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CRISPR編集されたHLAドナー腎臓移植により、拒絶リスクを減らします

フェーズ1/2、シングルアーム、オープンラベル試験では、ヒト腎移植レシピエントにおけるex vivo CRISPR-CAS9遺伝子編集ドナー腎臓(HLA-A、HLA-B、およびCIITAのノックアウト)の安全性、実現可能性、および免疫原性を評価する

この臨床試験では、CRISPR-CAS9ゲノム編集を使用して免疫原性と移植拒絶反応を減らすために、Ex vivoを遺伝子組み換えたドナー腎臓の移植を調査します。 ドナー腎臓移植片には、主要なヒト白血球抗原(HLA)遺伝子が破壊されます。特に、HLAクラスIヘビーチェーンHLA-AおよびHLA-Bのノックアウトと、CIITA遺伝子(HLA-DR/DQ/DP/DPのマスターレギュレーター)を標的とすることによりHLAクラスII発現を無効にします。 約90人の成人末期腎疾患患者は、CRISPR編集ドナー腎臓移植を受けます。 主な目的は、この新しい介入の安全性と実現可能性を評価することです。一方、二次目標は、免疫応答(免疫原性)の減少、移植機能、およびヒトにおけるex vivo遺伝子編集臓器移植の実用性を評価することです。 主要なドナーHLA分子をノックアウトすることにより、この試験は、移植片のT細胞および抗体を介した認識を減らし、拒絶速度を下げる可能性があり、高用量免疫抑制剤への依存を目的としています。 オフターゲット効果や予期せぬ免疫反応を含む安全性は綿密に監視され、移植の結果は移植後1年間追跡されます。

調査の概要

詳細な説明

臓器移植では、ドナーとレシピエントの間のHLA遺伝子の違いは、同種認識と移植片拒絶の主要なドライバーです。 不一致のドナーHLA抗原は、レシピエントの免疫系によって「非自己」として特定され、CD8+細胞毒性Tリンパ球応答、CD4+ Tヘルパー応答、およびグラフトを損傷する可能性のあるナチュラルキラー(NK)細胞活性化を引き起こします。 免疫抑制薬は拒絶を軽減できますが、ドナーHLAがなじみがない場合、患者は拒絶反応のリスクがあり、生涯にわたる免疫抑制には重大な病的(感染、悪性腫瘍など)が含まれます。

完全なHLAマッチングは、特に事前に形成された抗HLA抗体を持つ高感度の個人では、すべての患者にとって達成可能ではありません。 これに対処するために、研究者は、最も免疫原性HLA分子の発現を除去または還元することにより、ドナー組織を「低免疫原性」にすることを提案しました。 前臨床研究では、重要なHLAクラスIおよびII抗原を排除すると、同種細胞の免疫認識と拒絶を防ぐことができることが示されています。 たとえば、HLA-A、HLA-B、およびHLA-DR(DRA遺伝子を介して)をノックアウトする誘導多能性幹細胞のゲノム編集(DRA遺伝子を介して)は、T細胞応答を回避するユニバーサル細胞移植片を正常に作成しました。 同様に、動物モデルでは、ドナー臓器における主要な組織適合性複合体(MHC)遺伝子のサイレンシングが劇的に長期にわたって移植生存を延長します。 最近のブタの研究では、MHC(SLA遺伝子)発現の減少を伴うドナー肺は、結果を著しく改善しました。

一方、3か月以内に、変更されていない臓器を受けているすべてのコントロールピッグが拒否されました。 治療された動物は、ドナー特異的抗体産生の減少とT細胞反応性を示し、移植片抗原性の低下が拒絶反応を改善できることを示しています。 これらの発見は、ドナーHLA遺伝子をノックアウトすることで、ヒト同種移植片免疫原性を低下させ、免疫抑制が少ない際に移植片の生存率が向上する可能性があるという強力な根拠を提供します。

この試験は、移植前のHLA発現を減少させるために、ドナー臓器にex vivo crispr-cas9遺伝子編集を適用することです。 編集戦略は、ドナー腎臓のHLAクラスIおよびII経路を対象としています。HLA-AとHLA-Bの両方の遺伝子がノックアウトされます(二連絡合)、HLAクラスIIの発現は、HLA-DR、-DQ、および-DP発現に必要な転写活性化因子であるCiitaをノックアウトすることにより除去されます。 意図した結果は、古典的なHLAクラスIおよびII分子をほとんど欠いている腎臓移植片です。

