OxyChip を使用した EPR オキシメトリーによる皮下腫瘍の酸素測定
埋め込み型酸素センサー (OxyChip) を使用した電子常磁性共鳴 (EPR) オキシメトリーによる皮下腫瘍の反復酸素測定の単一施設、第 1 相試験
調査の概要
詳細な説明
これは、安全性に関する初期の実現可能性第 I 相臨床試験です。 この研究の総登録者は 60 人の患者です (フェーズごとに 30 人)。 この研究は、第 IA 相(切除前に他のがん治療が計画されていない短期間の移植)と第 IB 相(外科的切除前にネオアジュバント放射線療法または全身療法を受けながら最大 52 週間の移植期間)に分かれています。以下に説明するように。
最初の 6 人の患者には OxyChip が短期間 (最大 4 週間) 留置され、その後、さらなる治療を実施する前に、腫瘍塊が切除されたときに OxyChip が取り除かれます。 最初の 6 人のフェーズ IA 患者における OxyChip の埋め込み、除去、および評価が成功した後、追加の 24 人のフェーズ IA 患者と、ネオアジュバント放射線療法または全身療法 (化学療法、生物学的OxyChip が配置されている間、治療、または内分泌療法)。 放射線療法または全身療法を受ける第 IB 相患者の最初の 3 例における OxyChip の埋め込み、除去、および評価が成功した後、さらに 24 人の第 IB 相患者の登録が開始されます。 放射線療法または全身療法の過程で、週に最大5回の酸素測定が行われます。 OxyChipは手術で取り除かれます。 放射線療法または全身療法を受けている患者は、主な目的の有害事象に関する評価のために少なくとも毎週評価され、オキシメトリー測定は、移植の少なくとも1日後から計画された腫瘍切除での除去まで定期的に行われます。副次的な目的。 切除後、OxyChip を取り囲む組織は、主な目的のために有害事象がないか調べられます。 探索的目的のために、組織は低酸素症または成長に関連するバイオマーカーについても検査されます。
研究の種類
入学 (実際)
段階
- 適用できない
連絡先と場所
研究場所
-
-
New Hampshire
-
Lebanon、New Hampshire、アメリカ、03766
- Dartmouth-Hitchcock Medical Center
-
-
参加基準
適格基準
就学可能な年齢
健康ボランティアの受け入れ
説明
包含基準:
- フェーズ IA: 画像検査または身体検査によって OxyChip の埋め込みおよび測定にアクセス可能であると特定され、腫瘍全体を除去する目的で外科的切除を受ける予定の腫瘍。 腫瘍は、OxyChip を収容するのに十分な大きさでなければなりません。
- フェーズ IB: 切除前にネオアジュバント化学療法または放射線療法を受けることが予想される生検で証明された悪性腫瘍。 腫瘍は、OxyChip を収容するのに十分な大きさでなければなりません。
- 腫瘍は、皮膚または粘膜の表面から 3 cm 以内にある必要があります。
- 年齢は18歳以上。
- -被験者はインフォームドコンセントを与えることができなければなりません。
- 移植と計画された外科的切除との間の予想される時間は、少なくとも 3 日間です。
- 適格となるには、腫瘍の最小直径が 2.5 cm を超える必要があります。
除外基準:
- 十分な避妊をしていない妊婦または出産の可能性のある女性。 最終月経の初日から OxyChip を取り外すまでは、禁欲を含む避妊が必要です。
- -切除前の同時化学療法と放射線療法、または計画された連続化学療法と放射線療法の受領(フェーズIB)、
- -研究中のアバスチンまたは他の血管新生阻害剤の受領。
- -移植部位への事前の放射線療法。
- 心臓ペースメーカーや除細動器など、電気的アーティファクトを生成する、または EPR 磁場によって変化する可能性のある他の埋め込み型 (取り外し不可) のデバイスがある。
- OxyChip デバイスの安全性を評価する主要なエンドポイントに影響を与える有害事象を引き起こす可能性があると合理的に予測できる、がんの再発がない臨床研究への同時登録。 研究がこの試験の有害事象の評価に影響を与えると感じられない場合、患者は同時登録の資格があります。 プロトコルで規定されている 1 年間のフォローアップ中に、最初のがん治療後 (および OxyChip の除去後) に臨床的再発が確認された場合、患者は、担当する腫瘍医によって適切と見なされるすべての臨床試験に適格となります。
- -患者の血小板の血球数が50,000 / lの血液未満であり、好中球の絶対数が1,000 / lの血液未満。 OxyChip の埋め込みの少なくとも 3 か月前に臨床検査値を取得する必要があります。
