Denne siden ble automatisk oversatt og nøyaktigheten av oversettelsen er ikke garantert. Vennligst referer til engelsk versjon for en kildetekst.

Effekt av Super-GDF9 på CAPA-IVM av COCs fra små antralfollikler (sGDF-9)

9. juli 2025 oppdatert av: Mỹ Đức Hospital

Utforskende in vitro-studie som evaluerer tilsetningen av Super-GDF9 under kapasitasjons-in-vitro-modning (CAPA-IVM) av donerte humane Cumulus-oocyttkomplekser (COC) avledet fra små antralfollikler

CAPA-IVM (In Vitro Maturation) teknologi er en assistert reproduksjonsmetode som gir betydelige fordeler når det gjelder sikkerhet og behandlingskostnader, spesielt for høyrisikopasienter. Disse inkluderer personer med ovariehyperstimuleringssyndrom (OHSS), venøs trombose, ovarietorsjon eller polycystisk ovariesyndrom (PCOS). Men mens fødselsraten i CAPA-IVM-gruppen (35,2 %) er sammenlignbar med konvensjonell IVF (43,2 %), er antallet embryoer av god kvalitet og kumulative kliniske graviditetsrater fortsatt lavere. Forbedring av CAPA-IVM-kulturprosessen, spesielt gjennom tilsetning av vekstfaktorer som finnes i follikulærvæske, har vist lovende å forbedre oocyttkvaliteten.

Vekstdifferensieringsfaktor 9 (GDF9) og beinmorfogenetisk protein 15 (BMP15) spiller kritiske roller i follikulær utvikling, med deres heterodimere struktur som viser de mest positive effektene på cumulus-oocyttkomplekser (COC). Nyere studier har identifisert en potent variant, super GDF9, som er >1000 ganger mer effektiv enn GDF9 og overgår cumulin, en heterodimer vekstfaktor. Super GDF9 forbedrer cumuluscelleekspansjon og oocyttutviklingskompetanse, og etterligner tett in vivo-modning.

Denne studien undersøker virkningen av å supplere super GDF9 under CAPA-IVM-kultur, med sikte på å forbedre resultatene av cumulus-oocyttkomplekser (COC) fra små follikler og til slutt forbedre behandlingssuksessen.

Studieoversikt

Detaljert beskrivelse

CAPA-IVM (In Vitro Maturation) teknologi er en assistert reproduksjonsmetode som gir betydelige fordeler når det gjelder sikkerhet og behandlingskostnader, spesielt for høyrisikopasienter. Disse inkluderer personer med ovariehyperstimuleringssyndrom (OHSS), venøs trombose, ovarietorsjon eller polycystisk ovariesyndrom (PCOS) - som vanligvis har et høyt antall antralfollikler (som utgjør nesten 15 % av alle pasienter). Selv om fødselsraten etter den første overføringen i CAPA-IVM-gruppen er 35,2 %, noe som ikke er statistisk forskjellig fra den konvensjonelle IVF-gruppen på 43,2 % (risikoforskjell: -8,1 %; 95 % konfidensintervall: -16,6 % til 0,5 %), forblir antall embryoer av god kvalitet per syklus og den kumulative kliniske graviditetsraten lavere enn ved konvensjonell IVF. Derfor er det viktig å forbedre CAPA-IVM-kulturprosessen for å oppnå det optimale antallet og kvaliteten på oocytter.

Samtidig representerer tilsetning av vekstfaktorer som vanligvis finnes i follikulærvæske til kulturmediet et bemerkelsesverdig fremskritt når det gjelder å forbedre oocyttkvaliteten i CAPA-IVM. Noen somatiske rom, som ekspansjon, metabolisme og apoptose, reguleres av løselige vekstfaktorer, kjent som oocyttsekresjonsfaktorer (OSF). To OSF-er, Growth differentiation factor 9 (GDF9) og Bone morfogenetic protein 15 (BMP15), har blitt identifisert som kritiske for follikulær utvikling og fruktbarhet hos forskjellige arter som mus, sauer og mennesker. Under IVM-kultur har både de umodne og modne formene av disse faktorene så vel som deres homo- og heterodimerstrukturer blitt testet. Spesielt har heterodimerstrukturen vist de mest positive effektene på cumulus-oocyttkomplekser (COC) under IVM-kultur.

