jun;78(6):2033-8. doi: 10.1152/jappl.1995.78.6.2033.
- Hoppeler H, Luthi P, Claassen H, Weibel ER, Howald H. The ultrastructure of the normal human skeletal muscle. A morphometric analysis on untrained men, women and well-trained orienteers. Pflugers Arch. 1973 Nov 28;344(3):217-32. doi: 10.1007/BF00588462. No abstract available.
- Tarnopolsky MA, Rennie CD, Robertshaw HA, Fedak-Tarnopolsky SN, Devries MC, Hamadeh MJ. Influence of endurance exercise training and sex on intramyocellular lipid and mitochondrial ultrastructure, substrate use, and mitochondrial enzyme activity. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2007 Mar;292(3):R1271-8. doi: 10.1152/ajpregu.00472.2006. Epub 2006 Nov 9.
- Larsen RG, Callahan DM, Foulis SA, Kent-Braun JA. In vivo oxidative capacity varies with muscle and training status in young adults. J Appl Physiol (1985). 2009 Sep;107(3):873-9. doi: 10.1152/japplphysiol.00260.2009. Epub 2009 Jun 25.
- Mettauer B, Zoll J, Sanchez H, Lampert E, Ribera F, Veksler V, Bigard X, Mateo P, Epailly E, Lonsdorfer J, Ventura-Clapier R. Oxidative capacity of skeletal muscle in heart failure patients versus sedentary or active control subjects. J Am Coll Cardiol. 2001 Oct;38(4):947-54. doi: 10.1016/s0735-1097(01)01460-7.
- Conley KE, Amara CE, Bajpeyi S, Costford SR, Murray K, Jubrias SA, Arakaki L, Marcinek DJ, Smith SR. Higher mitochondrial respiration and uncoupling with reduced electron transport chain content in vivo in muscle of sedentary versus active subjects. J Clin Endocrinol Metab. 2013 Jan;98(1):129-36. doi: 10.1210/jc.2012-2967. Epub 2012 Nov 12.
- Bogacka I, Ukropcova B, McNeil M, Gimble JM, Smith SR. Structural and functional consequences of mitochondrial biogenesis in human adipocytes in vitro. J Clin Endocrinol Metab. 2005 Dec;90(12):6650-6. doi: 10.1210/jc.2005-1024. Epub 2005 Oct 4.
- Sparks LM, Moro C, Ukropcova B, Bajpeyi S, Civitarese AE, Hulver MW, Thoresen GH, Rustan AC, Smith SR. Remodeling lipid metabolism and improving insulin responsiveness in human primary myotubes. PLoS One. 2011;6(7):e21068. doi: 10.1371/journal.pone.0021068. Epub 2011 Jul 8.
- Henningsen J, Rigbolt KT, Blagoev B, Pedersen BK, Kratchmarova I. Dynamics of the skeletal muscle secretome during myoblast differentiation. Mol Cell Proteomics. 2010 Nov;9(11):2482-96. doi: 10.1074/mcp.M110.002113. Epub 2010 Jul 14.
- Zhang Y, Liu D, Chen X, Li J, Li L, Bian Z, Sun F, Lu J, Yin Y, Cai X, Sun Q, Wang K, Ba Y, Wang Q, Wang D, Yang J, Liu P, Xu T, Yan Q, Zhang J, Zen K, Zhang CY. Secreted monocytic miR-150 enhances targeted endothelial cell migration. Mol Cell. 2010 Jul 9;39(1):133-44. doi: 10.1016/j.molcel.2010.06.010.
- Davidson-Moncada J, Papavasiliou FN, Tam W. MicroRNAs of the immune system: roles in inflammation and cancer. Ann N Y Acad Sci. 2010 Jan;1183:183-94. doi: 10.1111/j.1749-6632.2009.05121.x.
- Dang CV. Rethinking the Warburg effect with Myc micromanaging glutamine metabolism. Cancer Res. 2010 Feb 1;70(3):859-62. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-09-3556. Epub 2010 Jan 19.
