- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT04632732
Apelin; ACE2 e biomarcatori di permeabilità alveolare-capillare in SARS-cov-2 (COVID-19). (APEL-COVID)
Ipotesi: il sistema apelin/APJ è coinvolto nella protezione del polmone affetto da COVID-19 interagendo con la porta di ingresso della SARS-coV-2: l'enzima di conversione dell'angiotensina I 2 (ACE2) e il sistema renina-angiotensina (ras ). Livelli sistemici elevati di apeline e attività ACE2 sono associati a forme meno critiche di COVID-19 e caratterizzate da minore iperpermeabilità polmonare e infiammazione.
Obiettivi: Principale: Nei pazienti COVID-19+, stabilire la conoscenza di base di 1) apelins e sistemi correlati (ras ed enzimi di degradazione, di cui ACE2) profilo fenodinamico nel flusso sanguigno, 2) profilo di iperpermeabilità polmonare mediante valutazione del biomarcatore i) confronto tra SARS e danno respiratorio minore da COVID-19 e con ARDS non COVID-19 e condizione respiratoria acuta non ARDS. Secondario: creare collegamenti tra dati clinici di base e progressivi (sistema di raccolta dati APEL-COVID).
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
Il COVID-19 colpisce i pazienti attraverso la sua via d'ingresso: le vie aeree e il polmone profondo. Dal 20 al 30% dei pazienti adulti sintomatici che sono ricoverati all'interno o all'esterno dell'unità di terapia intensiva presentano distress respiratorio con importanti alterazioni dell'indice di ossigenazione. Tale sindrome è specificamente designata sindrome respiratoria acuta grave coronavirus 2 (SARS-coV-2). SARS-coV-2 si sviluppa 2 settimane dopo l'inizio dei sintomi, con febbre ricorrente, dispnea progressiva e un tasso di mortalità dal 10 al 50%. Nella SARS-coV-2: 1) gli infiltrati polmonari radiologici sono più periferici e 2) si osserva predominanza di iperinfiammazione (tempesta di citochine, di cui l'interleuchina-6 IL-6) e iperpermeabilità della barriera alveolo-capillare, 3) in confronto a una ARDS tradizionale (non COVID), l'ipossia generata è eccezionalmente grave e associata a una compliance polmonare scarsamente ridotta in oltre il 70% dei casi.
L'enzima 2 di conversione dell'angiotensina I (ACE2) è una carbossipeptidasi transmembrana del sistema renina-angiotensina (ras) implicato nell'omeostasi cardiovascolare. L'ACE2 contro-regola l'ipertensivo proinfiammatorio ACE1/Angiotensina II (Ang II). ACE2 converte Ang II in Ang1-7 per promuovere vasodilatazione, anti-infiammazione e protezione tissutale. L'ACE2 è espresso abbondantemente nei polmoni ed è la porta d'ingresso per molti virus come l'influenza A, coV-1 e -2. Una downregulation dell'attività ACE2 porta ad un eccesso di Ang II, con una stimolazione del recettore AngI (AT1R) e un aumento della permeabilità vascolare polmonare, con un impatto negativo sulla prognosi del virus influenzale H7N9. Più dell'85% dell'ACE2 polmonare è espresso nella membrana apicale delle cellule epiteliali alveolari di tipo II (AECII) che si trovano negli spazi aerei distali del polmone all'interfaccia della barriera alveolare-capillare. È qui che il coV-2 si insedia e induce la SARS (COVID-19+). Gli AECII regolano la permeabilità della barriera alveolo-capillare. Questi producono proteine specifiche (SP-D o proteina tensioattiva D, e CC-16 o proteina Clara Cell) che vengono rilasciate nel flusso sanguigno quando la barriera alveolo-capillare diventa iperpermeabile e sono marcatori biologici diagnostici e prognostici.
