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Efeito do Super-GDF9 no CAPA-IVM de AOCs de pequenos folículos antrais (sGDF-9)

9 de julho de 2025 atualizado por: Mỹ Đức Hospital

Estudo exploratório in vitro avaliando a adição de Super-GDF9 durante a maturação de capacitação in vitro (CAPA-IVM) de complexos cumulus-oócitos humanos doados (COCs) derivados de pequenos folículos antrais

A tecnologia CAPA-IVM (Maturação In Vitro) é um método de reprodução assistida que oferece benefícios significativos em termos de segurança e custos de tratamento, especialmente para pacientes de alto risco. Estes incluem indivíduos com síndrome de hiperestimulação ovariana (OHSS), trombose venosa, torção ovariana ou síndrome dos ovários policísticos (SOP). No entanto, embora a taxa de nascidos vivos no grupo CAPA-IVM (35,2%) seja comparável à fertilização in vitro convencional (43,2%), o número de embriões de boa qualidade e as taxas cumulativas de gravidez clínica permanecem mais baixas. A melhoria do processo de cultura CAPA-IVM, particularmente através da adição de fatores de crescimento encontrados no fluido folicular, tem se mostrado promissora na melhoria da qualidade do oócito.

O fator de diferenciação de crescimento 9 (GDF9) e a proteína morfogenética óssea 15 (BMP15) desempenham papéis críticos no desenvolvimento folicular, com sua estrutura heterodímérica demonstrando os efeitos mais positivos nos complexos cumulus-oócitos (COCs). Estudos recentes identificaram uma variante potente, o super GDF9, que é >1000 vezes mais eficaz que o GDF9 e supera a cumulina, um fator de crescimento heterodimérico. Super GDF9 aumenta a expansão das células do cumulus e a competência de desenvolvimento dos oócitos, imitando de perto a maturação in vivo.

Este estudo investiga o impacto da suplementação de super GDF9 durante a cultura CAPA-IVM, com o objetivo de melhorar os resultados dos complexos cumulus-oócitos (COCs) de pequenos folículos e, em última análise, aumentar o sucesso do tratamento.

Visão geral do estudo

Descrição detalhada

A tecnologia CAPA-IVM (Maturação In Vitro) é um método de reprodução assistida que oferece benefícios significativos em termos de segurança e custos de tratamento, especialmente para pacientes de alto risco. Estes incluem indivíduos com síndrome de hiperestimulação ovariana (SHO), trombose venosa, torção ovariana ou síndrome dos ovários policísticos (SOP) - que normalmente apresentam um elevado número de folículos antrais (constituindo quase 15% de todos os pacientes). Embora a taxa de nascidos vivos após a primeira transferência no grupo CAPA-IVM seja de 35,2%, o que não é estatisticamente diferente do grupo de fertilização in vitro convencional de 43,2% (diferença de risco: -8,1%; intervalo de confiança de 95%: -16,6% a 0,5 %), o número de embriões de boa qualidade por ciclo e a taxa cumulativa de gravidez clínica permanecem inferiores aos da fertilização in vitro convencional. Portanto, melhorar o processo de cultura CAPA-IVM para atingir o número e a qualidade ideais de oócitos é essencial.

Ao mesmo tempo, a adição de fatores de crescimento comumente encontrados no fluido folicular ao meio de cultura representa um avanço notável na melhoria da qualidade do oócito no CAPA-IVM. Alguns compartimentos somáticos, como expansão, metabolismo e apoptose, são regulados por fatores de crescimento solúveis, conhecidos como fatores de secreção de oócitos (OSFs). Dois OSFs, o fator de diferenciação de crescimento 9 (GDF9) e a proteína morfogenética óssea 15 (BMP15), foram identificados como críticos para o desenvolvimento folicular e a fertilidade em várias espécies, como camundongos, ovelhas e humanos. Durante a cultura IVM, foram testadas tanto as formas imaturas como maduras destes factores, bem como as suas estruturas homo e heterodiméricas. Notavelmente, a estrutura do heterodímero mostrou os efeitos mais positivos nos complexos cumulus-oócitos (COCs) durante a cultura IVM.