- Chan SY, Loscalzo J. MicroRNA-210: a unique and pleiotropic hypoxamir. Cell Cycle. 2010 Mar 15;9(6):1072-83. doi: 10.4161/cc.9.6.11006. Epub 2010 Mar 15.
- Williams AH, Liu N, van Rooij E, Olson EN. MicroRNA control of muscle development and disease. Curr Opin Cell Biol. 2009 Jun;21(3):461-9. doi: 10.1016/j.ceb.2009.01.029. Epub 2009 Mar 9.
- Davidsen PK, Gallagher IJ, Hartman JW, Tarnopolsky MA, Dela F, Helge JW, Timmons JA, Phillips SM. High responders to resistance exercise training demonstrate differential regulation of skeletal muscle microRNA expression. J Appl Physiol (1985). 2011 Feb;110(2):309-17. doi: 10.1152/japplphysiol.00901.2010. Epub 2010 Oct 28.
- Sayed D, Hong C, Chen IY, Lypowy J, Abdellatif M. MicroRNAs play an essential role in the development of cardiac hypertrophy. Circ Res. 2007 Feb 16;100(3):416-24. doi: 10.1161/01.RES.0000257913.42552.23. Epub 2007 Jan 18.
- van Rooij E, Sutherland LB, Qi X, Richardson JA, Hill J, Olson EN. Control of stress-dependent cardiac growth and gene expression by a microRNA. Science. 2007 Apr 27;316(5824):575-9. doi: 10.1126/science.1139089. Epub 2007 Mar 22.
- Boutz PL, Chawla G, Stoilov P, Black DL. MicroRNAs regulate the expression of the alternative splicing factor nPTB during muscle development. Genes Dev. 2007 Jan 1;21(1):71-84. doi: 10.1101/gad.1500707.
- Chen JF, Mandel EM, Thomson JM, Wu Q, Callis TE, Hammond SM, Conlon FL, Wang DZ. The role of microRNA-1 and microRNA-133 in skeletal muscle proliferation and differentiation. Nat Genet. 2006 Feb;38(2):228-33. doi: 10.1038/ng1725. Epub 2005 Dec 25.
- Flynt AS, Li N, Thatcher EJ, Solnica-Krezel L, Patton JG. Zebrafish miR-214 modulates Hedgehog signaling to specify muscle cell fate. Nat Genet. 2007 Feb;39(2):259-63. doi: 10.1038/ng1953. Epub 2007 Jan 14.
- Kim HK, Lee YS, Sivaprasad U, Malhotra A, Dutta A. Muscle-specific microRNA miR-206 promotes muscle differentiation. J Cell Biol. 2006 Aug 28;174(5):677-87. doi: 10.1083/jcb.200603008. Epub 2006 Aug 21.
- McCarthy JJ, Esser KA. MicroRNA-1 and microRNA-133a expression are decreased during skeletal muscle hypertrophy. J Appl Physiol (1985). 2007 Jan;102(1):306-13. doi: 10.1152/japplphysiol.00932.2006. Epub 2006 Sep 28.
- Naguibneva I, Ameyar-Zazoua M, Polesskaya A, Ait-Si-Ali S, Groisman R, Souidi M, Cuvellier S, Harel-Bellan A. The microRNA miR-181 targets the homeobox protein Hox-A11 during mammalian myoblast differentiation. Nat Cell Biol. 2006 Mar;8(3):278-84. doi: 10.1038/ncb1373. Epub 2006 Feb 19.
- Safdar A, Abadi A, Akhtar M, Hettinga BP, Tarnopolsky MA. miRNA in the regulation of skeletal muscle adaptation to acute endurance exercise in C57Bl/6J male mice. PLoS One. 2009;4(5):e5610. doi: 10.1371/journal.pone.0005610. Epub 2009 May 19.
- Aoi W, Naito Y, Mizushima K, Takanami Y, Kawai Y, Ichikawa H, Yoshikawa T. The microRNA miR-696 regulates PGC-1alpha in mouse skeletal muscle in response to physical activity. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2010 Apr;298(4):E799-806. doi: 10.1152/ajpendo.00448.2009. Epub 2010 Jan 19.
