小さな胞状濾胞由来の COC の CAPA-IVM に対する Super-GDF9 の効果 (sGDF-9)
提供された小型胞状卵胞由来のヒト卵丘 - 卵母細胞複合体 (COC) の受精能獲得 - in vitro 成熟 (CAPA-IVM) 中のスーパー GDF9 の添加を評価する探索的 in vitro 研究
CAPA-IVM (In Vitro Maturation) テクノロジーは、特に高リスク患者にとって、安全性と治療コストの面で大きな利点を提供する生殖補助医療法です。 これらには、卵巣過剰刺激症候群(OHSS)、静脈血栓症、卵巣捻転、または多嚢胞性卵巣症候群(PCOS)を患っている人が含まれます。 ただし、CAPA-IVM グループの生児出生率 (35.2%) は従来の IVF (43.2%) に匹敵しますが、良質な胚の数と累積臨床妊娠率は依然として低いままです。 特に卵胞液に含まれる成長因子の添加による CAPA-IVM 培養プロセスの改善は、卵母細胞の品質を向上させることが期待されています。
成長分化因子 9 (GDF9) と骨形成タンパク質 15 (BMP15) は、卵胞の発育において重要な役割を果たしており、そのヘテロ二量体構造は卵丘 - 卵母細胞複合体 (COC) に対して最もプラスの効果を示しています。 最近の研究では、GDF9 の 1000 倍を超える効果があり、ヘテロ二量体成長因子であるクムリンを超える強力な変異体であるスーパー GDF9 が特定されました。 スーパー GDF9 は、卵丘細胞の増殖と卵母細胞の発育能力を強化し、生体内成熟を厳密に模倣します。
この研究では、CAPA-IVM培養中にスーパーGDF9を補給することの影響を調査し、小卵胞からの卵丘-卵母細胞複合体(COC)の結果を改善し、最終的に治療の成功を高めることを目的としています。
調査の概要
詳細な説明
CAPA-IVM (In Vitro Maturation) テクノロジーは、特に高リスク患者にとって、安全性と治療コストの面で大きな利点を提供する生殖補助医療法です。 これらには、卵巣過剰刺激症候群(OHSS)、静脈血栓症、卵巣捻転、または多嚢胞性卵巣症候群(PCOS)を患う患者が含まれます。これらの患者は通常、多数の胞状卵胞(全患者のほぼ15%を占める)を示します。 CAPA-IVM グループの最初の移植後の出生率は 35.2% ですが、これは従来の IVF グループの 43.2% と統計的には変わりません (リスク差: -8.1%、95% 信頼区間: -16.6% ~ 0.5) %)、1サイクルあたりの良質な胚の数と累積臨床妊娠率は従来の体外受精よりも低いままです。 したがって、CAPA-IVM 培養プロセスを改善して、最適な卵母細胞の数と品質を達成することが不可欠です。
同時に、卵胞液に一般的に見られる成長因子を培地に添加することは、CAPA-IVM における卵母細胞の品質の改善において顕著な進歩を表します。 拡大、代謝、アポトーシスなどの一部の体細胞区画は、卵母細胞分泌因子 (OSF) として知られる可溶性成長因子によって制御されています。 2 つの OSF、成長分化因子 9 (GDF9) と骨形成タンパク質 15 (BMP15) は、マウス、ヒツジ、ヒトなどのさまざまな種の卵胞の発育と生殖能力に重要であることが確認されています。 IVMの培養中に、これらの因子の未成熟型と成熟型の両方、さらにそれらのホモ二量体構造とヘテロ二量体構造が検査されています。 注目すべきことに、ヘテロ二量体構造は、IVM培養中の卵丘-卵母細胞複合体(COC)に対して最もプラスの効果を示しています。
どちらの成長因子もホモ二量体で存在しますが、最近の研究では、GDF9 と BMP15 ヘテロ二量体がクムリンと呼ばれる、より強力な成長因子を形成することもできることが判明しました。 BMP15 はクムリンの潜在的な GDF9 を活性化し、I 型受容体 (ALK4/5) および SMAD2/3 転写因子を介して顆粒膜細胞に強力なシグナル伝達を引き起こします。 生物医学的に操作されたクムリンは、マウスおよびブタモデルにおける胚の転帰を顕著に改善することが提案されている。 最近、スーパー GDF9 と呼ばれる野生型 GDF9 の改変バージョンは、顆粒膜細胞における SMAD2/3 応答性転写アッセイにおいて、GDF9 よりも 1000 倍以上強力で、クムリンより 4 倍以上の活性があることが実証されました。 これまでの研究では、マウスの CAPA-IVM 培地にスーパー GDF9 を添加すると、生体内成熟とよく似た CAPA-IVM 成熟中の排卵カスケードにおける遺伝子発現が誘導されることが示されています。 スーパー GDF9 は、卵丘細胞の増殖を効果的に促進し、インビトロでの卵母細胞の発生能力を高めます。 したがって、スーパー GDF9 は、生産と精製において課題に直面しているクムリンに代わる可能性があります。
