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Wirkung von Super-GDF9 auf CAPA-IVM von KOK aus kleinen Antralfollikeln (sGDF-9)

9. Juli 2025 aktualisiert von: Mỹ Đức Hospital

Explorative In-vitro-Studie zur Bewertung der Zugabe von Super-GDF9 während der Kapazitation-in-vitro-Reifung (CAPA-IVM) von gespendeten menschlichen Cumulus-Oozyten-Komplexen (COCs), die aus kleinen Antralfollikeln stammen

Die CAPA-IVM-Technologie (In-vitro-Maturation) ist eine assistierte Reproduktionsmethode, die insbesondere für Hochrisikopatienten erhebliche Vorteile hinsichtlich Sicherheit und Behandlungskosten bietet. Dazu gehören Personen mit ovariellem Überstimulationssyndrom (OHSS), Venenthrombose, Ovarialtorsion oder polyzystischem Ovarialsyndrom (PCOS). Während die Lebendgeburtenrate in der CAPA-IVM-Gruppe (35,2 %) mit der konventionellen IVF (43,2 %) vergleichbar ist, bleiben die Anzahl qualitativ hochwertiger Embryonen und die kumulativen klinischen Schwangerschaftsraten niedriger. Die Verbesserung des CAPA-IVM-Kulturprozesses, insbesondere durch die Zugabe von Wachstumsfaktoren aus der Follikelflüssigkeit, hat sich als vielversprechend für die Verbesserung der Eizellenqualität erwiesen.

Wachstumsdifferenzierungsfaktor 9 (GDF9) und Knochenmorphogenetisches Protein 15 (BMP15) spielen eine entscheidende Rolle bei der Follikelentwicklung, wobei ihre Heterodimerstruktur die positivsten Auswirkungen auf Cumulus-Oozyten-Komplexe (COCs) zeigt. Jüngste Studien haben eine wirksame Variante, Super-GDF9, identifiziert, die >1000-mal wirksamer als GDF9 ist und Cumulin, einen heterodimeren Wachstumsfaktor, übertrifft. Super GDF9 steigert die Cumuluszellexpansion und die Entwicklungskompetenz der Eizellen und ahmt die In-vivo-Reifung weitgehend nach.

Diese Studie untersucht die Auswirkungen der Ergänzung von Super-GDF9 während der CAPA-IVM-Kultur mit dem Ziel, die Ergebnisse von Cumulus-Oozyten-Komplexen (COCs) aus kleinen Follikeln zu verbessern und letztendlich den Behandlungserfolg zu steigern.

Studienübersicht

Detaillierte Beschreibung

Die CAPA-IVM-Technologie (In-vitro-Maturation) ist eine assistierte Reproduktionsmethode, die insbesondere für Hochrisikopatienten erhebliche Vorteile hinsichtlich Sicherheit und Behandlungskosten bietet. Dazu gehören Personen mit ovariellem Überstimulationssyndrom (OHSS), Venenthrombose, Ovarialtorsion oder polyzystischem Ovarialsyndrom (PCOS), die typischerweise eine hohe Anzahl an Antralfollikeln aufweisen (was fast 15 % aller Patienten ausmacht). Obwohl die Lebendgeburtenrate nach dem ersten Transfer in der CAPA-IVM-Gruppe 35,2 % beträgt, unterscheidet sie sich statistisch gesehen nicht von der konventionellen IVF-Gruppe mit 43,2 % (Risikounterschied: -8,1 %; 95 %-Konfidenzintervall: -16,6 % bis 0,5). %), bleiben die Anzahl qualitativ hochwertiger Embryonen pro Zyklus und die kumulative klinische Schwangerschaftsrate niedriger als bei der konventionellen IVF. Daher ist die Verbesserung des CAPA-IVM-Kulturprozesses zur Erzielung der optimalen Anzahl und Qualität der Eizellen unerlässlich.