特に、HLA-C(クラスI遺伝子)は部分的に保持される場合があります(例: 低レベルのクラスI表現を維持するために、1つの対立遺伝子のみがノックアウトしました - この戦略は、すべてのクラスIが存在しないときに発生するNK細胞媒介の「欠落」応答を回避するのに役立ちます。 最小限のHLA-Cまたは非耳型HLA-E/G発現を保存することにより、移植片は、T細胞および抗体応答を誘発する非常に多型HLA-A/BおよびクラスII抗原がまだ欠けている間、NK細胞攻撃を回避する可能性があります。 全体的な仮説は、このようなCRISPR編集された「ステルス」腎臓は免疫原性が大幅に少なくなり、急性拒絶反応が少なくなり、抗移植抗体形成の減少につながり、移植の成功が改善されるということです。

研究の種類

介入

入学 (推定)

90

段階

  • フェーズ2
  • フェーズ 1

連絡先と場所

このセクションには、調査を実施する担当者の連絡先の詳細と、この調査が実施されている場所に関する情報が記載されています。

研究連絡先

研究場所

    • Changping
      • Beijing、Changping、中国、102206
        • 募集
        • Peking University Health Science Center (PKUHSC)
        • コンタクト:
          • Huan Yang, Phd
          • 電話番号:+8613202512868
          • メール:PAD@aotcri.org

参加基準

研究者は、適格基準と呼ばれる特定の説明に適合する人を探します。これらの基準のいくつかの例は、人の一般的な健康状態または以前の治療です。

適格基準

就学可能な年齢

  • 子
  • 大人
  • 高齢者

健康ボランティアの受け入れ

いいえ

説明

包含基準:

  • 16歳から85歳の成人患者、腎臓移植の候補者である末期腎疾患(ESRD)。 これには、移植のために評価およびリストされている透析または透析に近づく患者が含まれます。
  • 医学的評価に基づいた移植手術の対象となります(つまり、主要な手術と移植に対する禁忌はありません)。 患者の全体的な健康状態は、移植手術と必要な免疫抑制を受けるのに十分でなければなりません。
  • 利用可能な適切なドナー臓器:移植の標準的な許容基準(適切な臓器機能と解剖学)を満たし、レシピエントと互換性のあるABO血液型を満たす故人の腎臓。 ドナー腎臓は試験に割り当てられ、移植前にex vivo遺伝子編集に利用できる必要があります。
  • インフォームドコンセント:患者(または法的に認可された代表者)は、研究の実験的性質を理解することができ、インフォームドコンセントフォームに自発的に署名しました。 患者は、すべての研究手順、フォローアップ訪問、および臨床検査に慣れても構わないようにしなければなりません。
  • ネガティブクロスマッチ(該当する場合):即時の移植片障害を引き起こす既存の抗存在防止反応性はありません。 (すべてのレシピエントは、特にHLA-Cなどの残りのドナーHLAに対して、強力なベースラインドナー特異的抗体に対して強力なベースラインドナー固有の抗体を確保するために、標準的な慣行に従って、移植前にドナー臓器と陰性のTおよびB細胞クロスマッチを持つ必要があります。)
  • 出産の可能性を秘めた女性は、妊娠検査が陰性であり、免疫抑制剤の使用と妊娠中の遺伝子編集臓器移植の未知の効果を考えると、研究中および(例えば、移植後1年後に指定する)後の効果的な避妊を使用することに同意する必要があります。 出産可能性のあるパートナーを持つ男性も、避妊を使用することに同意すべきです。
  • 免疫学的リスクの高い患者は適格です:介入は広範なHLA感作の患者に利益をもたらすように設計されているため、この試験では、高パネル反応性抗体レベルまたは感作の既往(以前の移植、輸血、または妊娠による)の患者が許可され、さらに予想されています。 たとえば、計算されたPRA> 80%(一致したドナーを見つけるのが難しい)の患者を含めることができます。 (そのような患者は、上記のクロスマッチ基準をまだ満たす必要があります - 既存の抗体は、編集された移植片に残っている抗原を標的としてはなりません。)
  • 地理的利用可能性:患者は、中国の研究センターで長期的なフォローアップに利用できるか、予定されているフォローアップ訪問のために旅行できる必要があります。 彼らは、標準的な移植ケアに従って、最初の術後期間の移植センターに近接していることをいとわないはずです。

除外基準:

  • 活性感染:移植を禁止したり、免疫抑制によって悪化する進行中の重度の感染症(例えば、活性結核、未治療のB型肝炎またはC、HIV、制御されていないウイルス血症など)。 制御されたHIVの患者(検出不能なウイルス量の安定した抗レトロウイルス療法)は、ケースバイケースで考慮される場合がありますが、活発な制御された感染症は除外されます。
  • 妊娠または母乳育児:妊娠中の女性は、免疫抑制薬の必要性と胎児の治験介入の未知のリスクのために除外されます。 母乳育児中の女性は、牛乳中の潜在的な薬物排泄と乳児への不明なリスクのために除外されます。
  • マルチオルガン移植のニーズ:複数の臓器移植を同時に必要とする患者(例:腎臓 +肝臓、または腎臓 +心臓)は除外されます。 (以前の移植の履歴は、患者が腎臓のみを必要とする場合、自動排除ではありませんが、同時のマルチオルガン要件は除外されます。)
  • 移植リスクを大幅に増加させる、または交絡結果を大幅に増加させる重度の併存疾患:たとえば、制御されていない心血管疾患(たとえば、最近の心筋梗塞、重度の心不全)、ESRDを超えた末端肝障害を伴う制御されない糖尿病、重度の肝臓機能障害、または他の生命測定疾患は腎不全に抑制されません。 そのような状態は、手術を安全でないか、結果を解釈するのが難しい可能性があります。
  • 免疫抑制の禁忌:標準的な免疫抑制療法を排除する状態の患者(たとえば、管理できないタクロリムスまたはマイコフェノール酸のアナフィラキシの既往、または免疫抑制によって致命的に悪化する慢性感染症)は除外されます。 この試験は依然としてベースライン免疫抑制剤に依存しているため、患者はそれらに耐えることができなければなりません。
  • プロトコルに従うことができないこと:精神障害の重大な障害、認知障害、または研究プロトコルとフォローアップの順守を可能にする社会的状況の患者。 これには、インフォームドコンセントまたは集中的なフォローアップに対するサポートの欠如を与えることができないことが含まれます(たとえば、患者が投獄されているか、住所が固定されていない場合など)。
  • 以前の遺伝子治療または臓器実験の参加:以前に治験遺伝子治療を受けたことがある患者、またはドナー特異的耐性誘導またはその他の実験的移植治療を行っている患者は、交絡効果を避けるために除外される場合があります。 (これは、CRISPR編集臓器介入に特に成果を帰することを予防することです。)
  • 実験室の異常:ベースラインラボの臨床的に有意な異常は、追加のリスクをもたらすものです。たとえば、免疫抑制で悪化する可能性のある重度の白血球減少症または血小板減少症、または外科的リスクを引き起こす制御されていない凝固障害。
  • ドナー関連の除外:検索時にドナー腎臓が遺伝子編集または移植に適さない場合(例えば、臓器の臓器の質の低さ、臓器の予期しない疾患、またはCRISPR編集が標的遺伝子の十分なノックアウトを達成できない場合)、その患者への移植は研究下で標準的な移植を受けているか、標準移植を受けていないか。 そのような場合、患者は撤回または延期される可能性がありますが、これは患者の特徴ではなく手続き上の考慮事項です。

研究計画

このセクションでは、研究がどのように設計され、研究が何を測定しているかなど、研究計画の詳細を提供します。

研究はどのように設計されていますか?

デザインの詳細

  • 主な目的:処理
  • 割り当て:なし
  • 介入モデル:単一グループの割り当て
  • マスキング:なし(オープンラベル)

武器と介入

参加者グループ / アーム
介入・治療
実験的:CRISPR編集ドナー腎臓移植
登録されているすべての参加者は、HLA-AとHLA-B(クラスI)およびCIITA遺伝子を破壊するために、ex vivo CRISPR-CAS9遺伝子編集を受けた腎臓同種移植を受け取ります(HLAクラスIIの発現を広く抑制する)。 編集された腎臓は、標準的な手術技術を使用して患者に移植されます。 参加者は、従来の移植後免疫抑制レジメン(グラフト免疫原性の低下を適切に調整する可能性がある)で維持されます。 腕の説明:各患者が遺伝子編集された腎臓移植片を受けている実験群にいる単一腕の試験。
ドナー腎臓は、遺伝子HLA-A、HLA-B、およびCIITAを標的とするCRISPR-CAS9リボ核タンパク質複合体で体の外側で処理されます。 この遺伝的介入は、ドナー細胞のHLA -A/Bをノックアウトし、CIITA(クラスII抗原提示に不可欠)を破壊することにより、HLA -DR、-DQ、-DPの発現を無効にします。 目標は、免疫原性表面タンパク質が大幅に減少した移植臓器を作成することです。 (これは、移植前にドナー臓器に適用される1回限りの遺伝子操作です。患者自身の細胞に直接遺伝子治療は行われません。)
遺伝子編集後、ドナー腎臓は外科的移植手術でレシピエントに埋め込まれます。 標準的な術中ケアが提供されます。 すべての患者は、移植後の標準的な免疫抑制療法(中央プロトコルごとのタクロリムス、マイコフェノール酸、プレドニゾンなど)を拒否を防ぐために投与されますが、レジメンは編集された移植片の予想される低免疫性に基づいて調整される場合があります。 患者は移植のために入院し、術後の期間中に綿密に監視され、その後、診療所で頻繁に移植アフターケアのために続きます。

