- ICH GCP
- US-Register für klinische Studien
- Klinische Studie NCT06766604
Wirkung von Super-GDF9 auf CAPA-IVM von KOK aus kleinen Antralfollikeln (sGDF-9)
Explorative In-vitro-Studie zur Bewertung der Zugabe von Super-GDF9 während der Kapazitation-in-vitro-Reifung (CAPA-IVM) von gespendeten menschlichen Cumulus-Oozyten-Komplexen (COCs), die aus kleinen Antralfollikeln stammen
Die CAPA-IVM-Technologie (In-vitro-Maturation) ist eine assistierte Reproduktionsmethode, die insbesondere für Hochrisikopatienten erhebliche Vorteile hinsichtlich Sicherheit und Behandlungskosten bietet. Dazu gehören Personen mit ovariellem Überstimulationssyndrom (OHSS), Venenthrombose, Ovarialtorsion oder polyzystischem Ovarialsyndrom (PCOS). Während die Lebendgeburtenrate in der CAPA-IVM-Gruppe (35,2 %) mit der konventionellen IVF (43,2 %) vergleichbar ist, bleiben die Anzahl qualitativ hochwertiger Embryonen und die kumulativen klinischen Schwangerschaftsraten niedriger. Die Verbesserung des CAPA-IVM-Kulturprozesses, insbesondere durch die Zugabe von Wachstumsfaktoren aus der Follikelflüssigkeit, hat sich als vielversprechend für die Verbesserung der Eizellenqualität erwiesen.
Wachstumsdifferenzierungsfaktor 9 (GDF9) und Knochenmorphogenetisches Protein 15 (BMP15) spielen eine entscheidende Rolle bei der Follikelentwicklung, wobei ihre Heterodimerstruktur die positivsten Auswirkungen auf Cumulus-Oozyten-Komplexe (COCs) zeigt. Jüngste Studien haben eine wirksame Variante, Super-GDF9, identifiziert, die >1000-mal wirksamer als GDF9 ist und Cumulin, einen heterodimeren Wachstumsfaktor, übertrifft. Super GDF9 steigert die Cumuluszellexpansion und die Entwicklungskompetenz der Eizellen und ahmt die In-vivo-Reifung weitgehend nach.
Diese Studie untersucht die Auswirkungen der Ergänzung von Super-GDF9 während der CAPA-IVM-Kultur mit dem Ziel, die Ergebnisse von Cumulus-Oozyten-Komplexen (COCs) aus kleinen Follikeln zu verbessern und letztendlich den Behandlungserfolg zu steigern.
Studienübersicht
Status
Bedingungen
Intervention / Behandlung
Detaillierte Beschreibung
Die CAPA-IVM-Technologie (In-vitro-Maturation) ist eine assistierte Reproduktionsmethode, die insbesondere für Hochrisikopatienten erhebliche Vorteile hinsichtlich Sicherheit und Behandlungskosten bietet. Dazu gehören Personen mit ovariellem Überstimulationssyndrom (OHSS), Venenthrombose, Ovarialtorsion oder polyzystischem Ovarialsyndrom (PCOS), die typischerweise eine hohe Anzahl an Antralfollikeln aufweisen (was fast 15 % aller Patienten ausmacht). Obwohl die Lebendgeburtenrate nach dem ersten Transfer in der CAPA-IVM-Gruppe 35,2 % beträgt, unterscheidet sie sich statistisch gesehen nicht von der konventionellen IVF-Gruppe mit 43,2 % (Risikounterschied: -8,1 %; 95 %-Konfidenzintervall: -16,6 % bis 0,5). %), bleiben die Anzahl qualitativ hochwertiger Embryonen pro Zyklus und die kumulative klinische Schwangerschaftsrate niedriger als bei der konventionellen IVF. Daher ist die Verbesserung des CAPA-IVM-Kulturprozesses zur Erzielung der optimalen Anzahl und Qualität der Eizellen unerlässlich.
