- ICH GCP
- Registro de ensaios clínicos dos EUA
- Ensaio Clínico NCT06766604
Efeito do Super-GDF9 no CAPA-IVM de AOCs de pequenos folículos antrais (sGDF-9)
Estudo exploratório in vitro avaliando a adição de Super-GDF9 durante a maturação de capacitação in vitro (CAPA-IVM) de complexos cumulus-oócitos humanos doados (COCs) derivados de pequenos folículos antrais
A tecnologia CAPA-IVM (Maturação In Vitro) é um método de reprodução assistida que oferece benefícios significativos em termos de segurança e custos de tratamento, especialmente para pacientes de alto risco. Estes incluem indivíduos com síndrome de hiperestimulação ovariana (OHSS), trombose venosa, torção ovariana ou síndrome dos ovários policísticos (SOP). No entanto, embora a taxa de nascidos vivos no grupo CAPA-IVM (35,2%) seja comparável à fertilização in vitro convencional (43,2%), o número de embriões de boa qualidade e as taxas cumulativas de gravidez clínica permanecem mais baixas. A melhoria do processo de cultura CAPA-IVM, particularmente através da adição de fatores de crescimento encontrados no fluido folicular, tem se mostrado promissora na melhoria da qualidade do oócito.
O fator de diferenciação de crescimento 9 (GDF9) e a proteína morfogenética óssea 15 (BMP15) desempenham papéis críticos no desenvolvimento folicular, com sua estrutura heterodímérica demonstrando os efeitos mais positivos nos complexos cumulus-oócitos (COCs). Estudos recentes identificaram uma variante potente, o super GDF9, que é >1000 vezes mais eficaz que o GDF9 e supera a cumulina, um fator de crescimento heterodimérico. Super GDF9 aumenta a expansão das células do cumulus e a competência de desenvolvimento dos oócitos, imitando de perto a maturação in vivo.
Este estudo investiga o impacto da suplementação de super GDF9 durante a cultura CAPA-IVM, com o objetivo de melhorar os resultados dos complexos cumulus-oócitos (COCs) de pequenos folículos e, em última análise, aumentar o sucesso do tratamento.
Visão geral do estudo
Status
Condições
Intervenção / Tratamento
Descrição detalhada
A tecnologia CAPA-IVM (Maturação In Vitro) é um método de reprodução assistida que oferece benefícios significativos em termos de segurança e custos de tratamento, especialmente para pacientes de alto risco. Estes incluem indivíduos com síndrome de hiperestimulação ovariana (SHO), trombose venosa, torção ovariana ou síndrome dos ovários policísticos (SOP) - que normalmente apresentam um elevado número de folículos antrais (constituindo quase 15% de todos os pacientes). Embora a taxa de nascidos vivos após a primeira transferência no grupo CAPA-IVM seja de 35,2%, o que não é estatisticamente diferente do grupo de fertilização in vitro convencional de 43,2% (diferença de risco: -8,1%; intervalo de confiança de 95%: -16,6% a 0,5 %), o número de embriões de boa qualidade por ciclo e a taxa cumulativa de gravidez clínica permanecem inferiores aos da fertilização in vitro convencional. Portanto, melhorar o processo de cultura CAPA-IVM para atingir o número e a qualidade ideais de oócitos é essencial.
Ao mesmo tempo, a adição de fatores de crescimento comumente encontrados no fluido folicular ao meio de cultura representa um avanço notável na melhoria da qualidade do oócito no CAPA-IVM. Alguns compartimentos somáticos, como expansão, metabolismo e apoptose, são regulados por fatores de crescimento solúveis, conhecidos como fatores de secreção de oócitos (OSFs). Dois OSFs, o fator de diferenciação de crescimento 9 (GDF9) e a proteína morfogenética óssea 15 (BMP15), foram identificados como críticos para o desenvolvimento folicular e a fertilidade em várias espécies, como camundongos, ovelhas e humanos. Durante a cultura IVM, foram testadas tanto as formas imaturas como maduras destes factores, bem como as suas estruturas homo e heterodiméricas. Notavelmente, a estrutura do heterodímero mostrou os efeitos mais positivos nos complexos cumulus-oócitos (COCs) durante a cultura IVM.
