- ICH GCP
- Registro degli studi clinici negli Stati Uniti
- Sperimentazione clinica NCT06766604
Effetto di Super-GDF9 su CAPA-IVM di COC da piccoli follicoli antrali (sGDF-9)
Studio esplorativo in vitro che valuta l'aggiunta di Super-GDF9 durante la maturazione della capacitazione in vitro (CAPA-IVM) di complessi cumulo-ovociti (COC) umani donati derivati da piccoli follicoli antrali
La tecnologia CAPA-IVM (In Vitro Maturation) è un metodo di riproduzione assistita che offre vantaggi significativi in termini di sicurezza e costi di trattamento, in particolare per i pazienti ad alto rischio. Questi includono individui con sindrome da iperstimolazione ovarica (OHSS), trombosi venosa, torsione ovarica o sindrome dell'ovaio policistico (PCOS). Tuttavia, mentre il tasso di nati vivi nel gruppo CAPA-IVM (35,2%) è paragonabile alla fecondazione in vitro convenzionale (43,2%), il numero di embrioni di buona qualità e i tassi cumulativi di gravidanza clinica rimangono inferiori. Il miglioramento del processo di coltura CAPA-IVM, in particolare attraverso l'aggiunta di fattori di crescita presenti nel liquido follicolare, si è dimostrato promettente nel miglioramento della qualità degli ovociti.
Il fattore di differenziazione della crescita 9 (GDF9) e la proteina morfogenetica ossea 15 (BMP15) svolgono un ruolo critico nello sviluppo follicolare, con la loro struttura eterodimerica che dimostra gli effetti più positivi sui complessi cumulo-ovociti (COC). Studi recenti hanno identificato una potente variante, super GDF9, che è >1000 volte più efficace di GDF9 e supera la cumulina, un fattore di crescita eterodimerico. Super GDF9 migliora l’espansione delle cellule del cumulo e la competenza di sviluppo degli ovociti, imitando da vicino la maturazione in vivo.
Questo studio indaga l'impatto dell'integrazione di super GDF9 durante la coltura CAPA-IVM, con l'obiettivo di migliorare i risultati dei complessi cumulo-ovociti (COC) da piccoli follicoli e, in definitiva, migliorare il successo del trattamento.
Panoramica dello studio
Stato
Condizioni
Intervento / Trattamento
Descrizione dettagliata
La tecnologia CAPA-IVM (In Vitro Maturation) è un metodo di riproduzione assistita che offre vantaggi significativi in termini di sicurezza e costi di trattamento, in particolare per i pazienti ad alto rischio. Questi includono individui con sindrome da iperstimolazione ovarica (OHSS), trombosi venosa, torsione ovarica o sindrome dell'ovaio policistico (PCOS) - che tipicamente si presentano con un numero elevato di follicoli antrali (che costituiscono quasi il 15% di tutti i pazienti). Sebbene il tasso di nati vivi dopo il primo trasferimento nel gruppo CAPA-IVM sia del 35,2%, non è statisticamente diverso dal gruppo IVF convenzionale che è del 43,2% (differenza di rischio: -8,1%; intervallo di confidenza al 95%: da -16,6% a 0,5 %), il numero di embrioni di buona qualità per ciclo e il tasso cumulativo di gravidanza clinica rimangono inferiori rispetto alla fecondazione in vitro convenzionale. Pertanto, è essenziale migliorare il processo di coltura CAPA-IVM per ottenere il numero e la qualità ottimali degli ovociti.
Allo stesso tempo, l’aggiunta di fattori di crescita comunemente presenti nel fluido follicolare al terreno di coltura rappresenta un notevole progresso nel miglioramento della qualità degli ovociti nella CAPA-IVM. Alcuni compartimenti somatici, come l’espansione, il metabolismo e l’apoptosi, sono regolati da fattori di crescita solubili, noti come fattori di secrezione ovocitaria (OSF). Due OSF, il fattore di differenziazione della crescita 9 (GDF9) e la proteina morfogenetica ossea 15 (BMP15), sono stati identificati come fondamentali per lo sviluppo follicolare e la fertilità in varie specie come topi, pecore e esseri umani. Durante la coltura IVM, sono state testate sia le forme immature che quelle mature di questi fattori, nonché le loro strutture omo ed eterodimeriche. In particolare, la struttura eterodimerica ha mostrato gli effetti più positivi sui complessi cumulo-ovociti (COC) durante la coltura IVM.
