- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT04632732
Apélin ; ACE2 et biomarqueurs de la perméabilité alvéolaire-capillaire dans le SRAS-cov-2 (COVID-19). (APEL-COVID)
Hypothèse : Le système apeline/APJ est impliqué dans la protection du poumon affecté par le COVID-19 en interagissant avec la porte d'entrée du SRAS-coV-2 : l'angiotensine I Converting Enzyme 2 (ACE2) et le système rénine-angiotensine (ras ). Des niveaux systémiques élevés d'apelines et d'activité ACE2 sont associés à des formes moins critiques de COVID-19 et caractérisés par moins d'hyperperméabilité et d'inflammation pulmonaires.
Objectifs : Principaux : Chez les patients COVID-19+, établir les connaissances de base sur 1) les apélines et les systèmes associés (ras et enzymes de dégradation, dont ACE2) le profil phénodynamique dans la circulation sanguine, 2) le profil d'hyperperméabilité pulmonaire par l'évaluation de biomarqueurs i) comparaison du SRAS par rapport aux lésions respiratoires COVID-19 moindres, et avec les affections respiratoires aiguës non COVID-19 ARDS et non ARDS. Secondaire : Établir des liens entre les données cliniques de base et progressives (système de collecte de données APEL-COVID).
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
Le COVID-19 affecte les patients par sa voie d'entrée : les voies respiratoires et les poumons profonds. 20 à 30 % des patients adultes symptomatiques hospitalisés en réanimation ou hors réanimation présentent une détresse respiratoire avec des altérations importantes de l'indice d'oxygénation. Ce syndrome est spécifiquement désigné coronavirus 2 du syndrome respiratoire aigu sévère (SARS-coV-2). Le SRAS-coV-2 se développe 2 semaines après le début des symptômes, avec une fièvre récurrente, une dyspnée évolutive et un taux de mortalité de 10 à 50 %. Dans le SRAS-coV-2 : 1) les infiltrats pulmonaires radiologiques sont plus périphériques et 2) on observe une dominance d'hyperinflammation (tempête de cytokines, dont l'interleukine-6 IL-6) et d'hyperperméabilité de la barrière alvéolo-capillaire, 3) en comparaison à un SDRA traditionnel (non COVID), l'hypoxie générée est exceptionnellement sévère et associée à une compliance pulmonaire peu réduite dans plus de 70% des cas.
L'enzyme de conversion de l'angiotensine I (ACE2) est une carboxypeptidase transmembranaire du système rénine-angiotensine (ras) impliquée dans l'homéostasie cardiovasculaire. L'ACE2 contre-régule l'hypertenseur pro-inflammatoire ACE1/Angiotensin II (Ang II). ACE2 convertit Ang II en Ang1-7 pour favoriser la vasodilatation, l'anti-inflammation et la protection tissulaire. L'ACE2 s'exprime abondamment dans les poumons et est la porte d'entrée de nombreux virus comme la grippe A, coV-1 et -2. Une régulation à la baisse de l'activité ACE2 conduit à un excès d'Ang II, avec une stimulation du récepteur AngI (AT1R) et une augmentation de la perméabilité vasculaire pulmonaire, impactant négativement le pronostic du virus de la grippe H7N9. Plus de 85% de l'ACE2 pulmonaire est exprimé dans la membrane apicale des cellules épithéliales alvéolaires de type II (AECII) qui sont situées dans les espaces aériens distaux pulmonaires à l'interface de la barrière alvéolaire-capillaire. C'est là que le coV-2 s'installe et induit le SRAS (COVID-19+). Les AECII régulent la perméabilité de la barrière alvéolo-capillaire. Celles-ci produisent des protéines spécifiques (SP-D ou surfactant protein D, et CC-16 ou Clara Cell protein) qui sont libérées dans le sang lorsque la barrière alvéolo-capillaire devient hyperperméable et sont des marqueurs biologiques diagnostiques et pronostiques.
