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Effet du Super-GDF9 sur CAPA-IVM des COC des petits follicules antraux (sGDF-9)

9 juillet 2025 mis à jour par: Mỹ Đức Hospital

Étude exploratoire in vitro évaluant l'ajout de Super-GDF9 pendant la maturation par capacitation in vitro (CAPA-IVM) de complexes cumulus-ovocytes (COC) humains donnés dérivés de petits follicules antraux

La technologie CAPA-IVM (In Vitro Maturation) est une méthode de procréation assistée offrant des avantages significatifs en termes de sécurité et de coûts de traitement, notamment pour les patientes à haut risque. Il s'agit notamment des personnes atteintes du syndrome d'hyperstimulation ovarienne (SHO), de thrombose veineuse, de torsion ovarienne ou du syndrome des ovaires polykystiques (SOPK). Cependant, si le taux de naissances vivantes dans le groupe CAPA-IVM (35,2 %) est comparable à la FIV conventionnelle (43,2 %), le nombre d'embryons de bonne qualité et les taux cumulés de grossesses cliniques restent inférieurs. L'amélioration du processus de culture CAPA-IVM, notamment grâce à l'ajout de facteurs de croissance présents dans le liquide folliculaire, s'est révélée prometteuse pour améliorer la qualité des ovocytes.

Le facteur de différenciation de croissance 9 (GDF9) et la protéine morphogénétique osseuse 15 (BMP15) jouent un rôle essentiel dans le développement folliculaire, leur structure hétérodimère démontrant les effets les plus positifs sur les complexes cumulus-ovocytes (COC). Des études récentes ont identifié une variante puissante, le super GDF9, qui est > 1 000 fois plus efficace que le GDF9 et surpasse la cumuline, un facteur de croissance hétérodimère. Le Super GDF9 améliore l'expansion des cellules du cumulus et la compétence de développement des ovocytes, imitant fidèlement la maturation in vivo.

Cette étude examine l'impact de la supplémentation en super GDF9 pendant la culture CAPA-IVM, dans le but d'améliorer les résultats des complexes cumulus-ovocyte (COC) des petits follicules et, à terme, d'améliorer le succès du traitement.

Aperçu de l'étude

Description détaillée

La technologie CAPA-IVM (In Vitro Maturation) est une méthode de procréation assistée offrant des avantages significatifs en termes de sécurité et de coûts de traitement, notamment pour les patientes à haut risque. Il s'agit notamment des personnes atteintes du syndrome d'hyperstimulation ovarienne (SHO), de thrombose veineuse, de torsion ovarienne ou du syndrome des ovaires polykystiques (SOPK) - qui présentent généralement un nombre élevé de follicules antraux (constituant près de 15 % de tous les patients). Bien que le taux de natalité vivante suite au premier transfert dans le groupe CAPA-IVM soit de 35,2 %, ce qui n'est pas statistiquement différent du groupe FIV conventionnelle à 43,2 % (différence de risque : -8,1 % ; intervalle de confiance à 95 % : -16,6 % à 0,5 %), le nombre d’embryons de bonne qualité par cycle et le taux de grossesse clinique cumulé restent inférieurs à ceux de la FIV conventionnelle. Par conséquent, il est essentiel d’améliorer le processus de culture CAPA-IVM pour obtenir le nombre et la qualité optimaux des ovocytes.

Parallèlement, l’ajout de facteurs de croissance couramment présents dans le liquide folliculaire au milieu de culture représente une avancée remarquable dans l’amélioration de la qualité des ovocytes dans CAPA-IVM. Certains compartiments somatiques, tels que l'expansion, le métabolisme et l'apoptose, sont régulés par des facteurs de croissance solubles, appelés facteurs de sécrétion ovocytaire (OSF). Deux OSF, le facteur de différenciation de croissance 9 (GDF9) et la protéine morphogénétique osseuse 15 (BMP15), ont été identifiés comme essentiels au développement folliculaire et à la fertilité chez diverses espèces telles que la souris, le mouton et l'homme. Au cours de la culture IVM, les formes immatures et matures de ces facteurs ainsi que leurs structures homo- et hétérodimères ont été testées. Notamment, la structure hétérodimère a montré les effets les plus positifs sur les complexes cumulus-ovocytes (COC) au cours de la culture IVM.