- Radom-Aizik S, Zaldivar F Jr, Oliver S, Galassetti P, Cooper DM. Evidence for microRNA involvement in exercise-associated neutrophil gene expression changes. J Appl Physiol (1985). 2010 Jul;109(1):252-61. doi: 10.1152/japplphysiol.01291.2009. Epub 2010 Jan 28.
- Wessner B, Gryadunov-Masutti L, Tschan H, Bachl N, Roth E. Is there a role for microRNAs in exercise immunology? A synopsis of current literature and future developments. Exerc Immunol Rev. 2010;16:22-39.
- Baggish AL, Hale A, Weiner RB, Lewis GD, Systrom D, Wang F, Wang TJ, Chan SY. Dynamic regulation of circulating microRNA during acute exhaustive exercise and sustained aerobic exercise training. J Physiol. 2011 Aug 15;589(Pt 16):3983-94. doi: 10.1113/jphysiol.2011.213363. Epub 2011 Jun 20.
- Camera DM, Anderson MJ, Hawley JA, Carey AL. Short-term endurance training does not alter the oxidative capacity of human subcutaneous adipose tissue. Eur J Appl Physiol. 2010 May;109(2):307-16. doi: 10.1007/s00421-010-1356-3. Epub 2010 Jan 19.
- Costford SR, Bajpeyi S, Pasarica M, Albarado DC, Thomas SC, Xie H, Church TS, Jubrias SA, Conley KE, Smith SR. Skeletal muscle NAMPT is induced by exercise in humans. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2010 Jan;298(1):E117-26. doi: 10.1152/ajpendo.00318.2009. Epub 2009 Nov 3.
- Chesley A, Heigenhauser GJ, Spriet LL. Regulation of muscle glycogen phosphorylase activity following short-term endurance training. Am J Physiol. 1996 Feb;270(2 Pt 1):E328-35. doi: 10.1152/ajpendo.1996.270.2.E328.
- Spina RJ, Chi MM, Hopkins MG, Nemeth PM, Lowry OH, Holloszy JO. Mitochondrial enzymes increase in muscle in response to 7-10 days of cycle exercise. J Appl Physiol (1985). 1996 Jun;80(6):2250-4. doi: 10.1152/jappl.1996.80.6.2250.
- Freyssenet D. Energy sensing and regulation of gene expression in skeletal muscle. J Appl Physiol (1985). 2007 Feb;102(2):529-40. doi: 10.1152/japplphysiol.01126.2005. Epub 2006 Nov 2.
- Scarpulla RC, Vega RB, Kelly DP. Transcriptional integration of mitochondrial biogenesis. Trends Endocrinol Metab. 2012 Sep;23(9):459-66. doi: 10.1016/j.tem.2012.06.006. Epub 2012 Jul 18.
- Lowell BB. PPARgamma: an essential regulator of adipogenesis and modulator of fat cell function. Cell. 1999 Oct 29;99(3):239-42. doi: 10.1016/s0092-8674(00)81654-2. No abstract available.
- van Raalte DH, Li M, Pritchard PH, Wasan KM. Peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR)-alpha: a pharmacological target with a promising future. Pharm Res. 2004 Sep;21(9):1531-8. doi: 10.1023/b:pham.0000041444.06122.8d.
- Horowitz JF, Leone TC, Feng W, Kelly DP, Klein S. Effect of endurance training on lipid metabolism in women: a potential role for PPARalpha in the metabolic response to training. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2000 Aug;279(2):E348-55. doi: 10.1152/ajpendo.2000.279.2.E348.
- Luquet S, Lopez-Soriano J, Holst D, Fredenrich A, Melki J, Rassoulzadegan M, Grimaldi PA. Peroxisome proliferator-activated receptor delta controls muscle development and oxidative capability. FASEB J. 2003 Dec;17(15):2299-301. doi: 10.1096/fj.03-0269fje. Epub 2003 Oct 2.
- Mahoney DJ, Parise G, Melov S, Safdar A, Tarnopolsky MA. Analysis of global mRNA expression in human skeletal muscle during recovery from endurance exercise. FASEB J. 2005 Sep;19(11):1498-500. doi: 10.1096/fj.04-3149fje. Epub 2005 Jun 28.