Le système apéline/APJ pourrait être un moyen protecteur en interagissant avec le système rénine-angiotensine (ras) et l'enzyme de conversion de l'angiotensine I 2 (ACE2). Le système apeline/APJ est reconnu pour protéger et optimiser les fonctions cardiovasculaires. Les apélines et le récepteur APJ fonctionnent indépendamment du système catécholaminergique et constituent une réponse contre-régulatrice à la voie vasopressinergique avec une activité inodilatatrice. L'apeline/APJ est largement exprimée dans le poumon et est impliquée dans la réduction de l'inflammation pulmonaire. L'apelin-13 stabilise la fonction mitochondriale, réduit la perméabilité membranaire, prévient l'apoptose et stimule la prolifération des AECII. L'apeline/APJ est réactive à l'hypoxie comme dans le SRAS ou le SDRA avec une augmentation des taux sanguins d'apelines. Les apélines sont des substrats pour le système ras et la kallikréine/kinine qui produisent des enzymes de dégradation comme ACE2. Malgré cela, les apélines peuvent inverser une activité réduite d'ACE2 et réguler la surproduction d'Ang II et la stimulation AT1R qui conduisent à une augmentation de la perméabilité vasculaire pulmonaire et à un œdème pulmonaire. APJ est également capable d'inhiber AT1R par combinaison trans-allostérique. L'APJ est un co-récepteur du virus de l'immunodéficience humaine et simienne, et les apélines bloquent leur entrée. La proximité entre ACE2 et APJ sur les membranes AECII et leur gestion de l'internalisation/dégradation en terme d'isoforme des apélines conduit à s'interroger sur leur interaction et le lien avec leur activité protectrice pulmonaire.
Hypothèse : Le système apeline/APJ est impliqué dans la protection du poumon affecté par le COVID-19 en interagissant avec la porte d'entrée du SRAS-coV-2 : l'angiotensine I Converting Enzyme 2 (ACE2) et le système rénine-angiotensine (ras ). Des niveaux systémiques élevés d'apelines et d'activité ACE2 sont associés à des formes moins critiques de COVID-19 et caractérisés par moins d'hyperperméabilité et d'inflammation pulmonaires.
Objectifs : Principaux : Chez les patients COVID-19+, établir les connaissances de base sur 1) les apélines et les systèmes associés (ras et enzymes de dégradation, dont ACE2) le profil phénodynamique dans la circulation sanguine, 2) le profil d'hyperperméabilité pulmonaire par l'évaluation de biomarqueurs i) comparaison du SRAS par rapport aux lésions respiratoires COVID-19 moindres, et avec les affections respiratoires aiguës non COVID-19 ARDS et non ARDS. Secondaire : Établir des liens entre les données cliniques de base et progressives (système de collecte de données APEL-COVID).
Méthodes : Étude pilote observationnelle d'une cohorte prospective recrutant dans les 36 heures suivant l'admission des patients adultes hospitalisés pour une maladie respiratoire aiguë symptomatique. Groupes : 1) COVID+, SRAS, MV+ (ventilation mécanique) ou non, avec plus de 6L/min-40% de FiO2 pour une SpO2 supérieure à 90% depuis plus de 24h (n=30) ; 2) COVID+, non SARS, MV-, avec moins de 6L/min-40% de FiO2 pour une SpO2 supérieure à 90% depuis plus de 24h (n=30) ; 3) COVID-, ARDS, MV+, avec plus de 6L/min-40% de FiO2 pour une SpO2 à plus de 90% depuis plus de 24h (n=30) ; 4) COVID-, non ARDS, MV-, avec moins de 6L/min-40% de FiO2 pour une SpO2 supérieure à 90% depuis plus de 24h (n=30). Compte tenu des effets de la pression générée par la ventilation mécanique sur les marqueurs biologiques épithéliaux, 2 sous-groupes de 10 patients témoins hospitalisés pour des raisons non respiratoires seront constitués post hoc en appariement sexe-âge aux groupes ci-dessus. Les patients COVID+ non SRAS seront symptomatiques respiratoires, avec ou sans infiltrats pulmonaires et besoins en O2 inférieurs à 6L/min-40% FiO2 pour une SpO2 supérieure à 90% et hospitalisés sur les étages de pneumologie ou médecine interne ou en réanimation unités. Les patients SDRA seront sélectionnés sous la forme directe (ex. pneumonie, aspiration) et les paramètres de l'indice d'oxygénation établis selon la définition de Berlin.
