- ICH GCP
- Registro de ensayos clínicos de EE. UU.
- Ensayo clínico NCT06766604
Efecto de Super-GDF9 sobre CAPA-IVM de AOC de pequeños folículos antrales (sGDF-9)
Estudio exploratorio in vitro que evalúa la adición de Super-GDF9 durante la maduración por capacitación in vitro (CAPA-IVM) de complejos cúmulos-ovocitos (AOC) humanos donados derivados de pequeños folículos antrales
La tecnología CAPA-IVM (Maduración In Vitro) es un método de reproducción asistida que ofrece importantes beneficios en términos de seguridad y costes de tratamiento, especialmente para pacientes de alto riesgo. Estos incluyen personas con síndrome de hiperestimulación ovárica (SHO), trombosis venosa, torsión ovárica o síndrome de ovario poliquístico (SOP). Sin embargo, si bien la tasa de nacidos vivos en el grupo CAPA-IVM (35,2%) es comparable a la FIV convencional (43,2%), el número de embriones de buena calidad y las tasas acumuladas de embarazo clínico siguen siendo más bajas. La mejora del proceso de cultivo CAPA-IVM, particularmente mediante la adición de factores de crecimiento que se encuentran en el líquido folicular, ha demostrado ser prometedora para mejorar la calidad de los ovocitos.
El factor de diferenciación de crecimiento 9 (GDF9) y la proteína morfogenética ósea 15 (BMP15) desempeñan funciones críticas en el desarrollo folicular, y su estructura heterodímera demuestra los efectos más positivos sobre los complejos cúmulo-ovocito (AOC). Estudios recientes han identificado una variante potente, super GDF9, que es >1000 veces más efectiva que GDF9 y supera a la cumulina, un factor de crecimiento heterodimérico. Super GDF9 mejora la expansión de las células del cúmulo y la competencia de desarrollo de los ovocitos, imitando estrechamente la maduración in vivo.
Este estudio investiga el impacto de suplementar super GDF9 durante el cultivo CAPA-IVM, con el objetivo de mejorar los resultados de los complejos cúmulo-ovocitos (AOC) de folículos pequeños y, en última instancia, mejorar el éxito del tratamiento.
Descripción general del estudio
Estado
Condiciones
Intervención / Tratamiento
Descripción detallada
La tecnología CAPA-IVM (Maduración In Vitro) es un método de reproducción asistida que ofrece importantes beneficios en términos de seguridad y costes de tratamiento, especialmente para pacientes de alto riesgo. Estos incluyen personas con síndrome de hiperestimulación ovárica (SHO), trombosis venosa, torsión ovárica o síndrome de ovario poliquístico (SOP), que normalmente presentan una gran cantidad de folículos antrales (que constituyen casi el 15% de todos los pacientes). Aunque la tasa de nacidos vivos después de la primera transferencia en el grupo CAPA-IVM es del 35,2 %, lo que no es estadísticamente diferente del grupo de FIV convencional con un 43,2 % (diferencia de riesgo: -8,1 %; intervalo de confianza del 95 %: -16,6 % a 0,5 %), el número de embriones de buena calidad por ciclo y la tasa acumulada de embarazo clínico siguen siendo inferiores que en la FIV convencional. Por lo tanto, es esencial mejorar el proceso de cultivo CAPA-IVM para lograr el número y la calidad óptimos de ovocitos.
Al mismo tiempo, agregar factores de crecimiento que se encuentran comúnmente en el líquido folicular al medio de cultivo representa un avance notable en la mejora de la calidad de los ovocitos en CAPA-IVM. Algunos compartimentos somáticos, como la expansión, el metabolismo y la apoptosis, están regulados por factores de crecimiento solubles, conocidos como factores de secreción de ovocitos (OSF). Se han identificado dos OSF, el factor de diferenciación del crecimiento 9 (GDF9) y la proteína morfogenética ósea 15 (BMP15), como críticos para el desarrollo folicular y la fertilidad en varias especies, como ratones, ovejas y humanos. Durante el cultivo IVM, se han probado tanto las formas inmaduras como maduras de estos factores, así como sus estructuras homo y heterodímeras. En particular, la estructura del heterodímero ha mostrado los efectos más positivos sobre los complejos cúmulo-ovocito (AOC) durante el cultivo de MIV.