Il sistema apelin/APJ potrebbe essere un modo protettivo interagendo con il sistema renina-angiotensina (ras) e l'enzima di conversione 2 dell'angiotensina I (ACE2). Il sistema apelin/APJ è riconosciuto per proteggere e ottimizzare le funzioni cardiovascolari. Le apeline e il recettore APJ operano indipendentemente dal sistema catecolaminergico e costituiscono una risposta controregolatoria alla via vasopressinergica con attività inodilatatrice. L'apelina/APJ è largamente espressa nel polmone ed è coinvolta nella riduzione dell'infiammazione polmonare. Apelin-13 stabilizza la funzione mitocondriale, riduce la permeabilità della membrana, previene l'apoptosi e stimola la proliferazione di AECII. L'apelina/APJ è reattiva all'ipossia come nella SARS o nell'ARDS con un aumento dei livelli di apelina nel sangue. Le apeline sono substrati per il sistema ras e la callicreina/chinina che producono enzimi di degradazione come ACE2. Nonostante ciò, le apeline possono invertire una ridotta attività di ACE2 e regolare la sovrapproduzione di Ang II e la stimolazione di AT1R che portano ad un aumento della permeabilità vascolare polmonare e dell'edema polmonare. APJ è anche in grado di inibire AT1R mediante combinazione trans-allosterica. L'APJ è un co-recettore per il virus dell'immunodeficienza umana e delle scimmie e le apeline ne bloccano l'ingresso. La vicinanza tra ACE2 e APJ sulle membrane AECII e la loro gestione dell'internalizzazione/degradazione in termini di isoforma apelins portano alla domanda della loro interazione e del legame con la loro attività protettiva polmonare.
Ipotesi: il sistema apelin/APJ è coinvolto nella protezione del polmone affetto da COVID-19 interagendo con la porta di ingresso della SARS-coV-2: l'enzima di conversione dell'angiotensina I 2 (ACE2) e il sistema renina-angiotensina (ras ). Livelli sistemici elevati di apeline e attività ACE2 sono associati a forme meno critiche di COVID-19 e caratterizzate da minore iperpermeabilità polmonare e infiammazione.
Obiettivi: Principale: Nei pazienti COVID-19+, stabilire la conoscenza di base di 1) apelins e sistemi correlati (ras ed enzimi di degradazione, di cui ACE2) profilo fenodinamico nel flusso sanguigno, 2) profilo di iperpermeabilità polmonare mediante valutazione del biomarcatore i) confronto tra SARS e danno respiratorio minore da COVID-19 e con ARDS non COVID-19 e condizione respiratoria acuta non ARDS. Secondario: creare collegamenti tra dati clinici di base e progressivi (sistema di raccolta dati APEL-COVID).
Metodi: Studio pilota osservazionale di una coorte prospettica reclutando nelle 36 ore successive al ricovero pazienti adulti ricoverati per malattia respiratoria acuta sintomatica. Gruppi: 1) COVID+, SARS, MV+ (ventilazione meccanica) o meno, con più di 6L/min-40% di FiO2 per una SpO2 superiore al 90% per più di 24 ore (n=30); 2) COVID+, non SARS, MV-, con meno di 6L/min-40% di FiO2 per una SpO2 superiore al 90% per più di 24 ore (n=30); 3) COVID-, ARDS, MV+, con più di 6L/min-40% di FiO2 per una SpO2 superiore al 90% per più di 24 ore (n=30); 4) COVID-, non ARDS, MV-, con meno di 6L/min-40% di FiO2 per una SpO2 superiore al 90% per più di 24 ore (n=30). Dati gli effetti della pressione generata dalla ventilazione meccanica sui marcatori biologici epiteliali, verranno costituiti post hoc 2 sottogruppi di 10 pazienti di controllo ricoverati per motivi non respiratori con corrispondenza sesso-età ai suddetti gruppi. I pazienti COVID+ non SARS saranno sintomatici respiratori, con o senza infiltrati polmonari e bisogni in O2 inferiori a 6L/min-40% FiO2 per una SpO2 superiore al 90% e ricoverati ai piani di pneumologia o medicina interna o nelle terapie intensive unità. I pazienti ARDS saranno selezionati in forma diretta (es. polmonite, aspirazione) e i parametri dell'indice di ossigenazione stabiliti dalla definizione di Berlino.