この研究では、CAPA-IVM培養中にスーパーGDF9を補給することの影響を調査し、小卵胞からの卵丘-卵母細胞複合体(COC)の結果を改善し、最終的に治療の成功を高めることを目的としています。
資格審査
- この研究はベトナムのホーチミン市にあるミードゥック病院で実施されます。
- 潜在的に適格な女性には、IVM治療の適応時に研究に関する情報が提供されます。
- 適格性のスクリーニングは、IVM治療が必要な場合、最初の訪問日に行われます。
- 患者には研究に関する情報とインフォームドコンセント文書が提供されます。 研究者は、登録前にすべての女性から署名済みのインフォームドコンセント用紙を入手します。
- 適格な女性は、インフォームドコンセントから 1 ~ 7 日以内に採卵手順を受ける予定です。
- 採卵 採卵手順は、CAPA-IVM サイクルに関するセンターの標準手順に従って行われます。
OPU 後の小卵胞からの卵丘 - 卵母細胞複合体 (COC) は 2 つのグループに分けられます。
- グループ 1: 10 個の寄付された COC を CAPA および IVM ステップで培養し、CAPA-IVM の両方のステップ中に 50 ng/ml Super-GDF9 を添加します。
- グループ 2: 被験者の残りの COC は、CAPA-IVM 中に Super-GDF9 を添加せずに CAPA および IVM ステップで培養されます。
グループ 1 および 2: 容量獲得ステップ後の収集: 使用済み培地およびブランク ウェル。 成熟ステップ後の収集: 使用済み培地、卵丘細胞、およびブランクウェル。
+ CAPA および成熟培養: CAPA および成熟培養は、現在の実験室プロトコルに従って定期的に実行されます。 ICSI は成熟卵母細胞を受精させるために使用されます。
研究の種類
入学 (推定)
段階
- 適用できない
連絡先と場所
研究連絡先
- 名前:Kha T Huynh
- 電話番号:+84946699470
- メール:kha.ht@myduchospital.vn
研究場所
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-
Ho Chi Minh City、ベトナム
- 募集
- My Duc Hospital
-
コンタクト:
- Tuong M Ho, MSc, MD
- 電話番号:+84 90 3633377
- メール:tuongho.ivfmd@gmail.com
-
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参加基準
適格基準
就学可能な年齢
- 大人
健康ボランティアの受け入れ
説明
包含基準:
- 18歳から35歳までの女性(両方を含む)
- BMI ≤ 32 kg/m2
- ロッテルダム基準に基づく PCOS 女性 (2003)
- CAPA-IVM治療を適応とします。
- 血清AMH ≥ 4 ng/mL (28.57 スクリーニング時に pmol/L) を有し、CAPA-IVM 適応時の経膣超音波検査により 2 つの卵巣に少なくとも 50 個の胞状卵胞がある
- 研究目的で 10 個の COC を寄付したい
- 凍結胚に同意する
- 研究関連の手順の前に署名されたインフォームドコンセント
除外基準:
- ASRM分類による既知の子宮内膜腫またはグレード3~4の子宮内膜症
- 子宮の異常
- 重度の男性因子(精子濃度<500万/ml、運動率<10%)を持つカップル、外科的精子回収。
- IVF治療後の原因不明の未熟卵母細胞の既往歴
- ドナー卵母細胞を使用したサイクル
研究計画
研究はどのように設計されていますか?