Aunque ambos factores de crecimiento existen en formas homodiméricas, estudios recientes han encontrado que el heterodímero GDF9 y BMP15 también puede formar un factor de crecimiento más potente llamado cumulina. BMP15 activa el GDF9 latente en la cumulina, lo que genera una fuerte señalización en las células de la granulosa a través de receptores tipo I (ALK4/5) y factores de transcripción SMAD2/3. Se ha propuesto que la cumulina modificada biomédicamente mejore notablemente los resultados de los embriones en modelos de ratón y porcino. Recientemente, se ha demostrado que una versión modificada de GDF9 de tipo salvaje, llamada super GDF9, es >1000 veces más potente que GDF9 y 4 veces más actividad que la cumulina en ensayos transcripcionales de respuesta a SMAD2/3 en células de la granulosa. Investigaciones anteriores han ilustrado que la adición de super GDF9 al medio CAPA-IVM en ratones induce la expresión genética en la cascada ovulatoria durante la maduración de CAPA-IVM que se parece mucho a la maduración in vivo. Super GDF9 promueve eficazmente la expansión de las células del cúmulo y mejora la competencia de desarrollo de los ovocitos in vitro. Por lo tanto, el super GDF9 puede potencialmente reemplazar la cumulina, que enfrenta desafíos en la producción y purificación.
Este estudio investiga el impacto de suplementar super GDF9 durante el cultivo CAPA-IVM, con el objetivo de mejorar los resultados de los complejos cúmulo-ovocitos (AOC) de folículos pequeños y, en última instancia, mejorar el éxito del tratamiento.
Evaluación de elegibilidad
- Este estudio se llevará a cabo en el Hospital My Duc, Ciudad Ho Chi Minh, Vietnam.
- Las mujeres que sean potencialmente elegibles recibirán información sobre el estudio en el momento de la indicación del tratamiento con MIV.
- La evaluación de elegibilidad se realizará el día de la primera visita cuando esté indicado el tratamiento IVM.
- Los pacientes recibirán información sobre el estudio y documentos de consentimiento informado. Los investigadores obtendrán formularios de consentimiento informado firmados de todas las mujeres antes de la inscripción.
- Se programará que las mujeres elegibles se sometan a procedimientos de recolección de ovocitos dentro de 1 a 7 días desde el consentimiento informado.
- Recuperación de ovocitos El procedimiento de recogida de ovocitos se llevará a cabo de acuerdo con las prácticas estándar del centro para los ciclos CAPA-IVM.
Los complejos cúmulo-ovocitos (AOC) de folículos pequeños después de la OPU se dividirán en 2 grupos:
- Grupo 1: se cultivarán 10 AOC donados en los pasos CAPA e IVM, agregando 50 ng/ml de Super-GDF9 durante ambos pasos en CAPA-IVM.
- Grupo 2: los AOC restantes del sujeto se cultivarán en los pasos CAPA e IVM sin agregar Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
Grupos 1 y 2: Recolección después del paso de capacitación: medios gastados y pocillos en blanco. Recolección después del paso de maduración: medios gastados, células de cúmulo y pocillos en blanco.
+ CAPA y cultivo de maduración: CAPA y cultivo de maduración se realizarán de forma rutinaria siguiendo los protocolos de laboratorio actuales. Se utilizará ICSI para fertilizar ovocitos maduros.