- Mendham AE, Donges CE, Liberts EA, Duffield R. Effects of mode and intensity on the acute exercise-induced IL-6 and CRP responses in a sedentary, overweight population. Eur J Appl Physiol. 2011 Jun;111(6):1035-45. doi: 10.1007/s00421-010-1724-z. Epub 2010 Nov 19.
- Kim J, Heshka S, Gallagher D, Kotler DP, Mayer L, Albu J, Shen W, Freda PU, Heymsfield SB. Intermuscular adipose tissue-free skeletal muscle mass: estimation by dual-energy X-ray absorptiometry in adults. J Appl Physiol (1985). 2004 Aug;97(2):655-60. doi: 10.1152/japplphysiol.00260.2004. Epub 2004 Apr 16.
- Phielix E, Meex R, Moonen-Kornips E, Hesselink MK, Schrauwen P. Exercise training increases mitochondrial content and ex vivo mitochondrial function similarly in patients with type 2 diabetes and in control individuals. Diabetologia. 2010 Aug;53(8):1714-21. doi: 10.1007/s00125-010-1764-2. Epub 2010 Apr 27.
- Veksler VI, Kuznetsov AV, Sharov VG, Kapelko VI, Saks VA. Mitochondrial respiratory parameters in cardiac tissue: a novel method of assessment by using saponin-skinned fibers. Biochim Biophys Acta. 1987 Jun 29;892(2):191-6. doi: 10.1016/0005-2728(87)90174-5.
- Sparks LM, Xie H, Koza RA, Mynatt R, Hulver MW, Bray GA, Smith SR. A high-fat diet coordinately downregulates genes required for mitochondrial oxidative phosphorylation in skeletal muscle. Diabetes. 2005 Jul;54(7):1926-33. doi: 10.2337/diabetes.54.7.1926.
- Blei ML, Conley KE, Kushmerick MJ. Separate measures of ATP utilization and recovery in human skeletal muscle. J Physiol. 1993 Jun;465:203-22. doi: 10.1113/jphysiol.1993.sp019673.
- Matthews VB, Astrom MB, Chan MH, Bruce CR, Krabbe KS, Prelovsek O, Akerstrom T, Yfanti C, Broholm C, Mortensen OH, Penkowa M, Hojman P, Zankari A, Watt MJ, Bruunsgaard H, Pedersen BK, Febbraio MA. Brain-derived neurotrophic factor is produced by skeletal muscle cells in response to contraction and enhances fat oxidation via activation of AMP-activated protein kinase. Diabetologia. 2009 Jul;52(7):1409-18. doi: 10.1007/s00125-009-1364-1. Epub 2009 Apr 22.
- Nielsen S, Scheele C, Yfanti C, Akerstrom T, Nielsen AR, Pedersen BK, Laye MJ. Muscle specific microRNAs are regulated by endurance exercise in human skeletal muscle. J Physiol. 2010 Oct 15;588(Pt 20):4029-37. doi: 10.1113/jphysiol.2010.189860.
- Conley KE, Jubrias SA, Esselman PC. Oxidative capacity and ageing in human muscle. J Physiol. 2000 Jul 1;526 Pt 1(Pt 1):203-10. doi: 10.1111/j.1469-7793.2000.t01-1-00203.x.
研究記録日
これらの日付は、ClinicalTrials.gov への研究記録と要約結果の提出の進捗状況を追跡します。研究記録と報告された結果は、国立医学図書館 (NLM) によって審査され、公開 Web サイトに掲載される前に、特定の品質管理基準を満たしていることが確認されます。
主要日程の研究
研究開始
2013年7月1日
一次修了 (実際)
2014年12月1日
研究の完了 (推定)
2026年12月1日
試験登録日
最初に提出
2013年7月24日
QC基準を満たした最初の提出物
2013年7月25日
最初の投稿 (推定)
2013年7月30日
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
2026年3月30日
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
2026年3月25日
最終確認日
2026年3月1日
詳しくは
この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。