Type d'étude
Inscription (Réel)
Contacts et emplacements
Lieux d'étude
-
-
Quebec
-
Sherbrooke, Quebec, Canada, J1H5N4
- Sherbrooke University
-
-
Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
Accepte les volontaires sains
Sexes éligibles pour l'étude
Méthode d'échantillonnage
Population étudiée
La description
Critère d'intégration:
- Pour les 4 grands groupes -non-contrôle- :
- Patients adultes hospitalisés pour une maladie respiratoire aiguë symptomatique (vraisemblablement infectieuse)
- Dans les 36 heures suivant l'admission.
Critère d'exclusion:
- Des patients déjà hospitalisés depuis plus de 36 heures.
- Patients pédiatriques.
- Patients asymptomatiques.
- Patients souffrant de maladies respiratoires non aiguës.
- Embolie pulmonaire primaire comme cause (c'est-à-dire que l'embolie pulmonaire peut être concomitante à des symptômes respiratoires liés au SRAS COVID mais pas sans).
- MPOC terminale/sévère exacerbée de fibrose pulmonaire avec ou sans oxygène à domicile.
- Patients atteints de forme indirecte de SDRA.
- Fibrose kystique.
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Modèles d'observation: Cohorte
- Perspectives temporelles: Éventuel
Cohortes et interventions
Groupe / Cohorte |
Intervention / Traitement |
|---|---|
|
COVID+, SRAS
patients COVID+ SRAS ventilés mécaniquement et/ou nécessitant plus de 6L/min d'O2-40% FiO2 pour une SpO2 égale ou supérieure à 90% depuis plus de 24h.
|
Écouvillon nasal pharyngé
20 cc de sang seront prélevés tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
|
COVID+, non SRAS
patients COVID+ non symptomatiques respiratoires SRAS, avec ou sans infiltrats pulmonaires, non ventilés mécaniquement, et nécessitant moins de 6L/min O2-40% FiO2 pour une SpO2 égale ou supérieure à 90%.
Ils sont hospitalisés en étages (pneumologie, médecine interne ou en réanimation).
|
Écouvillon nasal pharyngé
20 cc de sang seront prélevés tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
|
COVID-, SDRA
les patients sont en SDRA selon la définition de Berlin et la lésion pulmonaire est catégorisée sous la forme directe (par ex.
pneumonie, aspiration).
|
Écouvillon nasal pharyngé
20 cc de sang seront prélevés tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
|
COVID-, non ARDS
les patients ne sont pas en SDRA selon la définition de Berlin mais sont symptomatiques respiratoires, avec ou sans infiltrats pulmonaires et ont besoin de moins de 6L O2/min-40% FiO2 pour une SpO2 égale ou supérieure à 90%.
|
Écouvillon nasal pharyngé
20 cc de sang seront prélevés tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
|
COVID-, contrôle, MV+
patients hospitalisés et ventilés mécaniquement pour des raisons non respiratoires (post hoc avec appariement sexe-âge).
|
Écouvillon nasal pharyngé
20 cc de sang seront prélevés tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
|
COVID-, contrôle, MV-
patients non ventilés mécaniquement hospitalisés pour des raisons non respiratoires (post hoc avec appariement sexe-âge).
|
Écouvillon nasal pharyngé
20 cc de sang seront prélevés tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
Apelins sanguins-13/12, -17/16, -36
Délai: 28 jours
|
Mesure par MS/MS des apelines sanguines -13/12, -17/16, -36 tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Angiotensine sanguine II
Délai: 28 jours
|
Dosage par ELISA de l'angiotensine II sanguine tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Protéine des cellules de Clara du sang (CC16)
Délai: 28 jours
|
Mesure par ELISA du CC16 sanguin tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Interleukine-6 sanguine (IL-6)
Délai: 28 jours
|
Dosage par ELISA de l'IL-6 sanguin tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Protéine D du surfactant sanguin (SP-D)
Délai: 28 jours
|
Mesure par ELISA de la SP-D sanguine tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Mesure de l'activité ACE2 plasmatique par fluorométrie
Délai: 28 jours
|
Mesure de l'activité ACE2 plasmatique tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Mesure de l'activité lysyl oxydase plasmatique par fluorométrie
Délai: 28 jours
|
Mesure de l'activité lysyl oxydase plasmatique tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Mesure de l'activité néprilysine plasmatique par fluorométrie
Délai: 28 jours
|
Mesure de l'activité plasmatique de la néprilysine tous les 7 jours pendant 28 jours.