Tipo de estudio
Inscripción (Estimado)
Fase
- No aplica
Contactos y Ubicaciones
Estudio Contacto
- Nombre: Kha T Huynh
- Número de teléfono: +84946699470
- Correo electrónico: kha.ht@myduchospital.vn
Ubicaciones de estudio
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-
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Ho Chi Minh City, Vietnam
- Reclutamiento
- My Duc Hospital
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Contacto:
- Tuong M Ho, MSc, MD
- Número de teléfono: +84 90 3633377
- Correo electrónico: tuongho.ivfmd@gmail.com
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Criterios de participación
Criterio de elegibilidad
Edades elegibles para estudiar
- Adulto
Acepta Voluntarios Saludables
Descripción
Criterios de inclusión:
- Mujeres entre 18 y 35 años (ambos inclusive)
- IMC ≤ 32 kg/m2
- Mujeres con SOP según los criterios de Rotterdam (2003)
- Indicando tratamiento CAPA-IVM.
- AMH sérica ≥ 4 ng/ml (28,57 pmol/L) en el momento de la selección y tener al menos 50 folículos antrales en dos ovarios mediante ecografía transvaginal en el momento de la indicación CAPA-IVM
- Dispuesto a donar 10 AOC con fines de investigación.
- Aceptando el embrión congelado
- Consentimiento informado firmado antes de cualquier procedimiento relacionado con el estudio.
Criterios de exclusión:
- Endometrioma conocido o endometriosis grado 3-4 según clasificación ASRM
- anomalías uterinas
- Parejas con factor masculino severo (concentración de espermatozoides <5 millones/ml, motilidad <10%), recuperación quirúrgica de espermatozoides.
- Historia previa de ovocitos inmaduros inexplicables después del tratamiento de FIV
- Ciclos con ovocitos de donante
Plan de estudios
¿Cómo está diseñado el estudio?
Detalles de diseño
- Propósito principal: Tratamiento
- Asignación: No aleatorizado
- Modelo Intervencionista: Asignación paralela
- Enmascaramiento: Ninguno (etiqueta abierta)
Armas e Intervenciones
Grupo de participantes/brazo |
Intervención / Tratamiento |
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Comparador activo: CAPA-IVM convencional
Grupo 2: Los AOC restantes del sujeto se cultivarán en el paso CAPA y el paso IVM sin la adición de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
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Grupo 2: Los AOC restantes del sujeto se cultivarán en el paso CAPA y el paso IVM sin la adición de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
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Experimental: Suplementación con Super-GDF9 durante CAPA-IVM
Grupo 1: los AOC donados se cultivarán en el paso CAPA y en el paso IVM, con la adición de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
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Grupo 1: los AOC donados se expondrán a Super-GDF9 a 50 ng/ml en los pasos de cultivo de CAPACITACIÓN y MADURACIÓN.
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¿Qué mide el estudio?
Medidas de resultado primarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
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Tasa de maduración por AOC
Periodo de tiempo: Dos días después de la extracción de ovocitos.
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Número de MII / AOC
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Dos días después de la extracción de ovocitos.
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Medidas de resultado secundarias
Medida de resultado |
Medida Descripción |
Periodo de tiempo |
|---|---|---|
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Tasa de maduración por paciente
Periodo de tiempo: Dos días después de la extracción de ovocitos.
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Número de MII/paciente
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Dos días después de la extracción de ovocitos.
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Tasa de degeneración por AOC
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de ovocitos degenerados después de MIV/AOC
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de degeneración por MII
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de ovocitos degenerados después de IVM / MII
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de degeneración por paciente
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de ovocitos degenerados tras MIV/pacientes
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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t2PN
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tiempo de aparición de dos pronúcleos.