Embora ambos os fatores de crescimento existam em formas homodiméricas, estudos recentes descobriram que o heterodímero GDF9 e BMP15 também pode formar um fator de crescimento mais potente chamado cumulina. A BMP15 ativa o GDF9 latente na cumulina, levando a uma forte sinalização nas células da granulosa através de receptores tipo I (ALK4/5) e fatores de transcrição SMAD2/3. A cumulina biomédica foi proposta para melhorar visivelmente os resultados embrionários em modelos de camundongos e suínos. Recentemente, foi demonstrado que uma versão modificada do GDF9 de tipo selvagem, chamada super GDF9, é> 1000 vezes mais potente que o GDF9 e 4 vezes mais atividade que a cumulina em ensaios transcricionais responsivos a SMAD2/3 em células da granulosa. Pesquisas anteriores ilustraram que a adição de super GDF9 à mídia CAPA-IVM em camundongos induz a expressão gênica na cascata ovulatória durante a maturação CAPA-IVM que se assemelha muito à maturação in vivo. Super GDF9 promove efetivamente a expansão das células do cumulus e aumenta a competência de desenvolvimento do oócito in vitro. Conseqüentemente, o super GDF9 pode potencialmente substituir a cumulina, que enfrenta desafios na produção e purificação.
Este estudo investiga o impacto da suplementação de super GDF9 durante a cultura CAPA-IVM, com o objetivo de melhorar os resultados dos complexos cumulus-oócitos (COCs) de pequenos folículos e, em última análise, aumentar o sucesso do tratamento.
Triagem de elegibilidade
- Este estudo será realizado no Hospital My Duc, cidade de Ho Chi Minh, Vietnã.
- As mulheres potencialmente elegíveis receberão informações sobre o estudo no momento da indicação do tratamento IVM.
- A triagem para elegibilidade será realizada no dia da primeira consulta quando o tratamento IVM for indicado.
- Os pacientes receberão informações sobre o estudo e documentos de consentimento informado. Os investigadores obterão formulários de consentimento informado assinados de todas as mulheres antes da inscrição.
- As mulheres elegíveis serão submetidas a procedimentos de coleta de ovócitos dentro de 1 a 7 dias a partir do consentimento informado.
- Recuperação de oócitos O procedimento de coleta de oócitos será realizado de acordo com as práticas padrão do centro para ciclos CAPA-IVM.
Complexos cumulus-oócitos (COCs) de pequenos folículos após OPU serão divididos em 2 grupos:
- Grupo 1: 10 AOCs doados serão cultivados nas etapas CAPA e IVM, adicionando 50ng/ml de Super-GDF9 durante ambas as etapas no CAPA-IVM.
- Grupo 2: Os COCs restantes do sujeito serão cultivados nas etapas CAPA e IVM sem adição de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
Grupos 1 e 2: Coleta após a etapa de capacitação: meio gasto e poços brancos. Coleta após a etapa de maturação: meio gasto, células cumulus e poços em branco.
+ CAPA e cultura de maturação: A cultura de CAPA e maturação será realizada rotineiramente seguindo os protocolos laboratoriais atuais. ICSI será usada para fertilizar oócitos maduros.
Tipo de estudo
Inscrição (Estimado)
Estágio
- Não aplicável
Contactos e Locais
Contato de estudo
- Nome: Kha T Huynh
- Número de telefone: +84946699470
- E-mail: kha.ht@myduchospital.vn
Locais de estudo
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Ho Chi Minh City, Vietnã
- Recrutamento
- My Duc Hospital
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Contato:
- Tuong M Ho, MSc, MD
- Número de telefone: +84 90 3633377
- E-mail: tuongho.ivfmd@gmail.com
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Critérios de participação
Critérios de elegibilidade
Idades elegíveis para estudo
- Adulto
Aceita Voluntários Saudáveis
Descrição
Critérios de inclusão:
- Mulheres entre 18 e 35 anos (ambos incluídos)
- IMC ≤ 32 kg/m2
- Mulheres com SOP de acordo com os critérios de Rotterdam (2003)
- Indicando tratamento CAPA-IVM.
- AMH sérico ≥ 4 ng/mL (28,57 pmol/L) na triagem e ter pelo menos 50 folículos antrais em dois ovários por ultrassonografia transvaginal no momento da indicação do CAPA-IVM
- Disposto a doar 10 AOCs para fins de pesquisa
- Concordando com embrião congelado
- Consentimento informado assinado antes de qualquer procedimento relacionado ao estudo
Critérios de exclusão:
- Endometrioma conhecido ou endometriose grau 3-4 de acordo com a classificação ASRM
- Anormalidades uterinas
- Casais com fator masculino grave (concentração de espermatozoides <5 milhões/ml, motilidade <10%), recuperação cirúrgica de espermatozoides.