Selv om begge vekstfaktorene eksisterer i homodimere former, har nyere studier funnet at GDF9- og BMP15-heterodimeren også kan danne en mer potent vekstfaktor kalt cumulin. BMP15 aktiverer latent GDF9 i cumulin, noe som fører til sterk signalering i granulosaceller via type I reseptorer (ALK4/5) og SMAD2/3 transkripsjonsfaktorer. Biomedisinsk konstruert cumulin har blitt foreslått for å merkbart forbedre embryoutfall i muse- og svinemodeller. Nylig har en modifisert versjon av villtype GDF9, kalt super GDF9, blitt vist å være >1000 ganger mer potent enn GDF9 og 4 ganger mer aktivitet enn cumulin i SMAD2/3-responsive transkripsjonsanalyser i granulosaceller. Tidligere forskning har illustrert at tilsetning av super GDF9 til CAPA-IVM-medier hos mus induserer genuttrykk i eggløsningskaskaden under CAPA-IVM-modning som ligner in vivo-modning. Super GDF9 fremmer effektivt cumuluscelleekspansjon og forbedrer oocyttutviklingskompetansen in vitro. Derfor kan super GDF9 potensielt erstatte cumulin, som står overfor utfordringer i produksjon og rensing.

Denne studien undersøker virkningen av å supplere super GDF9 under CAPA-IVM-kultur, med sikte på å forbedre resultatene av cumulus-oocyttkomplekser (COC) fra små follikler og til slutt forbedre behandlingssuksessen.

  • Screening for kvalifisering

    • Denne studien vil bli utført ved My Duc Hospital, Ho Chi Minh City, Vietnam.
    • Kvinner som er potensielt kvalifiserte vil bli gitt informasjon om studien på tidspunktet for IVM-behandlingsindikasjon.
    • Screening for kvalifisering vil bli utført på dagen for det første besøket når IVM-behandlingen er indisert.
    • Pasientene vil få informasjon om studien og informert samtykkedokumenter. Etterforskerne vil innhente signerte skjemaer for informert samtykke fra alle kvinner før påmelding.
    • Kvalifiserte kvinner vil etter planen gjennomgå prosedyrer for oocytthenting innen 1-7 dager fra informert samtykke.
  • Henting av oocytter. Oocytthentingsprosedyren vil bli utført i henhold til senterets standardpraksis for CAPA-IVM-sykluser.

Cumulus-oocyttkomplekser (COC) fra små follikler etter OPU vil bli delt inn i 2 grupper:

  • Gruppe 1: 10 donerte p-piller vil bli dyrket i CAPA- og IVM-trinnene, og legge til 50ng/ml Super-GDF9 under begge trinnene i CAPA-IVM.
  • Gruppe 2: Fagets gjenværende COC vil bli dyrket i CAPA- og IVM-trinnene uten å legge til Super-GDF9 under CAPA-IVM.

Gruppe 1 og 2: Innsamling etter kapasiteringstrinnet: brukte medier og tomme brønner. Innsamling etter modningstrinnet: brukte medier, cumuluscelle og tomme brønner.

+ CAPA og modningskultur: CAPA og modningskultur vil bli utført rutinemessig etter gjeldende laboratorieprotokoller. ICSI vil bli brukt til å befrukte modne oocytter.

Studietype

Intervensjonell

Registrering (Antatt)

9

Fase

  • Ikke aktuelt

Kontakter og plasseringer

Denne delen inneholder kontaktinformasjon for de som utfører studien, og informasjon om hvor denne studien blir utført.

Studiekontakt

Studiesteder

      • Ho Chi Minh City, Vietnam
        • Rekruttering
        • My Duc Hospital
        • Ta kontakt med:

Deltakelseskriterier

Forskere ser etter personer som passer til en bestemt beskrivelse, kalt kvalifikasjonskriterier. Noen eksempler på disse kriteriene er en persons generelle helsetilstand eller tidligere behandlinger.

Kvalifikasjonskriterier

Alder som er kvalifisert for studier

  • Voksen

Tar imot friske frivillige

Nei

Beskrivelse

Inkluderingskriterier:

  1. Kvinner mellom 18 og 35 år (begge inkludert)
  2. BMI ≤ 32 kg/m2
  3. PCOS kvinner i henhold til Rotterdam-kriteriene (2003)
  4. Indikerer CAPA-IVM-behandling.
  5. Serum AMH ≥ 4 ng/ml (28,57 pmol/L) ved screening og ha minst 50 antralfollikler i to eggstokker ved transvaginal ultralyd på tidspunktet for CAPA-IVM indikasjon
  6. Villig til å donere 10 COCs til forskningsformål
  7. Enig for frosset embryo
  8. Signert informert samtykke før eventuelle studierelaterte prosedyrer

Ekskluderingskriterier:

  1. Kjent endometriom eller grad 3-4 endometriose i henhold til ASRM klassifisering
  2. Uterine abnormiteter
  3. Par med alvorlig mannlig faktor (spermkonsentrasjon <5 mill./ml, motilitet < 10%), kirurgisk spermuthenting.
  4. Tidligere historie med uforklarlige umodne oocytter etter IVF-behandling
  5. Sykluser ved hjelp av donoroocytter

Studieplan

Denne delen gir detaljer om studieplanen, inkludert hvordan studien er utformet og hva studien måler.

