Super-GDF9 对小窦卵泡 COC CAPA-IVM 的影响 (sGDF-9)
探索性体外研究评估在小窦卵泡捐赠的人卵丘-卵母细胞复合物 (COC) 体外获能成熟 (CAPA-IVM) 过程中添加 Super-GDF9
CAPA-IVM(体外成熟)技术是一种辅助生殖方法,在安全性和治疗成本方面具有显着优势,特别是对于高危患者。 其中包括患有卵巢过度刺激综合征 (OHSS)、静脉血栓、卵巢扭转或多囊卵巢综合征 (PCOS) 的个体。 然而,虽然CAPA-IVM组的活产率(35.2%)与传统IVF(43.2%)相当,但优质胚胎的数量和累积临床妊娠率仍然较低。 改进 CAPA-IVM 培养过程,特别是通过添加卵泡液中的生长因子,已显示出提高卵母细胞质量的希望。
生长分化因子 9 (GDF9) 和骨形态发生蛋白 15 (BMP15) 在卵泡发育中发挥着关键作用,其异二聚体结构对卵丘-卵母细胞复合物 (COC) 具有最积极的影响。 最近的研究发现了一种有效的变体,超级 GDF9,其效果比 GDF9 高 1000 倍以上,并且超过了异二聚体生长因子 cumulin。 Super GDF9 增强卵丘细胞扩张和卵母细胞发育能力,密切模仿体内成熟。
本研究调查了 CAPA-IVM 培养期间补充超级 GDF9 的影响,旨在改善小卵泡卵丘卵母细胞复合物 (COC) 的结果,并最终提高治疗成功率。
研究概览
详细说明
CAPA-IVM(体外成熟)技术是一种辅助生殖方法,在安全性和治疗成本方面具有显着优势,特别是对于高危患者。 其中包括患有卵巢过度刺激综合征 (OHSS)、静脉血栓形成、卵巢扭转或多囊卵巢综合征 (PCOS) 的个体,这些患者通常会出现大量窦卵泡(占所有患者的近 15%)。 尽管CAPA-IVM组首次移植后的活产率为35.2%,与传统IVF组的43.2%没有统计学差异(风险差异:-8.1%;95%置信区间:-16.6%至0.5) %),每个周期的优质胚胎数量和累积临床妊娠率仍然低于传统IVF。 因此,改进CAPA-IVM培养过程以获得最佳卵母细胞数量和质量至关重要。
同时,在培养基中添加卵泡液中常见的生长因子代表了CAPA-IVM中改善卵母细胞质量的显着进步。 一些体细胞区室,例如扩张、代谢和细胞凋亡,受到可溶性生长因子(称为卵母细胞分泌因子(OSF))的调节。 生长分化因子 9 (GDF9) 和骨形态发生蛋白 15 (BMP15) 这两种 OSF 已被确定对小鼠、绵羊和人类等多种物种的卵泡发育和生育能力至关重要。 在 IVM 培养过程中,这些因子的未成熟和成熟形式及其同二聚体和异二聚体结构都经过了测试。 值得注意的是,异二聚体结构在 IVM 培养过程中对卵丘-卵母细胞复合物 (COC) 显示出最积极的影响。
尽管这两种生长因子均以同源二聚体形式存在,但最近的研究发现,GDF9 和 BMP15 异源二聚体也可以形成一种更有效的生长因子,称为累积蛋白。 BMP15 激活累积素中潜在的 GDF9,通过 I 型受体 (ALK4/5) 和 SMAD2/3 转录因子在颗粒细胞中产生强烈的信号传导。 生物医学工程的累积素已被提议可以显着改善小鼠和猪模型中的胚胎结局。 最近,野生型 GDF9 的改良版本(称为超级 GDF9)已被证明在颗粒细胞的 SMAD2/3 响应转录测定中比 GDF9 强 1000 倍以上,比积聚素高 4 倍。 先前的研究表明,在小鼠的 CAPA-IVM 培养基中添加超级 GDF9 会在 CAPA-IVM 成熟过程中诱导排卵级联中的基因表达,这与体内成熟非常相似。 Super GDF9 有效促进卵丘细胞扩增,增强卵母细胞体外发育能力。 因此,超级GDF9有可能取代在生产和纯化方面面临挑战的积聚素。
本研究调查了 CAPA-IVM 培养期间补充超级 GDF9 的影响,旨在改善小卵泡卵丘卵母细胞复合物 (COC) 的结果,并最终提高治疗成功率。
资格筛选
- 这项研究将在越南胡志明市 My Duc 医院进行。
- 可能符合资格的女性将在出现 IVM 治疗指征时获得有关研究的信息。
- 当需要 IVM 治疗时,将在首次就诊当天进行资格筛查。
- 将向患者提供有关研究的信息和知情同意文件。 研究人员将在入组前获得所有女性签署的知情同意书。