- História anterior de oócitos imaturos inexplicáveis após tratamento de fertilização in vitro
- Ciclos usando ovócitos de doadores
Plano de estudo
Como o estudo é projetado?
Detalhes do projeto
- Finalidade Principal: Tratamento
- Alocação: Não randomizado
- Modelo Intervencional: Atribuição Paralela
- Mascaramento: Nenhum (rótulo aberto)
Armas e Intervenções
Grupo de Participantes / Braço |
Intervenção / Tratamento |
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Comparador Ativo: CAPA-IVM convencional
Grupo 2: Os COCs restantes do sujeito serão cultivados na etapa CAPA e na etapa IVM sem a adição de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
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Grupo 2: Os COCs restantes do sujeito serão cultivados na etapa CAPA e na etapa IVM sem a adição de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
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Experimental: Suplementação de Super-GDF9 durante CAPA-IVM
Grupo 1: os COCs doados serão cultivados na etapa CAPA e na etapa IVM, com adição de Super-GDF9 durante CAPA-IVM.
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Grupo 1: COCs doados serão expostos ao Super-GDF9 a 50 ng/ml nas etapas de cultura de CAPACITAÇÃO e MATURAÇÃO.
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O que o estudo está medindo?
Medidas de resultados primários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Taxa de maturação por COC
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
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Número de MII/COCs
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Dois dias após a retirada do oócito
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Medidas de resultados secundários
Medida de resultado |
Descrição da medida |
Prazo |
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Taxa de maturação por paciente
Prazo: Dois dias após a retirada do oócito
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Número de MII/paciente
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Dois dias após a retirada do oócito
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Taxa de degeneração por COC
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de oócitos degenerados após MIV/AOCs
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de degeneração por MII
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de oócitos degenerados após IVM/MII
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de degeneração por paciente
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de ovócitos degenerados após MIV/pacientes
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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t2PN
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Tempo de aparecimento de dois pronúcleos
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de fertilização por COC
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de oócitos fertilizados/COCs
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de fertilização por MII
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de ovócitos fertilizados/MII
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de fertilização por paciente
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de oócitos fertilizados/pacientes
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de fertilização anormal por COC
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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A porcentagem de zigotos com 1,3 ou mais de 3 pronúcleos após injeção intracitoplasmática de espermatozóides/AOCs
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de fertilização anormal por MII
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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A porcentagem de zigotos com 1,3 ou mais de 3 pronúcleos após injeção intracitoplasmática de espermatozóides / MII
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de fertilização anormal por paciente
Prazo: 16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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A porcentagem de zigotos com 1,3 ou mais de 3 pronúcleos após injeção intracitoplasmática de espermatozóides/pacientes
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16-18 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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tPNf
Prazo: 23-25 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Tempo de desaparecimento dos pronúcleos
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23-25 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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t2
Prazo: 25-27 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Primeiro período de tempo em que um embrião atinge o estágio de blastômeros de 2 células
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25-27 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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t3
Prazo: 25-42 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Primeiro período de tempo em que um embrião atinge o estágio de blastômeros de 3 células
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25-42 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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t4
Prazo: 42-44 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Primeiro período de tempo em que um embrião atinge o estágio de blastômeros de 4 células
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42-44 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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t5
Prazo: 44-67 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Primeiro período de tempo em que um embrião atinge o estágio de blastômeros de 5 células
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44-67 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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t8
Prazo: 67-69 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Primeiro período de tempo em que um embrião atinge blastômeros no estágio de 8 células
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67-69 horas após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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TSC
Prazo: Durante o dia 3 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóides (início da compactação dos blastômeros)
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Primeira evidência de compactação
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Durante o dia 3 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóides (início da compactação dos blastômeros)
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Taxa de embriões no dia 3 por COC
Prazo: Cinco dias após a retirada do oócito
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Contando o número de pacientes com embriões/AOCs no Dia 3
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Cinco dias após a retirada do oócito
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Taxa de embriões no dia 3 por MII