デザインの詳細
- 主な目的:処理
- 割り当て:非ランダム化
- 介入モデル:並列代入
- マスキング:なし(オープンラベル)
武器と介入
参加者グループ / アーム |
介入・治療 |
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アクティブコンパレータ:従来のCAPA-IVM
グループ 2: 被験者の残りの COC は、CAPA-IVM 中に Super-GDF9 を添加せずに CAPA ステップおよび IVM ステップで培養されます。
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グループ 2: 被験者の残りの COC は、CAPA-IVM 中に Super-GDF9 を添加せずに CAPA ステップおよび IVM ステップで培養されます。
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実験的:CAPA-IVM 中の Super-GDF9 補給
グループ 1: 提供された COC は、CAPA ステップと IVM ステップで培養され、CAPA-IVM 中に Super-GDF9 が添加されます。
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グループ 1: 提供された COC は、CAPACITATION および MATURATION 培養ステップの両方で 50 ng/ml の Super-GDF9 に曝露されます。
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この研究は何を測定していますか?
主要な結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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COCごとの成熟率
時間枠:採卵から2日後
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MII / COC の数
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採卵から2日後
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二次結果の測定
結果測定 |
メジャーの説明 |
時間枠 |
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患者ごとの成熟率
時間枠:採卵から2日後
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MII 数 / 患者
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採卵から2日後
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COCあたりの変性率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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IVM / COC後の変性卵母細胞の数
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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MIIあたりの変性率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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IVM / MII後の変性卵母細胞の数
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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患者あたりの変性率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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IVM後の変性卵母細胞の数/患者
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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t2PN
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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2つの前核の出現時期
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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COCあたりの施肥率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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受精卵母細胞数/COC数
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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MII当たりの施肥率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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受精卵数 / MII
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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患者あたりの受精率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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受精卵数/患者数
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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COC当たりの異常受精率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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細胞質内精子注入/COC後の1、3、または3つ以上の前核を持つ接合子の割合
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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MIIあたりの異常受精率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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細胞質内精子注入 / MII 後の 1、3、または 3 つを超える前核を持つ接合子の割合
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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患者あたりの異常受精率
時間枠:細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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患者あたりの細胞質内精子注入後の前核が 1、3、または 3 個を超える接合子の割合
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細胞質内精子注入後 16 ~ 18 時間
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tPNf
時間枠:細胞質内精子注入後 23 ~ 25 時間
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前核が退色する時間
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細胞質内精子注入後 23 ~ 25 時間
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t2
時間枠:細胞質内精子注入後 25 ~ 27 時間
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胚が2細胞期割球に到達する最初の時間枠
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細胞質内精子注入後 25 ~ 27 時間
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t3
時間枠:細胞質内精子注入後 25 ~ 42 時間
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胚が3細胞期割球に到達する最初の時間枠
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細胞質内精子注入後 25 ~ 42 時間