Gleichzeitig stellt die Zugabe von Wachstumsfaktoren, die üblicherweise in der Follikelflüssigkeit vorkommen, zum Kulturmedium einen bemerkenswerten Fortschritt bei der Verbesserung der Eizellenqualität bei CAPA-IVM dar. Einige somatische Kompartimente wie Expansion, Stoffwechsel und Apoptose werden durch lösliche Wachstumsfaktoren reguliert, die als Oozytensekretionsfaktoren (OSFs) bekannt sind. Zwei OSFs, Wachstumsdifferenzierungsfaktor 9 (GDF9) und Knochenmorphogenetisches Protein 15 (BMP15), wurden als entscheidend für die Follikelentwicklung und Fruchtbarkeit bei verschiedenen Arten wie Mäusen, Schafen und Menschen identifiziert. Während der IVM-Kultur wurden sowohl die unreifen und reifen Formen dieser Faktoren als auch ihre Homo- und Heterodimerstrukturen getestet. Bemerkenswert ist, dass die Heterodimerstruktur während der IVM-Kultur die positivsten Auswirkungen auf Cumulus-Oozyten-Komplexe (COCs) gezeigt hat.
Obwohl beide Wachstumsfaktoren in homodimeren Formen vorliegen, haben neuere Studien ergeben, dass das GDF9- und BMP15-Heterodimer auch einen wirksameren Wachstumsfaktor namens Cumulin bilden kann. BMP15 aktiviert latentes GDF9 in Cumulin, was zu einer starken Signalübertragung in Granulosazellen über Typ-I-Rezeptoren (ALK4/5) und SMAD2/3-Transkriptionsfaktoren führt. Es wurde vorgeschlagen, dass biomedizinisch hergestelltes Cumulin die Embryonenergebnisse in Maus- und Schweinemodellen deutlich verbessert. Kürzlich wurde gezeigt, dass eine modifizierte Version von Wildtyp-GDF9, Super-GDF9 genannt, in SMAD2/3-responsiven Transkriptionstests in Granulosazellen > 1000-mal wirksamer als GDF9 und 4-mal aktiver als Cumulin ist. Frühere Untersuchungen haben gezeigt, dass die Zugabe von Super-GDF9 zu CAPA-IVM-Medien bei Mäusen die Genexpression in der Ovulationskaskade während der CAPA-IVM-Reifung induziert, die der In-vivo-Reifung sehr ähnlich ist. Super GDF9 fördert effektiv die Expansion von Kumuluszellen und verbessert die Entwicklungskompetenz der Eizelle in vitro. Daher kann Super-GDF9 möglicherweise Cumulin ersetzen, das bei der Herstellung und Reinigung vor Herausforderungen steht.
Diese Studie untersucht die Auswirkungen der Ergänzung von Super-GDF9 während der CAPA-IVM-Kultur mit dem Ziel, die Ergebnisse von Cumulus-Oozyten-Komplexen (COCs) aus kleinen Follikeln zu verbessern und letztendlich den Behandlungserfolg zu steigern.
Prüfung auf Eignung
- Diese Studie wird im My Duc Hospital in Ho-Chi-Minh-Stadt, Vietnam, durchgeführt.
- Frauen, die potenziell geeignet sind, werden zum Zeitpunkt der IVM-Behandlungsindikation über die Studie informiert.
- Das Screening auf Eignung wird am Tag des ersten Besuchs durchgeführt, wenn die IVM-Behandlung angezeigt ist.
- Den Patienten werden Informationen über die Studie und Einverständniserklärungen zur Verfügung gestellt. Die Ermittler werden vor der Einschreibung von allen Frauen unterschriebene Einverständniserklärungen einholen.
- Berechtigte Frauen werden innerhalb von 1–7 Tagen nach Einverständniserklärung einer Eizellentnahme unterzogen.
- Entnahme der Eizellen Das Verfahren zur Entnahme der Eizellen wird gemäß den Standardpraktiken des Zentrums für CAPA-IVM-Zyklen durchgeführt.