Tipo di studio
Iscrizione (Effettivo)
Contatti e Sedi
Luoghi di studio
-
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Quebec
-
Sherbrooke, Quebec, Canada, J1H5N4
- Sherbrooke University
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
Accetta volontari sani
Sessi ammissibili allo studio
Metodo di campionamento
Popolazione di studio
Descrizione
Criterio di inclusione:
- Per i 4 gruppi maggiori non di controllo:
- Pazienti adulti ricoverati per malattia respiratoria acuta sintomatica (presumibilmente infettiva).
- Nelle 36 ore successive al ricovero.
Criteri di esclusione:
- Pazienti già ricoverati da più di 36 ore.
- Pazienti pediatrici.
- Pazienti asintomatici.
- Pazienti con malattie respiratorie non acute.
- Embolia polmonare primaria come causale (cioè l'embolia polmonare può essere concomitante a sintomi respiratori correlati a SRAS COVID ma non senza).
- BPCO terminale/grave esacerbato di fibrosi polmonare con o senza ossigeno domiciliare.
- Pazienti con forma indiretta di ARDS.
- Fibrosi cistica.
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Modelli osservazionali: Coorte
- Prospettive temporali: Prospettiva
Coorti e interventi
Gruppo / Coorte |
Intervento / Trattamento |
|---|---|
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COVID+, SARS
pazienti COVID+ SARS ventilati meccanicamente e/o che necessitano di più di 6L/min di O2-40% di FiO2 per una SpO2 pari o superiore al 90% per più di 24 ore.
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Tampone nasale faringeo
Saranno raccolti 20 cc di sangue ogni 7 giorni per 28 giorni.
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COVID+, non SARS
pazienti COVID+ non SARS respiratori sintomatici, con o senza infiltrati polmonari, non ventilati meccanicamente e che necessitano di meno di 6L/min O2-40% di FiO2 per una SpO2 pari o superiore al 90%.
Sono ricoverati ai piani (pneumologia, medicina interna o in unità di terapia intensiva).
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Tampone nasale faringeo
Saranno raccolti 20 cc di sangue ogni 7 giorni per 28 giorni.
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COVID-, ARDS
i pazienti sono in ARDS secondo la definizione di Berlino e la lesione polmonare è classificata nella forma diretta (ad es.
polmonite, aspirazione).
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Tampone nasale faringeo
Saranno raccolti 20 cc di sangue ogni 7 giorni per 28 giorni.
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COVID-, nonARDS
i pazienti non sono in ARDS secondo la definizione di Berlino ma sono respiratori sintomatici, con o senza infiltrati polmonari e necessitano di meno di 6L O2/min-40% di FiO2 per una SpO2 uguale o superiore al 90%.
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Tampone nasale faringeo
Saranno raccolti 20 cc di sangue ogni 7 giorni per 28 giorni.
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COVID-, controllo, MV+
pazienti ricoverati e ventilati meccanicamente per motivi non respiratori (post hoc con corrispondenza sesso-età).
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Tampone nasale faringeo
Saranno raccolti 20 cc di sangue ogni 7 giorni per 28 giorni.
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COVID-, controllo, MV-
pazienti non ventilati meccanicamente ricoverati per motivi non respiratori (post hoc con corrispondenza sesso-età).
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Tampone nasale faringeo
Saranno raccolti 20 cc di sangue ogni 7 giorni per 28 giorni.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Apelins di sangue-13/12, -17/16, -36
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione mediante MS/MS delle apeline ematiche-13/12, -17/16, -36 ogni 7 giorni per 28 giorni.
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28 giorni
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Angiotensina II nel sangue
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione mediante ELISA dell'angiotensina II nel sangue ogni 7 giorni per 28 giorni.
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28 giorni
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Proteina cellulare Clara del sangue (CC16)
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione mediante ELISA del sangue CC16 ogni 7 giorni per 28 giorni.
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28 giorni
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Interleuchina-6 nel sangue (IL-6)
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione mediante ELISA dell'IL-6 nel sangue ogni 7 giorni per 28 giorni.
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28 giorni
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Proteina D del surfattante del sangue (SP-D)
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione mediante ELISA del sangue SP-D ogni 7 giorni per 28 giorni.