Bien que les deux facteurs de croissance existent sous des formes homodimères, des études récentes ont montré que les hétérodimères GDF9 et BMP15 peuvent également former un facteur de croissance plus puissant appelé cumuline. BMP15 active le GDF9 latent dans la cumuline, conduisant à une forte signalisation dans les cellules de la granulosa via les récepteurs de type I (ALK4/5) et les facteurs de transcription SMAD2/3. Il a été proposé que la cumuline issue du génie biomédical améliore sensiblement les résultats embryonnaires dans les modèles murins et porcins. Récemment, il a été démontré qu'une version modifiée du GDF9 de type sauvage, appelée super GDF9, est > 1 000 fois plus puissante que le GDF9 et 4 fois plus active que la cumuline dans les tests transcriptionnels sensibles à SMAD2/3 dans les cellules de la granulosa. Des recherches antérieures ont montré que l'ajout de super GDF9 au milieu CAPA-IVM chez la souris induit l'expression de gènes dans la cascade ovulatoire au cours de la maturation CAPA-IVM qui ressemble beaucoup à la maturation in vivo. Le Super GDF9 favorise efficacement l’expansion des cellules cumulus et améliore la compétence de développement des ovocytes in vitro. Le super GDF9 peut donc potentiellement remplacer la cumuline, qui fait face à des défis de production et de purification.

Cette étude examine l'impact de la supplémentation en super GDF9 pendant la culture CAPA-IVM, dans le but d'améliorer les résultats des complexes cumulus-ovocyte (COC) des petits follicules et, à terme, d'améliorer le succès du traitement.

  • Vérification de l'éligibilité

    • Cette étude sera menée à l'hôpital My Duc, Hô Chi Minh-Ville, Vietnam.
    • Les femmes potentiellement éligibles recevront des informations sur l'étude au moment de l'indication du traitement IVM.
    • Le dépistage de l'éligibilité sera effectué le jour de la première visite lorsque le traitement IVM est indiqué.
    • Les patients recevront des informations sur l'étude et des documents de consentement éclairé. Les enquêteurs obtiendront des formulaires de consentement éclairé signés de toutes les femmes avant l'inscription.
    • Les femmes éligibles devront subir des procédures de prélèvement d'ovocytes dans les 1 à 7 jours suivant leur consentement éclairé.
  • Récupération des ovocytes La procédure de prélèvement des ovocytes sera menée selon les pratiques standard du centre pour les cycles CAPA-IVM.

Les complexes cumulus-ovocytes (COC) issus de petits follicules après OPU seront divisés en 2 groupes :

  • Groupe 1 : 10 COC donnés seront cultivés dans les étapes CAPA et IVM, en ajoutant 50 ng/ml de Super-GDF9 pendant les deux étapes de CAPA-IVM.
  • Groupe 2 : Les COC restants du sujet seront cultivés dans les étapes CAPA et IVM sans ajouter de Super-GDF9 pendant CAPA-IVM.

Groupes 1 et 2 : Collecte après l'étape de capacitation : milieux usés et puits vierges. Collecte après l'étape de maturation : milieux usés, cumulus et puits à blanc.

+ Culture CAPA et Maturation : La culture CAPA et Maturation sera réalisée en routine selon les protocoles de laboratoire en vigueur. L'ICSI sera utilisée pour féconder les ovocytes matures.

Type d'étude

Interventionnel

Inscription (Estimé)

9

Phase

  • N'est pas applicable

Contacts et emplacements

Cette section fournit les coordonnées de ceux qui mènent l'étude et des informations sur le lieu où cette étude est menée.

Coordonnées de l'étude

Lieux d'étude

      • Ho Chi Minh City, Viêt Nam
        • Recrutement
        • My Duc Hospital
        • Contact:

Critères de participation

Les chercheurs recherchent des personnes qui correspondent à une certaine description, appelée critères d'éligibilité. Certains exemples de ces critères sont l'état de santé général d'une personne ou des traitements antérieurs.

Critère d'éligibilité

Âges éligibles pour étudier

  • Adulte

Accepte les volontaires sains

Non

La description

Critères d'intégration :

  1. Femmes âgées de 18 à 35 ans (tous deux inclus)
  2. IMC ≤ 32 kg/m2
  3. Femmes atteintes du SOPK selon les critères de Rotterdam (2003)
  4. Indiquant le traitement CAPA-IVM.
  5. AMH sérique ≥ 4 ng/mL (28,57 pmol/L) au moment du dépistage et avoir au moins 50 follicules antraux dans deux ovaires par échographie transvaginale au moment de l'indication CAPA-IVM
  6. Prêt à faire don de 10 COC à des fins de recherche
  7. Accepter un embryon congelé
  8. Consentement éclairé signé avant toute procédure liée à l'étude

Critères d'exclusion :

  1. Endométriome connu ou endométriose de grade 3-4 selon la classification ASRM
  2. Anomalies utérines
  3. Couples présentant un facteur masculin sévère (concentration de spermatozoïdes <5 millions/ml, motilité <10%), prélèvement chirurgical de spermatozoïdes.
  4. Antécédents d'ovocytes immatures inexpliqués après un traitement de FIV
  5. Cycles utilisant des ovocytes de donneurs

Plan d'étude

Cette section fournit des détails sur le plan d'étude, y compris la façon dont l'étude est conçue et ce que l'étude mesure.