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:診断
- 割り当て:非ランダム化
- 介入モデル:並列代入
- マスキング:なし(オープンラベル)
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
|---|---|
|
実験的:IA 標準治療(SOC)手術以外の治療なし
OxyChip の配置は低侵襲の手順 (針注射) によって行われ、除去は外科的切除時に行われます。
フェーズ IA では、患者は OxyChip の除去前にがん治療を受けることはなく、移植期間は通常 4 週間未満ですが、最長で 52 週間になることもあります。
|
OxyChip は、電子常磁性共鳴 (EPR) で測定したときに、組織内の酸素レベルを評価するための研究用デバイスです。
他の名前:
|
|
実験的:IB SOC 補助療法および SOC 手術
OxyChip の配置は低侵襲の手順 (針注射) によって行われ、除去は外科的切除時に行われます。
第 IB 相では、患者は、OxyChip が腫瘍内にある間、標準治療のネオアジュバント化学療法または術前放射線療法を受けます。これは通常 6 週間ですが、最大 52 週間になる場合もあります。
|
OxyChip は、電子常磁性共鳴 (EPR) で測定したときに、組織内の酸素レベルを評価するための研究用デバイスです。
他の名前:
|
この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
組織反応と炎症の組織学的徴候によって測定される有害事象の記録による OxyChip の安全性
時間枠:埋め込み手術時からオキシチップ除去後 2 週間、最長 18 週間
|
これは、OxyChip が合併症のリスクを最小限に抑えながら忍容性が良好であることを実証するための安全性研究です。
すべての腫瘍は OxyChip を装着した状態で切除され、OxyChip に隣接する組織反応や炎症の兆候がないか組織学が分析されます。
OxyChip に関連する病理学的所見が報告されています。
|
埋め込み手術時からオキシチップ除去後 2 週間、最長 18 週間
|
|
有害事象(アレルギー反応、感染、出血、デバイス上の皮膚侵食、デバイスの破損または故障)の記録によるオキシチップの安全性
時間枠:埋め込み手術時からオキシチップ除去後2週間まで
|
これは、移植手順、OxyChip、およびその後の酸素測定が合併症のリスクを最小限に抑えながら十分に耐えられることを実証するための安全性研究です。
|
埋め込み手術時からオキシチップ除去後2週間まで
|
二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
|
OxyChip センサーと EPR オキシメトリーを使用した腫瘍の酸素分圧 (pO2) レベルの測定
時間枠:埋め込み処置時から OxyChip 除去時まで。フェーズ IA では平均 2 週間、フェーズ IB では最大 4 か月
|
この研究では、OxyChip と EPR オキシメトリーを使用した腫瘍の pO2 の繰り返し測定の実現可能性も判断されます。 腫瘍の pO2 値は水銀柱ミリメートル (mmHg) で報告されます。 2 種類の測定 (データ) が行われました: (i) 最初の 10 分間までの部屋の空気を呼吸する患者のベースライン腫瘍 pO2 値。 (ii) 患者が 100% 酸素ガスを最大 10 分間呼吸した後の過酸化 pO2 値。 高酸素化は、ベースライン (室内呼吸) 測定の直後に投与されました。 |
埋め込み処置時から OxyChip 除去時まで。フェーズ IA では平均 2 週間、フェーズ IB では最大 4 か月
|
|
EPR 酸素濃度測定の完了に必要な時間
時間枠:EPR測定のための患者の準備、例えば、患者をベッドに配置し、共振器を取り付ける時点から、EPR測定の完了、例えば、共振器を取り外し、患者をベッドから降ろすまで。
|
この研究では、OxyChip と EPR オキシメトリーを使用した腫瘍内の酸素の繰り返し測定の実現可能性も判断されます。
毎日の酸素測定に必要なワークフローと時間を決定します。
各患者の複数の測定を平均した測定時間は、1 時間未満または 1 時間超として報告されます。
|
EPR測定のための患者の準備、例えば、患者をベッドに配置し、共振器を取り付ける時点から、EPR測定の完了、例えば、共振器を取り外し、患者をベッドから降ろすまで。
|
協力者と研究者
スポンサー
捜査官