Gleichzeitig stellt die Zugabe von Wachstumsfaktoren, die üblicherweise in der Follikelflüssigkeit vorkommen, zum Kulturmedium einen bemerkenswerten Fortschritt bei der Verbesserung der Eizellenqualität bei CAPA-IVM dar. Einige somatische Kompartimente wie Expansion, Stoffwechsel und Apoptose werden durch lösliche Wachstumsfaktoren reguliert, die als Oozytensekretionsfaktoren (OSFs) bekannt sind. Zwei OSFs, Wachstumsdifferenzierungsfaktor 9 (GDF9) und Knochenmorphogenetisches Protein 15 (BMP15), wurden als entscheidend für die Follikelentwicklung und Fruchtbarkeit bei verschiedenen Arten wie Mäusen, Schafen und Menschen identifiziert. Während der IVM-Kultur wurden sowohl die unreifen und reifen Formen dieser Faktoren als auch ihre Homo- und Heterodimerstrukturen getestet. Bemerkenswert ist, dass die Heterodimerstruktur während der IVM-Kultur die positivsten Auswirkungen auf Cumulus-Oozyten-Komplexe (COCs) gezeigt hat.

Obwohl beide Wachstumsfaktoren in homodimeren Formen vorliegen, haben neuere Studien ergeben, dass das GDF9- und BMP15-Heterodimer auch einen wirksameren Wachstumsfaktor namens Cumulin bilden kann. BMP15 aktiviert latentes GDF9 in Cumulin, was zu einer starken Signalübertragung in Granulosazellen über Typ-I-Rezeptoren (ALK4/5) und SMAD2/3-Transkriptionsfaktoren führt. Es wurde vorgeschlagen, dass biomedizinisch hergestelltes Cumulin die Embryonenergebnisse in Maus- und Schweinemodellen deutlich verbessert. Kürzlich wurde gezeigt, dass eine modifizierte Version von Wildtyp-GDF9, Super-GDF9 genannt, in SMAD2/3-responsiven Transkriptionstests in Granulosazellen > 1000-mal wirksamer als GDF9 und 4-mal aktiver als Cumulin ist. Frühere Untersuchungen haben gezeigt, dass die Zugabe von Super-GDF9 zu CAPA-IVM-Medien bei Mäusen die Genexpression in der Ovulationskaskade während der CAPA-IVM-Reifung induziert, die der In-vivo-Reifung sehr ähnlich ist. Super GDF9 fördert effektiv die Expansion von Kumuluszellen und verbessert die Entwicklungskompetenz der Eizelle in vitro. Daher kann Super-GDF9 möglicherweise Cumulin ersetzen, das bei der Herstellung und Reinigung vor Herausforderungen steht.

Diese Studie untersucht die Auswirkungen der Ergänzung von Super-GDF9 während der CAPA-IVM-Kultur mit dem Ziel, die Ergebnisse von Cumulus-Oozyten-Komplexen (COCs) aus kleinen Follikeln zu verbessern und letztendlich den Behandlungserfolg zu steigern.

  • Prüfung auf Eignung

    • Diese Studie wird im My Duc Hospital in Ho-Chi-Minh-Stadt, Vietnam, durchgeführt.
    • Frauen, die potenziell geeignet sind, werden zum Zeitpunkt der IVM-Behandlungsindikation über die Studie informiert.
    • Das Screening auf Eignung wird am Tag des ersten Besuchs durchgeführt, wenn die IVM-Behandlung angezeigt ist.
    • Den Patienten werden Informationen über die Studie und Einverständniserklärungen zur Verfügung gestellt. Die Ermittler werden vor der Einschreibung von allen Frauen unterschriebene Einverständniserklärungen einholen.
    • Berechtigte Frauen werden innerhalb von 1–7 Tagen nach Einverständniserklärung einer Eizellentnahme unterzogen.
  • Entnahme der Eizellen Das Verfahren zur Entnahme der Eizellen wird gemäß den Standardpraktiken des Zentrums für CAPA-IVM-Zyklen durchgeführt.

Cumulus-Oozyten-Komplexe (COCs) aus kleinen Follikeln nach OPU werden in zwei Gruppen eingeteilt:

  • Gruppe 1: 10 gespendete COCs werden in den CAPA- und IVM-Schritten kultiviert, wobei in beiden Schritten in CAPA-IVM 50 ng/ml Super-GDF9 hinzugefügt werden.
  • Gruppe 2: Die verbleibenden COCs des Probanden werden in den CAPA- und IVM-Schritten kultiviert, ohne dass während der CAPA-IVM Super-GDF9 hinzugefügt wird.

Gruppen 1 und 2: Sammeln nach dem Kapazitationsschritt: verbrauchte Medien und leere Vertiefungen. Sammeln nach dem Reifungsschritt: verbrauchtes Medium, Kumuluszelle und leere Vertiefungen.

+ CAPA und Reifungskultur: CAPA und Reifungskultur werden routinemäßig gemäß den aktuellen Laborprotokollen durchgeführt. ICSI wird zur Befruchtung reifer Eizellen eingesetzt.