Sebbene entrambi i fattori di crescita esistano in forme omodimeriche, studi recenti hanno scoperto che l'eterodimero GDF9 e BMP15 possono anche formare un fattore di crescita più potente chiamato cumulina. BMP15 attiva GDF9 latente nella cumulina, portando a una forte segnalazione nelle cellule della granulosa tramite i recettori di tipo I (ALK4/5) e i fattori di trascrizione SMAD2/3. È stato proposto che la cumulina ingegnerizzata biomedicamente migliori notevolmente i risultati embrionali nei modelli murini e suini. Recentemente, è stato dimostrato che una versione modificata di GDF9 wild-type, chiamata super GDF9, è >1000 volte più potente di GDF9 e 4 volte più attiva della cumulina nei test trascrizionali sensibili a SMAD2/3 nelle cellule della granulosa. Precedenti ricerche hanno dimostrato che l'aggiunta di super GDF9 ai mezzi CAPA-IVM nei topi induce l'espressione genica nella cascata ovulatoria durante la maturazione di CAPA-IVM che ricorda da vicino la maturazione in vivo. Super GDF9 promuove efficacemente l'espansione delle cellule del cumulo e migliora la competenza di sviluppo degli ovociti in vitro. Pertanto, il super GDF9 può potenzialmente sostituire la cumulina, che deve affrontare sfide nella produzione e nella purificazione.
Questo studio indaga l'impatto dell'integrazione di super GDF9 durante la coltura CAPA-IVM, con l'obiettivo di migliorare i risultati dei complessi cumulo-ovociti (COC) da piccoli follicoli e, in definitiva, migliorare il successo del trattamento.
Screening per l'idoneità
- Questo studio sarà condotto presso il My Duc Hospital, Ho Chi Minh City, Vietnam.
- Alle donne potenzialmente idonee verranno fornite informazioni sullo studio al momento dell'indicazione del trattamento IVM.
- Lo screening per l'idoneità verrà eseguito il giorno della prima visita quando è indicato il trattamento IVM.
- Ai pazienti verranno fornite informazioni sullo studio e documenti di consenso informato. Gli investigatori otterranno moduli di consenso informato firmati da tutte le donne prima dell'arruolamento.
- Alle donne idonee verrà programmato di sottoporsi a procedure di prelievo di ovociti entro 1-7 giorni dal consenso informato.
- Prelievo degli ovociti La procedura di prelievo degli ovociti sarà condotta secondo le pratiche standard del centro per i cicli CAPA-IVM.
I complessi cumulo-ovociti (COC) provenienti da piccoli follicoli dopo OPU saranno divisi in 2 gruppi:
- Gruppo 1: 10 COC donati verranno coltivati nelle fasi CAPA e IVM, aggiungendo 50 ng/ml Super-GDF9 durante entrambe le fasi in CAPA-IVM.
- Gruppo 2: i COC rimanenti del soggetto verranno coltivati nelle fasi CAPA e IVM senza aggiungere Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
Gruppi 1 e 2: Raccolta dopo la fase di capacitazione: mezzi esauriti e pozzetti vuoti. Raccolta dopo la fase di maturazione: mezzi esauriti, cella cumuliforme e pozzetti vuoti.
+ CAPA e coltura di maturazione: la CAPA e la coltura di maturazione verranno eseguite di routine seguendo gli attuali protocolli di laboratorio. L'ICSI verrà utilizzata per fecondare gli ovociti maturi.