- 主任研究者:Philip E Schaner, M.D., Ph.D.、Dartmouth-Hitchcock Medical Center
- 主任研究者:Periannan Kuppusamy, Ph.D.、Dartmouth College
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- Vaupel P, Thews O, Hoeckel M. Treatment resistance of solid tumors: role of hypoxia and anemia. Med Oncol. 2001;18(4):243-59. doi: 10.1385/MO:18:4:243.
- Brizel DM, Dodge RK, Clough RW, Dewhirst MW. Oxygenation of head and neck cancer: changes during radiotherapy and impact on treatment outcome. Radiother Oncol. 1999 Nov;53(2):113-7. doi: 10.1016/s0167-8140(99)00102-4.
- Swartz HM, Walczak T. Developing in vivo EPR oximetry for clinical use. Adv Exp Med Biol. 1998;454:243-52. doi: 10.1007/978-1-4615-4863-8_29.
- Doll CM, Milosevic M, Pintilie M, Hill RP, Fyles AW. Estimating hypoxic status in human tumors: a simulation using Eppendorf oxygen probe data in cervical cancer patients. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2003 Apr 1;55(5):1239-46. doi: 10.1016/s0360-3016(02)04474-7.
- Gagel B, Piroth M, Pinkawa M, Reinartz P, Zimny M, Kaiser HJ, Stanzel S, Asadpour B, Demirel C, Hamacher K, Coenen HH, Scholbach T, Maneschi P, DiMartino E, Eble MJ. pO polarography, contrast enhanced color duplex sonography (CDS), [18F] fluoromisonidazole and [18F] fluorodeoxyglucose positron emission tomography: validated methods for the evaluation of therapy-relevant tumor oxygenation or only bricks in the puzzle of tumor hypoxia? BMC Cancer. 2007 Jun 28;7:113. doi: 10.1186/1471-2407-7-113.
- Vaupel P, Mayer A. Hypoxia in cancer: significance and impact on clinical outcome. Cancer Metastasis Rev. 2007 Jun;26(2):225-39. doi: 10.1007/s10555-007-9055-1.
- Cosse JP, Michiels C. Tumour hypoxia affects the responsiveness of cancer cells to chemotherapy and promotes cancer progression. Anticancer Agents Med Chem. 2008 Oct;8(7):790-7. doi: 10.2174/187152008785914798.
- Shannon AM, Bouchier-Hayes DJ, Condron CM, Toomey D. Tumour hypoxia, chemotherapeutic resistance and hypoxia-related therapies. Cancer Treat Rev. 2003 Aug;29(4):297-307. doi: 10.1016/s0305-7372(03)00003-3.