Cumulus-Oozyten-Komplexe (COCs) aus kleinen Follikeln nach OPU werden in zwei Gruppen eingeteilt:
- Gruppe 1: 10 gespendete COCs werden in den CAPA- und IVM-Schritten kultiviert, wobei in beiden Schritten in CAPA-IVM 50 ng/ml Super-GDF9 hinzugefügt werden.
- Gruppe 2: Die verbleibenden COCs des Probanden werden in den CAPA- und IVM-Schritten kultiviert, ohne dass während der CAPA-IVM Super-GDF9 hinzugefügt wird.
Gruppen 1 und 2: Sammeln nach dem Kapazitationsschritt: verbrauchte Medien und leere Vertiefungen. Sammeln nach dem Reifungsschritt: verbrauchtes Medium, Kumuluszelle und leere Vertiefungen.
+ CAPA und Reifungskultur: CAPA und Reifungskultur werden routinemäßig gemäß den aktuellen Laborprotokollen durchgeführt. ICSI wird zur Befruchtung reifer Eizellen eingesetzt.
Studientyp
Einschreibung (Geschätzt)
Phase
- Unzutreffend
Kontakte und Standorte
Studienkontakt
- Name: Kha T Huynh
- Telefonnummer: +84946699470
- E-Mail: kha.ht@myduchospital.vn
Studienorte
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-
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Ho Chi Minh City, Vietnam
- Rekrutierung
- My Duc Hospital
-
Kontakt:
- Tuong M Ho, MSc, MD
- Telefonnummer: +84 90 3633377
- E-Mail: tuongho.ivfmd@gmail.com
-
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Teilnahmekriterien
Zulassungskriterien
Studienberechtigtes Alter
- Erwachsene
Akzeptiert gesunde Freiwillige
Beschreibung
Einschlusskriterien:
- Frauen im Alter zwischen 18 und 35 Jahren (beide inklusive)
- BMI ≤ 32 kg/m2
- PCOS-Frauen nach den Rotterdam-Kriterien (2003)
- Zeigt eine CAPA-IVM-Behandlung an.
- Serum-AMH ≥ 4 ng/ml (28,57 pmol/L) beim Screening und mit mindestens 50 Antrumfollikeln in zwei Eierstöcken im transvaginalen Ultraschall zum Zeitpunkt der CAPA-IVM-Indikation
- Bereit, 10 COCs für Forschungszwecke zu spenden
- Zustimmung zum eingefrorenen Embryo
- Unterzeichnete Einverständniserklärung vor allen studienbezogenen Verfahren
Ausschlusskriterien:
- Bekanntes Endometriom oder Endometriose Grad 3–4 gemäß ASRM-Klassifikation
- Uterusanomalien
- Paare mit schwerem männlichen Faktor (Spermienkonzentration <5 Millionen/ml, Motilität < 10 %), chirurgische Spermienentnahme.
- Vorgeschichte ungeklärter unreifer Eizellen nach IVF-Behandlung
- Zyklen mit Spendereizellen
Studienplan
Wie ist die Studie aufgebaut?
Designdetails
- Hauptzweck: Behandlung
- Zuteilung: Nicht randomisiert
- Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
- Maskierung: Keine (Offenes Etikett)
Waffen und Interventionen
Teilnehmergruppe / Arm |
Intervention / Behandlung |
|---|---|
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Aktiver Komparator: Konventionelles CAPA-IVM
Gruppe 2: Die verbleibenden COCs des Probanden werden im CAPA-Schritt und im IVM-Schritt ohne Zugabe von Super-GDF9 während CAPA-IVM kultiviert.
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Gruppe 2: Die verbleibenden COCs des Probanden werden im CAPA-Schritt und im IVM-Schritt ohne Zugabe von Super-GDF9 während CAPA-IVM kultiviert.