Comment l'étude est-elle conçue ?

Détails de conception

  • Objectif principal: Traitement
  • Répartition: Non randomisé
  • Modèle interventionnel: Affectation parallèle
  • Masquage: Aucun (étiquette ouverte)

Armes et Interventions

Groupe de participants / Bras
Intervention / Traitement
Comparateur actif: CAPA-IVM conventionnel
Groupe 2 : Les COC restants du sujet seront cultivés à l'étape CAPA et à l'étape IVM sans l'ajout de Super-GDF9 pendant CAPA-IVM.
Groupe 2 : Les COC restants du sujet seront cultivés à l'étape CAPA et à l'étape IVM sans l'ajout de Super-GDF9 pendant CAPA-IVM.
Expérimental: Supplémentation en Super-GDF9 pendant CAPA-IVM
Groupe 1 : les COC donnés seront cultivés dans l'étape CAPA et l'étape IVM, avec l'ajout de Super-GDF9 pendant CAPA-IVM.
Groupe 1 : les COC donnés seront exposés au Super-GDF9 à 50 ng/ml dans les étapes de culture CAPACITATION et MATURATION.

Que mesure l'étude ?

Principaux critères de jugement

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Taux de maturation par COC
Délai: Deux jours après le prélèvement des ovocytes
Nombre de MII/COC
Deux jours après le prélèvement des ovocytes

Mesures de résultats secondaires

Mesure des résultats
Description de la mesure
Délai
Taux de maturation par patient
Délai: Deux jours après le prélèvement des ovocytes
Nombre de MII / patient
Deux jours après le prélèvement des ovocytes
Taux de dégénérescence par COC
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'ovocytes dégénérés après IVM / COC
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de dégénérescence par MII
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'ovocytes dégénérés après IVM/MII
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de dégénérescence par patient
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'ovocytes dégénérés après MIV / patientes
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
t2PN
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Moment d'apparition de deux pronoyaux
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de fécondation par COC
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'ovocytes fécondés / COC
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de fécondation par MII
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'ovocytes fécondés / MII
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de fécondation par patiente
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'ovocytes fécondés/patientes
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de fécondation anormal par COC
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Le pourcentage de zygotes avec 1,3 ou plus de 3 pronoyaux après injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes / COC
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de fécondation anormal par MII
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Le pourcentage de zygotes avec 1,3 ou plus de 3 pronoyaux après injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes / MII
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de fécondation anormal par patiente
Délai: 16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Le pourcentage de zygotes avec 1,3 ou plus de 3 pronoyaux après injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes / patients
16 à 18 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
tPNf
Délai: 23-25 ​​heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Temps de disparition des pronoyaux
23-25 ​​heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
t2
Délai: 25 à 27 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Premier délai auquel un embryon atteint le stade blastomères à 2 cellules
25 à 27 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
t3
Délai: 25 à 42 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Premier délai auquel un embryon atteint le stade blastomères à 3 cellules
25 à 42 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
t4
Délai: 42 à 44 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Premier délai auquel un embryon atteint le stade blastomères à 4 cellules
42 à 44 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
t5
Délai: 44 à 67 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Premier délai auquel un embryon atteint le stade 5 cellules des blastomères
44 à 67 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
t8
Délai: 67 à 69 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Premier délai auquel un embryon atteint le stade 8 cellules des blastomères
67 à 69 heures après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
tSC
Délai: Au cours du 3ème jour après l'injection intracytoplasmique des spermatozoïdes (début du compactage des blastomères)
Premiers signes de compactage
Au cours du 3ème jour après l'injection intracytoplasmique des spermatozoïdes (début du compactage des blastomères)
Taux d'embryons au jour 3 par COC
Délai: Cinq jours après le prélèvement des ovocytes
Compter le nombre de patients avec des embryons/COC au jour 3
Cinq jours après le prélèvement des ovocytes
Taux d'embryons au jour 3 par MII
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Compter le nombre de patients avec un embryon au jour 3/MII
Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux d'embryons au jour 3 par patiente
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Compter le nombre de patients avec embryon/patients au jour 3
Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Embryons de bonne qualité au jour 3 par COC
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'embryons / COC de grade 1 et 2 au jour 3
Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Bonne qualité Jour-3 embryons par MII
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'embryons de grade 1 et grade 2 Jour-3 / MII
Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Embryons de bonne qualité au jour 3 par patient
Délai: Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre d'embryons/patients de grade 1 et 2 à jour 3
Trois jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
tM
Délai: Au jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Temps d’achèvement du processus de compactage
Au jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
TSB
Délai: Au cours du jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (au cours duquel le blastocèle est visible)
Début de la blastulation
Au cours du jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (au cours duquel le blastocèle est visible)
tuberculose
Délai: Au cours du jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (avant que la zone ne commence à s'amincir)
Blastocyste complet
Au cours du jour 4 après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes (avant que la zone ne commence à s'amincir)
Taux de blastocystes par COC (embryon au jour 5 ou 6)
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Compter le nombre de patients avec des embryons/COC au jour 5 ou 6
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de blastocystes par MII
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Compter le nombre de patients avec un embryon/MII au jour 5 ou au jour 6
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de blastocystes par patient
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Compter le nombre de patients avec un embryon/patient au jour 5 ou au jour 6
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Blastocystes de bonne qualité par COC
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre de blastocystes/COC de grade 1 et 2
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Blastocystes de bonne qualité par MII
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre de blastocystes de grade 1 et grade 2 / MII
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Blastocystes de bonne qualité par patient
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Nombre de blastocystes de grade 1 et grade 2/patients
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de blastocystes congelés par COC
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Compter le nombre de blastocystes/COC congelés
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de blastocystes congelés par MII
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Comptage du nombre de blastocystes congelés/ MII
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Taux de blastocystes congelés par patient
Délai: Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Comptage du nombre de blastocystes congelés/patient
Cinq ou six jours après l'injection intra-cytoplasmique de spermatozoïdes
Le taux d'expression relatif (R) des gènes des cellules cumulus humaines
Délai: Les cellules Cumulus seront collectées et congelées dans les 30 à 50 minutes suivant la dénudation des ovocytes, conservées à -80 °C jusqu'à la purification de l'ARN.
Les cellules Cumulus seront collectées, synthèse d'ADNc après purification de l'ARNm, PCR de quantification relative pour détecter l'expression des gènes (résultats potentiellement rapportés séparément)
Les cellules Cumulus seront collectées et congelées dans les 30 à 50 minutes suivant la dénudation des ovocytes, conservées à -80 °C jusqu'à la purification de l'ARN.
Taux de blastocystes par statut chromosomique dans le PGT
Délai: Après la fin des études, en moyenne 1 an.
Un PGT sera réalisé pour classer les blastocystes comme euploïdes, aneuploïdes ou mosaïques (résultats potentiellement rapportés séparément)
Après la fin des études, en moyenne 1 an.
Évaluation épigénétique
Délai: Après la fin des études, en moyenne 1 an.
L'évaluation épigénétique des blastocystes sera réalisée par marquage d'adaptateur post-bisulfite (PBAT), et la méthylation moyenne de l'ADN (%) au niveau des régions germinales imprimées différentiellement méthylées (gDMR) sera calculée (résultats potentiellement rapportés séparément)
Après la fin des études, en moyenne 1 an.