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t4
時間枠:細胞質内精子注入後 42 ~ 44 時間
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胚が4細胞期割球に到達する最初の時間枠
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細胞質内精子注入後 42 ~ 44 時間
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t5
時間枠:細胞質内精子注入後 44 ~ 67 時間
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胚が5細胞期割球に達する最初の時間枠
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細胞質内精子注入後 44 ~ 67 時間
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t8
時間枠:細胞質内精子注入後 67 ~ 69 時間
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胚が8細胞期割球に達する最初の時間枠
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細胞質内精子注入後 67 ~ 69 時間
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tSC
時間枠:細胞質内精子注入後 3 日目 (割球の圧縮の開始)
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圧縮の最初の証拠
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細胞質内精子注入後 3 日目 (割球の圧縮の開始)
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COCごとの3日目胚発生率
時間枠:採卵から5日後
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3 日目の胚/COC を有する患者数のカウント
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採卵から5日後
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MIIごとの3日目胚発生率
時間枠:細胞質内精子注入から3日後
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3 日目胚/MII を有する患者数のカウント
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細胞質内精子注入から3日後
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患者あたりの 3 日目の胚発生率
時間枠:細胞質内精子注入から3日後
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3 日目胚を持つ患者数 / 患者数のカウント
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細胞質内精子注入から3日後
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COCごとに高品質の3日目胚
時間枠:細胞質内精子注入から3日後
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グレード 1 およびグレード 2 の Day-3 胚 / COC の数
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細胞質内精子注入から3日後
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MIIごとに高品質の3日目胚
時間枠:細胞質内精子注入から3日後
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グレード 1 およびグレード 2 の 3 日目胚 / MII の数
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細胞質内精子注入から3日後
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患者ごとに高品質の 3 日目胚を提供
時間枠:細胞質内精子注入から3日後
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グレード 1 およびグレード 2 の 3 日目胚 / 患者の数
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細胞質内精子注入から3日後
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tM
時間枠:細胞質内精子注入後 4 日目
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圧縮プロセスの完了時刻
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細胞質内精子注入後 4 日目
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tSB
時間枠:細胞質内精子注入後 4 日目 (胚盤胞が見える)
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発芽の開始
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細胞質内精子注入後 4 日目 (胚盤胞が見える)
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tB
時間枠:細胞質内精子注入後 4 日目 (透明帯が薄くなり始める前)
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完全な胚盤胞
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細胞質内精子注入後 4 日目 (透明帯が薄くなり始める前)
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COCあたりの胚盤胞率(5日目または6日目の胚)
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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5 日目または 6 日目の胚/COC を有する患者数のカウント
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細胞質内精子注入から5~6日後
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MIIあたりの胚盤胞率
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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5 日目または 6 日目の胚/MII を有する患者数のカウント
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細胞質内精子注入から5~6日後
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患者あたりの胚盤胞率
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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5 日目または 6 日目の胚を有する患者/患者の数を数える
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細胞質内精子注入から5~6日後
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COCあたりの良質な胚盤胞
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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グレード 1 およびグレード 2 の胚盤胞 / COC の数
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細胞質内精子注入から5~6日後
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MIIあたりの良質な胚盤胞
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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グレード 1 およびグレード 2 の胚盤胞の数 / MII
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細胞質内精子注入から5~6日後
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患者あたりの良質な胚盤胞