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28 giorni
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Misurazione dell'attività plasmatica di ACE2 mediante fluorometria
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione dell'attività plasmatica di ACE2 ogni 7 giorni per 28 giorni.
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28 giorni
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Misurazione dell'attività della lisilossidasi plasmatica mediante fluorometria
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione dell'attività della lisil ossidasi plasmatica ogni 7 giorni per 28 giorni.
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28 giorni
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Misurazione dell'attività della neprilisina plasmatica mediante fluorometria
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione dell'attività della neprilisina plasmatica ogni 7 giorni per 28 giorni.
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28 giorni
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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APACHE II
Lasso di tempo: 28 giorni
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Punteggio prognostico (APACHEII) ogni giorno per 28 giorni.
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28 giorni
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Indice di ossigenazione
Lasso di tempo: 28 giorni
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Indice di ossigenazione ogni giorno per 28 giorni.
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28 giorni
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Ventilazione meccanica
Lasso di tempo: 28 giorni
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Durata della ventilazione meccanica.
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28 giorni
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Compliance polmonare (dinamica, in tempo reale, sul dispositivo di ventilazione: volume corrente / pressione di plateau - PEEP
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione della compliance polmonare ogni giorno per 28 giorni.
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28 giorni
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Durata della degenza ospedaliera
Lasso di tempo: 28 giorni
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Misurazione della durata della degenza ospedaliera e/o della mortalità in ospedale.
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28 giorni
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DIVANO
Lasso di tempo: 28 giorni
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Punteggio prognostico (SOFA) ogni giorno per 28 giorni.
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28 giorni
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Collaboratori e investigatori
Collaboratori
Investigatori
- Investigatore principale: Olivier Lesur, MD PhD, Sherbrooke University
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Zhou F, Yu T, Du R, Fan G, Liu Y, Liu Z, Xiang J, Wang Y, Song B, Gu X, Guan L, Wei Y, Li H, Wu X, Xu J, Tu S, Zhang Y, Chen H, Cao B. Clinical course and risk factors for mortality of adult inpatients with COVID-19 in Wuhan, China: a retrospective cohort study. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1054-1062. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30566-3. Epub 2020 Mar 11. Erratum In: Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1038. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1038.
- ARDS Definition Task Force, Ranieri VM, Rubenfeld GD, Thompson BT, Ferguson ND, Caldwell E, Fan E, Camporota L, Slutsky AS. Acute respiratory distress syndrome: the Berlin Definition. JAMA. 2012 Jun 20;307(23):2526-33. doi: 10.1001/jama.2012.5669.
- Ware LB, Matthay MA. The acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2000 May 4;342(18):1334-49. doi: 10.1056/NEJM200005043421806. No abstract available.
- Zhang H, Penninger JM, Li Y, Zhong N, Slutsky AS. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) as a SARS-CoV-2 receptor: molecular mechanisms and potential therapeutic target. Intensive Care Med. 2020 Apr;46(4):586-590. doi: 10.1007/s00134-020-05985-9. Epub 2020 Mar 3. No abstract available.
- Eisner MD, Parsons P, Matthay MA, Ware L, Greene K; Acute Respiratory Distress Syndrome Network. Plasma surfactant protein levels and clinical outcomes in patients with acute lung injury. Thorax. 2003 Nov;58(11):983-8. doi: 10.1136/thorax.58.11.983.
- Hoffmann M, Kleine-Weber H, Schroeder S, Kruger N, Herrler T, Erichsen S, Schiergens TS, Herrler G, Wu NH, Nitsche A, Muller MA, Drosten C, Pohlmann S. SARS-CoV-2 Cell Entry Depends on ACE2 and TMPRSS2 and Is Blocked by a Clinically Proven Protease Inhibitor. Cell. 2020 Apr 16;181(2):271-280.e8. doi: 10.1016/j.cell.2020.02.052. Epub 2020 Mar 5.
