- ICH GCP
- Registre américain des essais cliniques
- Essai clinique NCT06766604
Effet du Super-GDF9 sur CAPA-IVM des COC des petits follicules antraux (sGDF-9)
Étude exploratoire in vitro évaluant l'ajout de Super-GDF9 pendant la maturation par capacitation in vitro (CAPA-IVM) de complexes cumulus-ovocytes (COC) humains donnés dérivés de petits follicules antraux
La technologie CAPA-IVM (In Vitro Maturation) est une méthode de procréation assistée offrant des avantages significatifs en termes de sécurité et de coûts de traitement, notamment pour les patientes à haut risque. Il s'agit notamment des personnes atteintes du syndrome d'hyperstimulation ovarienne (SHO), de thrombose veineuse, de torsion ovarienne ou du syndrome des ovaires polykystiques (SOPK). Cependant, si le taux de naissances vivantes dans le groupe CAPA-IVM (35,2 %) est comparable à la FIV conventionnelle (43,2 %), le nombre d'embryons de bonne qualité et les taux cumulés de grossesses cliniques restent inférieurs. L'amélioration du processus de culture CAPA-IVM, notamment grâce à l'ajout de facteurs de croissance présents dans le liquide folliculaire, s'est révélée prometteuse pour améliorer la qualité des ovocytes.
Le facteur de différenciation de croissance 9 (GDF9) et la protéine morphogénétique osseuse 15 (BMP15) jouent un rôle essentiel dans le développement folliculaire, leur structure hétérodimère démontrant les effets les plus positifs sur les complexes cumulus-ovocytes (COC). Des études récentes ont identifié une variante puissante, le super GDF9, qui est > 1 000 fois plus efficace que le GDF9 et surpasse la cumuline, un facteur de croissance hétérodimère. Le Super GDF9 améliore l'expansion des cellules du cumulus et la compétence de développement des ovocytes, imitant fidèlement la maturation in vivo.
Cette étude examine l'impact de la supplémentation en super GDF9 pendant la culture CAPA-IVM, dans le but d'améliorer les résultats des complexes cumulus-ovocyte (COC) des petits follicules et, à terme, d'améliorer le succès du traitement.
Aperçu de l'étude
Statut
Les conditions
Intervention / Traitement
Description détaillée
La technologie CAPA-IVM (In Vitro Maturation) est une méthode de procréation assistée offrant des avantages significatifs en termes de sécurité et de coûts de traitement, notamment pour les patientes à haut risque. Il s'agit notamment des personnes atteintes du syndrome d'hyperstimulation ovarienne (SHO), de thrombose veineuse, de torsion ovarienne ou du syndrome des ovaires polykystiques (SOPK) - qui présentent généralement un nombre élevé de follicules antraux (constituant près de 15 % de tous les patients). Bien que le taux de natalité vivante suite au premier transfert dans le groupe CAPA-IVM soit de 35,2 %, ce qui n'est pas statistiquement différent du groupe FIV conventionnelle à 43,2 % (différence de risque : -8,1 % ; intervalle de confiance à 95 % : -16,6 % à 0,5 %), le nombre d’embryons de bonne qualité par cycle et le taux de grossesse clinique cumulé restent inférieurs à ceux de la FIV conventionnelle. Par conséquent, il est essentiel d’améliorer le processus de culture CAPA-IVM pour obtenir le nombre et la qualité optimaux des ovocytes.
Parallèlement, l’ajout de facteurs de croissance couramment présents dans le liquide folliculaire au milieu de culture représente une avancée remarquable dans l’amélioration de la qualité des ovocytes dans CAPA-IVM. Certains compartiments somatiques, tels que l'expansion, le métabolisme et l'apoptose, sont régulés par des facteurs de croissance solubles, appelés facteurs de sécrétion ovocytaire (OSF). Deux OSF, le facteur de différenciation de croissance 9 (GDF9) et la protéine morphogénétique osseuse 15 (BMP15), ont été identifiés comme essentiels au développement folliculaire et à la fertilité chez diverses espèces telles que la souris, le mouton et l'homme. Au cours de la culture IVM, les formes immatures et matures de ces facteurs ainsi que leurs structures homo- et hétérodimères ont été testées. Notamment, la structure hétérodimère a montré les effets les plus positifs sur les complexes cumulus-ovocytes (COC) au cours de la culture IVM.