- 符合条件的女性将被安排在知情同意后 1-7 天内接受卵母细胞采集程序。
- 卵母细胞获取 卵母细胞获取程序将根据中心的 CAPA-IVM 周期标准实践进行。
OPU 后小卵泡中的卵丘-卵母细胞复合物 (COC) 将分为 2 组:
- 第1组:10个捐赠的COC将在CAPA和IVM步骤中培养,在CAPA-IVM的两个步骤中添加50ng/ml Super-GDF9。
- 第2组:受试者的剩余COC将在CAPA和IVM步骤中培养,而不在CAPA-IVM期间添加Super-GDF9。
第 1 组和第 2 组:获能步骤后收集:用过的培养基和空白孔。 成熟步骤后收集:用过的培养基、卵丘细胞和空白孔。
+ CAPA 和成熟培养:CAPA 和成熟培养将按照当前实验室方案常规进行。 ICSI 将用于使成熟卵母细胞受精。
研究类型
注册 (估计的)
阶段
- 不适用
联系人和位置
学习联系方式
- 姓名:Kha T Huynh
- 电话号码:+84946699470
- 邮箱:kha.ht@myduchospital.vn
学习地点
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-
-
Ho Chi Minh City、越南
- 招聘中
- My Duc Hospital
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接触:
- Tuong M Ho, MSc, MD
- 电话号码:+84 90 3633377
- 邮箱:tuongho.ivfmd@gmail.com
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参与标准
资格标准
适合学习的年龄
- 成人
接受健康志愿者
描述
纳入标准:
- 18岁至35岁(含)之间的女性
- 体重指数≤32公斤/平方米
- 根据鹿特丹标准(2003 年)的 PCOS 女性
- 表明CAPA-IVM治疗。
- 血清 AMH ≥ 4 ng/mL (28.57 pmol/L) 筛选时且在 CAPA-IVM 指征时经阴道超声检查两个卵巢至少有 50 个窦卵泡
- 愿意捐赠10个COC用于研究目的
- 同意冷冻胚胎
- 在任何研究相关程序之前签署知情同意书
排除标准:
- 根据 ASRM 分类已知子宫内膜异位症或 3-4 级子宫内膜异位症
- 子宫异常
- 具有严重男性因素的夫妇(精子浓度<500万/ml,活力<10%),手术取精。
- 既往 IVF 治疗后出现不明原因的未成熟卵母细胞史
- 使用供体卵母细胞的周期
学习计划
研究是如何设计的?
设计细节
- 主要用途:治疗
- 分配:非随机化
- 介入模型:并行分配
- 屏蔽:无(打开标签)
武器和干预
参与者组/臂 |
干预/治疗 |
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有源比较器:传统CAPA-IVM
第2组:受试者的剩余COC将在CAPA步骤和IVM步骤中培养,且在CAPA-IVM期间不添加Super-GDF9。
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第2组:受试者的剩余COC将在CAPA步骤和IVM步骤中培养,且在CAPA-IVM期间不添加Super-GDF9。
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实验性的:CAPA-IVM 期间补充 Super-GDF9
第 1 组:捐赠的 COC 将在 CAPA 步骤和 IVM 步骤中进行培养,并在 CAPA-IVM 过程中添加 Super-GDF9。
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第 1 组:捐赠的 COC 将在获能和成熟培养步骤中暴露于 50 ng/ml 的 Super-GDF9。
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研究衡量的是什么?