- Kuba K, Imai Y, Rao S, Gao H, Guo F, Guan B, Huan Y, Yang P, Zhang Y, Deng W, Bao L, Zhang B, Liu G, Wang Z, Chappell M, Liu Y, Zheng D, Leibbrandt A, Wada T, Slutsky AS, Liu D, Qin C, Jiang C, Penninger JM. A crucial role of angiotensin converting enzyme 2 (ACE2) in SARS coronavirus-induced lung injury. Nat Med. 2005 Aug;11(8):875-9. doi: 10.1038/nm1267. Epub 2005 Jul 10.
- Gattinoni L, Coppola S, Cressoni M, Busana M, Rossi S, Chiumello D. COVID-19 Does Not Lead to a "Typical" Acute Respiratory Distress Syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 2020 May 15;201(10):1299-1300. doi: 10.1164/rccm.202003-0817LE. No abstract available.
- Imai Y, Kuba K, Rao S, Huan Y, Guo F, Guan B, Yang P, Sarao R, Wada T, Leong-Poi H, Crackower MA, Fukamizu A, Hui CC, Hein L, Uhlig S, Slutsky AS, Jiang C, Penninger JM. Angiotensin-converting enzyme 2 protects from severe acute lung failure. Nature. 2005 Jul 7;436(7047):112-6. doi: 10.1038/nature03712.
- Sun H, Ning R, Tao Y, Yu C, Deng X, Zhao C, Meng S, Tang F, Xu D. Risk Factors for Mortality in 244 Older Adults With COVID-19 in Wuhan, China: A Retrospective Study. J Am Geriatr Soc. 2020 Jun;68(6):E19-E23. doi: 10.1111/jgs.16533. Epub 2020 May 12.
- Nikpouraghdam M, Jalali Farahani A, Alishiri G, Heydari S, Ebrahimnia M, Samadinia H, Sepandi M, Jafari NJ, Izadi M, Qazvini A, Dorostkar R, Tat M, Shahriary A, Farnoosh G, Hosseini Zijoud SR, Taghdir M, Alimohamadi Y, Abbaszadeh S, Gouvarchin Ghaleh HE, Bagheri M. Epidemiological characteristics of coronavirus disease 2019 (COVID-19) patients in IRAN: A single center study. J Clin Virol. 2020 Jun;127:104378. doi: 10.1016/j.jcv.2020.104378. Epub 2020 Apr 21.
- Zangrillo A, Beretta L, Scandroglio AM, Monti G, Fominskiy E, Colombo S, Morselli F, Belletti A, Silvani P, Crivellari M, Monaco F, Azzolini ML, Reineke R, Nardelli P, Sartorelli M, Votta CD, Ruggeri A, Ciceri F, De Cobelli F, Tresoldi M, Dagna L, Rovere-Querini P, Serpa Neto A, Bellomo R, Landoni G; COVID-BioB Study Group. Characteristics, treatment, outcomes and cause of death of invasively ventilated patients with COVID-19 ARDS in Milan, Italy. Crit Care Resusc. 2020 Apr 23. Online ahead of print.
- Lu W, Zhang S, Chen B, Chen J, Xian J, Lin Y, Shan H, Su ZZ. A Clinical Study of Noninvasive Assessment of Lung Lesions in Patients with Coronavirus Disease-19 (COVID-19) by Bedside Ultrasound. Ultraschall Med. 2020 Jun;41(3):300-307. doi: 10.1055/a-1154-8795. Epub 2020 Apr 15.
- Sayiner A, Cinkooglu A, Tasbakan MS, Basoglu OK, Ceylan N, Savas R, Bayraktaroglu S, Ozhan MH. Radiographic examination of the chest and COVID-19. Ann R Coll Surg Engl. 2020 May;102(5):334. doi: 10.1308/rcsann.2020.0099. No abstract available.
- Wu J, Pan J, Teng D, Xu X, Feng J, Chen YC. Interpretation of CT signs of 2019 novel coronavirus (COVID-19) pneumonia. Eur Radiol. 2020 Oct;30(10):5455-5462. doi: 10.1007/s00330-020-06915-5. Epub 2020 May 4.