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Contando o número de pacientes com embrião do dia 3/MII
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Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de embriões no dia 3 por paciente
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Contando o número de pacientes com embriões/pacientes do Dia 3
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Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Embriões do dia 3 de boa qualidade por COC
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de embriões / AOCs de grau 1 e grau 2 no dia 3
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Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Embriões do dia 3 de boa qualidade por MII
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de embriões de grau 1 e grau 2 no dia 3/MII
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Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Embriões do terceiro dia de boa qualidade por paciente
Prazo: Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de embriões/pacientes de grau 1 e grau 2 no dia 3
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Três dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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tM
Prazo: Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Tempo de conclusão do processo de compactação
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Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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tSB
Prazo: Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide (em que a blastocele é visível)
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Início da blastulação
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Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide (em que a blastocele é visível)
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TB
Prazo: Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóides (antes que a zona comece a afinar)
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Blastocisto completo
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Durante o dia 4 após a injeção intracitoplasmática de espermatozóides (antes que a zona comece a afinar)
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Taxa de blastocistos por COC (dia 5 ou 6 embrião)
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Contando o número de pacientes com embriões/AOCs no Dia 5 ou no Dia 6
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de blastocisto por MII
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Contando o número de pacientes com embrião/MII no dia 5 ou no dia 6
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de blastocisto por paciente
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Contando o número de pacientes com embrião/paciente no Dia 5 ou Dia 6
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Blastocistos de boa qualidade por COC
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de blastocistos/AOCs de grau 1 e grau 2
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Blastocistos de boa qualidade por MII
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de blastocistos grau 1 e grau 2/MII
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Blastocistos de boa qualidade por paciente
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Número de blastocistos/pacientes de grau 1 e grau 2
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de blastocistos congelados por COC
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Contando o número de blastocistos/AOCs congelados
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de blastocistos congelados por MII
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Contando o número de blastocistos congelados/MII
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Taxa de blastocistos congelados por paciente
Prazo: Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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Contagem do número de blastocistos congelados/paciente
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Cinco ou seis dias após a injeção intracitoplasmática de espermatozóide
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A razão de expressão relativa (R) dos genes das células cumulus humanas
Prazo: As células cumulus serão coletadas e congeladas dentro de 30-50 minutos após a desnudação dos oócitos, armazenadas a -80oC até a purificação do RNA.
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Serão coletadas células Cumulus, síntese de cDNA após purificação de mRNA, PCR de quantificação relativa para detecção de expressão gênica (resultados potencialmente relatados separadamente)
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As células cumulus serão coletadas e congeladas dentro de 30-50 minutos após a desnudação dos oócitos, armazenadas a -80oC até a purificação do RNA.
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Taxas de blastocistos por status cromossômico em PGT
Prazo: Após a conclusão do estudo, em média 1 ano.
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PGT será realizado para classificar blastocistos como euploides, aneuploides ou mosaicos (resultados potencialmente relatados separadamente)
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Após a conclusão do estudo, em média 1 ano.
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Avaliação Epigenética
Prazo: Após a conclusão do estudo, em média 1 ano.
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A avaliação epigenética dos blastocistos será realizada por marcação do adaptador pós-bissulfito (PBAT), e a metilação média do DNA (%) nas regiões diferencialmente metiladas da linha germinativa impressa (gDMRs) será calculada (resultados potencialmente relatados separadamente)
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Após a conclusão do estudo, em média 1 ano.
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Colaboradores e Investigadores
Patrocinador
Colaboradores
Investigadores
- Investigador principal: Lan N Vuong, University of Medicine and Pharmacy at Ho Chi Minh City
Publicações e links úteis
Publicações Gerais
- Rotterdam ESHRE/ASRM-Sponsored PCOS consensus workshop group. Revised 2003 consensus on diagnostic criteria and long-term health risks related to polycystic ovary syndrome (PCOS). Hum Reprod. 2004 Jan;19(1):41-7. doi: 10.1093/humrep/deh098.
- Saenz-de-Juano MD, Ivanova E, Romero S, Lolicato F, Sanchez F, Van Ranst H, Krueger F, Segonds-Pichon A, De Vos M, Andrews S, Smitz J, Kelsey G, Anckaert E. DNA methylation and mRNA expression of imprinted genes in blastocysts derived from an improved in vitro maturation method for oocytes from small antral follicles in polycystic ovary syndrome patients. Hum Reprod. 2019 Sep 29;34(9):1640-1649. doi: 10.1093/humrep/dez121.
- Practice Committee of the American Society for Reproductive Medicine. Endometriosis and infertility: a committee opinion. Fertil Steril. 2012 Sep;98(3):591-8. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.031. Epub 2012 Jun 15.