Collaborateurs et enquêteurs

C'est ici que vous trouverez les personnes et les organisations impliquées dans cette étude.

Les enquêteurs

  • Chercheur principal: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City

Publications et liens utiles

La personne responsable de la saisie des informations sur l'étude fournit volontairement ces publications. Il peut s'agir de tout ce qui concerne l'étude.

Publications générales

Dates d'enregistrement des études

Ces dates suivent la progression des dossiers d'étude et des soumissions de résultats sommaires à ClinicalTrials.gov. Les dossiers d'étude et les résultats rapportés sont examinés par la Bibliothèque nationale de médecine (NLM) pour s'assurer qu'ils répondent à des normes de contrôle de qualité spécifiques avant d'être publiés sur le site Web public.

Dates principales de l'étude

Début de l'étude (Réel)

10 janvier 2025

Achèvement primaire (Réel)

17 février 2025

Achèvement de l'étude (Estimé)

30 avril 2026

Dates d'inscription aux études

Première soumission

24 décembre 2024

Première soumission répondant aux critères de contrôle qualité

8 janvier 2025

Première publication (Réel)

9 janvier 2025

Mises à jour des dossiers d'étude

Dernière mise à jour publiée (Réel)

10 juillet 2025

Dernière mise à jour soumise répondant aux critères de contrôle qualité

9 juillet 2025

Dernière vérification

1 juillet 2025

Plus d'information

Termes liés à cette étude

Autres numéros d'identification d'étude

  • 12/24/DD-BVMD

Informations sur les médicaments et les dispositifs, documents d'étude

Étudie un produit pharmaceutique réglementé par la FDA américaine

Non

Étudie un produit d'appareil réglementé par la FDA américaine

Non

Ces informations ont été extraites directement du site Web clinicaltrials.gov sans aucune modification. Si vous avez des demandes de modification, de suppression ou de mise à jour des détails de votre étude, veuillez contacter register@clinicaltrials.gov. Dès qu'un changement est mis en œuvre sur clinicaltrials.gov, il sera également mis à jour automatiquement sur notre site Web .

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