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de fertilización por AOC
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de ovocitos fertilizados/AOC
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de fertilización por MII
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de ovocitos fecundados/MII
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de fertilización por paciente
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de ovocitos fecundados/pacientes
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de fertilización anormal por AOC
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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El porcentaje de cigotos con 1,3 o más de 3 pronúcleos después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides/AOC
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de fertilización anormal por MII
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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El porcentaje de cigotos con 1,3 o más de 3 pronúcleos después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides / MII
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de fertilización anormal por paciente
Periodo de tiempo: 16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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El porcentaje de cigotos con 1,3 o más de 3 pronúcleos después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides / pacientes
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16-18 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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tPNf
Periodo de tiempo: 23-25 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tiempo de desvanecimiento de los pronúcleos
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23-25 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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t2
Periodo de tiempo: 25-27 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Primer período de tiempo en el que un embrión alcanza blastómeros en etapa de 2 células
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25-27 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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t3
Periodo de tiempo: 25-42 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Primer período de tiempo en el que un embrión alcanza la etapa de blastómeros de 3 células
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25-42 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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t4
Periodo de tiempo: 42-44 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Primer período de tiempo en el que un embrión alcanza blastómeros en etapa de 4 células
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42-44 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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t5
Periodo de tiempo: 44-67 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Primer período de tiempo en el que un embrión alcanza blastómeros en etapa de 5 células
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44-67 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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t8
Periodo de tiempo: 67-69 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Primer período de tiempo en el que un embrión alcanza la etapa de blastómeros de 8 células
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67-69 horas después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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tsc
Periodo de tiempo: Durante el día 3 después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (inicio de la compactación de las blastómeras)
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Primera evidencia de compactación
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Durante el día 3 después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (inicio de la compactación de las blastómeras)
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Tasa de embriones del día 3 por AOC
Periodo de tiempo: Cinco días después de la extracción de ovocitos
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Contando el número de pacientes con embriones/AOC del día 3
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Cinco días después de la extracción de ovocitos
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Tasa de embriones del día 3 por MII
Periodo de tiempo: Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Contando el número de pacientes con embrión/MII del día 3
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Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Tasa de embriones del día 3 por paciente
Periodo de tiempo: Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Contando el número de pacientes con embrión/pacientes del día 3
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Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Embriones de día 3 de buena calidad por AOC
Periodo de tiempo: Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Número de embriones/AOC de día 3 de grado 1 y 2
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Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Embriones de día 3 de buena calidad por MII
Periodo de tiempo: Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Número de embriones de día 3 de grado 1 y 2 / MII
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Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Embriones de día 3 de buena calidad por paciente
Periodo de tiempo: Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Número de embriones/pacientes de día 3 de grado 1 y 2
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Tres días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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tM
Periodo de tiempo: Durante el día 4 después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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Tiempo de finalización del proceso de compactación.
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Durante el día 4 después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides.
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TSB
Periodo de tiempo: Durante el día 4 después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (en el que el blastocele es visible)
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Inicio de la blastulación
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Durante el día 4 después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (en el que el blastocele es visible)
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tuberculosis
Periodo de tiempo: Durante el día 4 después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (antes de que la zona comience a adelgazarse)
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Blastocisto completo
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Durante el día 4 después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides (antes de que la zona comience a adelgazarse)
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Tasa de blastocistos por AOC (día 5 o 6 embrión)
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Conteo del número de pacientes con embriones/AOC del día 5 o 6
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de blastocistos por MII
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Contando el número de pacientes con embrión/MII del día 5 o 6
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de blastocistos por paciente
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Contando el número de pacientes con embrión/paciente del día 5 o 6
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Blastocistos de buena calidad por AOC
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de blastocistos/AOC de grado 1 y 2
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Blastocistos de buena calidad por MII
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de blastocistos de grado 1 y 2/MII
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Blastocistos de buena calidad por paciente.
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Número de blastocistos de grado 1 y 2/pacientes
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de blastocistos congelados por AOC
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Contando el número de blastocistos/AOC congelados
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de blastocistos congelados por MII
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Contando el número de blastocistos congelados/MII
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Tasa de blastocistos congelados por paciente
Periodo de tiempo: Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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Contando el número de blastocistos congelados/paciente
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Cinco o seis días después de la inyección intracitoplasmática de espermatozoides
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La relación de expresión relativa (R) de genes de células del cúmulo humano.
Periodo de tiempo: Las células del cúmulo se recolectarán y congelarán entre 30 y 50 minutos después de la denudación de los ovocitos y se almacenarán a -80 ° C hasta la purificación del ARN.