- Vuong LN, Ho VNA, Ho TM, Dang VQ, Phung TH, Giang NH, Le AH, Pham TD, Wang R, Smitz J, Gilchrist RB, Norman RJ, Mol BW. In-vitro maturation of oocytes versus conventional IVF in women with infertility and a high antral follicle count: a randomized non-inferiority controlled trial. Hum Reprod. 2020 Nov 1;35(11):2537-2547. doi: 10.1093/humrep/deaa240.
- Akin N, Ates G, von Mengden L, Herta AC, Meriggioli C, Billooye K, Stocker WA, Ghesquiere B, Harrison CA, Cools W, Klamt F, Massie A, Smitz J, Anckaert E. Effects of lactate, super-GDF9, and low oxygen tension during bi-phasic in vitro maturation on the bioenergetic profiles of mouse cumulus-oocyte complexdagger. Biol Reprod. 2023 Oct 13;109(4):432-449. doi: 10.1093/biolre/ioad085.
- Practice Committees of the American Society for Reproductive Medicine, the Society of Reproductive Biologists and Technologists, and the Society for Assisted Reproductive Technology. Electronic address: jgoldstein@asrm.org. In vitro maturation: a committee opinion. Fertil Steril. 2021 Feb;115(2):298-304. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.11.018. Epub 2020 Dec 24.
- Gilchrist RB, Ho TM, De Vos M, Sanchez F, Romero S, Ledger WL, Anckaert E, Vuong LN, Smitz J. A fresh start for IVM: capacitating the oocyte for development using pre-IVM. Hum Reprod Update. 2024 Jan 3;30(1):3-25. doi: 10.1093/humupd/dmad023.
- Herta AC, von Mengden L, Akin N, Billooye K, Coucke W, van Leersum J, Cava-Cami B, Saucedo-Cuevas L, Klamt F, Smitz J, Anckaert E. Characterization of carbohydrate metabolism in in vivo- and in vitro-grown and matured mouse antral folliclesdagger. Biol Reprod. 2022 Oct 11;107(4):998-1013. doi: 10.1093/biolre/ioac124.
- Stocker WA, Walton KL, Richani D, Chan KL, Beilby KH, Finger BJ, Green MP, Gilchrist RB, Harrison CA. A variant of human growth differentiation factor-9 that improves oocyte developmental competence. J Biol Chem. 2020 Jun 5;295(23):7981-7991. doi: 10.1074/jbc.RA120.013050. Epub 2020 Apr 29.
- Krisher RL, Bavister BD. Enhanced glycolysis after maturation of bovine oocytes in vitro is associated with increased developmental competence. Mol Reprod Dev. 1999 May;53(1):19-26. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199905)53:13.0.CO;2-U.
- Ortmann B, Druker J, Rocha S. Cell cycle progression in response to oxygen levels. Cell Mol Life Sci. 2014 Sep;71(18):3569-82. doi: 10.1007/s00018-014-1645-9. Epub 2014 May 25.
- Mottershead DG, Sugimura S, Al-Musawi SL, Li JJ, Richani D, White MA, Martin GA, Trotta AP, Ritter LJ, Shi J, Mueller TD, Harrison CA, Gilchrist RB. Cumulin, an Oocyte-secreted Heterodimer of the Transforming Growth Factor-beta Family, Is a Potent Activator of Granulosa Cells and Improves Oocyte Quality. J Biol Chem. 2015 Sep 25;290(39):24007-20. doi: 10.1074/jbc.M115.671487. Epub 2015 Aug 8.
- Vuong LN, Nguyen MHN, Nguyen NA, Ly TT, Tran VTT, Nguyen NT, Hoang HLT, Le XTH, Pham TD, Smitz JEJ, Mol BW, Norman RJ, Ho TM. Development of children born from IVM versus IVF: 2-year follow-up of a randomized controlled trial. Hum Reprod. 2022 Jul 30;37(8):1871-1879. doi: 10.1093/humrep/deac115.
Datas de registro do estudo
Datas Principais do Estudo
Início do estudo (Real)
Conclusão Primária (Real)
Conclusão do estudo (Estimado)
Datas de inscrição no estudo
Enviado pela primeira vez
Enviado pela primeira vez que atendeu aos critérios de CQ
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Atualizações de registro de estudo
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Estuda um medicamento regulamentado pela FDA dos EUA
Estuda um produto de dispositivo regulamentado pela FDA dos EUA
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