Studientyp

Interventionell

Einschreibung (Geschätzt)

9

Phase

  • Unzutreffend

Kontakte und Standorte

Dieser Abschnitt enthält die Kontaktdaten derjenigen, die die Studie durchführen, und Informationen darüber, wo diese Studie durchgeführt wird.

Studienkontakt

Studienorte

      • Ho Chi Minh City, Vietnam
        • Rekrutierung
        • My Duc Hospital
        • Kontakt:

Teilnahmekriterien

Forscher suchen nach Personen, die einer bestimmten Beschreibung entsprechen, die als Auswahlkriterien bezeichnet werden. Einige Beispiele für diese Kriterien sind der allgemeine Gesundheitszustand einer Person oder frühere Behandlungen.

Zulassungskriterien

Studienberechtigtes Alter

  • Erwachsene

Akzeptiert gesunde Freiwillige

Nein

Beschreibung

Einschlusskriterien:

  1. Frauen im Alter zwischen 18 und 35 Jahren (beide inklusive)
  2. BMI ≤ 32 kg/m2
  3. PCOS-Frauen nach den Rotterdam-Kriterien (2003)
  4. Zeigt eine CAPA-IVM-Behandlung an.
  5. Serum-AMH ≥ 4 ng/ml (28,57 pmol/L) beim Screening und mit mindestens 50 Antrumfollikeln in zwei Eierstöcken im transvaginalen Ultraschall zum Zeitpunkt der CAPA-IVM-Indikation
  6. Bereit, 10 COCs für Forschungszwecke zu spenden
  7. Zustimmung zum eingefrorenen Embryo
  8. Unterzeichnete Einverständniserklärung vor allen studienbezogenen Verfahren

Ausschlusskriterien:

  1. Bekanntes Endometriom oder Endometriose Grad 3–4 gemäß ASRM-Klassifikation
  2. Uterusanomalien
  3. Paare mit schwerem männlichen Faktor (Spermienkonzentration <5 Millionen/ml, Motilität < 10 %), chirurgische Spermienentnahme.
  4. Vorgeschichte ungeklärter unreifer Eizellen nach IVF-Behandlung
  5. Zyklen mit Spendereizellen

Studienplan

Dieser Abschnitt enthält Einzelheiten zum Studienplan, einschließlich des Studiendesigns und der Messung der Studieninhalte.

Wie ist die Studie aufgebaut?

Designdetails

  • Hauptzweck: Behandlung
  • Zuteilung: Nicht randomisiert
  • Interventionsmodell: Parallele Zuordnung
  • Maskierung: Keine (Offenes Etikett)

Waffen und Interventionen

Teilnehmergruppe / Arm
Intervention / Behandlung
Aktiver Komparator: Konventionelles CAPA-IVM
Gruppe 2: Die verbleibenden COCs des Probanden werden im CAPA-Schritt und im IVM-Schritt ohne Zugabe von Super-GDF9 während CAPA-IVM kultiviert.
Gruppe 2: Die verbleibenden COCs des Probanden werden im CAPA-Schritt und im IVM-Schritt ohne Zugabe von Super-GDF9 während CAPA-IVM kultiviert.
Experimental: Super-GDF9-Supplementierung während CAPA-IVM
Gruppe 1: Gespendete COCs werden im CAPA-Schritt und im IVM-Schritt kultiviert, mit der Zugabe von Super-GDF9 während CAPA-IVM.
Gruppe 1: Gespendete COCs werden in den Kulturschritten CAPACITATION und REIFUNG Super-GDF9 mit 50 ng/ml ausgesetzt.

Was misst die Studie?

Primäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Reiferate pro COC
Zeitfenster: Zwei Tage nach der Eizellentnahme
Anzahl der MII/COCs
Zwei Tage nach der Eizellentnahme