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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患者あたりのグレード 1 およびグレード 2 の胚盤胞の数
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細胞質内精子注入から5~6日後
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COCあたりの凍結胚盤胞率
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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凍結胚盤胞・COC数のカウント
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細胞質内精子注入から5~6日後
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MII ごとの凍結胚盤胞率
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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凍結胚盤胞/MIIの数を数える
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細胞質内精子注入から5~6日後
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患者あたりの凍結胚盤胞率
時間枠:細胞質内精子注入から5~6日後
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患者あたりの凍結胚盤胞の数を数える
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細胞質内精子注入から5~6日後
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ヒト卵丘細胞遺伝子の相対発現率(R)
時間枠:卵丘細胞は卵母細胞の露出後 30 ~ 50 分以内に収集され凍結され、RNA 精製まで -80℃ で保存されます。
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卵丘細胞が収集され、mRNA精製後のcDNA合成、遺伝子発現を検出するための相対定量PCR(結果は別途報告される可能性があります)
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卵丘細胞は卵母細胞の露出後 30 ~ 50 分以内に収集され凍結され、RNA 精製まで -80℃ で保存されます。
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PGT における染色体状態別の胚盤胞の割合
時間枠:学習完了後、平均1年。
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PGT は、胚盤胞を正数性、異数性、またはモザイクとして分類するために実行されます (結果は個別に報告される可能性があります)
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学習完了後、平均1年。
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エピジェネティック評価
時間枠:学習完了後、平均1年。
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胚盤胞のエピジェネティック評価はポスト重亜硫酸塩アダプタータグ付け (PBAT) によって実行され、インプリントされた生殖細胞系列差次的メチル化領域 (gDMR) における平均 DNA メチル化 (%) が計算されます (結果は別途報告される可能性があります)。
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学習完了後、平均1年。
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協力者と研究者
スポンサー
捜査官
- 主任研究者:Lan N Vuong、University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
出版物と役立つリンク
一般刊行物
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Saenz-de-Juano MD, Ivanova E, Romero S, Lolicato F, Sanchez F, Van Ranst H, Krueger F, Segonds-Pichon A, De Vos M, Andrews S, Smitz J, Kelsey G, Anckaert E. DNA methylation and mRNA expression of imprinted genes in blastocysts derived from an improved in vitro maturation method for oocytes from small antral follicles in polycystic ovary syndrome patients. Hum Reprod. 2019 Sep 29;34(9):1640-1649. doi: 10.1093/humrep/dez121.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Endometriosis and infertility: a committee opinion. Fertil Steril. 2012 Sep;98(3):591-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.031. Epub 2012 Jun 15.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
- Stocker WA, Walton KL, Richani D, Chan KL, Beilby KH, Finger BJ, Green MP, Gilchrist RB, Harrison CA. A variant of human growth differentiation factor-9 that improves oocyte developmental competence. J Biol Chem. 2020 Jun 5;295(23):7981-7991. doi: 10.1074/jbc.RA120.013050. Epub 2020 Apr 29.
- Krisher RL, Bavister BD. Enhanced glycolysis after maturation of bovine oocytes in vitro is associated with increased developmental competence. Mol Reprod Dev. 1999 May;53(1):19-26. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199905)53:13.0.CO;2-U.
- Ortmann B, Druker J, Rocha S. Cell cycle progression in response to oxygen levels. Cell Mol Life Sci. 2014 Sep;71(18):3569-82. doi: 10.1007/s00018-014-1645-9. Epub 2014 May 25.
- Mottershead DG, Sugimura S, Al-Musawi SL, Li JJ, Richani D, White MA, Martin GA, Trotta AP, Ritter LJ, Shi J, Mueller TD, Harrison CA, Gilchrist RB. Cumulin, an Oocyte-secreted Heterodimer of the Transforming Growth Factor-beta Family, Is a Potent Activator of Granulosa Cells and Improves Oocyte Quality. J Biol Chem. 2015 Sep 25;290(39):24007-20. doi: 10.1074/jbc.M115.671487. Epub 2015 Aug 8.
- Vuong LN, Nguyen MHN, Nguyen NA, Ly TT, Tran VTT, Nguyen NT, Hoang HLT, Le XTH, Pham TD, Smitz JEJ, Mol BW, Norman RJ, Ho TM. Development of children born from IVM versus IVF: 2-year follow-up of a randomized controlled trial. Hum Reprod. 2022 Jul 30;37(8):1871-1879. doi: 10.1093/humrep/deac115.
研究記録日
主要日程の研究
研究開始 (実際)
一次修了 (実際)
研究の完了 (推定)
試験登録日
最初に提出
QC基準を満たした最初の提出物
最初の投稿 (実際)
学習記録の更新
投稿された最後の更新 (実際)
QC基準を満たした最後の更新が送信されました
最終確認日
詳しくは
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