Bien que les deux facteurs de croissance existent sous des formes homodimères, des études récentes ont montré que les hétérodimères GDF9 et BMP15 peuvent également former un facteur de croissance plus puissant appelé cumuline. BMP15 active le GDF9 latent dans la cumuline, conduisant à une forte signalisation dans les cellules de la granulosa via les récepteurs de type I (ALK4/5) et les facteurs de transcription SMAD2/3. Il a été proposé que la cumuline issue du génie biomédical améliore sensiblement les résultats embryonnaires dans les modèles murins et porcins. Récemment, il a été démontré qu'une version modifiée du GDF9 de type sauvage, appelée super GDF9, est > 1 000 fois plus puissante que le GDF9 et 4 fois plus active que la cumuline dans les tests transcriptionnels sensibles à SMAD2/3 dans les cellules de la granulosa. Des recherches antérieures ont montré que l'ajout de super GDF9 au milieu CAPA-IVM chez la souris induit l'expression de gènes dans la cascade ovulatoire au cours de la maturation CAPA-IVM qui ressemble beaucoup à la maturation in vivo. Le Super GDF9 favorise efficacement l’expansion des cellules cumulus et améliore la compétence de développement des ovocytes in vitro. Le super GDF9 peut donc potentiellement remplacer la cumuline, qui fait face à des défis de production et de purification.
Cette étude examine l'impact de la supplémentation en super GDF9 pendant la culture CAPA-IVM, dans le but d'améliorer les résultats des complexes cumulus-ovocyte (COC) des petits follicules et, à terme, d'améliorer le succès du traitement.
Vérification de l'éligibilité
- Cette étude sera menée à l'hôpital My Duc, Hô Chi Minh-Ville, Vietnam.
- Les femmes potentiellement éligibles recevront des informations sur l'étude au moment de l'indication du traitement IVM.
- Le dépistage de l'éligibilité sera effectué le jour de la première visite lorsque le traitement IVM est indiqué.
- Les patients recevront des informations sur l'étude et des documents de consentement éclairé. Les enquêteurs obtiendront des formulaires de consentement éclairé signés de toutes les femmes avant l'inscription.
- Les femmes éligibles devront subir des procédures de prélèvement d'ovocytes dans les 1 à 7 jours suivant leur consentement éclairé.
- Récupération des ovocytes La procédure de prélèvement des ovocytes sera menée selon les pratiques standard du centre pour les cycles CAPA-IVM.
Les complexes cumulus-ovocytes (COC) issus de petits follicules après OPU seront divisés en 2 groupes :
- Groupe 1 : 10 COC donnés seront cultivés dans les étapes CAPA et IVM, en ajoutant 50 ng/ml de Super-GDF9 pendant les deux étapes de CAPA-IVM.
- Groupe 2 : Les COC restants du sujet seront cultivés dans les étapes CAPA et IVM sans ajouter de Super-GDF9 pendant CAPA-IVM.
Groupes 1 et 2 : Collecte après l'étape de capacitation : milieux usés et puits vierges. Collecte après l'étape de maturation : milieux usés, cumulus et puits à blanc.
+ Culture CAPA et Maturation : La culture CAPA et Maturation sera réalisée en routine selon les protocoles de laboratoire en vigueur. L'ICSI sera utilisée pour féconder les ovocytes matures.