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Experimental: Super-GDF9-Supplementierung während CAPA-IVM
Gruppe 1: Gespendete COCs werden im CAPA-Schritt und im IVM-Schritt kultiviert, mit der Zugabe von Super-GDF9 während CAPA-IVM.
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Gruppe 1: Gespendete COCs werden in den Kulturschritten CAPACITATION und REIFUNG Super-GDF9 mit 50 ng/ml ausgesetzt.
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Was misst die Studie?
Primäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Reiferate pro COC
Zeitfenster: Zwei Tage nach der Eizellentnahme
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Anzahl der MII/COCs
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Zwei Tage nach der Eizellentnahme
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Sekundäre Ergebnismessungen
Ergebnis Maßnahme |
Maßnahmenbeschreibung |
Zeitfenster |
|---|---|---|
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Reiferate pro Patient
Zeitfenster: Zwei Tage nach der Eizellentnahme
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Anzahl MII/Patient
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Zwei Tage nach der Eizellentnahme
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Degenerationsrate pro COC
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl degenerierter Eizellen nach IVM/COCs
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16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Degenerationsrate pro MII
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl degenerierter Eizellen nach IVM / MII
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16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Degenerationsrate pro Patient
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl degenerierter Eizellen nach IVM / Patientinnen
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16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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t2PN
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zeitpunkt des Auftretens zweier Vorkerne
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16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Befruchtungsrate pro COC
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
Anzahl befruchteter Eizellen/COCs
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16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Befruchtungsrate pro MII
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
Anzahl befruchteter Eizellen / MII
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16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
|
Befruchtungsrate pro Patient
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
Anzahl befruchteter Eizellen / Patientinnen
|
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
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Abnormale Befruchtungsrate pro COC
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Der Prozentsatz der Zygoten mit 1,3 oder mehr als 3 Vorkernen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion/COCs
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16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Abnormale Befruchtungsrate pro MII
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
Der Prozentsatz der Zygoten mit 1,3 oder mehr als 3 Vorkernen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion/MII
|
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
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Abnormale Befruchtungsrate pro Patient
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
Der Prozentsatz der Zygoten mit 1,3 oder mehr als 3 Vorkernen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion pro Patient
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16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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tPNf
Zeitfenster: 23–25 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zeit des Verblassens der Vorkerne
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23–25 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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t2
Zeitfenster: 25–27 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Erster Zeitrahmen, in dem ein Embryo Blastomeren im 2-Zellen-Stadium erreicht
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25–27 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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t3
Zeitfenster: 25–42 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Erster Zeitrahmen, in dem ein Embryo Blastomeren im 3-Zellen-Stadium erreicht
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25–42 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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t4
Zeitfenster: 42–44 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Erster Zeitraum, in dem ein Embryo Blastomeren im 4-Zellen-Stadium erreicht
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42–44 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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t5
Zeitfenster: 44–67 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Erster Zeitraum, in dem ein Embryo die Blastomere im 5-Zellen-Stadium erreicht
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44–67 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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t8
Zeitfenster: 67–69 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Erster Zeitrahmen, in dem ein Embryo Blastomeren im 8-Zellen-Stadium erreicht
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67–69 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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tSC
Zeitfenster: Am 3. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (Beginn der Verdichtung der Blastomeren)
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Erster Hinweis auf Verdichtung
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Am 3. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (Beginn der Verdichtung der Blastomeren)
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Tag-3-Embryonenrate pro COC