|
28 jours
|
Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
|
APACHE II
Délai: 28 jours
|
Score pronostique (APACHEII) chaque jour pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Indice d'oxygénation
Délai: 28 jours
|
Indice d'oxygénation chaque jour pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Ventilation mécanique
Délai: 28 jours
|
Durée de la ventilation mécanique.
|
28 jours
|
|
Compliance pulmonaire (Dynamique, temps réel, sur appareil respiratoire : Volume courant / Pression plateau - PEP
Délai: 28 jours
|
Mesure de la compliance pulmonaire chaque jour pendant 28 jours.
|
28 jours
|
|
Durée du séjour à l'hôpital
Délai: 28 jours
|
Mesure de la durée d'hospitalisation et/ou de la mortalité hospitalière.
|
28 jours
|
|
CANAPÉ
Délai: 28 jours
|
Score pronostique (SOFA) chaque jour pendant 28 jours.
|
28 jours
|
Collaborateurs et enquêteurs
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Olivier Lesur, MD PhD, Sherbrooke University
Publications et liens utiles
Publications générales
- Zhou F, Yu T, Du R, Fan G, Liu Y, Liu Z, Xiang J, Wang Y, Song B, Gu X, Guan L, Wei Y, Li H, Wu X, Xu J, Tu S, Zhang Y, Chen H, Cao B. Clinical course and risk factors for mortality of adult inpatients with COVID-19 in Wuhan, China: a retrospective cohort study. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1054-1062. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30566-3. Epub 2020 Mar 11. Erratum In: Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1038. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1038.
- ARDS Definition Task Force, Ranieri VM, Rubenfeld GD, Thompson BT, Ferguson ND, Caldwell E, Fan E, Camporota L, Slutsky AS. Acute respiratory distress syndrome: the Berlin Definition. JAMA. 2012 Jun 20;307(23):2526-33. doi: 10.1001/jama.2012.5669.
- Ware LB, Matthay MA. The acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2000 May 4;342(18):1334-49. doi: 10.1056/NEJM200005043421806. No abstract available.
- Zhang H, Penninger JM, Li Y, Zhong N, Slutsky AS. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) as a SARS-CoV-2 receptor: molecular mechanisms and potential therapeutic target. Intensive Care Med. 2020 Apr;46(4):586-590. doi: 10.1007/s00134-020-05985-9. Epub 2020 Mar 3. No abstract available.
- Eisner MD, Parsons P, Matthay MA, Ware L, Greene K; Acute Respiratory Distress Syndrome Network. Plasma surfactant protein levels and clinical outcomes in patients with acute lung injury. Thorax. 2003 Nov;58(11):983-8. doi: 10.1136/thorax.58.11.983.
- Hoffmann M, Kleine-Weber H, Schroeder S, Kruger N, Herrler T, Erichsen S, Schiergens TS, Herrler G, Wu NH, Nitsche A, Muller MA, Drosten C, Pohlmann S. SARS-CoV-2 Cell Entry Depends on ACE2 and TMPRSS2 and Is Blocked by a Clinically Proven Protease Inhibitor. Cell. 2020 Apr 16;181(2):271-280.e8. doi: 10.1016/j.cell.2020.02.052. Epub 2020 Mar 5.
- Kuba K, Imai Y, Rao S, Gao H, Guo F, Guan B, Huan Y, Yang P, Zhang Y, Deng W, Bao L, Zhang B, Liu G, Wang Z, Chappell M, Liu Y, Zheng D, Leibbrandt A, Wada T, Slutsky AS, Liu D, Qin C, Jiang C, Penninger JM. A crucial role of angiotensin converting enzyme 2 (ACE2) in SARS coronavirus-induced lung injury. Nat Med. 2005 Aug;11(8):875-9. doi: 10.1038/nm1267. Epub 2005 Jul 10.