主要结果指标
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
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每个 COC 的成熟率
大体时间:取卵后两天
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MII / COC 数量
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取卵后两天
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次要结果测量
结果测量 |
措施说明 |
大体时间 |
|---|---|---|
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每个患者的成熟率
大体时间:取卵后两天
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MII 数量/患者
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取卵后两天
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每个 COC 的退化率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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IVM / COC 后退化卵母细胞数量
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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每个 MII 的退化率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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IVM / MII 后退化卵母细胞数量
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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每个患者的退化率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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IVM 后退化卵母细胞数量 / 患者
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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t2PN
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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两原核出现时间
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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每个 COC 的受精率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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受精卵母细胞数量/COC
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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每个 MII 的受精率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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受精卵母细胞数/MII
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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每个患者的受精率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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受精卵母细胞数/患者
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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每个 COC 的异常受精率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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胞浆内单精子注射/COCs后具有1,3个或超过3个原核的受精卵的百分比
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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每个 MII 的异常受精率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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胞浆内单精子注射后具有 1,3 个或 3 个以上原核的受精卵的百分比 / MII
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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每个患者的异常受精率
大体时间:胞浆内单精子注射后16-18小时
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胞浆内单精子注射后具有 1,3 个或超过 3 个原核的受精卵的百分比/患者
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胞浆内单精子注射后16-18小时
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PNf
大体时间:胞浆内单精子注射后23-25小时
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原核衰落时间
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胞浆内单精子注射后23-25小时
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t2
大体时间:胞浆内单精子注射后25-27小时
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胚胎到达 2 细胞阶段卵裂球的第一个时间范围
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胞浆内单精子注射后25-27小时
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t3
大体时间:胞浆内单精子注射后25-42小时
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胚胎到达 3 细胞阶段卵裂球的第一个时间范围
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胞浆内单精子注射后25-42小时
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t4
大体时间:胞浆内单精子注射后42-44小时
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胚胎到达 4 细胞阶段卵裂球的第一个时间范围
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胞浆内单精子注射后42-44小时
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t5
大体时间:胞浆内单精子注射后44-67小时
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胚胎达到 5 细胞阶段卵裂球的第一个时间范围
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胞浆内单精子注射后44-67小时
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t8
大体时间:胞浆内单精子注射后67-69小时
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胚胎达到 8 细胞阶段卵裂球的第一个时间范围
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胞浆内单精子注射后67-69小时
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tSC
大体时间:胞浆内单精子注射后第 3 天(卵裂球开始压缩)
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压实的第一个证据
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胞浆内单精子注射后第 3 天(卵裂球开始压缩)
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每个COC的第3天胚胎率
大体时间:取卵后五天
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计算第 3 天胚胎/COC 的患者数量
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取卵后五天
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根据 MII 的第 3 天胚胎率
大体时间:胞浆内单精子注射三天后
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计算第 3 天胚胎/MII 的患者数量
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胞浆内单精子注射三天后
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每个患者的第 3 天胚胎率
大体时间:胞浆内单精子注射三天后
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计算第 3 天胚胎/患者的患者数量
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胞浆内单精子注射三天后
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每个 COC 的优质第 3 天胚胎
大体时间:胞浆内单精子注射三天后
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1 级和 2 级第 3 天胚胎/COC 的数量
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胞浆内单精子注射三天后
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根据 MII 获得优质第 3 天胚胎
大体时间:胞浆内单精子注射三天后
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1 级和 2 级 Day-3 胚胎数量 / MII
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胞浆内单精子注射三天后
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每位患者的第 3 天胚胎质量良好
大体时间:胞浆内单精子注射三天后
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1 级和 2 级第 3 天胚胎/患者的数量
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胞浆内单精子注射三天后
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tM
大体时间:胞浆内单精子注射后第 4 天
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压实过程完成时间
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胞浆内单精子注射后第 4 天