- Tatum JL, Kelloff GJ, Gillies RJ, Arbeit JM, Brown JM, Chao KS, Chapman JD, Eckelman WC, Fyles AW, Giaccia AJ, Hill RP, Koch CJ, Krishna MC, Krohn KA, Lewis JS, Mason RP, Melillo G, Padhani AR, Powis G, Rajendran JG, Reba R, Robinson SP, Semenza GL, Swartz HM, Vaupel P, Yang D, Croft B, Hoffman J, Liu G, Stone H, Sullivan D. Hypoxia: importance in tumor biology, noninvasive measurement by imaging, and value of its measurement in the management of cancer therapy. Int J Radiat Biol. 2006 Oct;82(10):699-757. doi: 10.1080/09553000601002324.
- Vaupel P. Hypoxia and aggressive tumor phenotype: implications for therapy and prognosis. Oncologist. 2008;13 Suppl 3:21-6. doi: 10.1634/theoncologist.13-S3-21.
- Cardenas-Navia LI, Yu D, Braun RD, Brizel DM, Secomb TW, Dewhirst MW. Tumor-dependent kinetics of partial pressure of oxygen fluctuations during air and oxygen breathing. Cancer Res. 2004 Sep 1;64(17):6010-7. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-03-0947.
- Cardenas-Navia LI, Mace D, Richardson RA, Wilson DF, Shan S, Dewhirst MW. The pervasive presence of fluctuating oxygenation in tumors. Cancer Res. 2008 Jul 15;68(14):5812-9. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-07-6387.
- O'Hara JA, Blumenthal RD, Grinberg OY, Demidenko E, Grinberg S, Wilmot CM, Taylor AM, Goldenberg DM, Swartz HM. Response to radioimmunotherapy correlates with tumor pO2 measured by EPR oximetry in human tumor xenografts. Radiat Res. 2001 Mar;155(3):466-73. doi: 10.1667/0033-7587(2001)155[0466:rtrcwt]2.0.co;2.
- O'Hara JA, Goda F, Dunn JF, Swartz HM. Potential for EPR oximetry to guide treatment planning for tumors. Adv Exp Med Biol. 1997;411:233-42. doi: 10.1007/978-1-4615-5865-1_28. No abstract available.
- Pandian RP, Dolgos M, Marginean C, Woodward PM, Hammel PC, Manoharan PT, Kuppusamy P. Molecular packing and magnetic properties of lithium naphthalocyanine crystals: hollow channels enabling permeability and paramagnetic sensitivity to molecular oxygen. J Mater Chem. 2009;19(24):4138-4147. doi: 10.1039/b901886g.
- Pandian RP, Parinandi NL, Ilangovan G, Zweier JL, Kuppusamy P. Novel particulate spin probe for targeted determination of oxygen in cells and tissues. Free Radic Biol Med. 2003 Nov 1;35(9):1138-48. doi: 10.1016/s0891-5849(03)00496-9.
- Meenakshisundaram G, Eteshola E, Pandian RP, Bratasz A, Selvendiran K, Lee SC, Krishna MC, Swartz HM, Kuppusamy P. Oxygen sensitivity and biocompatibility of an implantable paramagnetic probe for repeated measurements of tissue oxygenation. Biomed Microdevices. 2009 Aug;11(4):817-26. doi: 10.1007/s10544-009-9298-4.
- Meenakshisundaram G, Pandian RP, Eteshola E, Lee SC, Kuppusamy P. A paramagnetic implant containing lithium naphthalocyanine microcrystals for high-resolution biological oximetry. J Magn Reson. 2010 Mar;203(1):185-9. doi: 10.1016/j.jmr.2009.11.016. Epub 2009 Nov 26.
- Schaner PE, Pettus JR, Flood AB, Williams BB, Jarvis LA, Chen EY, Pastel DA, Zuurbier RA, diFlorio-Alexander RM, Swartz HM, Kuppusamy P. OxyChip Implantation and Subsequent Electron Paramagnetic Resonance Oximetry in Human Tumors Is Safe and Feasible: First Experience in 24 Patients. Front Oncol. 2020 Oct 27;10:572060. doi: 10.3389/fonc.2020.572060. eCollection 2020.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (実際)
研究の完了 (実際)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (推定)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。