Type d'étude
Inscription (Estimé)
Phase
- N'est pas applicable
Contacts et emplacements
Coordonnées de l'étude
- Nom: Kha T Huynh
- Numéro de téléphone: +84946699470
- E-mail: kha.ht@myduchospital.vn
Lieux d'étude
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Ho Chi Minh City, Viêt Nam
- Recrutement
- My Duc Hospital
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Contact:
- Tuong M Ho, MSc, MD
- Numéro de téléphone: +84 90 3633377
- E-mail: tuongho.ivfmd@gmail.com
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Critères de participation
Critère d'éligibilité
Âges éligibles pour étudier
- Adulte
Accepte les volontaires sains
La description
Critères d'intégration :
- Femmes âgées de 18 à 35 ans (tous deux inclus)
- IMC ≤ 32 kg/m2
- Femmes atteintes du SOPK selon les critères de Rotterdam (2003)
- Indiquant le traitement CAPA-IVM.
- AMH sérique ≥ 4 ng/mL (28,57 pmol/L) au moment du dépistage et avoir au moins 50 follicules antraux dans deux ovaires par échographie transvaginale au moment de l'indication CAPA-IVM
- Prêt à faire don de 10 COC à des fins de recherche
- Accepter un embryon congelé
- Consentement éclairé signé avant toute procédure liée à l'étude
Critères d'exclusion :
- Endométriome connu ou endométriose de grade 3-4 selon la classification ASRM
- Anomalies utérines
- Couples présentant un facteur masculin sévère (concentration de spermatozoïdes <5 millions/ml, motilité <10%), prélèvement chirurgical de spermatozoïdes.
- Antécédents d'ovocytes immatures inexpliqués après un traitement de FIV
- Cycles utilisant des ovocytes de donneurs
Plan d'étude
Comment l'étude est-elle conçue ?
Détails de conception
- Objectif principal: Traitement
- Répartition: Non randomisé
- Modèle interventionnel: Affectation parallèle
- Masquage: Aucun (étiquette ouverte)
Armes et Interventions
Groupe de participants / Bras |
Intervention / Traitement |
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Comparateur actif: CAPA-IVM conventionnel
Groupe 2 : Les COC restants du sujet seront cultivés à l'étape CAPA et à l'étape IVM sans l'ajout de Super-GDF9 pendant CAPA-IVM.
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Groupe 2 : Les COC restants du sujet seront cultivés à l'étape CAPA et à l'étape IVM sans l'ajout de Super-GDF9 pendant CAPA-IVM.
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Expérimental: Supplémentation en Super-GDF9 pendant CAPA-IVM
Groupe 1 : les COC donnés seront cultivés dans l'étape CAPA et l'étape IVM, avec l'ajout de Super-GDF9 pendant CAPA-IVM.
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Groupe 1 : les COC donnés seront exposés au Super-GDF9 à 50 ng/ml dans les étapes de culture CAPACITATION et MATURATION.
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Que mesure l'étude ?
Principaux critères de jugement
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
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Taux de maturation par COC
Délai: Deux jours après le prélèvement des ovocytes
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Nombre de MII/COC
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Deux jours après le prélèvement des ovocytes
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Mesures de résultats secondaires
Mesure des résultats |
Description de la mesure |
Délai |
|---|---|---|
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Taux de maturation par patient
Délai: Deux jours après le prélèvement des ovocytes
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Nombre de MII / patient
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Deux jours après le prélèvement des ovocytes
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Taux de dégénérescence par COC
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'ovocytes dégénérés après IVM / COC
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de dégénérescence par MII
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'ovocytes dégénérés après IVM/MII
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de dégénérescence par patient
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'ovocytes dégénérés après MIV / patientes
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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t2PN
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Moment d'apparition de deux pronoyaux
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de fécondation par COC
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'ovocytes fécondés / COC
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de fécondation par MII
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'ovocytes fécondés / MII
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de fécondation par patiente
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'ovocytes fécondés/patientes
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de fécondation anormal par COC
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Le pourcentage de zygotes avec 1,3 ou plus de 3 pronoyaux après injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes / COC
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de fécondation anormal par MII
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Le pourcentage de zygotes avec 1,3 ou plus de 3 pronoyaux après injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes / MII
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de fécondation anormal par patiente
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Le pourcentage de zygotes avec 1,3 ou plus de 3 pronoyaux après injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes / patients
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16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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tPNf
Délai: 23-25 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Temps de disparition des pronoyaux
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23-25 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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t2
Délai: 25 à 27 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Premier délai auquel un embryon atteint le stade blastomères à 2 cellules
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25 à 27 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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t3
Délai: 25 à 42 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Premier délai auquel un embryon atteint le stade blastomères à 3 cellules
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25 à 42 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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t4