- Gattinoni L, Coppola S, Cressoni M, Busana M, Rossi S, Chiumello D. COVID-19 Does Not Lead to a "Typical" Acute Respiratory Distress Syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 2020 May 15;201(10):1299-1300. doi: 10.1164/rccm.202003-0817LE. No abstract available.
- Imai Y, Kuba K, Rao S, Huan Y, Guo F, Guan B, Yang P, Sarao R, Wada T, Leong-Poi H, Crackower MA, Fukamizu A, Hui CC, Hein L, Uhlig S, Slutsky AS, Jiang C, Penninger JM. Angiotensin-converting enzyme 2 protects from severe acute lung failure. Nature. 2005 Jul 7;436(7047):112-6. doi: 10.1038/nature03712.
- Sun H, Ning R, Tao Y, Yu C, Deng X, Zhao C, Meng S, Tang F, Xu D. Risk Factors for Mortality in 244 Older Adults With COVID-19 in Wuhan, China: A Retrospective Study. J Am Geriatr Soc. 2020 Jun;68(6):E19-E23. doi: 10.1111/jgs.16533. Epub 2020 May 12.
- Nikpouraghdam M, Jalali Farahani A, Alishiri G, Heydari S, Ebrahimnia M, Samadinia H, Sepandi M, Jafari NJ, Izadi M, Qazvini A, Dorostkar R, Tat M, Shahriary A, Farnoosh G, Hosseini Zijoud SR, Taghdir M, Alimohamadi Y, Abbaszadeh S, Gouvarchin Ghaleh HE, Bagheri M. Epidemiological characteristics of coronavirus disease 2019 (COVID-19) patients in IRAN: A single center study. J Clin Virol. 2020 Jun;127:104378. doi: 10.1016/j.jcv.2020.104378. Epub 2020 Apr 21.
- Zangrillo A, Beretta L, Scandroglio AM, Monti G, Fominskiy E, Colombo S, Morselli F, Belletti A, Silvani P, Crivellari M, Monaco F, Azzolini ML, Reineke R, Nardelli P, Sartorelli M, Votta CD, Ruggeri A, Ciceri F, De Cobelli F, Tresoldi M, Dagna L, Rovere-Querini P, Serpa Neto A, Bellomo R, Landoni G; COVID-BioB Study Group. Characteristics, treatment, outcomes and cause of death of invasively ventilated patients with COVID-19 ARDS in Milan, Italy. Crit Care Resusc. 2020 Apr 23. Online ahead of print.
- Lu W, Zhang S, Chen B, Chen J, Xian J, Lin Y, Shan H, Su ZZ. A Clinical Study of Noninvasive Assessment of Lung Lesions in Patients with Coronavirus Disease-19 (COVID-19) by Bedside Ultrasound. Ultraschall Med. 2020 Jun;41(3):300-307. doi: 10.1055/a-1154-8795. Epub 2020 Apr 15.
- Sayiner A, Cinkooglu A, Tasbakan MS, Basoglu OK, Ceylan N, Savas R, Bayraktaroglu S, Ozhan MH. Radiographic examination of the chest and COVID-19. Ann R Coll Surg Engl. 2020 May;102(5):334. doi: 10.1308/rcsann.2020.0099. No abstract available.
- Wu J, Pan J, Teng D, Xu X, Feng J, Chen YC. Interpretation of CT signs of 2019 novel coronavirus (COVID-19) pneumonia. Eur Radiol. 2020 Oct;30(10):5455-5462. doi: 10.1007/s00330-020-06915-5. Epub 2020 May 4.