この研究は何を測定していますか?

主要な結果の測定

結果測定
メジャーの説明
時間枠
治療関連の深刻な有害事象の発生率
時間枠:移植後の0日目から365日目
移植後最初の12か月以内に、おそらく遺伝子編集移植手術に関連する深刻な有害事象(SAE)を経験する参加者の数。
移植後の0日目から365日目
6か月での移植生存
時間枠:6ヶ月
移植後6か月で実行可能で機能的なままである移植遺伝子編集腎臓の割合。 移植片の生存は、腎臓移植片が拒絶反応や他の原因に失われていないと定義されます(つまり、レシピエントは慢性透析に戻るのではなく、機能する移植で生きています)測定単位:機能する移植片の参加者(N、%)
6ヶ月

二次結果の測定

結果測定
メジャーの説明
時間枠
急性拒絶エピソード
時間枠:12か月
移植後最初の12か月以内の急性拒絶イベントの発生率。 これは、患者ごとに生検確認された急性同種移植片拒絶(急性T細胞媒介拒絶または抗体媒介拒絶反応)のエピソードと、少なくとも1つの拒絶反応を経験する患者の割合として測定されます。 測定単位:参加者ごとのエピソード
12か月
ドナー特異的抗体(DSA)開発
時間枠:12か月
DE-NOVO抗ドナーHLA抗体を開発した参加者の数(MFI≥1000)。 時間枠:ベースラインから12ヶ月目の測定単位:DE-NOVO DSAの参加者(N、%)
12か月
12か月目のEGFRを平均します
時間枠:12か月
12±7日間のCKD-EPIによって計算された平均EGFR。 ユニット:ml/min/1.73 m²(平均±sd)
12か月
ドナー反応性IFN-γ産生T細胞の頻度(ELISPOT)
時間枠:12か月
ベースラインと比較して、6か月目のElispotアッセイにおける10°PBMCあたりのスポット形成セル。 ユニット:スポット形成セル/10⁶PBMC(平均±SD)
12か月
インデル変異を伴うHLA-A対立遺伝子の割合(NGS)
時間枠:30日
次世代シーケンスによって決定される、インプラント前生検でのHLA-A遺伝子座でのインデル頻度。
30日
12か月での患者全体の生存
時間枠:12か月
移植後12ヶ月で生きた参加者。
12か月

協力者と研究者

ここでは、この調査に関係する人々や組織を見つけることができます。

研究記録日

これらの日付は、ClinicalTrials.gov への研究記録と要約結果の提出の進捗状況を追跡します。研究記録と報告された結果は、国立医学図書館 (NLM) によって審査され、公開 Web サイトに掲載される前に、特定の品質管理基準を満たしていることが確認されます。

主要日程の研究

研究開始 (実際)

2025年6月1日

一次修了 (推定)

2027年12月18日

研究の完了 (推定)

2028年12月28日

試験登録日

最初に提出

2025年6月8日

QC基準を満たした最初の提出物

2025年6月26日

最初の投稿 (推定)

2025年7月8日

学習記録の更新

投稿された最後の更新 (推定)

2025年7月8日

QC基準を満たした最後の更新が送信されました

2025年6月26日

最終確認日

2025年6月1日

詳しくは

本研究に関する用語

個々の参加者データ (IPD) の計画

個々の参加者データ (IPD) を共有する予定はありますか?

いいえ

医薬品およびデバイス情報、研究文書

米国FDA規制医薬品の研究

いいえ

米国FDA規制機器製品の研究

いいえ

この情報は、Web サイト clinicaltrials.gov から変更なしで直接取得したものです。研究の詳細を変更、削除、または更新するリクエストがある場合は、register@clinicaltrials.gov。 までご連絡ください。 clinicaltrials.gov に変更が加えられるとすぐに、ウェブサイトでも自動的に更新されます。

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