Embora ambos os fatores de crescimento existam em formas homodiméricas, estudos recentes descobriram que o heterodímero GDF9 e BMP15 também pode formar um fator de crescimento mais potente chamado cumulina. A BMP15 ativa o GDF9 latente na cumulina, levando a uma forte sinalização nas células da granulosa através de receptores tipo I (ALK4/5) e fatores de transcrição SMAD2/3. A cumulina biomédica foi proposta para melhorar visivelmente os resultados embrionários em modelos de camundongos e suínos. Recentemente, foi demonstrado que uma versão modificada do GDF9 de tipo selvagem, chamada super GDF9, é> 1000 vezes mais potente que o GDF9 e 4 vezes mais atividade que a cumulina em ensaios transcricionais responsivos a SMAD2/3 em células da granulosa. Pesquisas anteriores ilustraram que a adição de super GDF9 à mídia CAPA-IVM em camundongos induz a expressão gênica na cascata ovulatória durante a maturação CAPA-IVM que se assemelha muito à maturação in vivo. Super GDF9 promove efetivamente a expansão das células do cumulus e aumenta a competência de desenvolvimento do oócito in vitro. Conseqüentemente, o super GDF9 pode potencialmente substituir a cumulina, que enfrenta desafios na produção e purificação.

Este estudo investiga o impacto da suplementação de super GDF9 durante a cultura CAPA-IVM, com o objetivo de melhorar os resultados dos complexos cumulus-oócitos (COCs) de pequenos folículos e, em última análise, aumentar o sucesso do tratamento.

  • Triagem de elegibilidade

    • Este estudo será realizado no Hospital My Duc, cidade de Ho Chi Minh, Vietnã.
    • As mulheres potencialmente elegíveis receberão informações sobre o estudo no momento da indicação do tratamento IVM.
    • A triagem para elegibilidade será realizada no dia da primeira consulta quando o tratamento IVM for indicado.
    • Os pacientes receberão informações sobre o estudo e documentos de consentimento informado. Os investigadores obterão formulários de consentimento informado assinados de todas as mulheres antes da inscrição.
    • As mulheres elegíveis serão submetidas a procedimentos de coleta de ovócitos dentro de 1 a 7 dias a partir do consentimento informado.
  • Recuperação de oócitos O procedimento de coleta de oócitos será realizado de acordo com as práticas padrão do centro para ciclos CAPA-IVM.

Complexos cumulus-oócitos (COCs) de pequenos folículos após OPU serão divididos em 2 grupos:

  • Grupo 1: 10 AOCs doados serão cultivados nas etapas CAPA e IVM, adicionando 50ng/ml de Super-GDF9 durante ambas as etapas no CAPA-IVM.
  • Grupo 2: Os COCs restantes do sujeito serão cultivados nas etapas CAPA e IVM sem adição de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.

Grupos 1 e 2: Coleta após a etapa de capacitação: meio gasto e poços brancos. Coleta após a etapa de maturação: meio gasto, células cumulus e poços em branco.

+ CAPA e cultura de maturação: A cultura de CAPA e maturação será realizada rotineiramente seguindo os protocolos laboratoriais atuais. ICSI será usada para fertilizar oócitos maduros.

Tipo de estudo

Intervencional

Inscrição (Estimado)

9

Estágio

  • Não aplicável

Contactos e Locais

Esta seção fornece os detalhes de contato para aqueles que conduzem o estudo e informações sobre onde este estudo está sendo realizado.

Contato de estudo

Locais de estudo

      • Ho Chi Minh City, Vietnã
        • Recrutamento
        • My Duc Hospital
        • Contato:

Critérios de participação

Os pesquisadores procuram pessoas que se encaixem em uma determinada descrição, chamada de critérios de elegibilidade. Alguns exemplos desses critérios são a condição geral de saúde de uma pessoa ou tratamentos anteriores.

Critérios de elegibilidade

Idades elegíveis para estudo

  • Adulto

Aceita Voluntários Saudáveis

Não

Descrição

Critérios de inclusão:

  1. Mulheres entre 18 e 35 anos (ambos incluídos)
  2. IMC ≤ 32 kg/m2
  3. Mulheres com SOP de acordo com os critérios de Rotterdam (2003)
  4. Indicando tratamento CAPA-IVM.
  5. AMH sérico ≥ 4 ng/mL (28,57 pmol/L) na triagem e ter pelo menos 50 folículos antrais em dois ovários por ultrassonografia transvaginal no momento da indicação do CAPA-IVM
  6. Disposto a doar 10 AOCs para fins de pesquisa
  7. Concordando com embrião congelado
  8. Consentimento informado assinado antes de qualquer procedimento relacionado ao estudo

Critérios de exclusão:

  1. Endometrioma conhecido ou endometriose grau 3-4 de acordo com a classificação ASRM
  2. Anormalidades uterinas
  3. Casais com fator masculino grave (concentração de espermatozoides <5 milhões/ml, motilidade <10%), recuperação cirúrgica de espermatozoides.
  4. História anterior de oócitos imaturos inexplicáveis ​​após tratamento de fertilização in vitro
  5. Ciclos usando ovócitos de doadores

Plano de estudo

Esta seção fornece detalhes do plano de estudo, incluindo como o estudo é projetado e o que o estudo está medindo.