Délai: 42 à 44 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Premier délai auquel un embryon atteint le stade blastomères à 4 cellules
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42 à 44 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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t5
Délai: 44 à 67 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Premier délai auquel un embryon atteint le stade 5 cellules des blastomères
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44 à 67 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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t8
Délai: 67 à 69 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Premier délai auquel un embryon atteint le stade 8 cellules des blastomères
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67 à 69 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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tSC
Délai: Au cours du 3ème jour après l'injection intracytoplasmique des spermatozoïdes (début du compactage des blastomères)
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Premiers signes de compactage
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Au cours du 3ème jour après l'injection intracytoplasmique des spermatozoïdes (début du compactage des blastomères)
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Taux d'embryons au jour 3 par COC
Délai: Cinq jours après le prélèvement des ovocytes
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Compter le nombre de patients avec des embryons/COC au jour 3
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Cinq jours après le prélèvement des ovocytes
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Taux d'embryons au jour 3 par MII
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Compter le nombre de patients avec un embryon au jour 3/MII
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Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux d'embryons au jour 3 par patiente
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Compter le nombre de patients avec embryon/patients au jour 3
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Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Embryons de bonne qualité au jour 3 par COC
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'embryons / COC de grade 1 et 2 au jour 3
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Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Bonne qualité Jour-3 embryons par MII
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'embryons de grade 1 et grade 2 Jour-3 / MII
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Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Embryons de bonne qualité au jour 3 par patient
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre d'embryons/patients de grade 1 et 2 à jour 3
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Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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tM
Délai: Au jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Temps d’achèvement du processus de compactage
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Au jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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TSB
Délai: Au cours du jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (au cours duquel le blastocèle est visible)
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Début de la blastulation
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Au cours du jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (au cours duquel le blastocèle est visible)
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tuberculose
Délai: Au cours du jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (avant que la zone ne commence à s'amincir)
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Blastocyste complet
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Au cours du jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (avant que la zone ne commence à s'amincir)
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Taux de blastocystes par COC (embryon au jour 5 ou 6)
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Compter le nombre de patients avec des embryons/COC au jour 5 ou 6
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de blastocystes par MII
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Compter le nombre de patients avec un embryon/MII au jour 5 ou au jour 6
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de blastocystes par patient
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Compter le nombre de patients avec un embryon/patient au jour 5 ou au jour 6
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Blastocystes de bonne qualité par COC
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre de blastocystes/COC de grade 1 et 2
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Blastocystes de bonne qualité par MII
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre de blastocystes de grade 1 et grade 2 / MII
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Blastocystes de bonne qualité par patient
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Nombre de blastocystes de grade 1 et grade 2/patients
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de blastocystes congelés par COC
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Compter le nombre de blastocystes/COC congelés
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de blastocystes congelés par MII
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Comptage du nombre de blastocystes congelés/ MII
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Taux de blastocystes congelés par patient
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Comptage du nombre de blastocystes congelés/patient
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Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
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Le taux d'expression relatif (R) des gènes des cellules cumulus humaines
Délai: Les cellules Cumulus seront collectées et congelées dans les 30 à 50 minutes suivant la dénudation des ovocytes, conservées à -80 °C jusqu'à la purification de l'ARN.
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Les cellules Cumulus seront collectées, synthèse d'ADNc après purification de l'ARNm, PCR de quantification relative pour détecter l'expression des gènes (résultats potentiellement rapportés séparément)
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Les cellules Cumulus seront collectées et congelées dans les 30 à 50 minutes suivant la dénudation des ovocytes, conservées à -80 °C jusqu'à la purification de l'ARN.