- Toniati P, Piva S, Cattalini M, Garrafa E, Regola F, Castelli F, Franceschini F, Airo P, Bazzani C, Beindorf EA, Berlendis M, Bezzi M, Bossini N, Castellano M, Cattaneo S, Cavazzana I, Contessi GB, Crippa M, Delbarba A, De Peri E, Faletti A, Filippini M, Filippini M, Frassi M, Gaggiotti M, Gorla R, Lanspa M, Lorenzotti S, Marino R, Maroldi R, Metra M, Matteelli A, Modina D, Moioli G, Montani G, Muiesan ML, Odolini S, Peli E, Pesenti S, Pezzoli MC, Pirola I, Pozzi A, Proto A, Rasulo FA, Renisi G, Ricci C, Rizzoni D, Romanelli G, Rossi M, Salvetti M, Scolari F, Signorini L, Taglietti M, Tomasoni G, Tomasoni LR, Turla F, Valsecchi A, Zani D, Zuccala F, Zunica F, Foca E, Andreoli L, Latronico N. Tocilizumab for the treatment of severe COVID-19 pneumonia with hyperinflammatory syndrome and acute respiratory failure: A single center study of 100 patients in Brescia, Italy. Autoimmun Rev. 2020 Jul;19(7):102568. doi: 10.1016/j.autrev.2020.102568. Epub 2020 May 3.
- van de Veerdonk FL, Netea MG, van Deuren M, van der Meer JW, de Mast Q, Bruggemann RJ, van der Hoeven H. Kallikrein-kinin blockade in patients with COVID-19 to prevent acute respiratory distress syndrome. Elife. 2020 Apr 27;9:e57555. doi: 10.7554/eLife.57555.
- Gralinski LE, Bankhead A 3rd, Jeng S, Menachery VD, Proll S, Belisle SE, Matzke M, Webb-Robertson BJ, Luna ML, Shukla AK, Ferris MT, Bolles M, Chang J, Aicher L, Waters KM, Smith RD, Metz TO, Law GL, Katze MG, McWeeney S, Baric RS. Mechanisms of severe acute respiratory syndrome coronavirus-induced acute lung injury. mBio. 2013 Aug 6;4(4):e00271-13. doi: 10.1128/mBio.00271-13.
- Herold S, Gabrielli NM, Vadasz I. Novel concepts of acute lung injury and alveolar-capillary barrier dysfunction. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2013 Nov 15;305(10):L665-81. doi: 10.1152/ajplung.00232.2013. Epub 2013 Sep 13.
- Keidar S, Kaplan M, Gamliel-Lazarovich A. ACE2 of the heart: From angiotensin I to angiotensin (1-7). Cardiovasc Res. 2007 Feb 1;73(3):463-9. doi: 10.1016/j.cardiores.2006.09.006. Epub 2006 Sep 19.
- Gichuhi PM, Isahakia MA. Electron-microscopic localization of baboon acrosomal antigens using antisperm monoclonal antibody. Acta Anat (Basel). 1992;144(2):178-83. doi: 10.1159/000147304.
- Wevers BA, van der Hoek L. Renin-angiotensin system in human coronavirus pathogenesis. Future Virol. 2010 Mar;5(2):145-161. doi: 10.2217/fvl.10.4. Epub 2010 Mar 1.
- Yang P, Gu H, Zhao Z, Wang W, Cao B, Lai C, Yang X, Zhang L, Duan Y, Zhang S, Chen W, Zhen W, Cai M, Penninger JM, Jiang C, Wang X. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) mediates influenza H7N9 virus-induced acute lung injury. Sci Rep. 2014 Nov 13;4:7027. doi: 10.1038/srep07027.
- Mossel EC, Wang J, Jeffers S, Edeen KE, Wang S, Cosgrove GP, Funk CJ, Manzer R, Miura TA, Pearson LD, Holmes KV, Mason RJ. SARS-CoV replicates in primary human alveolar type II cell cultures but not in type I-like cells. Virology. 2008 Mar 1;372(1):127-35. doi: 10.1016/j.virol.2007.09.045. Epub 2007 Nov 26.
- Lesur O, Arsalane K, Lane D. Lung alveolar epithelial cell migration in vitro: modulators and regulation processes. Am J Physiol. 1996 Mar;270(3 Pt 1):L311-9. doi: 10.1152/ajplung.1996.270.3.L311.
- Berthiaume Y, Lesur O, Dagenais A. Treatment of adult respiratory distress syndrome: plea for rescue therapy of the alveolar epithelium. Thorax. 1999 Feb;54(2):150-60. doi: 10.1136/thx.54.2.150. No abstract available.