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tSB
大体时间:胞浆内单精子注射后第 4 天(囊胚腔可见)
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爆破的开始
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胞浆内单精子注射后第 4 天(囊胚腔可见)
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tB
大体时间:胞浆内单精子注射后第 4 天(透明带开始变薄之前)
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完整囊胚
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胞浆内单精子注射后第 4 天(透明带开始变薄之前)
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每个 COC 的囊胚率(第 5 或第 6 天胚胎)
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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计算第 5 天或第 6 天胚胎/COC 的患者数量
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胞浆内单精子注射后五六天
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每个 MII 的囊胚率
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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计算第 5 天或第 6 天胚胎/MII 的患者数量
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胞浆内单精子注射后五六天
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每名患者的囊胚率
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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计算第 5 天或第 6 天胚胎/患者的患者数量
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胞浆内单精子注射后五六天
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每个 COC 均获得优质囊胚
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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1 级和 2 级囊胚/COC 的数量
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胞浆内单精子注射后五六天
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根据 MII 的优质囊胚
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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1级和2级囊胚数量/MII
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胞浆内单精子注射后五六天
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每位患者获得优质囊胚
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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1 级和 2 级囊胚数量/患者
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胞浆内单精子注射后五六天
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每个 COC 的冷冻囊胚率
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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计数冷冻囊胚/COC 的数量
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胞浆内单精子注射后五六天
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每个 MII 的冷冻囊胚率
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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计数冷冻囊胚/ MII 的数量
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胞浆内单精子注射后五六天
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每位患者的冷冻囊胚率
大体时间:胞浆内单精子注射后五六天
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计算/患者冷冻囊胚的数量
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胞浆内单精子注射后五六天
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人卵丘细胞基因相对表达率(R)
大体时间:卵母细胞剥除后30-50分钟内收集并冷冻卵丘细胞,保存在-80oC直至RNA纯化
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收集卵丘细胞,mRNA纯化后合成cDNA,相对定量PCR检测基因表达(结果可能单独报告)
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卵母细胞剥除后30-50分钟内收集并冷冻卵丘细胞,保存在-80oC直至RNA纯化
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PGT 中按染色体状态划分的囊胚率
大体时间:学习完成后,平均1年。
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将进行 PGT 将囊胚分类为整倍体、非整倍体或嵌合体(结果可能单独报告)
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学习完成后,平均1年。
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表观遗传学评估
大体时间:学习完成后,平均1年。
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囊胚的表观遗传评估将通过亚硫酸氢盐后接头标记 (PBAT) 进行,并且将计算印记种系差异甲基化区域 (gDMR) 的平均 DNA 甲基化 (%)(结果可能单独报告)
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学习完成后,平均1年。
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合作者和调查者
调查人员
- 首席研究员:Lan N Vuong、University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
出版物和有用的链接
一般刊物
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Saenz-de-Juano MD, Ivanova E, Romero S, Lolicato F, Sanchez F, Van Ranst H, Krueger F, Segonds-Pichon A, De Vos M, Andrews S, Smitz J, Kelsey G, Anckaert E. DNA methylation and mRNA expression of imprinted genes in blastocysts derived from an improved in vitro maturation method for oocytes from small antral follicles in polycystic ovary syndrome patients. Hum Reprod. 2019 Sep 29;34(9):1640-1649. doi: 10.1093/humrep/dez121.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Endometriosis and infertility: a committee opinion. Fertil Steril. 2012 Sep;98(3):591-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.031. Epub 2012 Jun 15.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
- Stocker WA, Walton KL, Richani D, Chan KL, Beilby KH, Finger BJ, Green MP, Gilchrist RB, Harrison CA. A variant of human growth differentiation factor-9 that improves oocyte developmental competence. J Biol Chem. 2020 Jun 5;295(23):7981-7991. doi: 10.1074/jbc.RA120.013050. Epub 2020 Apr 29.
- Krisher RL, Bavister BD. Enhanced glycolysis after maturation of bovine oocytes in vitro is associated with increased developmental competence. Mol Reprod Dev. 1999 May;53(1):19-26. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199905)53:13.0.CO;2-U.
- Ortmann B, Druker J, Rocha S. Cell cycle progression in response to oxygen levels. Cell Mol Life Sci. 2014 Sep;71(18):3569-82. doi: 10.1007/s00018-014-1645-9. Epub 2014 May 25.
- Mottershead DG, Sugimura S, Al-Musawi SL, Li JJ, Richani D, White MA, Martin GA, Trotta AP, Ritter LJ, Shi J, Mueller TD, Harrison CA, Gilchrist RB. Cumulin, an Oocyte-secreted Heterodimer of the Transforming Growth Factor-beta Family, Is a Potent Activator of Granulosa Cells and Improves Oocyte Quality. J Biol Chem. 2015 Sep 25;290(39):24007-20. doi: 10.1074/jbc.M115.671487. Epub 2015 Aug 8.
- Vuong LN, Nguyen MHN, Nguyen NA, Ly TT, Tran VTT, Nguyen NT, Hoang HLT, Le XTH, Pham TD, Smitz JEJ, Mol BW, Norman RJ, Ho TM. Development of children born from IVM versus IVF: 2-year follow-up of a randomized controlled trial. Hum Reprod. 2022 Jul 30;37(8):1871-1879. doi: 10.1093/humrep/deac115.
研究记录日期
研究主要日期
学习开始 (实际的)
初级完成 (实际的)
研究完成 (估计的)
研究注册日期
首次提交
首先提交符合 QC 标准的
首次发布 (实际的)
研究记录更新
最后更新发布 (实际的)
上次提交的符合 QC 标准的更新
最后验证
更多信息
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