Zeitfenster: Fünf Tage nach der Eizellentnahme
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Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-3-Embryonen/KOK
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Fünf Tage nach der Eizellentnahme
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Embryonenrate am 3. Tag pro MII
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-3-Embryo/MII
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Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Tag-3-Embryonenrate pro Patient
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
|
Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-3-Embryo/Patienten
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Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Tag-3-Embryonen von guter Qualität pro COC
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl der Grad-1- und Grad-2-Tag-3-Embryonen/COCs
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Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Tag-3-Embryonen von guter Qualität gemäß MII
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl der Grad-1- und Grad-2-Tag-3-Embryonen / MII
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Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Tag-3-Embryonen von guter Qualität pro Patient
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl der Grad-1- und Grad-2-Tag-3-Embryonen/Patienten
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Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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tM
Zeitfenster: Am Tag 4 nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zeitpunkt des Abschlusses des Verdichtungsprozesses
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Am Tag 4 nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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tSB
Zeitfenster: Am 4. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (in dem das Blastocoel sichtbar ist)
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Einleitung der Blastulation
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Am 4. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (in dem das Blastocoel sichtbar ist)
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tB
Zeitfenster: Am 4. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (bevor die Zona dünner wird)
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Vollständige Blastozyste
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Am 4. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (bevor die Zona dünner wird)
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Blastozystenrate pro COC (Tag 5 oder 6 Embryo)
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zählung der Anzahl der Patienten mit Embryonen/KOK am 5. oder 6. Tag
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Blastozystenrate pro MII
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-5- oder Tag-6-Embryo/MII
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Blastozystenrate pro Patient
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-5- oder Tag-6-Embryonen/Patienten
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Blastozysten von guter Qualität pro COC
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl der Blastozysten/KOKs Grad 1 und Grad 2
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Blastozysten von guter Qualität pro MII
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl der Blastozysten Grad 1 und Grad 2 / MII
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Gute Blastozysten pro Patient
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Anzahl der Blastozysten Grad 1 und Grad 2 / Patienten
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Rate gefrorener Blastozysten pro COC
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zählen der Anzahl der gefrorenen Blastozysten/COCs
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Rate gefrorener Blastozysten pro MII
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zählen der Anzahl der gefrorenen Blastozysten/MII
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Rate gefrorener Blastozysten pro Patient
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Zählen der Anzahl der gefrorenen Blastozysten pro Patient
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Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
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Das relative Expressionsverhältnis (R) menschlicher Cumuluszellgene
Zeitfenster: Cumuluszellen werden gesammelt und innerhalb von 30–50 Minuten nach der Entblößung der Eizelle eingefroren und bis zur RNA-Reinigung bei -80 °C gelagert
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Cumuluszellen werden gesammelt, cDNA-Synthese nach mRNA-Reinigung, relative Quantifizierung PCR zum Nachweis der Genexpression (Ergebnisse werden möglicherweise separat berichtet)
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Cumuluszellen werden gesammelt und innerhalb von 30–50 Minuten nach der Entblößung der Eizelle eingefroren und bis zur RNA-Reinigung bei -80 °C gelagert
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Blastozystenraten nach Chromosomenstatus in der PGT
Zeitfenster: Nach Abschluss des Studiums durchschnittlich 1 Jahr.
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Eine PGT wird durchgeführt, um Blastozysten als euploid, aneuploid oder mosaikartig zu klassifizieren (Ergebnisse werden möglicherweise separat gemeldet).
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Nach Abschluss des Studiums durchschnittlich 1 Jahr.
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Epigenetische Bewertung
Zeitfenster: Nach Abschluss des Studiums durchschnittlich 1 Jahr.
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Die epigenetische Bewertung von Blastozysten wird durch Post-Bisulfit-Adapter-Tagging (PBAT) durchgeführt und die durchschnittliche DNA-Methylierung (%) an geprägten differenziell methylierten Regionen der Keimbahn (gDMRs) wird berechnet (Ergebnisse werden möglicherweise separat berichtet).
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Nach Abschluss des Studiums durchschnittlich 1 Jahr.