- Lesur O, Berthiaume Y, Blaise G, Damas P, Deland E, Guimond JG, Michel RP. Acute respiratory distress syndrome: 30 years later. Can Respir J. 1999 Jan-Feb;6(1):71-86. doi: 10.1155/1999/812476.
- Park J, Pabon M, Choi AMK, Siempos II, Fredenburgh LE, Baron RM, Jeon K, Chung CR, Yang JH, Park CM, Suh GY. Plasma surfactant protein-D as a diagnostic biomarker for acute respiratory distress syndrome: validation in US and Korean cohorts. BMC Pulm Med. 2017 Dec 15;17(1):204. doi: 10.1186/s12890-017-0532-1.
- Lesur O, Langevin S, Berthiaume Y, Legare M, Skrobik Y, Bellemare JF, Levy B, Fortier Y, Lauzier F, Bravo G, Nickmilder M, Rousseau E, Bernard A; Critical Care Research Group of the Quebec Respiratory Health Network. Outcome value of Clara cell protein in serum of patients with acute respiratory distress syndrome. Intensive Care Med. 2006 Aug;32(8):1167-74. doi: 10.1007/s00134-006-0235-1. Epub 2006 Jun 23.
- Lesur O, Hermans C, Chalifour JF, Picotte J, Levy B, Bernard A, Lane D. Mechanical ventilation-induced pneumoprotein CC-16 vascular transfer in rats: effect of KGF pretreatment. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2003 Feb;284(2):L410-9. doi: 10.1152/ajplung.00384.2001. Epub 2002 Oct 25.
- Wosten-van Asperen RM, Lutter R, Specht PA, Moll GN, van Woensel JB, van der Loos CM, van Goor H, Kamilic J, Florquin S, Bos AP. Acute respiratory distress syndrome leads to reduced ratio of ACE/ACE2 activities and is prevented by angiotensin-(1-7) or an angiotensin II receptor antagonist. J Pathol. 2011 Dec;225(4):618-27. doi: 10.1002/path.2987. Epub 2011 Oct 18.
- Zhang R, Pan Y, Fanelli V, Wu S, Luo AA, Islam D, Han B, Mao P, Ghazarian M, Zeng W, Spieth PM, Wang D, Khang J, Mo H, Liu X, Uhlig S, Liu M, Laffey J, Slutsky AS, Li Y, Zhang H. Mechanical Stress and the Induction of Lung Fibrosis via the Midkine Signaling Pathway. Am J Respir Crit Care Med. 2015 Aug 1;192(3):315-23. doi: 10.1164/rccm.201412-2326OC.
- Marsault E, Llorens-Cortes C, Iturrioz X, Chun HJ, Lesur O, Oudit GY, Auger-Messier M. The apelinergic system: a perspective on challenges and opportunities in cardiovascular and metabolic disorders. Ann N Y Acad Sci. 2019 Nov;1455(1):12-33. doi: 10.1111/nyas.14123. Epub 2019 Jun 25.
- Coquerel D, Sainsily X, Dumont L, Sarret P, Marsault E, Auger-Messier M, Lesur O. The apelinergic system as an alternative to catecholamines in low-output septic shock. Crit Care. 2018 Jan 19;22(1):10. doi: 10.1186/s13054-018-1942-z.
- Raab WH, Magerl W, Muller H. Changes in dental blood flow following electrical tooth pulp stimulation--influences of capsaicin and guanethidine. Agents Actions. 1988 Dec;25(3-4):237-9. doi: 10.1007/BF01965022.
- Berta J, Kenessey I, Dobos J, Tovari J, Klepetko W, Jan Ankersmit H, Hegedus B, Renyi-Vamos F, Varga J, Lorincz Z, Paku S, Ostoros G, Rozsas A, Timar J, Dome B. Apelin expression in human non-small cell lung cancer: role in angiogenesis and prognosis. J Thorac Oncol. 2010 Aug;5(8):1120-9. doi: 10.1097/JTO.0b013e3181e2c1ff.