Tipo di studio
Iscrizione (Stimato)
Fase
- Non applicabile
Contatti e Sedi
Contatto studio
- Nome: Kha T Huynh
- Numero di telefono: +84946699470
- Email: kha.ht@myduchospital.vn
Luoghi di studio
-
-
-
Ho Chi Minh City, Vietnam
- Reclutamento
- My Duc Hospital
-
Contatto:
- Tuong M Ho, MSc, MD
- Numero di telefono: +84 90 3633377
- Email: tuongho.ivfmd@gmail.com
-
-
Criteri di partecipazione
Criteri di ammissibilità
Età idonea allo studio
- Adulto
Accetta volontari sani
Descrizione
Criteri di inclusione:
- Donne di età compresa tra 18 e 35 anni (entrambi compresi)
- BMI ≤ 32 kg/m2
- Donne PCOS secondo i criteri di Rotterdam (2003)
- Indicazione del trattamento CAPA-IVM.
- AMH sierico ≥ 4 ng/mL (28.57 pmol/L) allo screening e con almeno 50 follicoli antrali in due ovaie mediante ecografia transvaginale al momento dell'indicazione CAPA-IVM
- Disposto a donare 10 COC per scopi di ricerca
- Accettare l'embrione congelato
- Consenso informato firmato prima di qualsiasi procedura relativa allo studio
Criteri di esclusione:
- Endometrioma noto o endometriosi di grado 3-4 secondo la classificazione ASRM
- Anomalie uterine
- Coppie con fattore maschile grave (concentrazione di spermatozoi <5 milioni/ml, motilità <10%), recupero chirurgico degli spermatozoi.
- Anamnesi precedente di ovociti immaturi inspiegabili dopo il trattamento di fecondazione in vitro
- Cicli con ovociti di donatrice
Piano di studio
Come è strutturato lo studio?
Dettagli di progettazione
- Scopo principale: Trattamento
- Assegnazione: Non randomizzato
- Modello interventistico: Assegnazione parallela
- Mascheramento: Nessuno (etichetta aperta)
Armi e interventi
Gruppo di partecipanti / Arm |
Intervento / Trattamento |
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Comparatore attivo: CAPA-IVM convenzionale
Gruppo 2: i COC rimanenti del soggetto verranno coltivati nella fase CAPA e nella fase IVM senza l'aggiunta di Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
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Gruppo 2: i COC rimanenti del soggetto verranno coltivati nella fase CAPA e nella fase IVM senza l'aggiunta di Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
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Sperimentale: Supplementazione di Super-GDF9 durante CAPA-IVM
Gruppo 1: i COC donati verranno coltivati nella fase CAPA e nella fase IVM, con l'aggiunta di Super-GDF9 durante la CAPA-IVM.
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Gruppo 1: i COC donati saranno esposti a Super-GDF9 a 50 ng/ml in entrambe le fasi di coltura di CAPACITAZIONE e MATURAZIONE.
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Cosa sta misurando lo studio?
Misure di risultato primarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Tasso di maturazione per COC
Lasso di tempo: Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Numero di MII/COC
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Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Misure di risultato secondarie
Misura del risultato |
Misura Descrizione |
Lasso di tempo |
|---|---|---|
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Tasso di maturazione per paziente
Lasso di tempo: Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Numero di MII/paziente
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Due giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Tasso di degenerazione per COC
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di ovociti degenerati dopo IVM/COC
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16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di degenerazione per MII
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di ovociti degenerati dopo IVM/MII
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16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di degenerazione per paziente
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di ovociti degenerati dopo IVM/pazienti
|
16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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t2PN
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tempo di comparsa dei due pronuclei
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16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di fecondazione per COC
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di ovociti fecondati/COC
|
16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
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Tasso di fecondazione per MII
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
Numero di ovociti fecondati/MII
|
16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di fecondazione per paziente
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
Numero di ovociti fecondati/pazienti
|
16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di fecondazione anomalo per COC
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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La percentuale di zigoti con 1,3 o più di 3 pronuclei dopo l'iniezione intracitoplasmatica di spermatozoi/COC
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16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di fecondazione anomalo per MII
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
La percentuale di zigoti con 1,3 o più di 3 pronuclei dopo l'iniezione intracitoplasmatica di spermatozoi/MII
|
16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
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Tasso di fecondazione anormale per paziente
Lasso di tempo: 16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
La percentuale di zigoti con 1,3 o più di 3 pronuclei dopo l'iniezione intracitoplasmatica di spermatozoi/pazienti
|
16-18 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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tPNf
Lasso di tempo: 23-25 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
Tempo di sbiadimento dei pronuclei
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23-25 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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t2
Lasso di tempo: 25-27 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Primo intervallo temporale in cui un embrione raggiunge i blastomeri allo stadio di 2 cellule
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25-27 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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t3
Lasso di tempo: 25-42 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
Primo intervallo temporale in cui un embrione raggiunge i blastomeri allo stadio di 3 cellule
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25-42 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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t4
Lasso di tempo: 42-44 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Primo intervallo temporale in cui un embrione raggiunge i blastomeri allo stadio di 4 cellule
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42-44 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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t5