Hvordan er studiet utformet?

Designdetaljer

  • Primært formål: Behandling
  • Tildeling: Ikke-randomisert
  • Intervensjonsmodell: Parallell tildeling
  • Masking: Ingen (Open Label)

Våpen og intervensjoner

Deltakergruppe / Arm
Intervensjon / Behandling
Aktiv komparator: Konvensjonell CAPA-IVM
Gruppe 2: Emnets gjenværende p-piller vil bli dyrket i CAPA-trinnet og IVM-trinnet uten tilsetning av Super-GDF9 under CAPA-IVM.
Gruppe 2: Emnets gjenværende p-piller vil bli dyrket i CAPA-trinnet og IVM-trinnet uten tilsetning av Super-GDF9 under CAPA-IVM.
Eksperimentell: Super-GDF9-tilskudd under CAPA-IVM
Gruppe 1: donerte p-piller vil bli dyrket i CAPA-trinnet og IVM-trinnet, med tillegg av Super-GDF9 under CAPA-IVM.
Gruppe 1: donerte p-piller vil bli eksponert for Super-GDF9 ved 50 ng/ml i både KAPASITASJON og MODNINGS-kulturtrinn.

Hva måler studien?

Primære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Modningshastighet per COC
Tidsramme: To dager etter oocyttuthenting
Antall MII / COCs
To dager etter oocyttuthenting

Sekundære resultatmål

Resultatmål
Tiltaksbeskrivelse
Tidsramme
Modningsrate per pasient
Tidsramme: To dager etter oocyttuthenting
Antall MII / pasient
To dager etter oocyttuthenting
Degenerasjonshastighet per COC
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall degenererte oocytter etter IVM / COCs
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Degenerasjonsrate per MII
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall degenererte oocytter etter IVM / MII
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Degenerasjonsrate per pasient
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall degenererte oocytter etter IVM / pasienter
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
t2PN
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Tidspunkt for to pronuclei-opptreden
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Befruktningsgrad per COC
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall befruktede oocytter / COCs
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Gjødslingsgrad per MII
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall befruktede oocytter / MII
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Befruktningsrate per pasient
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall befruktede oocytter/pasienter
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Unormal befruktningsrate per COC
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Prosentandelen av zygoter med 1,3 eller mer enn 3 pronuklei etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon/COC
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Unormal befruktningsrate per MII
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Prosentandelen av zygoter med 1,3 eller mer enn 3 pronuklei etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon / MII
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Unormal befruktningsrate per pasient
Tidsramme: 16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Prosentandelen av zygoter med 1,3 eller mer enn 3 pronuklei etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon/pasienter
16-18 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
tPNf
Tidsramme: 23-25 ​​timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Tidspunkt for pronuclei-fading
23-25 ​​timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
t2
Tidsramme: 25-27 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Første tidsramme der et embryo når blastomerer i 2-cellet stadium
25-27 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
t3
Tidsramme: 25-42 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Første tidsramme der et embryo når 3-celle-stadium blastomerer
25-42 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
t4
Tidsramme: 42-44 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Første tidsramme der et embryo når blastomerer i 4-cellestadiet
42-44 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
t5
Tidsramme: 44-67 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Første tidsramme der et embryo når blastomerer på 5-cellestadiet
44-67 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
t8
Tidsramme: 67-69 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Første tidsramme der et embryo når blastomerer i 8-cellers stadium
67-69 timer etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
tSC
Tidsramme: I løpet av dag 3 etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon (begynnelsen av komprimeringen av blastomerer)
Første bevis på komprimering
I løpet av dag 3 etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon (begynnelsen av komprimeringen av blastomerer)
Dag-3 embryorate per COC
Tidsramme: Fem dager etter oocyttuthenting
Teller antall pasienter med dag-3 embryo/COC
Fem dager etter oocyttuthenting
Dag-3 embryorate per MII
Tidsramme: Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Teller antall pasienter med Dag-3 embryo/MII
Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Dag-3 embryorate per pasient
Tidsramme: Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Telling av antall pasienter med Dag-3 embryo/pasienter
Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Dag-3 embryoer av god kvalitet per COC
Tidsramme: Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall grad 1 og grad 2 Dag-3 embryoer / COCs
Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Dag-3 embryoer av god kvalitet per MII
Tidsramme: Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall grad 1 og grad 2 Dag-3 embryoer / MII
Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Dag-3 embryoer av god kvalitet per pasient
Tidsramme: Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall grad 1 og grad 2 Dag-3 embryoer/pasienter
Tre dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
tM
Tidsramme: I løpet av dag 4 etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Tidspunkt for fullføring av komprimeringsprosessen
I løpet av dag 4 etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
tSB
Tidsramme: I løpet av dag 4 etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon (der blastocoel er synlig)
Igangsetting av sprengning
I løpet av dag 4 etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon (der blastocoel er synlig)
tB
Tidsramme: I løpet av dag 4 etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon (før zona begynner å bli tynnere)
Full blastocyst
I løpet av dag 4 etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon (før zona begynner å bli tynnere)
Blastocysthastighet per COC (dag 5 eller 6 embryo)
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Teller antall pasienter med dag-5 eller dag-6 embryo/COC
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Blastocystrate per MII
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Teller antall pasienter med Dag-5 eller Dag-6 embryo/MII
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Blastocystrate per pasient
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Telling av antall pasienter med Dag-5 eller Dag-6 embryo/pasient
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Blastocyster av god kvalitet per COC
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall grad 1 og grad 2 blastocyster / p-piller
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Blastocyster av god kvalitet per MII
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall grad 1 og grad 2 blastocyster / MII
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Blastocyster av god kvalitet per pasient
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Antall grad 1 og grad 2 blastocyster / pasienter
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Frosne blastocyster rate per COC
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Teller antall frosne blastocyster/p-piller
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Frosne blastocyster rate per MII
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Teller antall frosne blastocyster/ MII
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Frosne blastocyster rate per pasient
Tidsramme: Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Telling av antall frosne blastocyster/pasient
Fem eller seks dager etter intracytoplasmatisk spermieinjeksjon
Det relative ekspresjonsforholdet (R) av gener fra humane cumulusceller
Tidsramme: Cumulusceller vil bli samlet og frosset innen 30-50 minutter etter oocyttenudering, lagret ved -80oC frem til RNA-rensing
Cumulusceller vil bli samlet inn, cDNA-syntese etter mRNA-rensing, relativ kvantifiserings-PCR for påvisning av genuttrykk (resultater potensielt rapportert separat)
Cumulusceller vil bli samlet og frosset innen 30-50 minutter etter oocyttenudering, lagret ved -80oC frem til RNA-rensing
Forekomster av blastocyster etter kromosomstatus i PGT
Tidsramme: Etter studieavslutning i snitt 1 år.
PGT vil bli utført for å klassifisere blastocyster som euploide, aneuploide eller mosaikk (resultater potensielt rapportert separat)
Etter studieavslutning i snitt 1 år.
Epigenetisk evaluering
Tidsramme: Etter studieavslutning i snitt 1 år.
Epigenetisk evaluering av blastocyster vil bli utført ved post-bisulfitt adapter tagging (PBAT), og gjennomsnittlig DNA-metylering (%) ved påtrykte kimlinje differensielt metylerte regioner (gDMRs) vil bli beregnet (resultater potensielt rapportert separat)
Etter studieavslutning i snitt 1 år.