Como o estudo é projetado?

Detalhes do projeto

  • Finalidade Principal: Tratamento
  • Alocação: Não randomizado
  • Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
  • Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)

Armas e Intervenções

Grupo de Participantes / Braço
Intervenção / Tratamento
Comparador Ativo: CAPA-IVM convencional
Grupo 2: Os COCs restantes do sujeito serão cultivados na etapa CAPA e na etapa IVM sem a adição de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
Grupo 2: Os COCs restantes do sujeito serão cultivados na etapa CAPA e na etapa IVM sem a adição de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
Experimental: Suplementação de Super-GDF9 durante CAPA-IVM
Grupo 1: os COCs doados serão cultivados na etapa CAPA e na etapa IVM, com adição de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
Grupo 1: COCs doados serão expostos ao Super-GDF9 a 50 ng/ml nas etapas de cultura de CAPACITAÇÃO e MATURAÇÃO.

O que o estudo está medindo?

Medidas de resultados primários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Taxa de maturação por COC
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
Número de MII/COCs
Dois dias após a retirada do oócito

Medidas de resultados secundários

Medida de resultado
Descrição da medida
Prazo
Taxa de maturação por paciente
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
Número de MII/paciente
Dois dias após a retirada do oócito
Taxa de degeneração por COC
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de oócitos degenerados após MIV/AOCs
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de degeneração por MII
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de oócitos degenerados após IVM/MII
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de degeneração por paciente
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de ovócitos degenerados após MIV/pacientes
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
t2PN
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Tempo de aparecimento de dois pronúcleos
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de fertilização por COC
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de oócitos fertilizados/COCs
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de fertilização por MII
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de ovócitos fertilizados/MII
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de fertilização por paciente
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de oócitos fertilizados/pacientes
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de fertilização anormal por COC
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
A porcentagem de zigotos com 1,3 ou mais de 3 pronúcleos após injeção intracitoplasmática de espermatozóides/AOCs
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de fertilização anormal por MII
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
A porcentagem de zigotos com 1,3 ou mais de 3 pronúcleos após injeção intracitoplasmática de espermatozóides / MII
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de fertilização anormal por paciente
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
A porcentagem de zigotos com 1,3 ou mais de 3 pronúcleos após injeção intracitoplasmática de espermatozóides/pacientes
16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
tPNf
Prazo: 23-25 ​​horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Tempo de desaparecimento dos pronúcleos
23-25 ​​horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
t2
Prazo: 25-27 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Primeiro período de tempo em que um embrião atinge o estágio de blastômeros de 2 células
25-27 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
t3
Prazo: 25-42 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Primeiro período de tempo em que um embrião atinge o estágio de blastômeros de 3 células
25-42 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
t4
Prazo: 42-44 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Primeiro período de tempo em que um embrião atinge o estágio de blastômeros de 4 células
42-44 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
t5
Prazo: 44-67 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Primeiro período de tempo em que um embrião atinge o estágio de blastômeros de 5 células
44-67 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
t8
Prazo: 67-69 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Primeiro período de tempo em que um embrião atinge blastômeros no estágio de 8 células
67-69 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
TSC
Prazo: Durante o dia 3 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóides (início da compactação dos blastômeros)
Primeira evidência de compactação
Durante o dia 3 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóides (início da compactação dos blastômeros)
Taxa de embriões no dia 3 por COC
Prazo: Cinco dias após a retirada do oócito
Contando o número de pacientes com embriões/AOCs no Dia 3
Cinco dias após a retirada do oócito
Taxa de embriões no dia 3 por MII
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contando o número de pacientes com embrião do dia 3/MII
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de embriões no dia 3 por paciente
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contando o número de pacientes com embriões/pacientes do Dia 3
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Embriões do dia 3 de boa qualidade por COC
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de embriões / AOCs de grau 1 e grau 2 no dia 3
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Embriões do dia 3 de boa qualidade por MII
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de embriões de grau 1 e grau 2 no dia 3/MII
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Embriões do terceiro dia de boa qualidade por paciente
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de embriões/pacientes de grau 1 e grau 2 no dia 3
Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
tM
Prazo: Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Tempo de conclusão do processo de compactação
Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
tSB
Prazo: Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide (em que a blastocele é visível)
Início da blastulação
Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide (em que a blastocele é visível)
TB
Prazo: Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóides (antes que a zona comece a afinar)
Blastocisto completo
Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóides (antes que a zona comece a afinar)
Taxa de blastocistos por COC (dia 5 ou 6 embrião)
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contando o número de pacientes com embriões/AOCs no Dia 5 ou no Dia 6
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de blastocisto por MII
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contando o número de pacientes com embrião/MII no dia 5 ou no dia 6
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de blastocisto por paciente
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contando o número de pacientes com embrião/paciente no Dia 5 ou Dia 6
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Blastocistos de boa qualidade por COC
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de blastocistos/AOCs de grau 1 e grau 2
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Blastocistos de boa qualidade por MII
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de blastocistos grau 1 e grau 2/MII
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Blastocistos de boa qualidade por paciente
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Número de blastocistos/pacientes de grau 1 e grau 2
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de blastocistos congelados por COC
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contando o número de blastocistos/AOCs congelados
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de blastocistos congelados por MII
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contando o número de blastocistos congelados/MII
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Taxa de blastocistos congelados por paciente
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
Contagem do número de blastocistos congelados/paciente
Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
A razão de expressão relativa (R) dos genes das células cumulus humanas
Prazo: As células cumulus serão coletadas e congeladas dentro de 30-50 minutos após a desnudação dos oócitos, armazenadas a -80oC até a purificação do RNA.
Serão coletadas células Cumulus, síntese de cDNA após purificação de mRNA, PCR de quantificação relativa para detecção de expressão gênica (resultados potencialmente relatados separadamente)
As células cumulus serão coletadas e congeladas dentro de 30-50 minutos após a desnudação dos oócitos, armazenadas a -80oC até a purificação do RNA.
Taxas de blastocistos por status cromossômico em PGT
Prazo: Após a conclusão do estudo, em média 1 ano.
PGT será realizado para classificar blastocistos como euploides, aneuploides ou mosaicos (resultados potencialmente relatados separadamente)
Após a conclusão do estudo, em média 1 ano.
Avaliação Epigenética
Prazo: Após a conclusão do estudo, em média 1 ano.
A avaliação epigenética dos blastocistos será realizada por marcação do adaptador pós-bissulfito (PBAT), e a metilação média do DNA (%) nas regiões diferencialmente metiladas da linha germinativa impressa (gDMRs) será calculada (resultados potencialmente relatados separadamente)
Após a conclusão do estudo, em média 1 ano.