Sekundäre Ergebnismessungen

Ergebnis Maßnahme
Maßnahmenbeschreibung
Zeitfenster
Reiferate pro Patient
Zeitfenster: Zwei Tage nach der Eizellentnahme
Anzahl MII/Patient
Zwei Tage nach der Eizellentnahme
Degenerationsrate pro COC
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl degenerierter Eizellen nach IVM/COCs
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Degenerationsrate pro MII
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl degenerierter Eizellen nach IVM / MII
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Degenerationsrate pro Patient
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl degenerierter Eizellen nach IVM / Patientinnen
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
t2PN
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zeitpunkt des Auftretens zweier Vorkerne
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Befruchtungsrate pro COC
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl befruchteter Eizellen/COCs
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Befruchtungsrate pro MII
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl befruchteter Eizellen / MII
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Befruchtungsrate pro Patient
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl befruchteter Eizellen / Patientinnen
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Abnormale Befruchtungsrate pro COC
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Der Prozentsatz der Zygoten mit 1,3 oder mehr als 3 Vorkernen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion/COCs
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Abnormale Befruchtungsrate pro MII
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Der Prozentsatz der Zygoten mit 1,3 oder mehr als 3 Vorkernen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion/MII
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Abnormale Befruchtungsrate pro Patient
Zeitfenster: 16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Der Prozentsatz der Zygoten mit 1,3 oder mehr als 3 Vorkernen nach intrazytoplasmatischer Spermieninjektion pro Patient
16–18 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
tPNf
Zeitfenster: 23–25 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zeit des Verblassens der Vorkerne
23–25 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
t2
Zeitfenster: 25–27 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Erster Zeitrahmen, in dem ein Embryo Blastomeren im 2-Zellen-Stadium erreicht
25–27 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
t3
Zeitfenster: 25–42 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Erster Zeitrahmen, in dem ein Embryo Blastomeren im 3-Zellen-Stadium erreicht
25–42 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
t4
Zeitfenster: 42–44 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Erster Zeitraum, in dem ein Embryo Blastomeren im 4-Zellen-Stadium erreicht
42–44 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
t5
Zeitfenster: 44–67 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Erster Zeitraum, in dem ein Embryo die Blastomere im 5-Zellen-Stadium erreicht
44–67 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
t8
Zeitfenster: 67–69 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Erster Zeitrahmen, in dem ein Embryo Blastomeren im 8-Zellen-Stadium erreicht
67–69 Stunden nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
tSC
Zeitfenster: Am 3. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (Beginn der Verdichtung der Blastomeren)
Erster Hinweis auf Verdichtung
Am 3. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (Beginn der Verdichtung der Blastomeren)
Tag-3-Embryonenrate pro COC
Zeitfenster: Fünf Tage nach der Eizellentnahme
Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-3-Embryonen/KOK
Fünf Tage nach der Eizellentnahme
Embryonenrate am 3. Tag pro MII
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-3-Embryo/MII
Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Tag-3-Embryonenrate pro Patient
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-3-Embryo/Patienten
Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Tag-3-Embryonen von guter Qualität pro COC
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl der Grad-1- und Grad-2-Tag-3-Embryonen/COCs
Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Tag-3-Embryonen von guter Qualität gemäß MII
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl der Grad-1- und Grad-2-Tag-3-Embryonen / MII
Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Tag-3-Embryonen von guter Qualität pro Patient
Zeitfenster: Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl der Grad-1- und Grad-2-Tag-3-Embryonen/Patienten
Drei Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
tM
Zeitfenster: Am Tag 4 nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zeitpunkt des Abschlusses des Verdichtungsprozesses
Am Tag 4 nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
tSB
Zeitfenster: Am 4. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (in dem das Blastocoel sichtbar ist)
Einleitung der Blastulation
Am 4. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (in dem das Blastocoel sichtbar ist)
tB
Zeitfenster: Am 4. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (bevor die Zona dünner wird)
Vollständige Blastozyste
Am 4. Tag nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion (bevor die Zona dünner wird)
Blastozystenrate pro COC (Tag 5 oder 6 Embryo)
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zählung der Anzahl der Patienten mit Embryonen/KOK am 5. oder 6. Tag
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Blastozystenrate pro MII
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-5- oder Tag-6-Embryo/MII
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Blastozystenrate pro Patient
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zählung der Anzahl der Patienten mit Tag-5- oder Tag-6-Embryonen/Patienten
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Blastozysten von guter Qualität pro COC
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl der Blastozysten/KOKs Grad 1 und Grad 2
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Blastozysten von guter Qualität pro MII
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl der Blastozysten Grad 1 und Grad 2 / MII
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Gute Blastozysten pro Patient
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Anzahl der Blastozysten Grad 1 und Grad 2 / Patienten
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Rate gefrorener Blastozysten pro COC
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zählen der Anzahl der gefrorenen Blastozysten/COCs
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Rate gefrorener Blastozysten pro MII
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zählen der Anzahl der gefrorenen Blastozysten/MII
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Rate gefrorener Blastozysten pro Patient
Zeitfenster: Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Zählen der Anzahl der gefrorenen Blastozysten pro Patient
Fünf oder sechs Tage nach der intrazytoplasmatischen Spermieninjektion
Das relative Expressionsverhältnis (R) menschlicher Cumuluszellgene
Zeitfenster: Cumuluszellen werden gesammelt und innerhalb von 30–50 Minuten nach der Entblößung der Eizelle eingefroren und bis zur RNA-Reinigung bei -80 °C gelagert
Cumuluszellen werden gesammelt, cDNA-Synthese nach mRNA-Reinigung, relative Quantifizierung PCR zum Nachweis der Genexpression (Ergebnisse werden möglicherweise separat berichtet)
Cumuluszellen werden gesammelt und innerhalb von 30–50 Minuten nach der Entblößung der Eizelle eingefroren und bis zur RNA-Reinigung bei -80 °C gelagert
Blastozystenraten nach Chromosomenstatus in der PGT
Zeitfenster: Nach Abschluss des Studiums durchschnittlich 1 Jahr.
Eine PGT wird durchgeführt, um Blastozysten als euploid, aneuploid oder mosaikartig zu klassifizieren (Ergebnisse werden möglicherweise separat gemeldet).
Nach Abschluss des Studiums durchschnittlich 1 Jahr.
Epigenetische Bewertung
Zeitfenster: Nach Abschluss des Studiums durchschnittlich 1 Jahr.
Die epigenetische Bewertung von Blastozysten wird durch Post-Bisulfit-Adapter-Tagging (PBAT) durchgeführt und die durchschnittliche DNA-Methylierung (%) an geprägten differenziell methylierten Regionen der Keimbahn (gDMRs) wird berechnet (Ergebnisse werden möglicherweise separat berichtet).
Nach Abschluss des Studiums durchschnittlich 1 Jahr.