Samarbeidspartnere og etterforskere

Det er her du vil finne personer og organisasjoner som er involvert i denne studien.

Samarbeidspartnere

Etterforskere

  • Hovedetterforsker: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City

Publikasjoner og nyttige lenker

Den som er ansvarlig for å legge inn informasjon om studien leverer frivillig disse publikasjonene. Disse kan handle om alt relatert til studiet.

Generelle publikasjoner

Studierekorddatoer

Disse datoene sporer fremdriften for innsending av studieposter og sammendragsresultater til ClinicalTrials.gov. Studieposter og rapporterte resultater gjennomgås av National Library of Medicine (NLM) for å sikre at de oppfyller spesifikke kvalitetskontrollstandarder før de legges ut på det offentlige nettstedet.

Studer hoveddatoer

Studiestart (Faktiske)

10. januar 2025

Primær fullføring (Faktiske)

17. februar 2025

Studiet fullført (Antatt)

30. april 2026

Datoer for studieregistrering

Først innsendt

24. desember 2024

Først innsendt som oppfylte QC-kriteriene

8. januar 2025

Først lagt ut (Faktiske)

9. januar 2025

Oppdateringer av studieposter

Sist oppdatering lagt ut (Faktiske)

10. juli 2025

Siste oppdatering sendt inn som oppfylte QC-kriteriene

9. juli 2025

Sist bekreftet

1. juli 2025

Mer informasjon

Begreper knyttet til denne studien

Andre studie-ID-numre

  • 12/24/DD-BVMD

Legemiddel- og utstyrsinformasjon, studiedokumenter

Studerer et amerikansk FDA-regulert medikamentprodukt

Nei

Studerer et amerikansk FDA-regulert enhetsprodukt

Nei

Denne informasjonen ble hentet direkte fra nettstedet clinicaltrials.gov uten noen endringer. Hvis du har noen forespørsler om å endre, fjerne eller oppdatere studiedetaljene dine, vennligst kontakt register@clinicaltrials.gov. Så snart en endring er implementert på clinicaltrials.gov, vil denne også bli oppdatert automatisk på nettstedet vårt. .

Abonnere