Colaboradores e Investigadores

É aqui que você encontrará pessoas e organizações envolvidas com este estudo.

Patrocinador

Investigadores

  • Investigador principal: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City

Publicações e links úteis

A pessoa responsável por inserir informações sobre o estudo fornece voluntariamente essas publicações. Estes podem ser sobre qualquer coisa relacionada ao estudo.

Publicações Gerais

Datas de registro do estudo

Essas datas acompanham o progresso do registro do estudo e os envios de resumo dos resultados para ClinicalTrials.gov. Os registros do estudo e os resultados relatados são revisados ​​pela National Library of Medicine (NLM) para garantir que atendam aos padrões específicos de controle de qualidade antes de serem publicados no site público.

Datas Principais do Estudo

Início do estudo (Real)

10 de janeiro de 2025

Conclusão Primária (Real)

17 de fevereiro de 2025

Conclusão do estudo (Estimado)

30 de abril de 2026

Datas de inscrição no estudo

Enviado pela primeira vez

24 de dezembro de 2024

Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ

8 de janeiro de 2025

Primeira postagem (Real)

9 de janeiro de 2025

Atualizações de registro de estudo

Última Atualização Postada (Real)

10 de julho de 2025

Última atualização enviada que atendeu aos critérios de controle de qualidade

9 de julho de 2025

Última verificação

1 de julho de 2025

Mais Informações

Termos relacionados a este estudo

Palavras-chave

Outros números de identificação do estudo

  • 12/24/DD-BVMD

Informações sobre medicamentos e dispositivos, documentos de estudo

Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA

Não

Essas informações foram obtidas diretamente do site clinicaltrials.gov sem nenhuma alteração. Se você tiver alguma solicitação para alterar, remover ou atualizar os detalhes do seu estudo, entre em contato com register@clinicaltrials.gov. Assim que uma alteração for implementada em clinicaltrials.gov, ela também será atualizada automaticamente em nosso site .

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