Mitarbeiter und Ermittler

Hier finden Sie Personen und Organisationen, die an dieser Studie beteiligt sind.

Ermittler

  • Hauptermittler: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City

Publikationen und hilfreiche Links

Die Bereitstellung dieser Publikationen erfolgt freiwillig durch die für die Eingabe von Informationen über die Studie verantwortliche Person. Diese können sich auf alles beziehen, was mit dem Studium zu tun hat.

Allgemeine Veröffentlichungen

Studienaufzeichnungsdaten

Diese Daten verfolgen den Fortschritt der Übermittlung von Studienaufzeichnungen und zusammenfassenden Ergebnissen an ClinicalTrials.gov. Studienaufzeichnungen und gemeldete Ergebnisse werden von der National Library of Medicine (NLM) überprüft, um sicherzustellen, dass sie bestimmten Qualitätskontrollstandards entsprechen, bevor sie auf der öffentlichen Website veröffentlicht werden.

Haupttermine studieren

Studienbeginn (Tatsächlich)

10. Januar 2025

Primärer Abschluss (Tatsächlich)

17. Februar 2025

Studienabschluss (Geschätzt)

30. April 2026

Studienanmeldedaten

Zuerst eingereicht

24. Dezember 2024

Zuerst eingereicht, das die QC-Kriterien erfüllt hat

8. Januar 2025

Zuerst gepostet (Tatsächlich)

9. Januar 2025

Studienaufzeichnungsaktualisierungen

Letztes Update gepostet (Tatsächlich)

10. Juli 2025

Letztes eingereichtes Update, das die QC-Kriterien erfüllt

9. Juli 2025

Zuletzt verifiziert

1. Juli 2025

Mehr Informationen

Begriffe im Zusammenhang mit dieser Studie

Schlüsselwörter

Andere Studien-ID-Nummern

  • 12/24/DD-BVMD

Arzneimittel- und Geräteinformationen, Studienunterlagen

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Arzneimittelprodukt

Nein

Studiert ein von der US-amerikanischen FDA reguliertes Geräteprodukt

Nein

Diese Informationen wurden ohne Änderungen direkt von der Website clinicaltrials.gov abgerufen. Wenn Sie Ihre Studiendaten ändern, entfernen oder aktualisieren möchten, wenden Sie sich bitte an register@clinicaltrials.gov. Sobald eine Änderung auf clinicaltrials.gov implementiert wird, wird diese automatisch auch auf unserer Website aktualisiert .

Klinische Studien zur In-vitro-Fertilisation

Klinische Studien zur Konventionelles CAPA-IVM

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