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Mitarbeiter und Ermittler
Sponsor
Mitarbeiter
Ermittler
- Hauptermittler: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
Publikationen und hilfreiche Links
Allgemeine Veröffentlichungen
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Saenz-de-Juano MD, Ivanova E, Romero S, Lolicato F, Sanchez F, Van Ranst H, Krueger F, Segonds-Pichon A, De Vos M, Andrews S, Smitz J, Kelsey G, Anckaert E. DNA methylation and mRNA expression of imprinted genes in blastocysts derived from an improved in vitro maturation method for oocytes from small antral follicles in polycystic ovary syndrome patients. Hum Reprod. 2019 Sep 29;34(9):1640-1649. doi: 10.1093/humrep/dez121.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Endometriosis and infertility: a committee opinion. Fertil Steril. 2012 Sep;98(3):591-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.031. Epub 2012 Jun 15.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
- Stocker WA, Walton KL, Richani D, Chan KL, Beilby KH, Finger BJ, Green MP, Gilchrist RB, Harrison CA. A variant of human growth differentiation factor-9 that improves oocyte developmental competence. J Biol Chem. 2020 Jun 5;295(23):7981-7991. doi: 10.1074/jbc.RA120.013050. Epub 2020 Apr 29.
- Krisher RL, Bavister BD. Enhanced glycolysis after maturation of bovine oocytes in vitro is associated with increased developmental competence. Mol Reprod Dev. 1999 May;53(1):19-26. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199905)53:13.0.CO;2-U.
- Ortmann B, Druker J, Rocha S. Cell cycle progression in response to oxygen levels. Cell Mol Life Sci. 2014 Sep;71(18):3569-82. doi: 10.1007/s00018-014-1645-9. Epub 2014 May 25.
- Mottershead DG, Sugimura S, Al-Musawi SL, Li JJ, Richani D, White MA, Martin GA, Trotta AP, Ritter LJ, Shi J, Mueller TD, Harrison CA, Gilchrist RB. Cumulin, an Oocyte-secreted Heterodimer of the Transforming Growth Factor-beta Family, Is a Potent Activator of Granulosa Cells and Improves Oocyte Quality. J Biol Chem. 2015 Sep 25;290(39):24007-20. doi: 10.1074/jbc.M115.671487. Epub 2015 Aug 8.
- Vuong LN, Nguyen MHN, Nguyen NA, Ly TT, Tran VTT, Nguyen NT, Hoang HLT, Le XTH, Pham TD, Smitz JEJ, Mol BW, Norman RJ, Ho TM. Development of children born from IVM versus IVF: 2-year follow-up of a randomized controlled trial. Hum Reprod. 2022 Jul 30;37(8):1871-1879. doi: 10.1093/humrep/deac115.
Studienaufzeichnungsdaten
Haupttermine studieren
Studienbeginn (Tatsächlich)
Primärer Abschluss (Tatsächlich)
Studienabschluss (Geschätzt)
Studienanmeldedaten
Zuerst eingereicht
Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat
Zuerst gepostet (Tatsächlich)
Studienaufzeichnungsaktualisierungen
Letztes Update gepostet (Tatsächlich)
Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt
Zuletzt verifiziert
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Schlüsselwörter
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- 12/24/DD-BVMD
Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt
Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt
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Klinische Studien zur In-vitro-Fertilisation
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University of Central FloridaThe IVF Center at Winter ParkRekrutierungIn-Vitro-Fertilisation | In-Vitro-Fertilisation (IVF) Behandlung | Alterung der Eierstöcke | Ergebnis der In-vitro-FertilisationVereinigte Staaten
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Centre Hospitalier Universitaire de NīmesAbgeschlossen
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Organon and CoAbgeschlossen
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Kaohsiung Veterans General Hospital.Abgeschlossen
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Kaohsiung Veterans General Hospital.Abgeschlossen
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Adiyaman UniversityAbgeschlossen
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Rabin Medical CenterUnbekannt
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Istituto Clinico HumanitasAbgeschlossen
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Suleyman Demirel UniversityUnbekanntin-vitro-FertilisationTruthahn
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Tel-Aviv Sourasky Medical CenterUnbekannt
Klinische Studien zur Konventionelles CAPA-IVM
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Chinese University of Hong KongRekrutierung
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Mỹ Đức HospitalVrije Universiteit BrusselAbgeschlossen
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