- Toniati P, Piva S, Cattalini M, Garrafa E, Regola F, Castelli F, Franceschini F, Airo P, Bazzani C, Beindorf EA, Berlendis M, Bezzi M, Bossini N, Castellano M, Cattaneo S, Cavazzana I, Contessi GB, Crippa M, Delbarba A, De Peri E, Faletti A, Filippini M, Filippini M, Frassi M, Gaggiotti M, Gorla R, Lanspa M, Lorenzotti S, Marino R, Maroldi R, Metra M, Matteelli A, Modina D, Moioli G, Montani G, Muiesan ML, Odolini S, Peli E, Pesenti S, Pezzoli MC, Pirola I, Pozzi A, Proto A, Rasulo FA, Renisi G, Ricci C, Rizzoni D, Romanelli G, Rossi M, Salvetti M, Scolari F, Signorini L, Taglietti M, Tomasoni G, Tomasoni LR, Turla F, Valsecchi A, Zani D, Zuccala F, Zunica F, Foca E, Andreoli L, Latronico N. Tocilizumab for the treatment of severe COVID-19 pneumonia with hyperinflammatory syndrome and acute respiratory failure: A single center study of 100 patients in Brescia, Italy. Autoimmun Rev. 2020 Jul;19(7):102568. doi: 10.1016/j.autrev.2020.102568. Epub 2020 May 3.
- van de Veerdonk FL, Netea MG, van Deuren M, van der Meer JW, de Mast Q, Bruggemann RJ, van der Hoeven H. Kallikrein-kinin blockade in patients with COVID-19 to prevent acute respiratory distress syndrome. Elife. 2020 Apr 27;9:e57555. doi: 10.7554/eLife.57555.
- Gralinski LE, Bankhead A 3rd, Jeng S, Menachery VD, Proll S, Belisle SE, Matzke M, Webb-Robertson BJ, Luna ML, Shukla AK, Ferris MT, Bolles M, Chang J, Aicher L, Waters KM, Smith RD, Metz TO, Law GL, Katze MG, McWeeney S, Baric RS. Mechanisms of severe acute respiratory syndrome coronavirus-induced acute lung injury. mBio. 2013 Aug 6;4(4):e00271-13. doi: 10.1128/mBio.00271-13.
- Herold S, Gabrielli NM, Vadasz I. Novel concepts of acute lung injury and alveolar-capillary barrier dysfunction. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2013 Nov 15;305(10):L665-81. doi: 10.1152/ajplung.00232.2013. Epub 2013 Sep 13.
- Keidar S, Kaplan M, Gamliel-Lazarovich A. ACE2 of the heart: From angiotensin I to angiotensin (1-7). Cardiovasc Res. 2007 Feb 1;73(3):463-9. doi: 10.1016/j.cardiores.2006.09.006. Epub 2006 Sep 19.
- Gichuhi PM, Isahakia MA. Electron-microscopic localization of baboon acrosomal antigens using antisperm monoclonal antibody. Acta Anat (Basel). 1992;144(2):178-83. doi: 10.1159/000147304.
- Wevers BA, van der Hoek L. Renin-angiotensin system in human coronavirus pathogenesis. Future Virol. 2010 Mar;5(2):145-161. doi: 10.2217/fvl.10.4. Epub 2010 Mar 1.
- Yang P, Gu H, Zhao Z, Wang W, Cao B, Lai C, Yang X, Zhang L, Duan Y, Zhang S, Chen W, Zhen W, Cai M, Penninger JM, Jiang C, Wang X. Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) mediates influenza H7N9 virus-induced acute lung injury. Sci Rep. 2014 Nov 13;4:7027. doi: 10.1038/srep07027.
- Mossel EC, Wang J, Jeffers S, Edeen KE, Wang S, Cosgrove GP, Funk CJ, Manzer R, Miura TA, Pearson LD, Holmes KV, Mason RJ. SARS-CoV replicates in primary human alveolar type II cell cultures but not in type I-like cells. Virology. 2008 Mar 1;372(1):127-35. doi: 10.1016/j.virol.2007.09.045. Epub 2007 Nov 26.
- Lesur O, Arsalane K, Lane D. Lung alveolar epithelial cell migration in vitro: modulators and regulation processes. Am J Physiol. 1996 Mar;270(3 Pt 1):L311-9. doi: 10.1152/ajplung.1996.270.3.L311.