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Se recolectarán células de cúmulo, síntesis de ADNc después de la purificación de ARNm, PCR de cuantificación relativa para detectar la expresión génica (los resultados potencialmente se informarán por separado)
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Las células del cúmulo se recolectarán y congelarán entre 30 y 50 minutos después de la denudación de los ovocitos y se almacenarán a -80 ° C hasta la purificación del ARN.
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Tasas de blastocistos por estado cromosómico en PGT
Periodo de tiempo: Una vez finalizados los estudios, una media de 1 año.
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Se realizará PGT para clasificar los blastocistos como euploides, aneuploides o mosaicos (los resultados potencialmente se informarán por separado)
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Una vez finalizados los estudios, una media de 1 año.
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Evaluación epigenética
Periodo de tiempo: Una vez finalizados los estudios, una media de 1 año.
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La evaluación epigenética de los blastocistos se realizará mediante etiquetado con adaptador post-bisulfito (PBAT), y se calculará la metilación promedio del ADN (%) en las regiones metiladas diferencialmente de la línea germinal impresas (gDMR) (los resultados potencialmente se informarán por separado)
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Una vez finalizados los estudios, una media de 1 año.
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
Publicaciones y enlaces útiles
Publicaciones Generales
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Saenz-de-Juano MD, Ivanova E, Romero S, Lolicato F, Sanchez F, Van Ranst H, Krueger F, Segonds-Pichon A, De Vos M, Andrews S, Smitz J, Kelsey G, Anckaert E. DNA methylation and mRNA expression of imprinted genes in blastocysts derived from an improved in vitro maturation method for oocytes from small antral follicles in polycystic ovary syndrome patients. Hum Reprod. 2019 Sep 29;34(9):1640-1649. doi: 10.1093/humrep/dez121.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Endometriosis and infertility: a committee opinion. Fertil Steril. 2012 Sep;98(3):591-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.031. Epub 2012 Jun 15.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
- Stocker WA, Walton KL, Richani D, Chan KL, Beilby KH, Finger BJ, Green MP, Gilchrist RB, Harrison CA. A variant of human growth differentiation factor-9 that improves oocyte developmental competence. J Biol Chem. 2020 Jun 5;295(23):7981-7991. doi: 10.1074/jbc.RA120.013050. Epub 2020 Apr 29.
- Krisher RL, Bavister BD. Enhanced glycolysis after maturation of bovine oocytes in vitro is associated with increased developmental competence. Mol Reprod Dev. 1999 May;53(1):19-26. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199905)53:13.0.CO;2-U.
- Ortmann B, Druker J, Rocha S. Cell cycle progression in response to oxygen levels. Cell Mol Life Sci. 2014 Sep;71(18):3569-82. doi: 10.1007/s00018-014-1645-9. Epub 2014 May 25.
- Mottershead DG, Sugimura S, Al-Musawi SL, Li JJ, Richani D, White MA, Martin GA, Trotta AP, Ritter LJ, Shi J, Mueller TD, Harrison CA, Gilchrist RB. Cumulin, an Oocyte-secreted Heterodimer of the Transforming Growth Factor-beta Family, Is a Potent Activator of Granulosa Cells and Improves Oocyte Quality. J Biol Chem. 2015 Sep 25;290(39):24007-20. doi: 10.1074/jbc.M115.671487. Epub 2015 Aug 8.
- Vuong LN, Nguyen MHN, Nguyen NA, Ly TT, Tran VTT, Nguyen NT, Hoang HLT, Le XTH, Pham TD, Smitz JEJ, Mol BW, Norman RJ, Ho TM. Development of children born from IVM versus IVF: 2-year follow-up of a randomized controlled trial. Hum Reprod. 2022 Jul 30;37(8):1871-1879. doi: 10.1093/humrep/deac115.
Fechas de registro del estudio
Fechas importantes del estudio
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Finalización del estudio (Estimado)
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