Lasso di tempo: 44-67 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Primo intervallo temporale in cui un embrione raggiunge i blastomeri allo stadio di 5 cellule
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44-67 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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t8
Lasso di tempo: 67-69 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Primo intervallo temporale in cui un embrione raggiunge i blastomeri allo stadio di 8 cellule
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67-69 ore dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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tSC
Lasso di tempo: Durante il giorno 3 dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma (inizio della compattazione dei blastomeri)
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Prime prove di compattazione
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Durante il giorno 3 dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma (inizio della compattazione dei blastomeri)
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Tasso di embrioni al terzo giorno per COC
Lasso di tempo: Cinque giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Conteggio del numero di pazienti con embrioni/COC al terzo giorno
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Cinque giorni dopo il prelievo degli ovociti
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Tasso di embrioni al terzo giorno per MII
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Conteggio del numero di pazienti con embrione/MII al terzo giorno
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Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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|
Tasso di embrioni al terzo giorno per paziente
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
Conteggio del numero di pazienti con embrione/pazienti al terzo giorno
|
Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Embrioni di buona qualità al terzo giorno per COC
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
Numero di embrioni/COC di grado 1 e grado 2 del giorno 3
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Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Embrioni di buona qualità al terzo giorno per MII
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di embrioni di grado 1 e grado 2 del giorno 3/MII
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Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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|
Embrioni di buona qualità al terzo giorno per paziente
Lasso di tempo: Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
Numero di embrioni/pazienti di grado 1 e grado 2 al giorno 3
|
Tre giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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tM
Lasso di tempo: Durante il giorno 4 dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Orario di completamento del processo di compattazione
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Durante il giorno 4 dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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tSB
Lasso di tempo: Durante il giorno 4 dopo l'iniezione intracitoplasmatica di spermatozoi (in cui è visibile il blastocele)
|
Inizio della blastulazione
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Durante il giorno 4 dopo l'iniezione intracitoplasmatica di spermatozoi (in cui è visibile il blastocele)
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tB
Lasso di tempo: Durante il giorno 4 dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma (prima che la zona inizi ad assottigliarsi)
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Blastocisti completa
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Durante il giorno 4 dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma (prima che la zona inizi ad assottigliarsi)
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Tasso di blastocisti per COC (embrione al 5 o 6 giorno)
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Conteggio del numero di pazienti con embrioni/COC al giorno 5 o al giorno 6
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Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di blastocisti per MII
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Conteggio del numero di pazienti con embrioni/MII al giorno 5 o al giorno 6
|
Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
|
Tasso di blastocisti per paziente
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
|
Conteggio del numero di pazienti con embrione/paziente al giorno 5 o giorno 6
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Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Blastocisti di buona qualità per COC
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di blastocisti/COC di grado 1 e grado 2
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Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Blastocisti di buona qualità per MII
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di blastocisti di grado 1 e grado 2/MII
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Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Blastocisti di buona qualità per paziente
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Numero di blastocisti/pazienti di grado 1 e grado 2
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Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di blastocisti congelate per COC
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Conteggio del numero di blastocisti/COC congelati
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Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di blastocisti congelate per MII
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Conteggio del numero di blastocisti/MII congelate
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Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Tasso di blastocisti congelate per paziente
Lasso di tempo: Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Conteggio del numero di blastocisti congelate/paziente
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Cinque o sei giorni dopo l'iniezione intracitoplasmatica dello sperma
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Il rapporto di espressione relativa (R) dei geni delle cellule del cumulo umano
Lasso di tempo: Le cellule del cumulo verranno raccolte e congelate entro 30-50 minuti dalla denudazione degli ovociti, conservate a -80°C fino alla purificazione dell'RNA
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Verranno raccolte le cellule del cumulo, sintesi del cDNA dopo purificazione dell'mRNA, quantificazione relativa PCR per rilevare l'espressione genica (risultati potenzialmente riportati separatamente)
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Le cellule del cumulo verranno raccolte e congelate entro 30-50 minuti dalla denudazione degli ovociti, conservate a -80°C fino alla purificazione dell'RNA
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Tassi di blastocisti in base allo stato cromosomico nel PGT
Lasso di tempo: Dopo il completamento degli studi, in media 1 anno.