- Berthiaume Y, Lesur O, Dagenais A. Treatment of adult respiratory distress syndrome: plea for rescue therapy of the alveolar epithelium. Thorax. 1999 Feb;54(2):150-60. doi: 10.1136/thx.54.2.150. No abstract available.
- Lesur O, Berthiaume Y, Blaise G, Damas P, Deland E, Guimond JG, Michel RP. Acute respiratory distress syndrome: 30 years later. Can Respir J. 1999 Jan-Feb;6(1):71-86. doi: 10.1155/1999/812476.
- Park J, Pabon M, Choi AMK, Siempos II, Fredenburgh LE, Baron RM, Jeon K, Chung CR, Yang JH, Park CM, Suh GY. Plasma surfactant protein-D as a diagnostic biomarker for acute respiratory distress syndrome: validation in US and Korean cohorts. BMC Pulm Med. 2017 Dec 15;17(1):204. doi: 10.1186/s12890-017-0532-1.
- Lesur O, Langevin S, Berthiaume Y, Legare M, Skrobik Y, Bellemare JF, Levy B, Fortier Y, Lauzier F, Bravo G, Nickmilder M, Rousseau E, Bernard A; Critical Care Research Group of the Quebec Respiratory Health Network. Outcome value of Clara cell protein in serum of patients with acute respiratory distress syndrome. Intensive Care Med. 2006 Aug;32(8):1167-74. doi: 10.1007/s00134-006-0235-1. Epub 2006 Jun 23.
- Lesur O, Hermans C, Chalifour JF, Picotte J, Levy B, Bernard A, Lane D. Mechanical ventilation-induced pneumoprotein CC-16 vascular transfer in rats: effect of KGF pretreatment. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2003 Feb;284(2):L410-9. doi: 10.1152/ajplung.00384.2001. Epub 2002 Oct 25.
- Wosten-van Asperen RM, Lutter R, Specht PA, Moll GN, van Woensel JB, van der Loos CM, van Goor H, Kamilic J, Florquin S, Bos AP. Acute respiratory distress syndrome leads to reduced ratio of ACE/ACE2 activities and is prevented by angiotensin-(1-7) or an angiotensin II receptor antagonist. J Pathol. 2011 Dec;225(4):618-27. doi: 10.1002/path.2987. Epub 2011 Oct 18.
- Zhang R, Pan Y, Fanelli V, Wu S, Luo AA, Islam D, Han B, Mao P, Ghazarian M, Zeng W, Spieth PM, Wang D, Khang J, Mo H, Liu X, Uhlig S, Liu M, Laffey J, Slutsky AS, Li Y, Zhang H. Mechanical Stress and the Induction of Lung Fibrosis via the Midkine Signaling Pathway. Am J Respir Crit Care Med. 2015 Aug 1;192(3):315-23. doi: 10.1164/rccm.201412-2326OC.
- Marsault E, Llorens-Cortes C, Iturrioz X, Chun HJ, Lesur O, Oudit GY, Auger-Messier M. The apelinergic system: a perspective on challenges and opportunities in cardiovascular and metabolic disorders. Ann N Y Acad Sci. 2019 Nov;1455(1):12-33. doi: 10.1111/nyas.14123. Epub 2019 Jun 25.
- Coquerel D, Sainsily X, Dumont L, Sarret P, Marsault E, Auger-Messier M, Lesur O. The apelinergic system as an alternative to catecholamines in low-output septic shock. Crit Care. 2018 Jan 19;22(1):10. doi: 10.1186/s13054-018-1942-z.
- Raab WH, Magerl W, Muller H. Changes in dental blood flow following electrical tooth pulp stimulation--influences of capsaicin and guanethidine. Agents Actions. 1988 Dec;25(3-4):237-9. doi: 10.1007/BF01965022.
- Berta J, Kenessey I, Dobos J, Tovari J, Klepetko W, Jan Ankersmit H, Hegedus B, Renyi-Vamos F, Varga J, Lorincz Z, Paku S, Ostoros G, Rozsas A, Timar J, Dome B. Apelin expression in human non-small cell lung cancer: role in angiogenesis and prognosis. J Thorac Oncol. 2010 Aug;5(8):1120-9. doi: 10.1097/JTO.0b013e3181e2c1ff.