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Taux de blastocystes par statut chromosomique dans le PGT
Délai: Après la fin des études, en moyenne 1 an.
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Un PGT sera réalisé pour classer les blastocystes comme euploïdes, aneuploïdes ou mosaïques (résultats potentiellement rapportés séparément)
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Après la fin des études, en moyenne 1 an.
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Évaluation épigénétique
Délai: Après la fin des études, en moyenne 1 an.
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L'évaluation épigénétique des blastocystes sera réalisée par marquage d'adaptateur post-bisulfite (PBAT), et la méthylation moyenne de l'ADN (%) au niveau des régions germinales imprimées différentiellement méthylées (gDMR) sera calculée (résultats potentiellement rapportés séparément)
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Après la fin des études, en moyenne 1 an.
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Collaborateurs et enquêteurs
Parrainer
Collaborateurs
Les enquêteurs
- Chercheur principal: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
Publications et liens utiles
Publications générales
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Saenz-de-Juano MD, Ivanova E, Romero S, Lolicato F, Sanchez F, Van Ranst H, Krueger F, Segonds-Pichon A, De Vos M, Andrews S, Smitz J, Kelsey G, Anckaert E. DNA methylation and mRNA expression of imprinted genes in blastocysts derived from an improved in vitro maturation method for oocytes from small antral follicles in polycystic ovary syndrome patients. Hum Reprod. 2019 Sep 29;34(9):1640-1649. doi: 10.1093/humrep/dez121.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Endometriosis and infertility: a committee opinion. Fertil Steril. 2012 Sep;98(3):591-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.031. Epub 2012 Jun 15.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
- Stocker WA, Walton KL, Richani D, Chan KL, Beilby KH, Finger BJ, Green MP, Gilchrist RB, Harrison CA. A variant of human growth differentiation factor-9 that improves oocyte developmental competence. J Biol Chem. 2020 Jun 5;295(23):7981-7991. doi: 10.1074/jbc.RA120.013050. Epub 2020 Apr 29.
- Krisher RL, Bavister BD. Enhanced glycolysis after maturation of bovine oocytes in vitro is associated with increased developmental competence. Mol Reprod Dev. 1999 May;53(1):19-26. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199905)53:13.0.CO;2-U.
- Ortmann B, Druker J, Rocha S. Cell cycle progression in response to oxygen levels. Cell Mol Life Sci. 2014 Sep;71(18):3569-82. doi: 10.1007/s00018-014-1645-9. Epub 2014 May 25.
- Mottershead DG, Sugimura S, Al-Musawi SL, Li JJ, Richani D, White MA, Martin GA, Trotta AP, Ritter LJ, Shi J, Mueller TD, Harrison CA, Gilchrist RB. Cumulin, an Oocyte-secreted Heterodimer of the Transforming Growth Factor-beta Family, Is a Potent Activator of Granulosa Cells and Improves Oocyte Quality. J Biol Chem. 2015 Sep 25;290(39):24007-20. doi: 10.1074/jbc.M115.671487. Epub 2015 Aug 8.
- Vuong LN, Nguyen MHN, Nguyen NA, Ly TT, Tran VTT, Nguyen NT, Hoang HLT, Le XTH, Pham TD, Smitz JEJ, Mol BW, Norman RJ, Ho TM. Development of children born from IVM versus IVF: 2-year follow-up of a randomized controlled trial. Hum Reprod. 2022 Jul 30;37(8):1871-1879. doi: 10.1093/humrep/deac115.
Dates d'enregistrement des études
Dates principales de l'étude
Début de l'étude (Réel)
Achèvement primaire (Réel)
Achèvement de l'étude (Estimé)
Dates d'inscription aux études
Première soumission
Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité
Première publication (Réel)
Mises à jour des dossiers d'étude
Dernière mise à jour publiée (Réel)
Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité
Dernière vérification
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