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Verrà eseguita la PGT per classificare le blastocisti come euploidi, aneuploidi o a mosaico (risultati potenzialmente riportati separatamente)
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Dopo il completamento degli studi, in media 1 anno.
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Valutazione epigenetica
Lasso di tempo: Dopo il completamento degli studi, in media 1 anno.
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La valutazione epigenetica delle blastocisti sarà eseguita mediante etichettatura dell'adattatore post-bisolfito (PBAT) e verrà calcolata la metilazione media del DNA (%) nelle regioni differenzialmente metilate della linea germinale (gDMR) impresse (risultati potenzialmente riportati separatamente)
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Dopo il completamento degli studi, in media 1 anno.
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Collaboratori e investigatori
Sponsor
Collaboratori
Investigatori
- Investigatore principale: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
Pubblicazioni e link utili
Pubblicazioni generali
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Saenz-de-Juano MD, Ivanova E, Romero S, Lolicato F, Sanchez F, Van Ranst H, Krueger F, Segonds-Pichon A, De Vos M, Andrews S, Smitz J, Kelsey G, Anckaert E. DNA methylation and mRNA expression of imprinted genes in blastocysts derived from an improved in vitro maturation method for oocytes from small antral follicles in polycystic ovary syndrome patients. Hum Reprod. 2019 Sep 29;34(9):1640-1649. doi: 10.1093/humrep/dez121.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Endometriosis and infertility: a committee opinion. Fertil Steril. 2012 Sep;98(3):591-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.031. Epub 2012 Jun 15.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
- Stocker WA, Walton KL, Richani D, Chan KL, Beilby KH, Finger BJ, Green MP, Gilchrist RB, Harrison CA. A variant of human growth differentiation factor-9 that improves oocyte developmental competence. J Biol Chem. 2020 Jun 5;295(23):7981-7991. doi: 10.1074/jbc.RA120.013050. Epub 2020 Apr 29.
- Krisher RL, Bavister BD. Enhanced glycolysis after maturation of bovine oocytes in vitro is associated with increased developmental competence. Mol Reprod Dev. 1999 May;53(1):19-26. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199905)53:13.0.CO;2-U.
- Ortmann B, Druker J, Rocha S. Cell cycle progression in response to oxygen levels. Cell Mol Life Sci. 2014 Sep;71(18):3569-82. doi: 10.1007/s00018-014-1645-9. Epub 2014 May 25.
- Mottershead DG, Sugimura S, Al-Musawi SL, Li JJ, Richani D, White MA, Martin GA, Trotta AP, Ritter LJ, Shi J, Mueller TD, Harrison CA, Gilchrist RB. Cumulin, an Oocyte-secreted Heterodimer of the Transforming Growth Factor-beta Family, Is a Potent Activator of Granulosa Cells and Improves Oocyte Quality. J Biol Chem. 2015 Sep 25;290(39):24007-20. doi: 10.1074/jbc.M115.671487. Epub 2015 Aug 8.
- Vuong LN, Nguyen MHN, Nguyen NA, Ly TT, Tran VTT, Nguyen NT, Hoang HLT, Le XTH, Pham TD, Smitz JEJ, Mol BW, Norman RJ, Ho TM. Development of children born from IVM versus IVF: 2-year follow-up of a randomized controlled trial. Hum Reprod. 2022 Jul 30;37(8):1871-1879. doi: 10.1093/humrep/deac115.
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Prove cliniche su Fecondazione in vitro
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