- Zhang H, Chen S, Zeng M, Lin D, Wang Y, Wen X, Xu C, Yang L, Fan X, Gong Y, Zhang H, Kong X. Apelin-13 Administration Protects Against LPS-Induced Acute Lung Injury by Inhibiting NF-kappaB Pathway and NLRP3 Inflammasome Activation. Cell Physiol Biochem. 2018;49(5):1918-1932. doi: 10.1159/000493653. Epub 2018 Sep 20.
- Visser YP, Walther FJ, Laghmani el H, Laarse Av, Wagenaar GT. Apelin attenuates hyperoxic lung and heart injury in neonatal rats. Am J Respir Crit Care Med. 2010 Nov 15;182(10):1239-50. doi: 10.1164/rccm.200909-1361OC. Epub 2010 Jul 9.
- Zhang L, Li F, Su X, Li Y, Wang Y, Fang R, Guo Y, Jin T, Shan H, Zhao X, Yang R, Shan H, Liang H. Melatonin prevents lung injury by regulating apelin 13 to improve mitochondrial dysfunction. Exp Mol Med. 2019 Jul 4;51(7):1-12. doi: 10.1038/s12276-019-0273-8.
- He L, Xu J, Chen L, Li L. Apelin/APJ signaling in hypoxia-related diseases. Clin Chim Acta. 2015 Dec 7;451(Pt B):191-8. doi: 10.1016/j.cca.2015.09.029. Epub 2015 Oct 3.
- Andersen CU, Markvardsen LH, Hilberg O, Simonsen U. Pulmonary apelin levels and effects in rats with hypoxic pulmonary hypertension. Respir Med. 2009 Nov;103(11):1663-71. doi: 10.1016/j.rmed.2009.05.011. Epub 2009 Jun 17.
- Wang W, McKinnie SM, Farhan M, Paul M, McDonald T, McLean B, Llorens-Cortes C, Hazra S, Murray AG, Vederas JC, Oudit GY. Angiotensin-Converting Enzyme 2 Metabolizes and Partially Inactivates Pyr-Apelin-13 and Apelin-17: Physiological Effects in the Cardiovascular System. Hypertension. 2016 Aug;68(2):365-77. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.115.06892. Epub 2016 May 23.
- Siddiquee K, Hampton J, McAnally D, May L, Smith L. The apelin receptor inhibits the angiotensin II type 1 receptor via allosteric trans-inhibition. Br J Pharmacol. 2013 Mar;168(5):1104-17. doi: 10.1111/j.1476-5381.2012.02192.x.
- Zhou N, Zhang X, Fan X, Argyris E, Fang J, Acheampong E, DuBois GC, Pomerantz RJ. The N-terminal domain of APJ, a CNS-based coreceptor for HIV-1, is essential for its receptor function and coreceptor activity. Virology. 2003 Dec 5;317(1):84-94. doi: 10.1016/j.virol.2003.08.026.
- Zou MX, Liu HY, Haraguchi Y, Soda Y, Tatemoto K, Hoshino H. Apelin peptides block the entry of human immunodeficiency virus (HIV). FEBS Lett. 2000 May 4;473(1):15-8. doi: 10.1016/s0014-5793(00)01487-3.
- Zhou N, Fang J, Mukhtar M, Acheampong E, Pomerantz RJ. Inhibition of HIV-1 fusion with small interfering RNAs targeting the chemokine coreceptor CXCR4. Gene Ther. 2004 Dec;11(23):1703-12. doi: 10.1038/sj.gt.3302339.
- Imai Y, Kuba K, Penninger JM. The discovery of angiotensin-converting enzyme 2 and its role in acute lung injury in mice. Exp Physiol. 2008 May;93(5):543-8. doi: 10.1113/expphysiol.2007.040048. Epub 2008 Apr 10.
- Jia H. Pulmonary Angiotensin-Converting Enzyme 2 (ACE2) and Inflammatory Lung Disease. Shock. 2016 Sep;46(3):239-48. doi: 10.1097/SHK.0000000000000633.
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