- Zhang H, Chen S, Zeng M, Lin D, Wang Y, Wen X, Xu C, Yang L, Fan X, Gong Y, Zhang H, Kong X. Apelin-13 Administration Protects Against LPS-Induced Acute Lung Injury by Inhibiting NF-kappaB Pathway and NLRP3 Inflammasome Activation. Cell Physiol Biochem. 2018;49(5):1918-1932. doi: 10.1159/000493653. Epub 2018 Sep 20.
- Visser YP, Walther FJ, Laghmani el H, Laarse Av, Wagenaar GT. Apelin attenuates hyperoxic lung and heart injury in neonatal rats. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Nov 15;182(10):1239-50. doi: 10.1164/rccm.200909-1361OC. Epub 2010 Jul 9.
- Zhang L, Li F, Su X, Li Y, Wang Y, Fang R, Guo Y, Jin T, Shan H, Zhao X, Yang R, Shan H, Liang H. Melatonin prevents lung injury by regulating apelin 13 to improve mitochondrial dysfunction. Exp Mol Med. 2019 Jul 4;51(7):1-12. doi: 10.1038/s12276-019-0273-8.
- He L, Xu J, Chen L, Li L. Apelin/APJ signaling in hypoxia-related diseases. Clin Chim Acta. 2015 Dec 7;451(Pt B):191-8. doi: 10.1016/j.cca.2015.09.029. Epub 2015 Oct 3.
- Andersen CU, Markvardsen LH, Hilberg O, Simonsen U. Pulmonary apelin levels and effects in rats with hypoxic pulmonary hypertension. Respir Med. 2009 Nov;103(11):1663-71. doi: 10.1016/j.rmed.2009.05.011. Epub 2009 Jun 17.
- Wang W, McKinnie SM, Farhan M, Paul M, McDonald T, McLean B, Llorens-Cortes C, Hazra S, Murray AG, Vederas JC, Oudit GY. Angiotensin-Converting Enzyme 2 Metabolizes and Partially Inactivates Pyr-Apelin-13 and Apelin-17: Physiological Effects in the Cardiovascular System. Hypertension. 2016 Aug;68(2):365-77. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.115.06892. Epub 2016 May 23.
- Siddiquee K, Hampton J, McAnally D, May L, Smith L. The apelin receptor inhibits the angiotensin II type 1 receptor via allosteric trans-inhibition. Br J Pharmacol. 2013 Mar;168(5):1104-17. doi: 10.1111/j.1476-5381.2012.02192.x.
- Zhou N, Zhang X, Fan X, Argyris E, Fang J, Acheampong E, DuBois GC, Pomerantz RJ. The N-terminal domain of APJ, a CNS-based coreceptor for HIV-1, is essential for its receptor function and coreceptor activity. Virology. 2003 Dec 5;317(1):84-94. doi: 10.1016/j.virol.2003.08.026.
- Zou MX, Liu HY, Haraguchi Y, Soda Y, Tatemoto K, Hoshino H. Apelin peptides block the entry of human immunodeficiency virus (HIV). FEBS Lett. 2000 May 4;473(1):15-8. doi: 10.1016/s0014-5793(00)01487-3.
- Zhou N, Fang J, Mukhtar M, Acheampong E, Pomerantz RJ. Inhibition of HIV-1 fusion with small interfering RNAs targeting the chemokine coreceptor CXCR4. Gene Ther. 2004 Dec;11(23):1703-12. doi: 10.1038/sj.gt.3302339.
- Imai Y, Kuba K, Penninger JM. The discovery of angiotensin-converting enzyme 2 and its role in acute lung injury in mice. Exp Physiol. 2008 May;93(5):543-8. doi: 10.1113/expphysiol.2007.040048. Epub 2008 Apr 10.
- Jia H. Pulmonary Angiotensin-Converting Enzyme 2 (ACE2) and Inflammatory Lung Disease. Shock. 2016 Sep;46(3):239-48. doi: 10.1097/SHK.0000000000000633.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Réel)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Estimation)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
Plus d'information
Termes liés à cette étude
Mots clés
Termes MeSH pertinents supplémentaires
Autres numéros d'identification d'étude
- 2021-3862-APEL-COVID
Plan pour les données individuelles des participants (IPD)
Prévoyez-vous de partager les données individuelles des participants (DPI) ?
Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude
Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine
Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine
Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .