アペリン; SARS-cov-2 (COVID-19) における ACE2 と肺胞毛細血管透過性のバイオマーカー。 (APEL-COVID)
仮説: アペリン/APJ システムは、SARS-coV-2 の入口ドアであるアンジオテンシン I 変換酵素 2 (ACE2) およびレニン-アンギオテンシン システム (ras )。 アペリンと ACE2 活性の全身レベルの上昇は、COVID-19 の重症度の低い形態に関連しており、肺の透過性亢進と炎症が少ないことを特徴としています。
目標: 主: COVID-19+ 患者において、1) アペリンおよび関連システム (ras および分解酵素、うち ACE2) 血流中の表現力学的プロファイル、2) バイオマーカーの評価による肺透過性亢進プロファイル i) の基礎知識を確立することSARS と COVID-19 による軽度の呼吸器損傷の比較、および非 COVID-19 ARDS および非 ARDS 急性呼吸器疾患との比較。 二次: 基本的な臨床データと進歩的な臨床データの間のリンクを設定する (データ収集システム APEL-COVID)。
調査の概要
詳細な説明
COVID-19 は、その侵入経路である気道と深部肺から患者に影響を与えます。 集中治療室の内外に入院している症状のある成人患者の 20 ~ 30% は、主要な酸素化指数の変化を伴う呼吸困難を示します。 その症候群は、特に重症急性呼吸器症候群コロナウイルス 2 (SARS-coV-2) と指定されています。 SARS-coV-2 は、症状が始まってから 2 週間後に発症し、発熱を繰り返し、呼吸困難が進行し、死亡率は 10 ~ 50% になります。 SARS-coV-2 では、1) 放射線学的肺浸潤はより末梢性であり、2) 過炎症 (サイトカインストーム、そのうちインターロイキン-6 IL-6) の優位性と、肺胞毛細血管関門の透過性亢進が観察されます。3) 比較して従来の(COVID 以外の)ARDS では、発生する低酸素症は非常に重度であり、70% 以上の症例で肺コンプライアンスに関連してまばらに減少します。
アンギオテンシン I 変換酵素 2 (ACE2) は、心臓血管の恒常性に関与するレニン-アンギオテンシン系 (ras) の膜貫通型カルボキシペプチダーゼです。 ACE2 は、炎症誘発性高血圧の ACE1/アンジオテンシン II (Ang II) を逆調節します。 ACE2 は、Ang1-7 の Ang II を変換して、血管拡張、抗炎症、組織保護を促進します。 ACE2 は肺で豊富に発現し、インフルエンザ A、coV-1 および -2 のような多くのウイルスの入り口です。 ACE2 活性のダウンレギュレーションは Ang II 過剰をもたらし、AngI 受容体 (AT1R) の刺激と肺血管透過性の増加をもたらし、インフルエンザ ウイルス H7N9 の予後に悪影響を及ぼす。 肺の ACE2 の 85% 以上が、肺胞毛細血管関門界面の肺遠位空隙に位置する II 型肺胞上皮細胞 (AECII) の頂端膜で発現しています。 これは、coV-2 がセットアップされ、SARS (COVID-19+) を誘発する場所です。 AECII は、肺胞毛細血管バリアの透過性を調節します。 これらは特定のタンパク質 (SP-D または界面活性タンパク質 D、および CC-16 またはクララ細胞タンパク質) を産生します。これらは、肺胞毛細血管バリアが過透過性になると血流に放出され、診断および予後の生物学的マーカーです。
アペリン/APJ システムは、レニン-アンギオテンシン システム (ras) およびアンギオテンシン I 変換酵素 2 (ACE2) と相互作用することにより、保護的な方法である可能性があります。 アペリン/APJ システムは、心血管機能を保護および最適化することが認められています。 アペリンと受容体 APJ は、カテコールアミン作動系とは独立して機能し、イノダイレーター活性を伴う血管収縮作用に対する逆調節応答を構成します。 アペリン/APJ は主に肺で発現し、肺の炎症の軽減に関与しています。 Apelin-13 は、ミトコンドリア機能を安定させ、膜透過性を低下させ、アポトーシスを防ぎ、AECII 増殖を刺激します。 アペリン/APJ は、SARS や ARDS のように低酸素に反応し、血中アペリン レベルが上昇します。 アペリンは、ACE2 のような分解酵素を生成する ras システムおよびカリクレイン/キニンの基質です。 それにもかかわらず、アペリンは ACE2 の活性低下を逆転させ、Ang II の過剰産生と AT1R 刺激を調節して、肺血管透過性と肺水腫を増加させることができます。 APJ は、トランス アロステリック結合によって AT1R を阻害することもできます。 APJ は、ヒトおよびサルの免疫不全ウイルスの共受容体であり、アペリンはそれらの侵入をブロックします。 AECII 膜上の ACE2 と APJ の間の近接性と、アペリン アイソフォームに関するそれらの内在化/分解管理は、それらの相互作用の疑問とそれらの肺保護活動との関連性につながります。
仮説: アペリン/APJ システムは、SARS-coV-2 の入口ドアであるアンジオテンシン I 変換酵素 2 (ACE2) およびレニン-アンギオテンシン システム (ras )。 アペリンと ACE2 活性の全身レベルの上昇は、COVID-19 の重症度の低い形態に関連しており、肺の透過性亢進と炎症が少ないことを特徴としています。
目標: 主: COVID-19+ 患者において、1) アペリンおよび関連システム (ras および分解酵素、うち ACE2) 血流中の表現力学的プロファイル、2) バイオマーカーの評価による肺透過性亢進プロファイル i) の基礎知識を確立することSARS と COVID-19 による軽度の呼吸器損傷の比較、および非 COVID-19 ARDS および非 ARDS 急性呼吸器疾患との比較。 二次: 基本的な臨床データと進歩的な臨床データの間のリンクを設定する (データ収集システム APEL-COVID)。
方法: 症候性急性呼吸器疾患で入院した成人患者を入院後 36 時間以内に募集する前向きコホートの観察パイロット研究。 グループ: 1) COVID+、SARS、MV+ (機械換気) またはそうでない、24 時間以上の SpO2 が 90% 以上の FiO2 が 6L/分以上 (n=30)。 2) COVID+、非 SARS、MV-、SpO2 が 24 時間以上 90% 以上の場合、FiO2 が 6L/min-40% 未満 (n=30); 3) COVID-、ARDS、MV+、SpO2 が 90% 以上で 24 時間以上 (n=30)、FiO2 が 6L/min 以上 - 40% 4) COVID-、非 ARDS、MV-、SpO2 が 24 時間以上 90% を超える場合、FiO2 が 6L/分未満 - 40% (n=30)。 人工呼吸器によって生成された圧力が上皮の生物学的マーカーに及ぼす影響を考慮して、呼吸以外の理由で入院した 10 人の対照患者の 2 つのサブグループを、上記のグループと性年齢を一致させて事後的に構成します。 COVID+ 非 SARS の患者は呼吸器症状があり、肺浸潤の有無にかかわらず、SpO2 が 90% を超える場合は 6L/min-40% FiO2 未満の O2 が必要で、呼吸器科または内科または集中治療室に入院しています。単位。 ARDS 患者は、直接形式で選択されます (例: 肺炎、誤嚥) およびベルリンの定義によって確立された酸素化指数パラメーター。
研究の種類
入学 (実際)
連絡先と場所
研究場所
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Quebec
-
Sherbrooke、Quebec、カナダ、J1H5N4
- Sherbrooke University
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-
参加基準
適格基準
就学可能な年齢
健康ボランティアの受け入れ
受講資格のある性別
サンプリング方法
調査対象母集団
説明
包含基準:
- 4 つの非コントロール メジャー グループの場合:
- 症候性急性(おそらく感染性)呼吸器疾患で入院した成人患者
- 入院後36時間以内。
除外基準:
- 患者はすでに 36 時間以上入院しています。
- 小児患者。
- 無症候性の患者。
- 非急性呼吸器疾患患者。
- 原因としての原発性肺塞栓症(すなわち、肺塞栓症はSRAS COVIDに関連する呼吸器症状を伴う可能性がありますが、伴わないわけではありません)。
- ホーム酸素の有無にかかわらず、肺線維症の末期/重度のCOPDの悪化。
- 間接型ARDSの患者。
- 嚢胞性線維症。
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 観測モデル:コホート
- 時間の展望:見込みのある
コホートと介入
グループ/コホート |
介入・治療 |
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COVID+、SARS
COVID+ SARS の患者で、人工呼吸器を使用している、および/または 24 時間以上にわたって 90% 以上の SpO2 に対して 6L/min 以上の O2-40% FiO2 を必要としている。
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鼻咽頭スワブ
28日間、7日ごとに20ccの血液を採取します。
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COVID+、非SARS
COVID+ 非 SARS 呼吸器症状あり、肺浸潤の有無にかかわらず、人工呼吸器を使用せず、SpO2 が 90% 以上の場合に 6L/分未満の O2-40% FiO2 を必要とする患者。
彼らは床に入院しています(呼吸器科、内科、または集中治療室)。
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鼻咽頭スワブ
28日間、7日ごとに20ccの血液を採取します。
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COVID-、ARDS
患者はベルリンの定義によるとARDSにあり、肺損傷は直接型に分類されます(例:
肺炎、誤嚥)。
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鼻咽頭スワブ
28日間、7日ごとに20ccの血液を採取します。
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COVID-、非ARDS
患者は、ベルリンの定義によると ARDS ではありませんが、呼吸器症状があり、肺浸潤の有無にかかわらず、SpO2 が 90% 以上の場合、6L O2/min-40% FiO2 未満を必要とします。
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鼻咽頭スワブ
28日間、7日ごとに20ccの血液を採取します。
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COVID-、コントロール、MV+
呼吸以外の理由で入院し、機械的に人工呼吸された患者(性別と年齢の一致による事後)。
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鼻咽頭スワブ
28日間、7日ごとに20ccの血液を採取します。
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COVID-、コントロール、MV-
呼吸器系以外の理由で入院した人工呼吸器を使用していない患者(性別と年齢の一致による事後)。
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鼻咽頭スワブ
28日間、7日ごとに20ccの血液を採取します。
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この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
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ブラッドアペリン-13/12、-17/16、-36
時間枠:28日
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血液アペリン-13/12、-17/16、-36のMS/MSによる測定は、28日間中7日ごと。
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28日
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血中アンギオテンシンⅡ
時間枠:28日
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血中アンギオテンシン II の ELISA による 28 日間中 7 日ごとの測定。
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28日
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血液クララ細胞タンパク質 (CC16)
時間枠:28日
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血中 CC16 の ELISA による測定を 7 日ごとに 28 日間行います。
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28日
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血中インターロイキン-6 (IL-6)
時間枠:28日
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血中 IL-6 の ELISA による 28 日間中 7 日ごとの測定。
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28日
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血液界面活性剤プロテインD(SP-D)
時間枠:28日
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28日間、7日ごとに血液SP-DのELISAによる測定。
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28日
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蛍光測定法による血漿ACE2活性測定
時間枠:28日
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28 日間の 7 日ごとの血漿 ACE2 活性の測定。
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28日
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蛍光測定法による血漿リジルオキシダーゼ活性測定
時間枠:28日
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28 日間、7 日ごとの血漿リシルオキシダーゼ活性の測定。
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28日
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蛍光測定法による血漿ネプリライシン活性測定
時間枠:28日
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28日間、7日ごとに血漿ネプリライシン活性を測定。
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28日
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二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
|---|---|---|
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アパチーイ
時間枠:28日
|
28 日間の毎日の予後スコア (APACHEII)。
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28日
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酸素化指数
時間枠:28日
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28 日間の毎日の酸素化指数。
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28日
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機械換気
時間枠:28日
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機械換気の持続時間。
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28日
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肺コンプライアンス (動的、リアルタイム、人工呼吸器デバイス: 一回換気量 / プラトー圧 - PEEP
時間枠:28日
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28 日間の毎日の肺コンプライアンスの測定。
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28日
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入院期間
時間枠:28日
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入院期間および/または院内死亡率の測定。
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28日
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ソファー
時間枠:28日
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28 日間の毎日の予後スコア (SOFA)。
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28日
|
協力者と研究者
捜査官
- 主任研究者:Olivier Lesur, MD PhD、Sherbrooke University
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- Zhou F, Yu T, Du R, Fan G, Liu Y, Liu Z, Xiang J, Wang Y, Song B, Gu X, Guan L, Wei Y, Li H, Wu X, Xu J, Tu S, Zhang Y, Chen H, Cao B. Clinical course and risk factors for mortality of adult inpatients with COVID-19 in Wuhan, China: a retrospective cohort study. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1054-1062. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30566-3. Epub 2020 Mar 11. Erratum In: Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1038. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1038.
- ARDS Definition Task Force, Ranieri VM, Rubenfeld GD, Thompson BT, Ferguson ND, Caldwell E, Fan E, Camporota L, Slutsky AS. Acute respiratory distress syndrome: the Berlin Definition. JAMA. 2012 Jun 20;307(23):2526-33. doi: 10.1001/jama.2012.5669.
- Ware LB, Matthay MA. The acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2000 May 4;342(18):1334-49. doi: 10.1056/NEJM200005043421806. No abstract available.
- Zhang H, Penninger JM, Li Y, Zhong N, Slutsky AS. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) as a SARS-CoV-2 receptor: molecular mechanisms and potential therapeutic target. Intensive Care Med. 2020 Apr;46(4):586-590. doi: 10.1007/s00134-020-05985-9. Epub 2020 Mar 3. No abstract available.
- Eisner MD, Parsons P, Matthay MA, Ware L, Greene K; Acute Respiratory Distress Syndrome Network. Plasma surfactant protein levels and clinical outcomes in patients with acute lung injury. Thorax. 2003 Nov;58(11):983-8. doi: 10.1136/thorax.58.11.983.
- Hoffmann M, Kleine-Weber H, Schroeder S, Kruger N, Herrler T, Erichsen S, Schiergens TS, Herrler G, Wu NH, Nitsche A, Muller MA, Drosten C, Pohlmann S. SARS-CoV-2 Cell Entry Depends on ACE2 and TMPRSS2 and Is Blocked by a Clinically Proven Protease Inhibitor. Cell. 2020 Apr 16;181(2):271-280.e8. doi: 10.1016/j.cell.2020.02.052. Epub 2020 Mar 5.
- Kuba K, Imai Y, Rao S, Gao H, Guo F, Guan B, Huan Y, Yang P, Zhang Y, Deng W, Bao L, Zhang B, Liu G, Wang Z, Chappell M, Liu Y, Zheng D, Leibbrandt A, Wada T, Slutsky AS, Liu D, Qin C, Jiang C, Penninger JM. A crucial role of angiotensin converting enzyme 2 (ACE2) in SARS coronavirus-induced lung injury. Nat Med. 2005 Aug;11(8):875-9. doi: 10.1038/nm1267. Epub 2005 Jul 10.
- Gattinoni L, Coppola S, Cressoni M, Busana M, Rossi S, Chiumello D. COVID-19 Does Not Lead to a "Typical" Acute Respiratory Distress Syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 2020 May 15;201(10):1299-1300. doi: 10.1164/rccm.202003-0817LE. No abstract available.
- Imai Y, Kuba K, Rao S, Huan Y, Guo F, Guan B, Yang P, Sarao R, Wada T, Leong-Poi H, Crackower MA, Fukamizu A, Hui CC, Hein L, Uhlig S, Slutsky AS, Jiang C, Penninger JM. Angiotensin-converting enzyme 2 protects from severe acute lung failure. Nature. 2005 Jul 7;436(7047):112-6. doi: 10.1038/nature03712.
- Sun H, Ning R, Tao Y, Yu C, Deng X, Zhao C, Meng S, Tang F, Xu D. Risk Factors for Mortality in 244 Older Adults With COVID-19 in Wuhan, China: A Retrospective Study. J Am Geriatr Soc. 2020 Jun;68(6):E19-E23. doi: 10.1111/jgs.16533. Epub 2020 May 12.
- Nikpouraghdam M, Jalali Farahani A, Alishiri G, Heydari S, Ebrahimnia M, Samadinia H, Sepandi M, Jafari NJ, Izadi M, Qazvini A, Dorostkar R, Tat M, Shahriary A, Farnoosh G, Hosseini Zijoud SR, Taghdir M, Alimohamadi Y, Abbaszadeh S, Gouvarchin Ghaleh HE, Bagheri M. Epidemiological characteristics of coronavirus disease 2019 (COVID-19) patients in IRAN: A single center study. J Clin Virol. 2020 Jun;127:104378. doi: 10.1016/j.jcv.2020.104378. Epub 2020 Apr 21.
- Zangrillo A, Beretta L, Scandroglio AM, Monti G, Fominskiy E, Colombo S, Morselli F, Belletti A, Silvani P, Crivellari M, Monaco F, Azzolini ML, Reineke R, Nardelli P, Sartorelli M, Votta CD, Ruggeri A, Ciceri F, De Cobelli F, Tresoldi M, Dagna L, Rovere-Querini P, Serpa Neto A, Bellomo R, Landoni G; COVID-BioB Study Group. Characteristics, treatment, outcomes and cause of death of invasively ventilated patients with COVID-19 ARDS in Milan, Italy. Crit Care Resusc. 2020 Apr 23. Online ahead of print.
- Lu W, Zhang S, Chen B, Chen J, Xian J, Lin Y, Shan H, Su ZZ. A Clinical Study of Noninvasive Assessment of Lung Lesions in Patients with Coronavirus Disease-19 (COVID-19) by Bedside Ultrasound. Ultraschall Med. 2020 Jun;41(3):300-307. doi: 10.1055/a-1154-8795. Epub 2020 Apr 15.
- Sayiner A, Cinkooglu A, Tasbakan MS, Basoglu OK, Ceylan N, Savas R, Bayraktaroglu S, Ozhan MH. Radiographic examination of the chest and COVID-19. Ann R Coll Surg Engl. 2020 May;102(5):334. doi: 10.1308/rcsann.2020.0099. No abstract available.
- Wu J, Pan J, Teng D, Xu X, Feng J, Chen YC. Interpretation of CT signs of 2019 novel coronavirus (COVID-19) pneumonia. Eur Radiol. 2020 Oct;30(10):5455-5462. doi: 10.1007/s00330-020-06915-5. Epub 2020 May 4.
- Toniati P, Piva S, Cattalini M, Garrafa E, Regola F, Castelli F, Franceschini F, Airo P, Bazzani C, Beindorf EA, Berlendis M, Bezzi M, Bossini N, Castellano M, Cattaneo S, Cavazzana I, Contessi GB, Crippa M, Delbarba A, De Peri E, Faletti A, Filippini M, Filippini M, Frassi M, Gaggiotti M, Gorla R, Lanspa M, Lorenzotti S, Marino R, Maroldi R, Metra M, Matteelli A, Modina D, Moioli G, Montani G, Muiesan ML, Odolini S, Peli E, Pesenti S, Pezzoli MC, Pirola I, Pozzi A, Proto A, Rasulo FA, Renisi G, Ricci C, Rizzoni D, Romanelli G, Rossi M, Salvetti M, Scolari F, Signorini L, Taglietti M, Tomasoni G, Tomasoni LR, Turla F, Valsecchi A, Zani D, Zuccala F, Zunica F, Foca E, Andreoli L, Latronico N. Tocilizumab for the treatment of severe COVID-19 pneumonia with hyperinflammatory syndrome and acute respiratory failure: A single center study of 100 patients in Brescia, Italy. Autoimmun Rev. 2020 Jul;19(7):102568. doi: 10.1016/j.autrev.2020.102568. Epub 2020 May 3.
- van de Veerdonk FL, Netea MG, van Deuren M, van der Meer JW, de Mast Q, Bruggemann RJ, van der Hoeven H. Kallikrein-kinin blockade in patients with COVID-19 to prevent acute respiratory distress syndrome. Elife. 2020 Apr 27;9:e57555. doi: 10.7554/eLife.57555.
- Gralinski LE, Bankhead A 3rd, Jeng S, Menachery VD, Proll S, Belisle SE, Matzke M, Webb-Robertson BJ, Luna ML, Shukla AK, Ferris MT, Bolles M, Chang J, Aicher L, Waters KM, Smith RD, Metz TO, Law GL, Katze MG, McWeeney S, Baric RS. Mechanisms of severe acute respiratory syndrome coronavirus-induced acute lung injury. mBio. 2013 Aug 6;4(4):e00271-13. doi: 10.1128/mBio.00271-13.
- Herold S, Gabrielli NM, Vadasz I. Novel concepts of acute lung injury and alveolar-capillary barrier dysfunction. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2013 Nov 15;305(10):L665-81. doi: 10.1152/ajplung.00232.2013. Epub 2013 Sep 13.
- Keidar S, Kaplan M, Gamliel-Lazarovich A. ACE2 of the heart: From angiotensin I to angiotensin (1-7). Cardiovasc Res. 2007 Feb 1;73(3):463-9. doi: 10.1016/j.cardiores.2006.09.006. Epub 2006 Sep 19.
- Gichuhi PM, Isahakia MA. Electron-microscopic localization of baboon acrosomal antigens using antisperm monoclonal antibody. Acta Anat (Basel). 1992;144(2):178-83. doi: 10.1159/000147304.
- Wevers BA, van der Hoek L. Renin-angiotensin system in human coronavirus pathogenesis. Future Virol. 2010 Mar;5(2):145-161. doi: 10.2217/fvl.10.4. Epub 2010 Mar 1.
- Yang P, Gu H, Zhao Z, Wang W, Cao B, Lai C, Yang X, Zhang L, Duan Y, Zhang S, Chen W, Zhen W, Cai M, Penninger JM, Jiang C, Wang X. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) mediates influenza H7N9 virus-induced acute lung injury. Sci Rep. 2014 Nov 13;4:7027. doi: 10.1038/srep07027.
- Mossel EC, Wang J, Jeffers S, Edeen KE, Wang S, Cosgrove GP, Funk CJ, Manzer R, Miura TA, Pearson LD, Holmes KV, Mason RJ. SARS-CoV replicates in primary human alveolar type II cell cultures but not in type I-like cells. Virology. 2008 Mar 1;372(1):127-35. doi: 10.1016/j.virol.2007.09.045. Epub 2007 Nov 26.
- Lesur O, Arsalane K, Lane D. Lung alveolar epithelial cell migration in vitro: modulators and regulation processes. Am J Physiol. 1996 Mar;270(3 Pt 1):L311-9. doi: 10.1152/ajplung.1996.270.3.L311.
- Berthiaume Y, Lesur O, Dagenais A. Treatment of adult respiratory distress syndrome: plea for rescue therapy of the alveolar epithelium. Thorax. 1999 Feb;54(2):150-60. doi: 10.1136/thx.54.2.150. No abstract available.
- Lesur O, Berthiaume Y, Blaise G, Damas P, Deland E, Guimond JG, Michel RP. Acute respiratory distress syndrome: 30 years later. Can Respir J. 1999 Jan-Feb;6(1):71-86. doi: 10.1155/1999/812476.
- Park J, Pabon M, Choi AMK, Siempos II, Fredenburgh LE, Baron RM, Jeon K, Chung CR, Yang JH, Park CM, Suh GY. Plasma surfactant protein-D as a diagnostic biomarker for acute respiratory distress syndrome: validation in US and Korean cohorts. BMC Pulm Med. 2017 Dec 15;17(1):204. doi: 10.1186/s12890-017-0532-1.
- Lesur O, Langevin S, Berthiaume Y, Legare M, Skrobik Y, Bellemare JF, Levy B, Fortier Y, Lauzier F, Bravo G, Nickmilder M, Rousseau E, Bernard A; Critical Care Research Group of the Quebec Respiratory Health Network. Outcome value of Clara cell protein in serum of patients with acute respiratory distress syndrome. Intensive Care Med. 2006 Aug;32(8):1167-74. doi: 10.1007/s00134-006-0235-1. Epub 2006 Jun 23.
- Lesur O, Hermans C, Chalifour JF, Picotte J, Levy B, Bernard A, Lane D. Mechanical ventilation-induced pneumoprotein CC-16 vascular transfer in rats: effect of KGF pretreatment. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2003 Feb;284(2):L410-9. doi: 10.1152/ajplung.00384.2001. Epub 2002 Oct 25.
- Wosten-van Asperen RM, Lutter R, Specht PA, Moll GN, van Woensel JB, van der Loos CM, van Goor H, Kamilic J, Florquin S, Bos AP. Acute respiratory distress syndrome leads to reduced ratio of ACE/ACE2 activities and is prevented by angiotensin-(1-7) or an angiotensin II receptor antagonist. J Pathol. 2011 Dec;225(4):618-27. doi: 10.1002/path.2987. Epub 2011 Oct 18.
- Zhang R, Pan Y, Fanelli V, Wu S, Luo AA, Islam D, Han B, Mao P, Ghazarian M, Zeng W, Spieth PM, Wang D, Khang J, Mo H, Liu X, Uhlig S, Liu M, Laffey J, Slutsky AS, Li Y, Zhang H. Mechanical Stress and the Induction of Lung Fibrosis via the Midkine Signaling Pathway. Am J Respir Crit Care Med. 2015 Aug 1;192(3):315-23. doi: 10.1164/rccm.201412-2326OC.
- Marsault E, Llorens-Cortes C, Iturrioz X, Chun HJ, Lesur O, Oudit GY, Auger-Messier M. The apelinergic system: a perspective on challenges and opportunities in cardiovascular and metabolic disorders. Ann N Y Acad Sci. 2019 Nov;1455(1):12-33. doi: 10.1111/nyas.14123. Epub 2019 Jun 25.
- Coquerel D, Sainsily X, Dumont L, Sarret P, Marsault E, Auger-Messier M, Lesur O. The apelinergic system as an alternative to catecholamines in low-output septic shock. Crit Care. 2018 Jan 19;22(1):10. doi: 10.1186/s13054-018-1942-z.
- Raab WH, Magerl W, Muller H. Changes in dental blood flow following electrical tooth pulp stimulation--influences of capsaicin and guanethidine. Agents Actions. 1988 Dec;25(3-4):237-9. doi: 10.1007/BF01965022.
- Berta J, Kenessey I, Dobos J, Tovari J, Klepetko W, Jan Ankersmit H, Hegedus B, Renyi-Vamos F, Varga J, Lorincz Z, Paku S, Ostoros G, Rozsas A, Timar J, Dome B. Apelin expression in human non-small cell lung cancer: role in angiogenesis and prognosis. J Thorac Oncol. 2010 Aug;5(8):1120-9. doi: 10.1097/JTO.0b013e3181e2c1ff.
- Zhang H, Chen S, Zeng M, Lin D, Wang Y, Wen X, Xu C, Yang L, Fan X, Gong Y, Zhang H, Kong X. Apelin-13 Administration Protects Against LPS-Induced Acute Lung Injury by Inhibiting NF-kappaB Pathway and NLRP3 Inflammasome Activation. Cell Physiol Biochem. 2018;49(5):1918-1932. doi: 10.1159/000493653. Epub 2018 Sep 20.
- Visser YP, Walther FJ, Laghmani el H, Laarse Av, Wagenaar GT. Apelin attenuates hyperoxic lung and heart injury in neonatal rats. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Nov 15;182(10):1239-50. doi: 10.1164/rccm.200909-1361OC. Epub 2010 Jul 9.
- Zhang L, Li F, Su X, Li Y, Wang Y, Fang R, Guo Y, Jin T, Shan H, Zhao X, Yang R, Shan H, Liang H. Melatonin prevents lung injury by regulating apelin 13 to improve mitochondrial dysfunction. Exp Mol Med. 2019 Jul 4;51(7):1-12. doi: 10.1038/s12276-019-0273-8.
- He L, Xu J, Chen L, Li L. Apelin/APJ signaling in hypoxia-related diseases. Clin Chim Acta. 2015 Dec 7;451(Pt B):191-8. doi: 10.1016/j.cca.2015.09.029. Epub 2015 Oct 3.
- Andersen CU, Markvardsen LH, Hilberg O, Simonsen U. Pulmonary apelin levels and effects in rats with hypoxic pulmonary hypertension. Respir Med. 2009 Nov;103(11):1663-71. doi: 10.1016/j.rmed.2009.05.011. Epub 2009 Jun 17.
- Wang W, McKinnie SM, Farhan M, Paul M, McDonald T, McLean B, Llorens-Cortes C, Hazra S, Murray AG, Vederas JC, Oudit GY. Angiotensin-Converting Enzyme 2 Metabolizes and Partially Inactivates Pyr-Apelin-13 and Apelin-17: Physiological Effects in the Cardiovascular System. Hypertension. 2016 Aug;68(2):365-77. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.115.06892. Epub 2016 May 23.
- Siddiquee K, Hampton J, McAnally D, May L, Smith L. The apelin receptor inhibits the angiotensin II type 1 receptor via allosteric trans-inhibition. Br J Pharmacol. 2013 Mar;168(5):1104-17. doi: 10.1111/j.1476-5381.2012.02192.x.
- Zhou N, Zhang X, Fan X, Argyris E, Fang J, Acheampong E, DuBois GC, Pomerantz RJ. The N-terminal domain of APJ, a CNS-based coreceptor for HIV-1, is essential for its receptor function and coreceptor activity. Virology. 2003 Dec 5;317(1):84-94. doi: 10.1016/j.virol.2003.08.026.
- Zou MX, Liu HY, Haraguchi Y, Soda Y, Tatemoto K, Hoshino H. Apelin peptides block the entry of human immunodeficiency virus (HIV). FEBS Lett. 2000 May 4;473(1):15-8. doi: 10.1016/s0014-5793(00)01487-3.
- Zhou N, Fang J, Mukhtar M, Acheampong E, Pomerantz RJ. Inhibition of HIV-1 fusion with small interfering RNAs targeting the chemokine coreceptor CXCR4. Gene Ther. 2004 Dec;11(23):1703-12. doi: 10.1038/sj.gt.3302339.
- Imai Y, Kuba K, Penninger JM. The discovery of angiotensin-converting enzyme 2 and its role in acute lung injury in mice. Exp Physiol. 2008 May;93(5):543-8. doi: 10.1113/expphysiol.2007.040048. Epub 2008 Apr 10.
- Jia H. Pulmonary Angiotensin-Converting Enzyme 2 (ACE2) and Inflammatory Lung Disease. Shock. 2016 Sep;46(3):239-48. doi: 10.1097/SHK.0000000000000633.
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- 2021-3862-APEL-COVID
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